Физиология: практические навыки

Материальное оснащение, описание и способы выражения практических результатов при измерениях физиологических показателей: динамометрии, определении количества гемоглобина, подсчете числа эритроцитов и лейкоцитов, вычислении цветового показателя.

Рубрика Медицина
Вид методичка
Язык русский
Дата добавления 17.03.2014
Размер файла 49,7 K

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

Размещено на http://www.allbest.ru/

ПРАКТИЧЕСКИЕ НАВЫКИ

1. Динамометрия

Материальное оснащение: динамометры кистевой ДРП-120 и становой ДС-200.

Испытуемый в положении стоя отводит вытянутую руку с динамометром в сторону под прямым углом к туловищу. Вторая свободная рука опущена и расслаблена. По сигналу экспериментатора испытуемый дважды выполняет максимальное усилие на динамометре. Силу мышц оценивают по лучшему результату. Определяется сила мышц правой, а затем левой руки (в кг).

К специальной платформе присоединяется становой динамометр. Испытуемый становится на платформу, берет рукоятки динамометра и производит максимальное разгибание туловища. По показаниям динамометра оценивают силу мышц-разгибателей спины.

Выражение практического результата

Силу мышц кисти и становую силу выражают в кг.

2. Определение количества гемоглобина

По методу Сали

Материальное оснащение: гемометр Сали, пипетки, стеклянная палочка, пипетка с меткой 0,02 мл, груша, 0,1 н раствор HСl, вода дистиллированная, вата, донорская кровь

В среднюю пробирку гемометра Сали наливают 0,1 н раствор хлористоводородной кислоты до нижней метки. Пипеткой берут 20 мм3 (0,02 мл) донорской крови и, обтерев кончик ее ватой, тотчас выдувают кровь на дно пробирки так, чтобы верхний слой кислоты оставался неокрашенным. Не вынимая пипетку, споласкивают ее кислотой. После этого содержимое пробирки перемешивают, ударяя пальцем по дну пробирки, и ставят в штатив на 5-10 мин. Это время необходимо для полного превращения гемоглобина в солянокислый гематин. Затем к содержимому пробирки добавляют по каплям дистиллированную воду до тех пор, пока цвет полученного раствора не будет совершенно одинаков с цветом стандарта (добавляя воду, раствор перемешивают стеклянной палочкой).

Цифра, стоящая на уровне полученного раствора, показывает содержание гемоглобина в испытуемой крови.

Выражение практического результата

Содержание гемоглобина выражают в г/л. В норме содержание гемоглобина составляет для мужчин 133-158 г/л, для женщин 121-138 г/л.

Определение количества гемоглобина на фотоэлектроколориметре (по методу Драбкина, Кросби и Кюннена

Материальное оснащение: фотоэлектроколориметр, кюветы на 10 мм, пипетка от гемометра Сали с меткой 0,02 мл, груша, реактив Драбкина (бикарбонат натрия, углекислый натрий, цианид калия, красная кровяная соль), пипетка на 5,0 мл, стеклянная палочка, донорская кровь, дистиллированная вода.

В пробирку наливают 5,0 мл реактива Драбкина. Пипеткой от гемометра Сали набирают 0,02 мл крови и переносят в реактив. Раствор тщательно перемешивают стеклянной палочкой. Через 10 минут (это время необходимо для образования цианметгемоглобина, обладающего устойчивой окраской) его помещают в кювету шириной 10 мм и фотоколориметрируют при длине волны 540 10 нм против дистиллированной воды.

Выражение практического результата

Содержание гемоглобина выражают в г/л. Для этого полученную экстинкцию умножают на 361 - коэффициент, установленный опытным путем. В норме содержание гемоглобина составляет для мужчин 133-158 г/л, для женщин 121-138 г/л.

3. Подсчет числа эритроцитов

Материальное оснащение: дозатор (или унипипетка) на 0,02 мл, пробирка, камера Горяева, микроскоп, стеклянная палочка или пастеровская пипетка, изотонический раствор NaCl, донорская кровь, груша, спирт, вата, игла-скарификатор одноразового пользования.

В пробирку наливают 4 мл изотонического раствора NaCl. Пипеткой от гемометра Сали набирают 0,02 мл крови и переносят в раствор NaCl. Тщательно перемешивают и небольшую каплю раствора (стеклянной палочкой или пастеровской пипеткой) наносят на среднюю пластинку камеры Горяева. По принципу капиллярности она устремляется под покровное стекло. Предварительно к камере должно быть притерто покровное стекло. Чтобы его притереть, нужно ватой, смоченной в спирте, обезжирить боковые пластинки камеры и само стекло. Критерием полного притирания является появление на боковых пластинках камеры цветных колец Ньютона. Считать эритроциты удобнее при большом увеличении (окуляр 7, объектив 40). Чтобы получить точные результаты, необходимо подсчитать число эритроцитов в 5 больших квадратах, расположенных в разных местах сетки, например по диагонали. Подсчитав число эритроцитов (А) в 5 больших квадратах (что составляет 80 маленьких), подставляют значение А в формулу:

где Х - искомое число эритроцитов, 80 - количество маленьких квадратов, в которых производился подсчет, 200 - разведение крови, 4000 - величина, обратная объему одного маленького квадрата. Объем маленького квадрата равен

где 1/20 мм - размер стороны маленького квадрата, мм - расстояние от плоскости средней пластинки камеры Горяева до покровного стекла (т.е. глубина камеры).

Выражение практического результата

Количественное содержание эритроцитов выражают в литре крови. В норме содержание эритроцитов у мужчин 4,5-51012 в литре; у женщин 3,9-4,51012 в литре.

4. Вычисление цветового показателя

Практически цветовой показатель (ЦП) вычисляют делением показателей концентрации гемоглобина, выраженной в г/л, на число первых трех цифр количества эритроцитов в 1 мкл крови с последующим умножением полученного частного на 3.

Выражение практического результата

Результат выражают в относительных единицах. В норме (нормохромазия) цветовой показатель равен 0,9-1,1.

5. Подсчет числа лейкоцитов

Материальное оснащение: пипетка с меткой 0,02 мл от гемометра Сали, пробирка, камера Горяева, микроскоп, груша, 3% раствор уксусной кислоты, подкрашенный метиленовым синим, донорская кровь, спирт, вата.

В пробирку наливают 0,4 мл 3% раствора уксусной кислоты, подкрашенной метиленовой синью. Набирают пипеткой от гемометра Сали 0,02 мл крови и переносят в раствор уксусной кислоты. Тщательно перемешивают и небольшую каплю раствора (стеклянной палочкой или пастеровской пипеткой) наносят на среднюю пластинку камеры Горяева. По принципу капиллярности она устремляется под покровное стекло. Предварительно к камере должно быть притерто покровное стекло. Чтобы его притереть, нужно ватой, смоченной в спирте, обезжирить боковые пластинки камеры и само стекло. Критерием полного притирания является появление на боковых пластинках камеры цветных колец Ньютона. Считать лейкоциты удобнее при малом увеличении (окуляр 15, объектив 20).

Чтобы получить точные результаты, необходимо подсчитать число лейкоцитов в 25 больших квадратах сетки Горяева, что составляет 400 маленьких квадратов. Подсчитав число лейкоцитов (В) в 25 больших квадратах (это 400 маленьких), подставляют значение В в формулу:

… мкл, (мм3)

где Х - искомое число лейкоцитов, 4000 - величина, обратная объему одного маленького квадрата.

Объем маленького квадрата равен:

= мм3 (мкл),

где мм - размер стороны маленького квадрата, мм - расстояние от плоскости средней пластинки камеры Горяева до покровного стекла (т.е. глубина камеры), 400 - количество маленьких квадратов.

Выражение практического результата

Количественное содержание лейкоцитов выражают в литре крови. В норме содержание лейкоцитов 4-8109 в литре.

физиологический показатель измерение практический

6. Определение групповой принадлежности крови (система АВ0)

Материальное оснащение: гемагглютинирующие сыворотки групп 0 (I), А (II), В (III) двух различных серий, сыворотка группы АВ0 (IV), изотонический раствор NaCl, пипетки, предметные стекла или стеклянные палочки, планшет для определения групп крови, донорская кровь, игла-скарификатор одноразового пользования, спирт, вата.

Техника определения групп крови при помощи стандартных гемагглютинирующих сывороток

В верхней части планшета надписывают фамилию и инициалы лица (испытуемого или донора), у которого определяют групповую принадлежность крови. На смачиваемую белую поверхность планшета, в ячейки, надписанные обозначениями: слева - 0 (I), в середине - А (II), справа - В (III), пипеткой наносят по одной большой капле (0,1 мл) стандартной сыворотки I, II, III групп, содержащей соответственно агглютинины I - и ; II - и III - . Так как используют стандартные сыворотки двух различных серий каждой группы, то всего получается 6 капель, которые образуют два ряда по три капли в следующем порядке слева направо: 0 (I), А (II) и В (III). Сухой стеклянной палочкой или краем предметного стекла по одной маленькой капле (0,01 мл), приблизительно в 10-20 раз меньше капли сыворотки, исследуемую кровь, взятую из пальца (или донорскую кровь) переносят в ячейки рядом с каплей стандартной сыворотки. Соотношение должно быть 1 : 10, т.е. 1 часть крови, 10 частей сыворотки.

Другой стеклянной палочкой (или другим краем предметного стекла) перемешивают каплю крови с сывороткой группы 0 (I) до тех пор, пока смесь не окрасится в равномерно розовый цвет. Следующей стеклянной палочкой (другим углом стекла) перемешивают следующую каплю крови с сывороткой группы А (II) и также поступают с сывороткой группы и В (III). Так же смешивают кровь с сыворотками во втором ряду.

После размешивания капель планшет покачивают, затем на 1 минуту оставляют в покое и снова периодически покачивают. Наблюдение за ходом реакции производят при легком покачивании планшета в течение 5 минут. Агглютинация наступает обычно в течение первых 19-30 секунд, однако наблюдение производят не менее 5 минут ввиду возможности позднего наступления агглютинации в случае слабой агглютинабельности эритроцитов (А2 или А2В).

Результат реакции в каждой капле может быть положительным (+) или отрицательным (-).

Положительный результат (+) выражается в агглютинации (склеивании) эритроцитов; агглютинаты видны невооруженным глазом сначала в виде мелких красных зернышек, постепенно сливающихся в более крупные хлопья. При этом сыворотка постепенно обесцвечивается. По мере наступления агглютинации, но не ранее 3 минут, в эти капли добавляют по одной большой капле (0,1 мл) физиологического раствора NaCl для разрушения иногда наступающей ложной агглютинации - неспецифического склеивания эритроцитов в так называемые монетные столбики. Планшет покачивают и продолжают исследование до истечения 5 минут.

В тех случаях, когда положительный результат получается со стандартными сыворотками всех трех групп (во всех каплях), для исключения неспецифической агглютинации проводится дополнительное исследование испытуемых эритроцитов со стандартной сывороткой группы АВ0 (IV), не содержащей групповых агглютининов. Для этого на поверхность 7-й ячейки наносят одну большую каплю (0,1 мл) сыворотки группы АВ0 (IV) и рядом - маленькую каплю (0,01 мл) крови. Кровь смешивают с сывороткой и при покачивании планшета исследуют реакцию в течение 5 минут. Лишь отсутствие агглютинации с сывороткой группы АВ0 (IV) позволяет учесть положительный результат реакции с сыворотками 0 (I), А (II) и В (III) как истинный.

Группу крови устанавливают в зависимости от наличия или отсутствия реакции изогемагглютинации. Оценку результата см. на рисунке 1.

Результаты реакций в каплях с сыворотками могут дать четыре различных комбинации положительных и отрицательных реакций.

1. Если сыворотки всех трех групп дали отрицательную реакцию, т.е. все смеси остались равномерно окрашенными в розовый цвет без признаков агглютинации, то испытуемая кровь не содержит агглютиногенов и, следовательно, принадлежит к группе 0 (I).

2. Если сыворотки групп 0 (I) и В (III) дали положительную реакцию, а сыворотка группы А (II) - отрицательную, то испытуемая кровь содержит агглютиноген А и эта кровь принадлежит к группе А (II).

3. Если сыворотки групп 0 (I) и А (II) дали положительную реакцию, а сыворотка группы В (III) - отрицательную, то испытуемая кровь содержит агглютиноген В, т.е. принадлежит к группе В (III).

4. Если сыворотки всех трех групп дали положительную реакцию, это указывает на то, что испытуемая кровь содержит оба агглютиногена - А и В - и принадлежит к группе АВ0 (IV) при условии, что в течение 5 минут кровь этой группы с сывороткой группы АВ0 (IV) в 7-й ячейке не дала агглютинации.

Выражение практического результата:

Группу крови записывают по общепринятым в странах СНГ правилам с обязательным указаниям буквенного обозначения выявленных агглютиногенов (агглютиногена), затем - агглютининов и в скобках римской цифрой - группа. Например, группа крови Иванова И.П. - 0 (I), или А (II), или В (III), или АВ0 (IV).

7. Определение резус-принадлежности крови

Материальное оснащение: пробирка, пипетки Пастера, стандартный реагент антирезус Rh0 (D), изотонический раствор NaCl, цельная донорская кровь, игла, спирт, вата.

Пробирочный метод:

На дно пробирки вносят 1 каплю стандартного реагента антирезус Rh0 (D) и 1 каплю исследуемой крови (или эритроцитов). Содержимое пробирки перемешивают встряхиванием и затем медленно поворачивают, наклоняя пробирку почти до горизонтали таким образом, чтобы содержимое растекалось по ее стенкам. Такое размазывание крови по стенкам пробирки делает реакцию более выраженной. Как правило, агглютинация наступает в течение 1-й минуты, но для образования устойчивого комплекса антиген+антитело и четко выраженной агглютинации, а также ввиду возможности замедленной реакции при слабо выраженной агглютинабельности эритроцитов контакт эритроцитов с реагентом при повертывании пробирки следует проводить не менее 3 мин. Затем для исключения неспецифической агрегации эритроцитов в пробирку добавить 2-3 мл изотонического раствора NaCl и перемешать, не взбалтывая, путем 2-3-кратного перевертывания пробирки. Если агрегация эритроцитов была неспецифической, то после добавления изотонического раствора она исчезает. Наличие агглютинации оценивается визуально, в неясных случаях проводят микрокопирование.

Оценка результатов

Наличие агглютинации в виде крупных хлопьев из эритроцитов на фоне просветленной жидкости указывает на резус-положительную принадлежность исследуемой крови (Rh+), содержащей антиген Rh0 (D).

Отсутствие агглютинации (в пробирке гомогенно окрашенная жидкость) указывает на резус-отрицательную принадлежность исследуемой крови (Rh-). Такая кровь не содержит антиген Rh0 (D).

Результат учитывается как истинный после проверки контрольных образцов, т.е. при положительном результате со стандартными резус-положительными эритроцитами той же группы или группы 0 (I) по системе АВ0 и отсутствии агглютинации со стандартными резус-отрицательными эритроцитами, одногруппными с исследуемой кровью по системе АВ0.

Выражение практического результата

Резус-принадлежность крови выражается буквенным обозначением и расшифровкой при обязательном указании группы крови по системе АВ0. Например: кровь испытуемого (донора) (Ф.И.О.) группы 0 (I) резус Rh+ (положительная).

8. Определение частоты пульса

Материальное оснащение: секундомер или часы с секундной стрелкой.

Основным методом исследования пульса является пальпация. Ее можно проводить на лучевой, сонной, височной и других артериях. Чаще всего пальпируют лучевую артерию, поскольку она располагается непосредственно под кожей и хорошо прощупывается между шиловидным отростком лучевой кости и сухожилием внутренней лучевой мышцы. При пальпации лучевой артерии кисть исследуемого охватывают правой рукой в области лучезапястного сустава так, чтобы 1 палец располагался на тыльной стороне предплечья, а остальные пальцы - на передней его поверхности. Нащупав артерию, прижимают ее 2-3 пальцами так, чтобы хорошо ощущались пульсовые удары, и проводят их счет в течение 60 с. Исследование повторяют в течение нескольких минут. Результаты счета регистрируют.

У здорового человека сокращения сердца и пульсовые волны следуют друг за другом через равные промежутки времени, т.е. пульс ритмичный (pulsus regularis). При ритмичном пульсе счет пульса обычно проводят за 30, 15 или 10 с и найденное число умножают соответственно на 2, 4 или 6, определяя число пульсовых ударов за 1 мин.

В нормальных условиях частота пульса соответствует частоте сердечных сокращений и равна 60-80 в минуту. При учащении сердечных сокращений выше 90 (синусовой тахикардии) увеличивается число пульсовых волн в минуту, регистрируют частый пульс (pulsus freguens), при замедлении сердечного ритма ниже 60 (синусовой брадикардии) регистрируют редкий пульс (pulsus rarus).

Частота пульса определяется не только состоянием сердечной мышцы, нервного аппарата сердца, способности к выработке импульсов самим синусно-предсердным узлом, но и экстракардиальными влияниями. Иногда редкий пульс, т.е. менее 60 ударов в минуту, встречается у совершенно здоровых людей ваготоников и хорошо тренированных спортсменов.

Волнение, эмоциональное напряжение (стресс), физическая нагрузка приводят к учащению пульса. Частота пульса зависит также и от температуры тела. Следует учитывать, что каждому повышению температуры тела на 1оС соответствует учащение пульса на 8-10 ударов.

Зная пульс, можно рассчитать длительность сердечного цикла по следующей пропорции: например, при частоте пульса 70 в мин.:

70 сокращений за 60 с

1 сокращение х с

.

Длительность сердечного цикла колеблется в пределах 0,75-1,0 с.

Выражение практического результата

Подсчитав частоту пульса лучевой артерии у себя или у коллеги, записывают, например:

Пульс испытуемого (Ф.И.О.) в покое ритмичный (pulsus regularis), 75 уд/мин, что соответствует норме (60-80 уд/мин).

Или: пульс испытуемого (Ф.И.О.) ритмичный, частый (pulsus freguens), 92 уд/мин, что соответствует тахикардии (например, в условиях волнения, эмоционального напряжения).

9. Определение артериального давления (АД) методом Короткова

Материальное оснащение: сфигмоманометр, фонендоскоп.

В настоящее время в клинической практике общепринятым методом для измерения АД является аускультативный метод Н.С.Короткова, которым можно измерить как систолическое, так и диастолическое давление. АД измеряют после не менее, чем 5 минут отдыха, а если пациент курит, то не менее, чем через 30 минут после курения. Сидя на стуле, испытуемый кладет расслабленную руку на стол, на обнаженное плечо ему накладывают манжетку так, чтобы она плотно охватывала плечо (не менее 80% окружности плеча), но не сдавливала ткани. Нижний край манжетки должен отстоять от локтевого сгиба не меньше, чем на 1 - 1,5 см. В локтевой ямке находят пульсирующую плечевую артерию, на которую ставят фонендоскоп. Нагнетанием воздуха в манжетку в ней создают давление выше максимального, движение крови прекращается. Поворачивают винтовой клапан и, выпуская воздух из манжетки (декомпрессия), выслушивают сосудистые тоны в плечевой артерии. Появившийся звук называют I тоном Короткова, он соответствует систолическому давлению. Продолжают снижать давление в манжетке и слушают нарастающую силу тонов, которые затем ослабевают и исчезают. Момент исчезновения звуков называется II тоном Короткова и соответствует диастолическому, или минимальному, давлению. Не снимая манжетки, повторяют 2 раза измерения систолического и диастолического давлений с интервалом 2 мин., если 2 цифры различаются более, чем на 5 мм рт. ст., должно быть выполнено дополнительное измерение. В настоящее время, согласно данным Комитета по предупреждению и лечению высокого АД (США, 1998), различают АД:

1) оптимальное: систолическое АД < 120 мм рт. ст., диастолическое < 80 мм рт. ст.;

2) нормальное: систолическое АД < 130 мм рт.ст., диастолическое < 85 мм рт. ст.;

3) высокое-нормальное: систолическое АД < 130-139 мм рт. ст., диастолическое < 85-89 мм рт. ст.;

Выражение практического результата

Количественное значение артериального давления выражают в мм. рт. ст.

10. Методика записи электрокардиограммы

Материальное оснащение: электрокардиограф ЭКТ1-01, электроды, марлевые салфетки, 3,0% раствор NaCl.

Испытуемого укладывают на кушетку. Накладывают электроды: с красной маркировкой провода - на правую руку, с желтой - на левую руку, с зеленой - на левую ногу, одновременно укрепляют электрод с черной маркировкой на правой ноге, (он является индифферентным и предназначен для заземления испытуемого). Чтобы обеспечить хороший электрический контакт, между электродами и кожей помещают марлю или фильтровальную бумагу, смоченную гипертоническим раствором NaCl. Ручку переключателя отведений устанавливают в положение “К”. Записывают калибровочный сигнал (величина сигнала в 1 мВ должна по высоте соответствовать 1 см бумаги).

Для удобства и точности расшифровки ЭКГ скорость протяжки ленты устанавливают на 50 или 100 мм/с. После этого делают запись в стандартных, усиленных от конечностей и грудных отведениях, отмечая на ленте вид отведения. Записывают примерно 4-5 сердечных циклов.

Наиболее распространены следующие отведения:

1. Три стандартных биполярных отведения, при которых регистрируется разность потенциалов между конечностями - от правой и левой руки (I отведение), правой руки и левой ноги (II отведение), левой руки и левой ноги (III отведение).

2. Три усиленных униполярных отведения от конечностей. При этих отведениях регистрируется разность потенциалов между одной из конечностей, на которой находится активный электрод, и индифферентным электродом. ЭКГ, отводимая от правой руки, обозначается буквами аVR (augmented value right), от левой - aVL (augmented value left), от левой ноги - aVF (augmented value foot). Augmented (англ.) - усиленный, right (англ.) - правый, left (англ.) - левый, foot (англ.) - нога, value (англ.) - величина.

3. Семь униполярных околосердечных отведений, при которых регистрируется разность потенциалов между определенными точками на грудной клетке и нулевым потенциалом.

Обычно для грудных отведений активный электрод помещают в точках, обозначаемых буквами: V1 - у правого края грудины в 4-м межреберье; V2 - у левого края грудины в 4-м межреберье; V3 - посередине между V2 и V4; V4 - в 5-м межреберье слева по среднеключичной линии; V5 - на той же горизонтали, что и электрод V4, но по передней подмышечной линии; V6 - на той же горизонтали, что и V4 и V5, но по средней подмышечной линии; V7 - на той же горизонтали, что и V4 -V6, но по задней подмышечной линии. Большей частью записывают 6 грудных отведений.

Выражение практического результата

На записанной ЭКГ испытуемого обозначают “контрольный милливольт”, вносят Ф.И.О. испытуемого, дату, обозначают отведения и зубцы.

11. Спирометрия. Определение жизненной емкости легких (ЖЁЛ)

Материальное оснащение: спирометр сухой портативный ССП, или спирометр водяной “Спиро 1-8В”, или спирометр водяной цилиндровый.

Проведение спирометрии с помощью сухого спирометра

Плотно надевают мундштук на входную трубку спирометра. Мундштук протирают ватой, смоченной спиртом. Поворачивая крышку спирометра, устанавливают шкалу прибора так, чтобы стрелка совпала с нулевым делением шкалы.

Измерение жизненной емкости легких (ЖЕЛ). Исследование проводят стоя. Испытуемый делает 2-3 глубоких вдоха и выдоха, после чего делает максимально глубокий вдох и, взяв в рот мундштук, равномерно выдыхает в спирометр максимально возможное количество воздуха, напрягая все дыхательные мышцы, включая и брюшной пресс. Выдох испытуемого не должен быть замедленным или форсированным. Продолжительность выдоха должна быть в пределах 4-8 секунд. Во время исследования дыхательного объема испытуемый должен держать спирометр за корпус так, чтобы не препятствовать свободному выходу воздуха из прибора. Величину ЖЕЛ в литрах определяют по шкале спирометра. После исследования, поворачивая крышку спирометра, вновь устанавливают шкалу спирометра так, чтобы стрелка совпала с нулевым делением шкалы. Измерение ЖЕЛ проводят 3 раза и вычисляют среднюю арифметическую величину.

Измерение дыхательного объема воздуха. Спирометр приводят в нулевое положение. Испытуемый, взяв мундштук в рот, старается дышать спокойно через нос, в обычном режиме дыхания. Затем вдох производит через нос, а выдох - через рот в спирометр. После 5 дыханий отсчитывают по шкале объем выдохнутого воздуха и делят его на число дыхательных движений.

Измерение резервного объема выдоха. После очередного спокойного выдоха делают максимальный выдох в спирометр. Повторяют измерение 3 раза и вычисляют среднюю арифметическую величину.

Определение дополнительного объема вдоха. Из средней величины ЖЕЛ вычисляют сумму средних значений величин дыхательного объема и дополнительного объема выдоха.

Проведение спирометрии с помощью водяного спирометра “Спиро 1-8В”

При измерении объема выдыхаемого воздуха с помощью водяного спирометра “Спиро 1-8В” нужно учитывать его конструктивные особенности.

Спирометр внутри своего корпуса имеет установленный на двух горизонтальных цапфах поворотный колокол. На передней стенке колокола имеется указатель, который на шкале показывает объем выдыхаемого воздуха в литрах. Одновременно с указателем показание дает контрольная стрелка, посаженная на переднюю цапфу. Контрольная стрелка всегда должна быть справа от ручки колокола. По окончании выдоха контрольная стрелка фиксирует величину выдыхаемого воздуха, а указатель возвращается к нулевой отметке шкалы.

Работа спирометра основана на принципе объемных измерений выдыхаемого воздуха. При выдохе под поворотным колоколом создается избыточное давление, в результате чего колокол поворачивается вокруг горизонтальной оси.

Перед исследованием указатель колокола устанавливают на нулевую отметку, вращая колокол за ручку влево. Контрольную стрелку рукой подводят к нулевой отметке шкалы.

Измерение жизненной емкости легких (ЖЕЛ). Обрабатывают мундштук ватой, смоченной спиртом. Исследование проводят стоя. Для измерения объема выдыхаемого воздуха после 3 глубоких вдохов и выдохов делают максимальный вдох и, взяв в рот мундштук, равномерно выдыхают в спирометр максимально возможное количество воздуха. Выдох производят медленно, без рывков. В конце выдоха контрольная стрелка устанавливается на делении шкалы, соответствующем объему выдохнутого воздуха, а указатель колокола возвращается к нулевой отметке. Записывают величину ЖЕЛ. Контрольную стрелку к нулевой отметке подводят рукой. Измерение ЖЕЛ проводят 3 раза и вычисляют среднюю арифметическую величину.

Измерение дыхательного объема и дополнительного (резервного) объема выдоха производят аналогично, как и с помощью портативного сухого спирометра.

Измерение дополнительного объема вдоха. Вращая колокол за ручку вправо, устанавливают контрольную стрелку на значение 3 л и, после спокойного обычного вдоха, взяв мундштук в рот, производят глубокий вдох из спирометра. Отмечают значение указателя колокола. Разность между первым показателем и последним показывает объем дополнительного воздуха. Исследование делают 3 раза и вычисляют среднюю арифметическую величину.

Проведение спирометрии с помощью водяного цилиндрового спирометра

Измерение дыхательного объема воздуха: мундштук спирометра протирают ватой, смоченной спиртом. Спокойный выдох делают в спирометр и по шкале спирометра определяют результат. Спирометр приводят в нулевое положение, вынимая из крышки пробку и медленно опуская колокол.

Измерение резервного объема выдоха: испытуемого просят сделать (после очередного спокойного выдоха) максимальный выдох в спирометр. По шкале спирометра определяют резервный объем выдоха.

Измерение резервного объема вдоха: из крышки спирометра вынимают пробку, поднимают колокол, наполняя спирометр атмосферным воздухом примерно до 3000 мл. Пробку закрывают. Испытуемый после очередного вдоха задерживает дыхание, берет в рот мундштук и делает глубокий вдох из спирометра. Разность между первым показателем (3000 мл) и последним (например, 1500) показывает объем резервного объема вдоха. Спирометр приводят в нулевое положение.

Измерение ЖЁЛ: испытуемый делает два максимальных вдоха и выдоха в атмосферу, а затем, вдохнув максимально глубоко, максимально глубоко выдыхает в спирометр, напрягая все дыхательные мышцы, включая и брюшной пресс. Выдох производится медленно, без рывков. По шкале спирографа определяют результат. Спирометр приводят в нулевое положение.

Для большей точности измерения повторяют три раза и вычисляют среднюю арифметическую величину.

В норме дыхательный объем равен от 300 до 800 мл, в среднем 500 мл; резервный объем выдоха - 1000-1500 мл; резервный объем вдоха - примерно 2500 мл. ЖЁЛ для женщин 3000-3500 мл, для мужчин 3500-4000 мл. У тренированных спортсменов ЖЁЛ достигает 7200 мл.

Выражение практического результата

Количественное значение ЖЕЛ выражают в миллилитрах или литрах.

12. Пневмотахометрия

Материальное оснащение: пневмотахометр ПТ-1, спирт, вата.

Жизненная емкость легких зависит от мощности дыхательной мускулатуры и от скорости выдоха и вдоха. У здорового человека вдох по объему практически равен выдоху. При слабости дыхательной мускулатуры изменяется сравнительная сила наружных и внутренних межреберных мышц (за счет которых главным образом осуществляется вдох и форсированный выдох), что приводит к изменению соотношения объемов воздуха при выдохе и вдохе. Это изменение может быть зарегистрировано с помощью специального прибора - пневмотахометра.

Исследования выполняют при положении испытуемого стоя. Для измерения мощности вдоха испытуемый после полного выдоха делает форсированный вдох через датчик пневмотахометра. При измерении мощности выдоха испытуемый из положения максимального вдоха делает форсированный выдох через датчик пневмотахометра диаметром 20 мм, показатели снимают по внутренней шкале манометра в л/с. Каждую операцию повторяют 5 раз. Мощность вдоха и выдоха определяют по максимальным показателям пневмотахометра. По объемной скорости вдоха клиницисты делают заключение об эластичности легких, а по объемной скорости выдоха - о проходимости дыхательных путей.

Количественные значения показателей колеблются в широких пределах, что зависит от индивидуальных особенностей дыхательной системы. Ценность исследования повышается при сравнении результатов у одного и того же испытуемого в динамике.

Выражение практического результата

Количественное значение показателей выражают в литрах за секунду (л/с).

13. Расчет должных величин основного обмена

Материальное оснащение: ростомер, весы медицинские, таблица Гарриса-Бенедикта.

С помощью ростомера и весов измеряют рост испытуемого и его массу. Если взвешивание производилось в одежде, то полученный результат следует уменьшить на 5 кг для мужчин и на 3 кг для женщин. Далее используют таблицы.

Таблица для расчета основного обмена мужчин

(1 ккал = 4,19 кДж)

А

Б

Масса,

Кило-

Рост,

Мужчины (возраст в годах)

кг

калории

см

17

19

21

23

25

27

29

50

754

64

-

-

-

-

-

-

-

51

768

68

-

-

-

-

-

-

-

52

782

72

-

-

-

-

-

-

-

53

795

76

-

-

-

-

-

-

-

54

809

80

-

-

-

-

-

-

-

55

823

84

-

-

-

-

-

-

-

56

837

88

-

-

-

-

-

-

-

57

850

92

-

-

-

-

-

-

-

58

864

96

113

-

-

-

-

-

-

59

878

100

153

128

-

-

-

-

-

60

892

104

193

168

-

-

-

-

-

61

905

108

233

208

-

-

-

-

-

62

919

112

273

248

-

-

-

-

-

63

933

116

313

288

-

-

-

-

-

64

947

120

353

328

-

-

-

-

-

65

960

124

393

368

-

-

-

-

-

66

974

128

433

408

-

-

-

-

-

67

988

132

473

448

-

-

-

-

-

68

1002

136

513

488

-

-

-

-

-

69

1015

140

553

528

-

-

-

-

-

70

1029

144

593

568

-

-

-

-

-

71

1043

148

633

608

-

-

-

-

-

72

1057

152

673

648

619

605

592

578

565

73

1070

156

713

678

669

625

612

598

585

74

1084

160

743

708

659

645

631

618

605

75

1098

164

773

738

679

665

652

638

625

76

1112

168

803

768

699

685

672

658

645

77

1125

172

823

788

719

705

692

678

665

78

1139

176

843

808

729

725

718

698

685

79

1153

180

863

828

759

745

732

718

705

80

1167

184

883

848

779

765

752

738

725

81

1180

188

903

868

799

785

772

758

745

82

1194

192

923

888

819

805

792

778

765

83

1208

196

-

908

839

825

812

798

785

84

1222

200

-

-

959

845

832

818

805

Таблица для расчета основного обмена женщин (1 ккал = 4,19 кДж)

А

Б

Масса,

Кило-

Рост,

Женщины (возраст в годах)

кг

калории

см

17

19

21

23

25

27

29

50

1133

64

-

-

-

-

-

-

-

51

1143

68

-

-

-

-

-

-

-

52

1152

72

-

-

-

-

-

-

-

53

1162

76

-

-

-

-

-

-

-

54

1172

80

-

-

-

-

-

-

-

55

1181

84

-

-

-

-

-

-

-

56

1191

88

-

-

-

-

-

-

-

57

1200

92

-

-

-

-

-

-

-

58

1210

96

-21

-

-

-

-

-

-

59

1219

100

-5

-14

-

-

-

-

-

60

1229

104

11

2

-

-

-

-

-

61

1238

108

27

18

-

-

-

-

-

62

1248

112

43

34

-

-

-

-

-

63

1258

116

59

50

-

-

-

-

-

64

1267

120

75

66

-

-

-

-

-

67

1277

124

101

82

-

-

-

-

-

66

1286

128

107

98

-

-

-

-

-

67

1296

132

123

114

-

-

-

-

-

68

1305

136

139

130

-

-

-

-

-

69

1315

140

155

146

-

-

-

-

-

70

1325

144

171

162

-

-

-

-

-

71

1334

148

187

178

-

-

-

-

-

72

1344

152

201

192

183

174

164

155

146

73

1353

156

215

206

190

181

172

162

153

74

1363

160

229

220

198

188

179

170

160

75

1372

164

243

234

205

196

184

177

168

76

1382

168

255

246

213

203

194

184

175

77

1391

172

267

258

220

211

201

192

183

78

1401

176

279

270

227

218

209

199

190

79

1411

180

291

282

235

225

216

207

197

80

1420

184

303

294

242

233

223

214

204

81

1430

188

313

304

250

240

231

221

215

82

1439

192

322

314

257

248

238

229

220

83

1449

196

333

324

264

255

246

236

227

84

1458

200

-

334

272

262

253

244

234

По таблицам для определения основного обмена (часть А) находят рядом со значением массы испытуемого соответствующее число, записывают его. В части Б находят по горизонтали возраст и по вертикали рост. На пересечении граф возраста и роста находится второе число. Сложив оба числа, получают среднестатистическую величину нормального основного обмена человека данного пола, возраста, роста и массы.

Выражение практического результата

Количественную величину основного обмена выражают в ккал/сутки или в кДж/сутки.

14. Определение остроты зрения с помощью таблиц

Материальное оснащение: аппарат Рота с электролампой 60 Вт и таблицей Д.А.Сивцева для определения остроты зрения, рулетка на 5 м, указка, щиток из белого материала для закрытия глаза.

Для определения остроты зрения используют стандартные таблицы Д.А.Сивцева с буквенными знаками, которые расположены в 12 строк.

Сбоку каждой строки стоит цифра, обозначающая расстояние, с которого нормальный глаз различает буквы данной строки под углом зрения 1. Так, например, самую верхнюю строчку испытуемый должен видеть с расстояния 50 м, самую нижнюю - с расстояния 2,5 м. Таблицу вешают на хорошо освещенной стене (освещенность должна быть не ниже 60 лк) или дополнительно освещают электрической лампочкой...


Подобные документы

  • Основные сведения об эритропоэзе. Патогенетическая классификация анемий. Изменение биохимических показателей при анемиях. Определение скорости оседания эритроцитов, уровня гемоглобина, цветового показателя крови, гематокрита и количества лейкоцитов.

    курсовая работа [62,8 K], добавлен 18.07.2014

  • Автоматические методы анализа клеток крови. Основные источники ошибок при подсчете эритроцитов и лейкоцитов в камере. Особенности влияния различных факторов на результаты исследования крови. Информативность и достоверность гематологических тестов.

    реферат [44,1 K], добавлен 20.12.2012

  • Понятие и причины анемий как патологических состояний, при которых отмечается снижение гемоглобина и количества эритроцитов вследствие кровопотерь, нарушенного образования и ускоренного разрушения эритроцитов. Физиологическая гиперволемия беременных.

    презентация [445,1 K], добавлен 20.10.2014

  • Анемия как проявление широчайшего спектра различных заболеваний и один из распространенных видов патологии. Основная функция эритроцитов, показатели красной крови при анемии. Причины уменьшения содержания гемоглобина и количества эритроцитов в крови.

    реферат [1,6 M], добавлен 08.04.2019

  • Снижение уровня гемоглобина, эритроцитов и гематокрита в единице объема крови. Клинико-патогенетическая классификация анемий. Лабораторные критерии анемии у детей по содержанию гемоглобина. Анемии, возникающие вследствие повышенной деструкции эритроцитов.

    презентация [3,8 M], добавлен 27.03.2016

  • Анализ крови на гемоглобин в диагностике различных заболеваний, снижение уровня гликированного гемоглобина при гипогликемии, гемолитической анемии, кровотечениях и переливании крови. Способы цитологического определения типа гемоглобина в эритроцитах.

    реферат [24,9 K], добавлен 07.06.2010

  • Снижение уровня эритроцитов и концентрации гемоглобина при анемии. Нормальные показатели красной крови по возрастам. Значение цветного показателя. Основные принципы классификации анемий, многообразие их клинических и гематологических проявлений.

    презентация [19,2 M], добавлен 09.10.2012

  • Общие закономерности в патогенезе печеночной патологии, нарушения в организме при повреждении печени. Возникновение гемолитической желтухи вследствие чрезмерного разрушения эритроцитов и значительного образования свободного билирубина из гемоглобина.

    презентация [3,4 M], добавлен 21.09.2015

  • Физиологическое разрушение эритроцитов крови вследствие их естественного старения. Дифференциально-диагностические признаки внутриклеточного и внутрисосудистого гемолиза. Механизм распада гемоглобина. Обмен желчных пигментов; костномозговое кроветворение.

    презентация [183,3 K], добавлен 09.12.2015

  • Сравнительный анализ изменения осмотических свойств эритроцитов при изменении температуры и при окислительном стрессе. Температура как один из факторов, влияющий на осмотические свойства эритроцитов, растворимость газов, сродство гемоглобина к кислороду.

    курсовая работа [319,5 K], добавлен 01.10.2011

  • Возрастная периодизация человека. Кроветворение в эмбриогенезе. Изменение концентрации эритроцитов, лейкоцитов, лимфоцитов и тромбоцитов с возрастом. Удельный вес и вязкость крови новорожденных и у пожилых людей. Классификация и сроки развития лейкоцитов.

    презентация [190,8 K], добавлен 26.05.2016

  • Понятие патологии эритроцитов, ее сущность и особенности, различные отклонения и их отличительные черты. Общая характеристика анемии, ее классификация и формы проявления. Эритроцитозы и их разновидности. Патофизиология системы лейкоцитозов, симптоматика.

    курсовая работа [2,6 M], добавлен 25.04.2009

  • Общая характеристика нарушений функций или строения клеток крови — эритроцитов, лейкоцитов или тромбоцитов, патологических изменений их числа, а также изменений свойств плазмы крови. Виды и проявления анемии, талассемии, диатеза, тромбоцитопатии.

    презентация [5,2 M], добавлен 26.06.2015

  • Содержание гемоглобина и эритроцитов в системе кровообращения. Постгеморрагическая и апластическая анемия. Разрушение эритроцитов в кровяном русле. Нарушение кровотворения вследствие поражения костного мозга. Наружная или внутренняя кровопотеря.

    реферат [26,3 K], добавлен 09.07.2009

  • Основная функция эритроцитов. Молекула гемоглобина. Признаки, виды и патофизиологическая сущность анемии. Микросфероцитоз (болезнь Минковского–Шаффара). Гемоглобинопатия, наследственный сфероцитоз. Периферическая кровь: мегалоциты, анизоцитоз, макроцитоз.

    презентация [1,8 M], добавлен 19.02.2014

  • Анемия (малокровие) — клинико-гематологический синдром при снижении концентрации гемоглобина и уменьшении числа эритроцитов; симптом патологических состояний. Классификация анемий, этиология, патогенез, клинические проявления; лечение и профилактика.

    реферат [322,2 K], добавлен 18.01.2012

  • Уменьшение в крови количества гемоглобина. Малокровие вследствие острой кровопотери в течение короткого срока. Анемия при свинцовом отравлении. Наследственный микросфероцитоз, его этиология, патогенез и клиническая картина. Повышенная гибель эритроцитов.

    лекция [52,4 K], добавлен 14.04.2009

  • Анализ форменных элементов крови: эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов. Гемоглобин и его функции в работе организма. Гранулоциты, моноциты и лимфоциты как составлющие лейкоцитов. Паталогии в составе крови, их влияние на функции организма человека.

    реферат [31,4 K], добавлен 06.10.2008

  • Изучение клеточного состава крови: эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов. Строение, физико-химические свойства, функции крови. Физиологически активные вещества, принимающие участие в свертывании крови и находящиеся в плазме. Скорость оседания эритроцитов.

    курсовая работа [146,8 K], добавлен 26.12.2013

  • Характеристика железа, его физические, химические и биологические свойства. Железо в составе гемоглобина и миоглобина человека. Количество гемоглобина в крови человека. Уровень железа в плазме крови. Процессы разрушения и образования эритроцитов.

    реферат [36,1 K], добавлен 13.02.2014

Работы в архивах красиво оформлены согласно требованиям ВУЗов и содержат рисунки, диаграммы, формулы и т.д.
PPT, PPTX и PDF-файлы представлены только в архивах.
Рекомендуем скачать работу.