Размещено на http://www.allbest.ru/

Новосибирский государственный аграрный университет

Факультет ветеринарной медицины

Кафедра хирургии и ВНБ

Курсовая работа

По дисциплине: оперативная хирургия

На тему: Овариоэктомия кошки

Выполнила:

Студентка 6303гр Шаброва А.В.

Проверила:

Доцент Бойкова М.А.

Новосибирск 2013

Содержание

• Введение
• 1. Литературный обзор
• 1.1 Определение, этиология заболевания
• 1.2 Топографическая анатомия оперируемой области и органа
• 1.3 Способы оперативного лечения
• 1.4 Фармакологическая характеристика препаратов
• 2. Собственная работа
• 2.1 Сведения о животном
• 2.2 Общая подготовка животного к наркозу
• 2.3 Профилактика хирургической инфекции
• 2.3.1 Инструменты и способ их стерилизации
• 2.3.2 Подготовка операционного поля
• 2.3.3 Подготовка рук хирурга
• 2.3.4 Шовный и перевязочный материал
• 2.4 Фиксация животного
• 2.5 Обезболивание
• 2.6 Содержание хирургической операции
• 2.6.1 Оперативный доступ
• 2.6.2 Оперативный прием
• 2.6.3 Заключительный этап
• 2.7 Послеоперационное лечение
• 2.8 Рекомендации по уходу, содержанию и эксплуатации
• Библиографический список

Введение

На операции, являющейся темой моей работы я ассистировала в ветеринарной клинике "Омега", находящейся в микрорайоне "Родники", ул. Объединения, 9. Основные направления деятельности: - лечебно-профилактическая ветеринарная помощь мелким домашним животным, а также экзотическим и пернатым;

- диагностические исследования (экспресс-диагностика на стригущий лишай, крови на сахар, биохимия мочи, микроскопия на эктопаразитов, морфология мазка, экспресс-исследование на бабезиоз, микология, ультразвуковая диагностика, ЭКГ, отоскопия, офтальмоскопия и т.д.);

- хирургическая помощь (остеосинтез, герниотомия, гастро-, энтеротомия, пластическая хирургия и т.д.);

- акушерство, гинекология;

- стоматология;

-груминг

- стационар для ослабленных животных;

- вызов ветеринарного врача на дом;

За 2012 отчетный год в клинике было проведено 573 кастрации, из них 321 оварио-, овариогистерэктомия.

1. Литературный обзор

1.1 Определение, этиология заболевания

Кастрация - искусственное прекращение функций половых желез самцов и самок. Проводят ее с экономической и лечебной целью.

Половые железы вырабатывают половые клетки и продуцируют половые гормоны. Гормональная функция половых желез тесно связана с функциональной деятельностью внутренней секреции. После кастрации в организме значительно изменяется деятельность желез внутренней секреции, что качественно влияет на обмен веществ, физиологическое состояние животного, его рост и развитие. У животных повышается склонность к ожирению, они становятся более спокойными, что способствует увеличению прироста массы при откорме. Мясо у кастрированных животных становится нежным и не имеет специфического запаха и вкуса, присущих мясу некастрированных животных.

Коров кастрируют с лечебной целью и для улучшения откорма.

Свинок кастрируют в 4-5 месячном возрасте для улучшения откорма и получения большей массы жира. От кастрированных свинок получают мясной продукции на 20-30 кг больше, чем от некастрированных, а расход кормов за период откорма на 10-12% меньше.

Собак и кошек кастрируют при патологии яичников и для снятия полового возбуждения.

Цель операции - снятие полового возбуждения, коррекция поведения, для прекращения: криков кошек во время половой охоты, навязчивого вылизывания, агрессии по отношению к хозяину, имитации покрытия, агрессии, обусловленной страхом, или фобией, половой агрессии, гиперактивности, состояния страха и возбуждения при транспортировке.

Путь достижения - удаление яичников (овариоэктомия).

1.2 Топографическая анатомия оперируемой области и органа

овариоэктомия яичник кошка хирургический

Яичники (ovaria) - располагаются в поясничной области, в перинатальной полости. Каждый яичник покрыт яичниковой сумкой, которая частично скрывает его от непосредственного обзора. После открывания яичниковой сумки яичник предстает в виде продольно-овального, слегка уплощенного, иногда округлого органа. У кошки размеры яичника в среднем составляют 10*6*4 мм. Поверхность яичника гладкая.

Левый и правый яичники расположены на уровне III-IV поясничных позвонков, с некоторым смещением относительно друг друга. Яичники соприкасаются с каудальным полюсом почек или находятся в непосредственной близости от него. Поддерживающая их брыжейка в целом довольно короткая. В яичнике различают брыжеечный край (margo mesovaricus), с воротами яичника (hilus ovarii), и противоположный свободный край (margo liber), а кроме того, маточный конец (extremitas uterine), к которому прикрепляется собственная связка яичника, и трубный конец (extremitas tubaria), к которому прикрепляются отдельные бахромки воронки маточной трубы. Обе поверхности, латеральная и медиальная (facies lateralis et facies medialis) разделяются свободным кольцом.

Матка (uterus s. metra) является двурогой (uterus bicornis). Оба длинных тонких рога матки (cornua uteri) имеют одинаковую толщину и трубчатую форму, но не всегда одинаковую длину. Диаметр рога матки у небеременной кошки составляет 3-4 мм, длина рогов матки колеблется между 90 и 100 мм. Каждый рог матки описывает выгнутую вентрально дугу; в каудальной части оба рога матки соединяются. На небольшом участке они образуют двойную трубку, что выражается в наличии внутри клиновидной перегородки. Затем они сливаются полностью, образуя тело матки (corpus uteri). Тело матки относительно короткое - около 20 мм. Каудально оно заканчивается шейкой матки (cervix uteri), которая в два раза короче тела матки. Таким образом, внутреннее и наружное отверстия матки (ostium uteri internum et externum) отстоят друг от друга на несколько миллиметров. Шейка матки у кошки пальпируется как узловатое образование. Внутреннее отверстие матки выделяется не очень четко, т.к. просвет тела матки, постепенно сужаясь, плавно переходит в канал шейки матки. Наружное отверстие находится на вагинальной порции шейки матки (portio vaginalis cervicis), которая у кошки выступает во влагалище в виде v-образного сосочка на дрсальной продольной складке. Подвешивание матки осуществляется при помощи брыжейки матки (mesometrium). Она разделяет каудальную часть брюшной полости на ректогенитальную экскавацию (excavatio rectogenitalis) и пузырногенитальную экскавацию (excavation vesicogenitalis).

1.3 Способы оперативного лечения

Ветеринарные врачи рассматривают такие способы стерилизации кошек:

боковой сантиметровый разрез позволяет удалить кошке яичники. Как проходит стерилизация кошек станет понятно по описанию: на боку выбривается поле под операцию, на котором делают разрез. Через него с помощью специального инструмента вытягиваются и удаляются яичники. Этот способ представляет собой минимальное вмешательство в организм животного. Проведение операции требует опыта и конкретных навыков от хирурга. При выполнении такой операции у врача отсутствует доступ к осмотру других внутренних органов, но, пользуясь опытом, врач оценит состояние матки. При необходимости ее удаления, разрез может быть увеличен;

способ доступа через разрез по белой линии живота менее популярен, чем стерилизация кошек через боковой разрез. Техника проведения та же, но доступ в внутренним органам животного более обширный;

лапараскопический метод стерилизации кошек значительно отличается от предыдущих оперативных вмешательств и является одним из передовых способов. При лапароскопической технике стерилизация проходит как атравматичная за счет того, что удаление органов производится посредством бокового прокола брюшной стенки размером в 5 мм.

Бесшовная стерилизация кошек, без сомнения, наиболее показательна.

1.4 Фармакологическая характеристика препаратов

в/м рометар 2% 0,2 - раствор ксилазина гидрохлорида для инъекций, в 1 мл которого содержится 2мг ксилазина и 1 мг метил-4-гидроксибензоата. Применяется для анестезии при клинических исследованиях, рентгенографии, катетеризации, при хирургических перевязках, удалении зубного камня, лечении отитов, глаз, ран, для снижения возбуждения, при сотрясении мозга. В/м кошкам: 0,1-0,2 мл/кг

золетил 100 0,2 - "Zoletil 100" - относится к группе диссоциативных анестетиков, препарат "Zoletil 50" может применяться как средство для общей анестезин у всех видов животных и птиц, однако необходимо учитывать, что при использовании "Zoletil 50" у кошек препарат не связывается с белками плазмы крови и быстро выводится почками с мочой, поэтому доза для кошек должна быть на 20-30% больше, нежели для собак, а продолжительность анестезии соответственно на 30- 3 5% будет меньше. При использовании "Zoletil 50" как мононаркоз рекомендуются следующие дозировки для кошек: внутримышечное применение 8 мг/кг , животное достигает глубокого сна уже через несколько минут, продолжительность наркоза 20-30 минут, выход из наркоза ровный и быстрый.

обработка операционного поля - спирт 70% 45,0 ,

настойка йода 5%,

местная анестезия - новокаин 0,5% 5,0. - сложный эфир диметиламиноэтанола и парааминобензойной кислоты (ПАБК). Продолжительность инфильтрационной анестезии 30-60 минут. Высшая разовая доза для кошек - от 10 до 20 мг/кг

Внутрибрюшинно новокаин 0,5% 10,0 + цефазолина натриевая соль 0,3. Обработка швов - террамицин спрей. Антибиотик широкого спектра действия. Препарат эффективен против многих видов грамположительных и грамотрицательных бактерий, вызывающих кожные инфекции Fusobacterium necroforum, F. Nodosus и др. Препарат легко растворяется в сыворотке крови и тканевых жидкостях организма. Прочно фиксируется на инфицированном участке. Действие препарата после однократной обработки сохраняется в течение 7 дней.

В/м кеторол 0,5 + димедрол 1,0; кеторол оказывает выраженное анальгезирующее действие, обладает также противовоспалительным и умеренным жаропонижающим действием. Механизм действия связан с неселективным угнетением активности ЦОГ1 и ЦОГ2, катализирующей образование Pg из арахидоновой кислоты, которые играют важную роль в патогенезе боли, воспаления и лихорадки. По силе анальгезирующего эффекта сопоставим с морфином, значительно превосходит др. НПВП. После в/м введения и приема внутрь начало анальгезирующего действия отмечается соответственно через 0.5 и 1 ч, максимальный эффект достигается через 1-2 ч и 2-3 ч.

Димедрол - производное этаноламина. Снижает реакцию организма на гистамин, снимает спазмы гладких мышц, уменьшает прницаемость капилляров, предупреждает развитие отека и облегчает течение аллергических реакций. Обладает некоторым седативным и противовоспалительным действием.

2. Собственная работа

2.1 Сведения о животном

Вид: кошка домашняя

Пол: кошка

Возраст: 3 года

Порода: беспородная

Масть: трехцветная

Кличка: Муся

Владелец: Пашечникова А.П. Адрес: ул. Гребенщикова, 11/1

Анамнез жизни: Содержится в квартире. Кормление - сухой, влажный корм. Домашнего рациона и витаминов не добавляется. Не привита

Диагноз: клинически здорова

Прогноз: благоприятный

Дата выполнения операции: 9.02.12

Оперативное вмешательство: овариоэктомия

Место проведения операции: ветеринарная клиника "Омега"

Исход: полное выздоровление

Члены операционной бригады: ветеринарный врач Маркина Н.А., ассистенты врача - ветеринарный фельдшер Петрова А.Б., студентка НГАУ ФВМ - Шаброва А.В.

2.2 Общая подготовка животного к наркозу

Голодная диета 15 часов

Водная диета 8 часов

При пальпации: кишечник - пустой, мочевой пузырь умеренно наполнен

Последняя половая охота - завершилась за 2 недели до операции (со слов хозяйки), гормональные контрацептивы не применялись в течении всей жизни. Применялись капли "Стоп-стресс" в течение 5 дней в период половой охоты.

2.3 Профилактика хирургической инфекции

2.3.1 Инструменты и способ их стерилизации

Ножницы прямые и изогнутые по плоскости Купера- 2 шт

Пинцеты анатомический и хирургический - 2 шт

Бельевые цапки Майо, Цапки для белья Микулича - 4 шт

Инструменты стерилизуются в бактерицидном стерилизаторе "Микроцид" в течении 3 минут.

2.3.2 Подготовка операционного поля

Механическая очистка. В оперируемой области выстригли и выбрили волосяной покров, затем мягкой щеткой или марлевой салфеткой обмыли кожу теплой водой с мылом и насухо вытерли чистым полотенцем.

Во время механической чистки с поверхности кожи удаляют чешуйки эпидермиса, грязь с секретами потовых и сальных желез, а вместе с ними большое количество различной микрофлоры.

Дезинфекция операционного поля.

Кожу дезинфицируют двукратным смазыванием операционного поля 5%-ным спиртовым раствором йода. Этот препарат хорошо растворяет кожное сало и глубоко проникает в кожу, воздействуя на микроорганизмы, находящиеся как на поверхности, так и в толще ее. Раствор йода наносят на сухую кожу, т.к. в присутствии влаги он действует слабее.

Первую обработку делают перед местным обезболиванием, вторую - непосредственно перед разрезом кожи. Для этого используют стерильные ватные или марлевые тампоны.

Обработку начинают с центра операционного поля концентрическими кругами или параллельными полосами.

Рис.1 Дезинфекция раствором йода

После дезинфекции операционное поле изолируют от окружающих участков кожного покрова стерильной салфеткой

Рис.2. Изоляция операционного поля

2.3.3 Подготовка рук хирурга

Подготовку рук начинают за 10-15 минут до операции. очищают механически: коротко подрезают ногти, удаляют заусенцы, очищают подногтевые пространства. Затем 3-4 минуты руки моют теплой водой с мылом щетками или салфеткой.Щетки перед употреблением должны быть простерилизованы кипячением и храниться около умывальника в широкой банке в антисептическом растворе (0,2%0ном хинозола, 3%-ном карболовой кислоты и др.) с закрытой крышкой. Руки моют методично и последовательно: сначала моют кисти и нижнюю часть ладони и тыльные стороны кистей. После мытья руки вытирают насухо стерильным полотенцем, начиная с кисти и заканчивая предплечьем.

Затем кожу рук обрабатывают 3 минуты, обтирая стерильным марлевым шариком, пропитанным этиловым спиртом. После обработки рук антисептическими средствами обязательно нужно смазать подногтевые пространства 5%-ным спиртовым раствором йода.

Обработка рук антисептическими средствами не обеспечивает их стерильность. Поэтому операция проводилась в стерильных хирургических перчатках, изготовленных из латекса натурального каучука, предварительно покрытых абсорбирующей пудрой. Перчатки находятся в стерильном состоянии, если упаковка не нарушена. Нужно помнить, что перчатки не очень прочные. Во время операции они нередко рвутся, могут быть случайно проколоты иглой, скальпелем. Поврежденные перчатки следует немедленно заменить.

2.3.4 Шовный и перевязочный материал

В качестве шовного материала использовались стерильные нити "Поликон" №0 для отшивания яичников, "Поликон"№2 для наложения непрерывного шва на брюшную стенку и для наложения узлового шва на кожу. Вспомогательным прокладочным материалом являлись стерильные салфетки. В качестве повязки была использована послеоперационная попона для кошек.

Рис. 3. Перевязочный материал. Послеоперационная попона

2.4 Фиксация животного

Животное зафиксировано в лежачем положении на спине на столе Виноградова.

2.5 Обезболивание

Вид общего наркоза - сочетанный, потенцированный

Премедикация - рометар 2% (Rometar, Sol. Xylasyni hydrochlorydi) в/м 0,2 мл

Общий наркоз - золетил 100 (Zoletil 100) в/м 0,2 мл

Местное обезболивание с применением инфильтрационной линейной анестезии 0,5%-ным раствором новокаина (Sol. Novocaini 0,5%) п/к по белой линии

Рис 4. Обезболивание раствором новокаина

2.6 Содержание хирургической операции

2.6.1 Оперативный доступ

Непосредственно перед операцией проводят повторную дезинфекцию операционного поля.

Брюшную стенку разрезают по белой линии живота на 4-5 см, отступив на 1-1,5 см каудально от пупка. Остатки средней пузырно-пупочной связки (Lig. vesicoumbilicale medium) отделяют пинцетом и ножницами.



2.6.2 Оперативный прием

После вскрытия брюшной полости вводят два пальца в полость и в дорсальной части брюшной стенки отыскивают рог матки. Затем рог матки вытягивают из брюшной полости и перемещают вперед яичник. Лигатуру накладывают на связку, брыжейку и сосуды над и под сумкой яичника, после чего яичник срезают ножницами.

Рис. 9. Культю обрабатывают настойкой йода.

В такой же последовательности удаляют и другой яичник.

Рис. 10. Затем внутрибрюшинно ввели новокаин 0,5% 10,0 + цефазолина натриевая соль 0,3.

2.6.3 Заключительный этап

Для остановки кровотечения применили механический способ. Для обнаружения кровоточащего сосуда раскрыли рану, удалили тампоном с ее поверхности кровь, захватили сосуд гемостатическим пинцетом и, убедившись, что он не кровоточит, перевязали его. Для этого взяли лигатуру длиной 10-15 см и обвели ее вокруг сосуда, затянули один узел и после снятия пинцета другой. Затем удалили сгустки крови стерильным тампоном.

Для ушивания брюшной стенки применили непрерывный скорняжный шов. Первый стежок делается вблизи угла раны, сблизив ее края до полного соприкосновения. В месте выхода иглы завязывают первый стежок. Последующие стежки делают на одинаковых расстояниях от краев раны( 0,5-0,75 см) с равными промежутками. При этом нить лежит на поверхности раны в косом направлении, а в глубине - перпендикулярно ее краям. Перед последним стежком делают свободный конец нити настолько длинным, чтобы он остался на стороне вкола, удаляют иглу, а освободившуюся петлю завязывают с концом нити тройным узлом.



Рис 11. ушивание брюшной стенки непрерывным скорняжным швом

На кожу наложили прерывистый узловой шов. Он накладывается отдельными нитями длиной 10-15 см каждая. Края раны фиксируют хирургическим пинцетом. Иглу, зажатую иглодержателем, вкалывают на расстоянии 0,5-1,5 см от краев раны и, действуя, одновременно пинцетом и иглой в направлении друг к другу, прокалывают ткани на одной стороне снаружи вовнутрь, на другой - изнутри наружу. Стежки накладывают на расстоянии 0,75-1,5 см один от другого. Нити каждого стежка завязывают без чрезмерного усилия, обеспечивая точное сопоставление краев раны. Узлы распологают сбоку от краев раны, вблизи введения или выведения иглы. Обработка швов - Террамицин спрей.

В качестве повязки использовали послеоперационную попону для кошек.

2.7 Послеоперационное лечение

название	Форма выпуска	Путь введения	Дозировка, шт, мл
			10.02	11.02	12.02
			у	в	у	в	у	в
Цитостат №20	таблетки	орально	2	2	2	2	2	2
Хлорогексидина биглюконат	раствор	наружно	*	*	*	*	*	*

*обработка необходимым количеством для удаления экссудата.

2.8 Рекомендации по уходу, содержанию и эксплуатации

В течение первых суток обеспечить животному тихое, уютное место, не беспокоить. Обеспечить доступ к чистой свежей питьевой воде. Через 6-8 часов после операции можно кормить. Предпочтительно послеоперационные кома, например из линейки Royal Canin - Recovery, а также куриное вареное нежирное мясо, кисломолочные продукты. Не давать животному доступ к ране (разлизывать, царапать, кусать), при необходимости одеть послеоперационный воротник. Повязку менять каждый день, обрабатывая рану. Снятие швов на 7-10 день. Далее можно переводить животное на корма для кастрированных животных, с целью профилактики избыточного веса, давать витамины для стерилизованных кошек.

В целом стерилизованные кошки после окончательного восстановления не нуждаются в особых мерах ухода. Эти животные становятся более мягкими характером, контактными, иногда более ленивыми. Все это очень индивидуально, но в любом случае надо следить за здоровьем питомца, обеспечивать ему подвижный образ жизни, кормить и любить. Стерилизация - лучший способ, для тех, кто не планирует заниматься разведением кошек, хочет продлить жизнь своему любимцу, не пичкать гормональными препаратами, забыть о его агрессии, криках и метках во время охоты.

Библиографический список

1. В.Д. Соколов. Фармакология: учебник / под ред. В.Д. Соколова - 3-е издание, дополн. и испр. - СПб.: Издательство "Лань", 2010

2. Х.Шебец, В.Брасс. Оперативная хирургия собак и кошек. М, Аквариум, 2001г. - 511с.

3. Б.Фольмерхаус, Й.Фревейн. Анатомия собаки и кошки. М, Аквариум 2003г.-580 с.

4. К.А.Петраков, П.Т.Саленко, С.М.Панинский. Оперативная хирургия с топографической анатомией животных. М.,"Колос" 2001г.-423 с.

5. И.А. Калашник. Практикум по общей и частной ветеринарной хирургии". М.: Агропромиздат - 1988г.-303с.

6. А.В. Лебедев, В.Я. Лукъяновский, Б.С. Семенов " Общая ветеринарная хирургия". М., Колос - 2000-448с.

7. С.С. Липницкий, В.Ф. Литвинов, В.В. Шимко. Справочник по болезням домашних и экзотических животных. Ростов-на-Дону, "Феникс", 2002г. - 448с.

8. Б.С. Семенов, А.В. Лебедев, А.Н. Елисеев "Частная ветеринарная хирургия". М., Колос, 1997г. - 496с.

9. Физиология сельскохозяйственных животных: учебник для вузов / А.Н. Голиков, М.Ф. Мещерякова, Н.А. Сафонов и др. // Под редакцией А.Н. Голикова, 3-е изд. перераб. и доп. М, Агропромиздат, 1991. - 432 с.

10. Акаевский А.И. "Анатомия домашних животных". М, Колос, 1984г - 543с.

Размещено на Allbest.ru

...