Сравнительная оценка биологических свойств штаммов ортохантавируса Amur на различных моделях in vivo

Представлен сравнительный анализ биологических свойств штаммов ортохантавируса Amur, выделенных от природных носителей в разных географических районах юга Дальнего Востока России, на модели лабораторных животных. Сравнивали вирулентность ортохантавирусов.

Рубрика Биология и естествознание
Вид статья
Язык русский
Дата добавления 30.03.2021
Размер файла 26,6 K

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

Размещено на http://www.allbest.ru/

Сравнительная оценка биологических свойств штаммов ортохантавируса Amur на различных моделях in vivo

А.Б. Потт, Г.Г. Компанец

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт эпидемиологии

и микробиологии имени Г.П. Сомова»

Аннотация

Ортохантавирусы, РНК-содержащие вирусы, широко распространены во многих регионах мира благодаря основным носителям - мелким мышевидным грызунам и являются возбудителями таких природно-очаговых инфекций человека, как геморрагическая лихорадка с почечным синдромом (ГЛПС) и хантавирусный сердечно-легочный синдром (ХСЛС). В Приморском крае установлена циркуляция двух патогенных для человека геновариантов ортохантавируса Hantaan (Far East и Amur), вызывающих тяжелые формы инфекции, с показателем летальности в отдельные годы до 16%.

В данной работе представлен сравнительный анализ биологических свойств штаммов ортохантавируса Amur, выделенных от природных носителей в разных географических районах юга Дальнего Востока России, на модели лабораторных животных. Сравнивали вирулентность ортохантавирусов для двух видов лабораторных животных (крыс и мышей), а также способность вызывать выработку противовирусных антител. Экспериментальную инфекцию моделировали на животных разного возраста и при разных путях введения вируса. Результаты исследования показали разный диапазон вирулентности штаммов ортохантавируса Amur для новорожденных белых мышей в возрасте 24-36 часов, от высокой вирулентности (штамм 25776-2004), приводящей к показателю летальности 77.5% зараженных животных, до низкой вирулентности (штамм 25786-2004, показатель летальности 15.0%). Кроме того, штамм 27191-2004 был авирулентным для данного вида новорожденных животных. При увеличении возраста модельных животных показатели летальности соответственно уменьшались. У сосунков белых крыс только отдельные штаммы ортохантавируса Amur вызывали клиническую, но не летальную инфекцию, а остальные штаммы были авирулентными. Все исследованные штаммы ортохантавируса Amur были иммунногенными, вызывая процесс антителообразования при разных исходах инфекции, при этом, титр специфических антител был ниже у животных с летальной инфекцией. Полученные результаты показали значительную неоднородность биологических свойств группы исследованных штаммов ортохантавируса Amur, отражая фенотипическую гетерогенность изолятов, выделенных от восточноазиатской мыши, по всей видимости, обусловленную их генетическим разнообразием, а также необходимость в разработке более приемлемой биологической модели.

Ключевые слова: ортохантавирус, Amur, биологические свойства, вирулентность.

Abstract

COMPARATIVE EVALUATION OF AMUR ORTHOHANTAVIRUS STRAINS BIOLOGICAL PROPERTIES ON VARIOUS IN VIVO MODELS

A.B. Pott, G.G. Kompanets

Somov Research Institute of Epidemiology and Microbiology

Orthohantaviruses, RNA-containing viruses, are widely distributed in many regions of the world due to their main carriers - small mouse-like rodents and are the causative agents of such human infections as hemorrhagic fever with renal syndrome (HFRS) and hantavirus cardiopulmonary syndrome (HPS). In the territory of Primorsky Krai circulation of two pathogenic orthohantavirus Hantaan genovariants (Far East and Amur) has been established with severe forms of infection and mortality rate up to 16%. This paper presents a comparative analysis of the biological properties of orthohantavirus Amur strains isolated from natural hosts in different geographic areas of the south of the Far East Russian, on the models of laboratory animals. We compared the virulence of orthohantaviruses for two types of laboratory animals (rats and mice), as well as the ability of viruses to induce the production of antiviral antibodies. Experimental infection was modeled on animals of different ages and by different routes of administration of the virus. The results of the study demonstrated a different range of virulence of Amur orthohantavirus for newborn white mice aged 24-36 hours, from high virulence (strain 25776-2004), resulting in a mortality rate of 77.5% of infected animals, to low virulence (strain 25786-2004, mortality rate 15.0%). In addition, strain 271912004 was avirulent for this species of newborn animals. With an increase in the age of model animals, the mortality rates decreased accordingly. In newborn white rats, only few strains of Amur orthohantavirus caused a clinical symptom, but not a lethal infection, and the other strains were virulent. All the studied strains of Amur orthohantavirus were immunogenic, causing the antibody-formation process at different infection outcomes, while the titer of specific antibodies was lower in animals with a lethal infection. The results showed a significant heterogeneity of the biological properties in the group of studied Amur orthohantavirus strains, reflecting the phenotypic heterogeneity of strains isolated from a forest mouse, apparently due to their genetic diversity, as well as the need to develop a more acceptable biological model.

Keywords: orthohantavirus, Amur, biological properties, virulence

Ортохантавирусы (род Orthohantavirus в семействе Hantaviridae, порядок Bunyavirales, ранее род Hantavirus, семейство Bunyaviridae) [1] это РНК-содержащие вирусы, широко распространенные во многих регионах мира, благодаря природным хозяевам - грызунам и насекомоядным, у которых вызывают бессимптомную хроническую инфекцию с выделением вируса в окружающую среду. В отличие от других буньявирусов ортохантавирусы не передаются человеку членистоногими, основной путь заражения человека - вдыхание аэрозолей, инфицированных выделениями грызунов-хозяев [2, 3]. В Евразии ортохантавирусы являются возбудителями такого заболевания людей, как геморрагическая лихорадка с почечным синдромом (ГЛПС), ежегодно регистрируется до 110 000 случаев ГЛПС различной степени тяжести. К настоящему времени, в мире генетически охарактеризовано более 80 типов ортохантавирусов, роль некоторых из них в патологии человека до конца не установлена. [3, 4] В Приморском крае установлена циркуляция, по меньшей мере, двух патогенных для человека ортохантавирусов: вируса Hantaan, генетические варианты Far East и Amur (природные носители - полевая мышь Apodemus agrarius и восточноазиатская мышь A.pen- insulae, соответственно) и вируса Seoul, генетический вариант Vladivostok (резервуар - серая крыса Rattus norvegicus) [5, 6].

Цель настоящей работы - сравнить вирулентность штаммов генетического варианта Amur, выделенных в разные годы на территории Приморского края, для лабораторных животных разных видов.

МЕТОДИКА ЭКСПЕРИМЕНТА

биологический штамм ортохантавирус amur

В эксперименте использовали вируссодержащий супернатант, полученный при инфицировании линии клеток Vero E-6 штаммами ортохантавируса Amur из рабочей коллекции лаборатории экспериментальной вирусологии НИИ эпидемиологии и микробиологии имени Г. П. Сомова (таблица 1).

Титр вируса определяли согласно методике Lee P.W. et al. [7], в нашем эксперименте он составлял не менее 4.0 lg ФОЕ/1.0 мл.

В эксперименте проводили заражение сосунков белых лабораторных мышей в возрасте 24-48 часов, и белых лабораторных крыс в возрасте 24 часа, 3 дня и 14 дней. Животных (1 самка и новорожденное потомство в отдельной клетке) содержали в стандартных условиях вивария: в пластиковых клетках с мелкой древесной стружкой, стандартный рацион и питьевой режим предоставлен в соответствии с нормами, утвержденными приказом Министра здравоохранения СССР от 10 марта 1966 г. № 163 и приказом Минздрава СССР от 10.10.83 № 1179 (пункт 4.1). Все эксперименты проведены в соответствии с «Правилами проведения работ с использованием экспериментальных животных» и «Европейской конвенцией о защите позвоночных животных, используемых для экспериментов или в иных научных целях» от 18 марта 1986 г. Уход за инфицированными животными и работу с ними, осуществляли в условиях вивария с уровнем безопасности Р-3 (BSL-3).

Вирулентность выбранных штаммов ортохантавируса изучали, заражая однократно интрацеребрально (сосунков мышей и крыс в возрасте 24 часа) и внутрибрюшинно (крыс в возрасте 3 дня и 14 дней). Доза вируса составила 2 lg ФОЕ/0.01 мл для мышей, для сосунков крыс дозу вируса увеличивали в три раза. Для белых крыс при внутрибрюшинном пути введения вируса доза составила 2.3 lg ФОЕ/0.04 мл. Группы животных, зараженных разными штаммами ортохантавируса, содержали в отдельных помещениях, для исключения возможности перекрестной аэрогенной контаминации.

Начиная с 13-14 дня после заражения (p.i.) дважды в день наблюдали за общим состоянием животных, отмечая признаки инфекции, и при выраженных клинических симптомах, свидетельствующих о терминальной фазе инфекции, проводили вскрытие под общим наркозом эфиром. Для исследования на наличие специфических антител отбирали образцы крови. При отсутствии симптомов заболевания животных обескровливали под общим наркозом на 35-40 день после заражения и также отбирали образцы для исследований

Для выявления титра антител в сыворотках крови экспериментально инфицированных животных использовали НМФА, постановка которого осуществлялась согласно методическим рекомендациям с помощью тест-системы «Диагностикам геморрагической лихорадки с почечным синдромом (ГЛПС) культуральный поливалентный» (ФГБНУ «Федеральный научный центр исследований и разработки иммунологических препаратов имени М.П. Чумакова», РАН).

Для статистической оценки полученных в ходе работы данных использовалась программа BioStat.

РЕЗУЛЬТАТЫ

Анализ вирулентности штаммов, выделенных от A.peninsulae, показал следующие результаты: все штаммы кроме 27191-2004, были вирулентными для новорожденных белых мышей в возрасте 24 часа, вызывая типичные клинические признаки ортохантавирусной инфекции у животных (вялость, потягивание конечностей и т.д.), начиная, в среднем с 15 дня от инфицирования (p.i) (таблица 2).

Однако выявлены существенные различия исследованных штаммов по степени вирулентности. Наиболее вирулентным оказался штамм 25776-2004, показатель летальности при заражении которым составил 77.5%, что статистически достоверно выше (t=1.991, p<0.05), чем для низковирулентных штаммов 19788-2000, 25786-2004 (t=1.998, p<0.05), 25795-2004 (t=2, p<0.05), при введении которых показатели летальности составили 43.3 %, 15% и 38%, соответственно, а разница с показателями летальности других штаммов (со средней вирулентностью) была статистически не достоверна. Однако при увеличении возраста инфицируемых животных до 48 часов вирулентность штамма 19788-2000 уменьшилась, животные не болели. Средняя продолжительность жизни инфицированных животных с клиническими симптомами составила 20 дней.

Вирулентность исследованных штаммов для новорожденных белых крыс в возрасте от 24 часов была значительно ниже: при заражении штаммами 19788-2000, 25795-2004 и 25786-2004 клинических признаков заболевания не выявлено, все животные были здоровы до 35-40 дня, показатель летальности составил 0%. Тогда как у сосунков крыс, инфицированных штаммом 257762004, начиная с 19 дня p.i., отмечали признаки и симптомы, характерные для экспериментальной ортохантавирусной инфекции, однако состояние животных далее не ухудшилось в течение периода наблюдения до 40 дня.

Таблица 1

Сведения о штаммах ортохантавирусов использованных в исследовании

Источник выделения

штамма

Номер штамма в коллекции НИИ эпидемиологии и микробиологии имени Г. П. Сомова

Географическое происхождение

Дата

выделения

1.

Apodemus peninsulae

17476-1994

Приморский край, Спасский р-он

Сентябрь 1994

2.

Apodemus peninsulae

19788-2000

Приморский край, Надеждинский р-н

Март 2000

3.

Apodemus peninsulae

25776-2004

Приморский край, Надеждинский р-н

Декабрь 2004

4.

Apodemus peninsulae

25786-2004

Приморский край, Надеждинский р-н

Декабрь 2004

5.

Apodemus peninsulae

27191-2004

Приморский край, Надеждинский р-н

Декабрь 2004

6.

Apodemus peninsulae

25795-2004

Приморский край, Надеждинский р-н

Декабрь 2004

Все штаммы, кроме 17476-1994, вызывали образование специфических антител: диапазон титра антител в НМФА в сыворотках погибших мышей сосунков составил 1:8-1:32 для 197882000 и 1:160 для 25795-2004, диапазон антител в сыворотках выживших животных, вскрытых на 35-40 день, составил 1:32-1:512 для 19788-2000, 1:16-1:128 для 25786-2004, 1:4-1:128 для 271912004. В сыворотках крыс, зараженных штаммом 25776-2004, у которых наблюдалась клиника заболевания без гибели животных, диапазон титра антител составил от 1:128 до 1:1024, у крыс без симптоматики титры антител были в диапазоне от 1:16 до 1:64.

При инфицировании штаммом 27191-2004 у новорожденных белых лабораторных мышей и крыс в возрасте 12-24 часа симптомов заболевания не выявлено и показатель летальности составил 0%, в то же время титр специфических антител в пуле сывороток животных составил 1:128.

ОБСУЖДЕНИЕ

По данным Роспотребнадзора за последние 10 лет, в Российской Федерации ежегодно регистрируется, в среднем, около 8000 случаев ГЛПС, из них 98.5% на европейской территории страны [8]. В дальневосточном регионе заболеваемость связана с ортохантавирусами Hantaan и Seoul, которые также циркулируют и в соседних странах (Китае и Южной Корее). [9, 10] Заболевание, обусловленное вирусом Hantaan, характеризуется наличием тяжелых форм, нередко заканчивающихся летально, причем в Приморском крае в отдельные годы показатель летальности при ГЛПС, вызванной этим вирусом, составлял до 16% [11]. На территории Дальнего Востока вирус Amur был идентифицирован в 1999 году по результатам молекулярно-генетического анализа образцов крови больных ГЛПС как самостоятельный генотип ортохантавируса. [6] В 2004 году Lokugamage и соавт. было проведено исследование генетических, антигенных и биологических характеристик двух штаммов H5 и B78, выделенных в Китае от больного ГЛПС и Apodemus peninsulae, соответственно, и результаты исследования показали значимое отличие от штаммов вируса Hantaan, соответствующее критериям отдельного типа вируса. [12] Однако, в 2016 году решением Международного комитета по таксономии вирусов (МКТВ) произошло изменение таксономии ортохантавирусов, и вирус Amur расценен как один из представителей вида (геновариант) ортохантавируса Hantaan [1].

Таблица 2

Вирулентность штаммов геноварианта Amur для лабораторных животных

Название штамма

Вид и возраст животного

Средний показатель летальности (%)

Начало заболевания (P.i.)

Средний день гибели животных (p.i.)

19788-2000

Белые мыши, 24 часа

43.3%±6.4

18

23

17476-1994

57.1%±18.7

14

14

25786-2004

15.0%± 3.99

21

25

25776-2004

77.5%±4.96

19

20

27191-2004

-

-

-

25795-2004

38%±10.6

14

17

19788-2000

Белые крысы, 24 часа

-

-

35*

25786-2004

-

-

27*

25776-2004

Клиника без гибели

19

32*

27191-2004

0

-

42*

19788-2000

Белые крысы, 3-14 дней

-

-

35*

Результаты, полученные в нашем исследовании, отличаются от данных Lokugamage и соавт., которые показали более высокую вирулентность штаммов геноварианта Amur для новорожденных белых мышей, в сравнении с вирусом Hantaan, так как в наших экспериментах средний показатель летальности для исследованных штаммов составил 38.8% для сосунков белых мышей, а для штамма 76-118 вируса Hantaan - 100%. [13] Кроме того, штаммы вируса Hantaan, выделенные от восточноазиатской мыши (Amur), как и штаммы вируса Hantaan, выделенные от полевой мыши (Far East) в предыдущем исследовании, были авирулентными в отношении сосунков крыс, за исключением штамма 25776-2004, вызывающего нелетальную симптоматическую инфекцию, что делает его сходным со штаммами геноварианта Far East. [14]

В нашей работе мы проанализировали различия вирулентности штаммов геноварианта Amur, выделенных от природного хозяина, отловленного в разные годы на нескольких очаговых территориях Приморского края - в Надеждинском и Спасском районах. Полученные результаты свидетельствуют о неоднородности группы исследованных штаммов, что согласуется с данными о генетическом разнообразии изолятов, выделенных от восточноазиатской мыши [15]. Так на территории Дальнего Востока и в ареале данного грызуна на территориях Китая и Кореи выделяют, по меньшей мере, четыре географических геноварианта Amur, при этом в кладе «Приморье» изоляты из Спасского района на филогенетическом древе располагались отдельно от ветви изолятов из Надеждинского района. Таким образом, полученные результаты свидетельствуют о значимых различиях вирулентности штаммов серотипа Amur ортохантавируса Hantaan для лабораторных животных разных видов, по всей видимости, обусловленных генетическими различиями.

Следует отметить, что исследования по изучению вирулентности на разных лабораторных животных и моделированию ортохантавирусной инфекции были начаты с момента обнаружения данного вируса [16, 17]. Моделирование хантавирусного легочного синдрома (ХЛС) при инфекции вирусом Andes и Rio-Mamores у сирийских хомяков (Mesocricetus auratus) показало некоторое сходство симптомов экспериментальной инфекции и заболевания человека (отек легких, плевральный выпот и.т.д.) [18,19]. Симптомы острого респираторного дистресс-синдрома, напоминающие ХЛС у людей, получены при заражении макакрезус (Macaca mulatta) вирусом Sin-Nombre. При заражении ортохантавирусом Puumala макак (Cynomolgus macaques) отмечено, что такие характеристики, как распределение антигена по органам животного и патологические изменения в почках, выявленные у экспериментально зараженных животных, были аналогичны наблюдениям у больных ГЛПС, вызванной вирусом Puumala. [17]. Однако, до настоящего времени не создано универсальной живой модели, пригодной для исследования биологических свойств ортохантавирусов и имитации клинического заболевания у человека [20]

Вполне возможно, что используемая в данных исследованиях экспериментальная модель менее чувствительна к ортохантавирусам серотипа Amur, а полученные результаты не так репрезентативны, как при моделировании ортохантавирусной инфекции на природных хозяевах, однако такие эксперименты сопряжены с существенными трудностями содержания изолированной колонии диких грызунов.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Adams M.J., Lefkowitz E.J. // Archives of Virology. 2017. Vol. 162, N 8, pp 2505-2538.

2. Kruger D.H., Figueiredo L., Song J-W., Klempa B. // Journal of Clinical Virology. 2015. Vol. 64, pp.128-136.

3. McCaughey C., Hart C.A. // Journal of Medical Microbiology. 2000. Vol.49, N 7, pp. 587-99.

4. Manigold T., Vial P. // Swiss Med. Wkly. 2014. 144, w. 13937

5. Слонова Р.А., Яшина Л.Н., Компанец Г.Г., Мишин В. А. // Вопросы вирусологии. 2003. № 3. B. 10-14.

6. Yashina L.N., Patrushev N.A., Ivanov L.I., Slonova R.A., Mishin V.P., Kompanets G.G., Zdanovskaya N.I., Kuzina I.I., Safronov P.F., Chizhikov V.E., Schmaljohn C., Netesov S.V. // Archives of Virology. 2000. № 70 (1-2), pp. 31-44.

7. Lee P., Gibbs C., Gajdusek D., et al. // J. of Clin. Microbiol. 1985. Vol. 22, N 6, pp. 940-944.

8. Ткаченко Е.А., Дзагурова Т.К., Бернштейн А.Д., Коротина Н.А., Окулова Н.М., Мутных Е.С., Иванов А.П., Ишмухаметов А.А., Юничева Ю.В., Пиликова О.М., Морозов В.Г., Транквилевский Д.В., Городин В.Н., Бахтина

B. А., Соцкова С.Е. // Эпидемиология и вакцино- профилактика. 2016. № 3. С. 23-34.

9. Слонова Р.А., Кушнарева Т.В., Компанец Г.Г., Максема И.Г., Иунихина О.В., Девятилова C. В.//Дальневосточный журнал инфекционной патологии. 2008. № 13 (13). С. 138-142.

10. Zhang Y., Liu B-H., Lin F., Zhang Y-G., Si B-I., Kang X-P., Hu Y., Li J., Wu X-Y., Li Y-C., Zhu Q-Y., Yang Y-H. // Archives of Virology. 2013. Vol.158(10), pp. 2185-2188

11. Афанасьева В.И., Иванис В.А., Максема И.Г., Компанец Г.Г., Слонова Р.А.// Дезинфекци-онное дело. 2011. № 2. С. 22-25.

12. Lokugamage K, Kariwa H, Lokugamage N, Miyamoto H, Iwasa M, Hagiya T, Araki K, Tachi A, Mizutani T, Yoshimatsu K, Arikawa J, Takashima I. // Virus Research. 2004. Vol.101, №2, pp.127-134.

13. Компанец Г. Г. //Тихоокеанский медицинский журнал. 2008. №2. С. 61-64.

14. Кумакшева Е.В., Потт А.Б., Компанец Г.Г.// Молодой ученый. 2015. № 19 (99). С. 249-252.

15. Яшина Л.Н. Автореф дис. докт. биол. наук. Кольцово, 2012, 48 с.

16. Yoo Y.C., Yoshimatsu K., Yoshida R., Tamura M., Azuma I., Arikawa J.//Microbiology and Immunology. 1993. Vol. 37(7), pp. 557-562.

17. Groen J., Gerding M., Koeman J.P., Roholl PJ., van Amerongen G., Jordans H.G., Niesters H.G., Osterhaus A.D. //The Journal of infectious diseases. 1995. Vol. 172(1), pp. 38-44.

18. Hooper JW, Larsen T, Custer DM, Schmaljohn CS.// Virology. 2001. 289(1). pp. 6-14.

19. Milazzo M. L., Eyzaguirre E. J., Fulhorst C. F. // Virus Research. 2014. Vol. 191, pp. 39-44.

20. Sachin L. Badole, Pragya D. Yadav, Dilip R. Patil & Devendra T. Mourya//Journal of vector borne diseases. 2015. №52, pp. 1-10.

REFERENCES

1. Adams M.J., Lefkowitz E.J., Archives of Virology., 2017., Vol. 162, N 8, pp 2505-2538.

2. Kruger D.H., Figueiredo L., Song J-W., Klempa B., Journal of Clinical Virology., 2015, Vol. 64, pp.128-136. DOI: 10.1016/jjcv.2014.08.033 Available at: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25453325

3. McCaughey C., Hart C.A., Journal of Medical Microbiology., 2000, Vol.49, N 7, pp. 587-99. DOI: 10.1099/0022-1317-49-7-587 Available at: https:// www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?cmd=Retrieve&db= PubMed&list_uids=10882083&dopt=Abstract

4. Manigold T., Vial P., Swiss Med. Wkly., 2014, 144, w. 13937. DOI: 10.4414/smw.2014.13937 Available at: https://smw.ch/article/doi/smw.2014.13937

5. Slonova R.A., YAshina L.N., Kompanec G.G., Mishin V. A., Voprosy virusologii, 2003, № 3, C. 10-14.

6. Yashina L.N., Patrushev N.A., Ivanov L.I., Slonova R.A., Mishin V.P., Kompanets G.G., Zdanovskaya N.I., Kuzina I.I., Safronov P.F., Chizhikov V.E., Schmaljohn C., Netesov S.V. , Archives of Virology., 2000, № 70 (1-2), pp. 31-44.

7. Lee P., Gibbs C., Gajdusek D., et al., J. of Clin. Microbiol., 1985, Vol. 22, N 6, pp. 940-944. DOI: 0095- 1137/85/120940-05$02.00/0 Available at: https:// www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC271855/

8. Tkachenko E.A., Dzagurova T.K., Bernshtejn A.D., Korotina N.A., Okulova N.M., Mutnyh E.S., Ivanov A.P., Ishmuhametov A.A., YUnicheva YU.V., Pilikova O.M., Morozov V.G., Trankvilevskij D.V., Gorodin V.N., Bahtina V.A., Sockova S.E., Epidemiologiya i vakcinoprofilaktika, 2016, № 3, S. 23-34.

9. Slonova R.A., Kushnareva T.V., Kompanec G.G., Maksema I.G., Iunihina O.V., Devyatilova S.V., Dal'nevostochnyj zhurnal infekcionnoj patologii, 2008, № 13 (13), S. 138-142.

10. Zhang Y., Liu B-H., Lin F., Zhang Y-G., Si B-I., Kang X-P., Hu Y., Li J., Wu X-Y., Li Y-C., Zhu Q-Y., Yang Y-H., Archives of Virology., 2013, Vol.158(10), pp. 2185-2188.

11. Afanas'eva V.I., Ivanis V.A., Maksema I.G., Kompanec G.G., Slonova R.A., Dezinfekcionnoe delo, 2011, № 2, S. 22-25.

12. Lokugamage K, Kariwa H, Lokugamage N, Miyamoto H, Iwasa M, Hagiya T, Araki K, Tachi A, Mizutani T, Yoshimatsu K, Arikawa J, Takashima I., Virus Research., 2004, Vol.101, №2, pp.127-134. DOI: 10.1016/j.virusres.2003.12.031 Available at: https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/ S0168170204000036?via%3Dihub

13. Kompanec G. G., Tihookeanskij medicinskij zhurnal, 2008, №2, pp. 61-64.

14. Kumaksheva E.V., Pott A.B., Kompanec G. G., Molodoj uchenyj, 2015, № 19

15. Yashina L.N. Avtoref dis. dokt. biol. nauk. Kol'covo, 2012, 48 s.

16. Yoo Y.C., Yoshimatsu K., Yoshida R., Tamura M., Azuma I., Arikawa J., Microbiology and Immunology., 1993, Vol. 37(7), pp. 557-562. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1348-0421.1993. tb01677.x Available at: https://www.ncbi.nlm.nih. gov/pubmed/7901740

17. Groen J., Gerding M., Koeman J.P., Roholl PJ., van Amerongen G., Jordans H.G., Niesters H. G., Osterhaus A.D., The Journal of infectious diseases., 1995, Vol. 172(1), pp. 38-44. DOI: 10.1093/infdis/172.1.38 Available at: https://

18. Hooper JW, Larsen T, Custer DM, Schmaljohn CS., Virology., 2001, 289(1), pp. 6-14. DOI: 10.1006/viro.2001.1133 Available at: https:// www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11601912

19. Milazzo M. L., Eyzaguirre E. J., Fulhorst C. F. , Virus Research., 2014, Vol. 191, pp. 39-44. DOI: 10.1016/j.virusres.2014.07.006 Available at: https:// www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4251737/

20. Sachin L. Badole, Pragya D. Yadav, Dilip R. Patil & Devendra T. Mourya, Journal of vector borne diseases., 2015, №52, pp. 1-10. Available at: https:// www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25815861

Размещено на Allbest.ru

...

Подобные документы

  • Характеристика и природа важнейших механических свойств биологических тканей, благодаря которым осуществляются разнообразные механические явления. Структура кожи и особенности ее механических свойств. Эластические и химические свойства сосудов, крови.

    реферат [29,1 K], добавлен 18.01.2010

  • Общая характеристика биологических ритмов, их роль в существовании растений. Влияние биоритмов на жизнь животных, биологические ритмы человека. Доказательства в лабораторных условиях существования биологических часов. Биоритмы кислицы и ветки сирени.

    творческая работа [1,6 M], добавлен 17.02.2013

  • Особенности влияния рентгеновского излучения на гематологические показатели крови крыс на фоне приема различных штаммов спирулины и смеси витаминов. Влияние пищевых добавок на гематологические показатели крови у лабораторных животных при облучении.

    курсовая работа [189,4 K], добавлен 22.09.2011

  • Изучение особенностей использования чистыми культурами микромицетов различных источников углерода. Определение у коллекционных штаммов микроскопических грибов способности к росту на природных субстратах (растительный опад, камыш, сено, опилки, кора).

    дипломная работа [2,0 M], добавлен 11.09.2010

  • Структура биологических мембран и строение их основы - билипидного слоя. Молекулярная масса мембранных белков, их различие по прочности связывания с мембраной. Динамические свойства биологических мембран и значение организации для биологических систем.

    реферат [19,1 K], добавлен 20.12.2009

  • Селекция как наука о методах создания новых пород животных, сортов растений, штаммов микроорганизмов с нужными человеку признаками. Особенности селекции животных на современном этапе, используемые методы и принципы, подходы, инструментарий и назначение.

    презентация [1008,6 K], добавлен 25.01.2012

  • Одно из фундаментальных свойств живой природы – цикличность большинства происходящих в ней процессов. Описание различных факторов, регулирующих ритмичную активность живых организмов. Понятие биологического ритма. Экзогенные и эндогенные ритмы организма.

    реферат [23,7 K], добавлен 20.07.2010

  • Понятие и значение селекции как науки о создании новых и улучшении существующих пород животных, сортов растений, штаммов микроорганизмов. Оценка роли и значения микроорганизмов в биосфере, и особенности их использования. Формы молочнокислых бактерий.

    презентация [1,1 M], добавлен 17.03.2015

  • Общие сведения и история селекции - науки о методах создания новых и улучшении существующих пород животных, сортов растений, штаммов микроорганизмов, с полезными для человека свойствами. Основные принципы селекции животных, ее некоторые особенности.

    презентация [939,1 K], добавлен 06.09.2016

  • Иерархическая организация и уровни жизни в природе. Порядок воплощения биологической информации в конкретные процессы жизнедеятельности. Проявление главных свойств жизни на разных уровнях ее организации. Проявление биологических закономерностей у людей.

    реферат [18,6 K], добавлен 29.07.2009

  • Совершенствование биологических и промыслово-биологических основ управления запасами промысловых рыб путем регулирования и контроля селективности и интенсивности рыболовства. Основные понятия и показатели интенсивности промышленного рыболовства.

    магистерская работа [2,3 M], добавлен 27.02.2009

  • Листерия как род грамположительных палочковидных бактерий. Факторы вирулентности Listeria monocytogenes. Характеристика культуральных свойств бактерий. Способность листерий размножаться в почве. Резистентность и патогенность для животных и человека.

    презентация [989,0 K], добавлен 05.06.2013

  • Механические модели биообъектов. Закон Гука при деформации тканей. Механические свойства мышц и костей, стенки кровеносных сосудов. Основные механические процессы в легких. Молекулярные основы упругих свойств биообъектов. Движение хромосом в клетках.

    презентация [4,7 M], добавлен 14.03.2015

  • Изучение биологических свойств Bordetella pertussis и проведение анализа распространения коклюша в РФ и Республике Татарстан. Эпидемиологический анализ распространения данного заболевания в исследуемый период. Характеристика возбудителя и патогенности.

    презентация [758,4 K], добавлен 12.06.2016

  • Характеристика зависимости биологических свойств активированной воды от вещества матрицы. Анализ долгосрочного сохранения памяти о проведенной активации водного вещества после ее кипячения. Факторы, определяющие макроструктурные преобразования кипятка.

    контрольная работа [509,5 K], добавлен 24.01.2018

  • Сущность процесса адаптации. Стресс как неспецифический стимулятор. Резервы продуктивности биологических систем. Использование резервов организма в спорте, медицине. Построение модели адаптации организма к факторам, выводящим его из состояния равновесия.

    курсовая работа [261,7 K], добавлен 25.11.2013

  • Методы исследования физико-химических свойств, тканевой и субклеточной локализации основных представителей биологических молекул, методы их выделения и очистки. Квалификационная характеристика специалиста-биохимика. Область профессиональной деятельности.

    учебное пособие [24,8 K], добавлен 19.07.2009

  • Селекция как наука об улучшении уже существующих и о выведении новых сортов растений, пород животных и штаммов микроорганизмов с нужными человеку свойствами, ее цели и задачи, направления развития на сегодня. Сферы использования методов селекции.

    презентация [2,4 M], добавлен 18.04.2013

  • Назначение и характеристика функции мембран как невидимых пленок, окружающих клетки живых организмов. Изучение строения и анализ химического состава биологических мембран. Описание систем трансмембранного переноса веществ и мембранной передачи сигналов.

    реферат [110,5 K], добавлен 10.12.2015

  • Понятие биоритмов биологических процессов в организме, их физиологические и экологические формы. Процессы, контролирующие фиксацию меди в почве. Биологические функции меди в растениях и организме человека. Оценка биологических особенностей меди и селена.

    доклад [19,4 K], добавлен 15.12.2009

Работы в архивах красиво оформлены согласно требованиям ВУЗов и содержат рисунки, диаграммы, формулы и т.д.
PPT, PPTX и PDF-файлы представлены только в архивах.
Рекомендуем скачать работу.