Анаплазмозно-бабезиозная инвазия овец в ЧП с. Новоселовское, Раздольненского района АР Крым
Изучение особенностей эпизоотологии анаплазмозно-бабезиозной инвазии овец. Комплекс мероприятий по борьбе и профилактике данного заболевания применительно к условиям хозяйства. Сезонно-возрастная динамика заболевания, источники передачи возбудителей.
Рубрика | Сельское, лесное хозяйство и землепользование |
Вид | дипломная работа |
Язык | русский |
Дата добавления | 01.09.2014 |
Размер файла | 7,0 M |
Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже
Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.
Размещено на http://www.allbest.ru/
Размещено на http://www.allbest.ru/
НАЦИОНАЛЬНЫЙ УНИВЕРСИТЕТ БИОРЕСУРСОВ И ПРИРОДОПОЛЬЗОВАНИЯ УКРАИНЫ
ЮЖНЫЙ ФИЛИАЛ «КРЫМСКИЙ АГРОТЕХНОЛОГИЧЕСКИЙ УНИВЕРСИТЕТ»
Дипломная работа на тему:
«Анаплазмозно-бабезиозная инвазия овец в ЧП с.Новоселовское, Раздольненского района АР Крым»
Выполнил: студентка 5 курса ФВМ
Бацунова Наталия Валериевна
Симферополь 2010
Содержание
Введение
1. Обзор литературы
1.1 Распространение анаплазмозно-бабезиозной инвазии овец и экономический ущерб от данного заболевания
1.2 Эпизоотология и патогенез анаплазмозно-бабезиозной инвазии у овец
1.3 Клинические признаки заболевания и лабораторная диагностика
1.4 Лечебно-профилактические мероприятия при анаплазмозно-бабезиозной инвазии овец
2. Собственные исследования
2.1.Материал и методы исследований
2.1.1 Характеристика препаратов
2.2 Характеристика хозяйства
2.3 Результаты исследований
2.3.1 Эпизоотологическая ситуация по анаплазмозно-бабезиозной инвазии овец в ЧП Селяметов Раздольненского района
2.3.2 Сезонно-возрастная динамика анаплазмозно-бабезиозной инвазии овец
2.3.3 Изучение источников передачи возбудителей анаплазмоза и бабезиоза
2.3.4 Сравнительная эффективность препаратов для лечения анаплазмозно-бабезиозной инвазии овец
2.3.5 Мероприятия по борьбе и профилактике анаплазмозно-бабезиозной инвазии овец в ЧП «Селяметов» Раздольненского района
3. Экономическое обоснование полученных результатов
4. Ветеринарная экология
5. Обсуждение полученных результатов
6. Предложения по профилактике и ликвидации анаплазмозно-бабезиозной инвазии в ЧП «Селяметов»
Выводы
Список использованной литературы
Приложения
Введение
Овцеводство в Крыму всегда было приоритетной отраслью, поскольку этот вид животных наиболее полно отвечает природно-климатическим и экономическим особенностям региона. Овцы довольно нетребовательные животные, они хорошо себя чувствуют на скудных степных солончаковых пастбищах, на которых существование других видов затруднено.
В Крыму овцеводство распространено в северной степной зоне, занимающей 4/5 всей территории полуострова, и частично в предгорье. Следует отметить, что зоны разведения овец в Крыму по агроклиматическим особенностям относятся к засушливым и очень засушливым, что определяется не только малым количеством осадков, но и большой сухостью воздуха, дополняемой в летнее время частыми суховеями. Вырастить, а тем более получить высокую продуктивность от овец в таких условиях нелегкая задача. К тому же она осложняется наличием различных заболеваний, поражающих этих животных. Большой экономический ущерб овцеводству причиняют эндоглобулярные кровопаразитарные заболевания[ 21].
Весомый вклад в изучение этих инвазий на территории Крыма внесли А.В. Белицер, А.А. Хейфец, Б.Д. Соколов, Д.К. Нечиненный, В.И. Курчатов, П.Н. Ли, М.В. Карташов, Ю.Г. Мироненко. Эти исследователи много сделали для профилактики, лечения кровопаразитарных инвазий, а также организации мер борьбы с их переносчиками - иксодовыми клещами. Они показали, что кровопаразитарным болезням свойственна строгая сезонность [ 10]. Эти заболевания не имеют повсеместного распространения, располагаются в виде отдельных очагов, не связанных друг с другом, что обусловлено наличием:
1. клеща - переносчика заболевания;
2. больного и переболевшего животного - носителя возбудителя заболевания;
3. здорового восприимчивого животного - объекта заражения;
4. совокупности благоприятных для заражения условий внешней среды, определяющих возможность развития клещей, инвазии в них, контакта клещей и восприимчивых животных [ 10,38,40].
Однако, несмотря на явные успехи борьбы с кровопаразитарными заболеваниями овец в Крыму, эти инвазии постоянно встречаются и наносят существенный урон овцеводству [10].
Заражение восприимчивых животных кровепаразитами осуществляется через кровососущих иксодовых клещей, широко распространенных временных внешних паразитов позвоночных животных [26].
Среди клещей наибольшее распространение имеют иксодовые клещи рода Parasitiformes, семейства Ixodidae (Балашов Ю.С., 1967; Беспалов Л.И., 1969; Бердиев А.Б., 1998), которые по условиям массового нападения приводят к сильной интоксикации, нередко с развитием «клещевого» паралича, а также могут привести к гибели животных, чем причиняют значительные экономические убытки (Агринский Н.И., 1962; Поляков В.А., Узаков У.Я., 1990).
Исследованиями в Украине была установлена ситуация по пироплазмидозам в определенных регионах и разработаны мероприятия борьбы с иксодовыми клещами и трансмиссивными болезнями в животноводстве [22].
На территории Крымского полуострова доминирующими паразитами, которых переносят иксодовые клещи являются три вида возбудителей кровопаразитарных заболеваний: Anaplasma ovis, Babesia ovis, Babesia motasi. Смешанную инвазию простейшими (Anaplasma ovis+Babesia ovis+Babesia motasi) впервые на территории бывшего СССР зарегистрировал именно в Крыму О.О. Марков [ 24].
Несмотря на широкое распространение смешанной формы инвазии до настоящего времени схемы профилактических и лечебных мероприятий при этой форме заболевания не щдостаточно разработаны. Проблемы кровопаразитарных заболеваний (особенно смешанных форм) осложняются тем, что на полуостров завозят племенных животных без соблюдения карантинно-профилактических мероприятий. При этом завезённые животные в первый же год тяжело болеют бабезиозом и анаплазмозом с высоким процентом падежа.
Таким образом, изучение смешанной формы анаплазмозно-бабезиозной инвазии овец, а также разработка лечебно-профилактических мероприятий при данном заболевании имеет практическое значение.
В связи с этим целью нашей работы было изучить особенности эпизоотологии анаплазмозно-бабезиозной инвазии овец и разработать комплекс мероприятий по борьбе и профилактике данного заболевания применительно к условиям хозяйства.
Задачи исследований:
1. Изучить распространение анаплазмозно-бабезиозной инвазии овец в АР Крым, Раздольненском районе и ЧП «Селяметов» Раздольненского района;
2. Установить сезонно-возрастную динамику заболевания;
3. Выяснить источники передачи возбудителей;
4. Изучить сравнительную эффективность лечебных препаратов при смешанном течении анаплазмоза и бабезиоза у овец;
5. Разработать мероприятия по борьбе и профилактике анаплазмозно-бабезиозной инвазии овец в ЧП «Селяметов» Раздольненского района.
1. Обзор литературы
1.1 Распространение анаплазмозно-бабезиозной инвазии овец и экономический ущерб от данного заболевания
Пироплазмидозы - облигатно-трансмиссивные заболевания, вызываемые беспигментными эндоглобулярными паразитами крови, поражающие многие виды домашних и диких животных, особенно часто крупный и мелкий рогатый скот, лошадей и собак [33].
Пироплазмиды - это кровепаразиты, локализующиеся в клетках и плазме крови и разрушающие их. Развиваются пироплазмиды у двух хозяев: дефинитивного - теплокровного животного и промежуточного - клеща. При укусе клеща, инвазированного пироплазмидами, возбудители попадают в кровь животного и внедряются в эритроциты, где размножаются простым делением и почкованием, разрушают эритроциты и поражают новые. При заглатывании клещами таких эритроцитов пироплазмиды освобождаются от клеток крови, проникают в кишечник клеща, где они также размножаются. В клещах простейшие долго сохраняются и передаются через несколько генераций[1,34 ].
Пироплазмидозы распространены в южных и западных зонах всех континентов земного шара. Заболевания наносят большой ущерб животноводству, особенно бабезиозы крупного рогатого скота, овец и коз [11]. овца хозяйство бабезиозный
Кровепаразитарные заболевания овец в Крыму вызываются тремя видами возбудителей: Babesia motasi (Piroplasma ovis), Babesia ovis и Anaplasma ovis. Чаще всего гемоспоридиозные заболевания встречаются в виде смешанной инвазии. Наиболее вероятным является сочетание обеих видов бабезий и анаплазм [10].
В основе зоологической классификации протозойных заболеваний лежат морфо-биологические особенности возбудителя.
Babesia ovis - беспигментные эндоглобулярные паразиты, также как и пироплазмы, относятся к подцарству Protozoa, классу Sporozoa, семейству Babesiidae, включающему два рода - Babesia и Piroplasma. Это мелкие паразиты, имеющие округлую, овальную, кольцевидную, парногрушевидную или амебовидную формы. Расположение в эритроцитах - периферическое. Грушевидные формы располагаются чаще всего парами, угол расхождения тупой. Преобладающей формой в периферической крови является округлая (до 80%). Вначале болезни в крови животных находят анаплазмоидные (кокковидные) формы, затем нарастает число кольцевидных и парных грушевидных форм паразитов. Заражение эритроцитов достигает 40%.
Babesia motasi - наиболее крупные из всех эндоглобулярных паразитов овец, имеют вид округлых, овальных, амебовидных, грушевидных включений. Характерная форма- двойные грушевидные паразиты, соединенные узкими концами, угол расхождения острый, в эритроцитах расположены центрально.
Анаплазмы под микроскопом имеют вид точки. Окраска по Романовскому-Гимза придает анаплазмам фиолетовый цвет, интенсивность которого варьирует от времени экспозиции воздействия краски. По структуре анаплазмы близки к представителям риккетсий. Наличие клеточной стенки, характер деления, свойственный грамотрицательным бактериям, трансмиссивность, чувствительность к тетрациклиновым препаратам в большей мере сближает анаплазмы с риккетсиями. Форма анаплазм круглая или овальная, но не всегда строго правильная. Они обнаруживается на периферии эритроцитов. Особенностью в строении анаплазм является отсутствие у них протоплазмы. Эритроциты поражаются анаплазмами от 0,5 до 35 %, при нахождении в одной клетке от 1 до 5 паразитов [10].
Заболевания, вызываемые указанными возбудителями носят названия - бабезиоз и анаплазмоз.
Бабезиоз - летнее, энзоотическое, остропротекающее заболевание, проявляется лихорадкой, гемоглобинурией, прекращением лактации.
У крупного рогатого скота паразитируют следующие виды пироплазмид: Babesia divergence = B. bovis, B. argentina, B. Major.
У северных оленей - B. tarandirangiferis [2].
Вторым наиболее частот встречающимся заболеванием является анаплазмоз - трансмиссивная лихорадочная болезнь, протекающая с явлениями анемии и истощения, угнетения общего состояния, кратковременным повышением температуры, резким снижением молочной продуктивности у крупного и мелкого рогатого скота [16].
Бабезиозом болеет и человек. Данную инвазию у людей впервые диагностировали в Югославии в 1957 году. В мировой литературе к настоящему времени описано всего около 100 случаев бабезиоза, большинство из которых закончилось летально. Манифестные формы заболевания развивались у лиц с резкими нарушениями иммунной системы, в частности после спленэктомии. Считается вероятной манифестация бабезиоза у ВИЧ-инфицированных. У людей с нормально функционирующей иммунной системой заболевание протекает бессимптомно, несмотря на наличие паразитемии, достигающей 1-2% [ 3].
Бабезиоз животных регистрируется в Европе (Скандинавские страны, Франция, ФРГ, Югославия, Польша) и в США (восточное побережье). Отмечены случаи инвазии у мышей-полёвок и других грызунов, собак, кошек, крупного рогатого скота, овец [ 3,6].
Впервые бабезиоз животных зарегистрировал в 1888 году В. Бабеш [ 2].
Ежегодно только в Европе отмечаются десятки тысяч случаев заболевания домашних животных бабезиозом. Возбудитель сохраняется в организме клещей-переносчиков пожизненно и может передаваться трансовариально из поколения в поколение на пртяжении нескольких лет [3].
1.2 Эпизоотология и патогенез анаплазмозно-бабезиозной инвазии у овец
При изучении эпизоотологии бабезиоза было установлено, что к нему восприимчивы овцы и козы всех пород и возрастов, но тяжелее заболевание переносят взрослые животные старше 2 лет. При паразитировании возбудителей у собак и свиней более тяжелое течение регистрируют у поросят в возрасте 2-4 месяцев и щенят [25].
Основным переносчиком бабезиоза собак является клещ Dermacentor pictus [37,13,17]. Dermacentor pictus встречается в лесах, особенно расположенных около водоемов. Прокормителями для этого вища клещей являются грызуны, насекомоядные, домашние и дикие животные. Пик активности клещей приходится на май и осенний период [23].
К анаплазмозу восприимчивы кроме мелкого и крупного рогатого скота, также буйволы, олени, лоси, сайгаки, козероги, белохвостые олени [16].
Источником возбудителя анаплазмоза и бабезиоза являются больные животные и носители [16, 25].
Основными переносчиками анаплазм и бабезий являются иксодовые клещи на разных стадиях развития. Механически переносить анаплазм также могут кровососущие насекомые и работники животноводсва, главным образом ветеринарные врачи при использовании нестерильных инструментов, загрязненных кровью больных животных или анаплазмоносителей [34, 25].
Анаплазмоз и бабезиоз - заболевания сезонные. У крупного рогатого скота вспышки заболеваний регистрируют в пастбищный (июнь-июль, октябрь) и стойловый (при анаплазмозе - январь-март) периоды. У овец массовая заболеваемость связана с периодом активности членистоногих (весна, лето, осень) [16,25].
Появление кровепаразитарных заболеваний тесно связано с ареалом распространения иксодовых клещей. В степном Крыму на овцах паразитируют четыре вида клещей: Rhipicephalus bursa, Haemaphysalis punctata, Hyalomma plumbeum и H.scupense. Причем, согласно данным исследователей, превалирует здесь клещ Hyalomma plumbeum. В предгорье обнаружено также четыре вида иксодовых клещей: Rhipicephalus bursa, Haemaphysalis punctata, Hyalomma plumbeum и Dermacentor marginatus, из которых основным является Rhipicephalus bursa. В горной зоне АР Крым зарегистрировано наличие пяти видов клещей: Rhipicephalus bursa, Haemaphysalis punctata, Hyalomma plumbeum, Ixodes ricinus и Dermacentor marginatus, из которых широко распространены Rhipicephalus bursa, Haemaphysalis punctata и Hyalomma plumbeum [10,9]. Также переносчиком южных гемоспоридиозных заболеваний крупного рогатого скота является клещ Боофилюс калькаратус [20].
Главным переносчиком кровепаразитарных болезней овец в Крыму, как свидетельствуют данные литературы, является двуххозяинный клещ Rhipicephalus bursa [10 ].
Результаты изучения динамики паразитирования клещей вида Rhipicephalus bursa на овцах в АР Крым показали, что сезон нападения клещей на животных длится в зависимости от климатических факторов (температуры и количества осадков) со второй декады апреля или второй декады мая по ноябрь. При этом заклещеванность небольшая - в среднем 1,5 экземпляра на одно животное, а экстенсивность инвазии - 50-60 %. В апреле и мае число поражённых животных увеличивается и достигает максимума в средине июня. В это время заклещеванность овец в среднем составляет до 30 экземпляров клещей на одном животном со 100% экстенсивностью инвазии. Именно в этот период наблюдается массовое клиническое проявление бабезиоза и анаплазмоза у овец. В июле пораженность овец снижается, а в августе, сентябре, октябре и ноябре обнаруживают единичные случаи паразитирования имаго клещей на животных. В сентябре заклещеванность овец резко возрастает за счет личиночных и нимфальных стадий. В это время на овцах выявляли до двадцати экземпляров личинок клещей [10,26].
Патогенез анаплазмозно-бабезиозной инвазии.
После укуса клеща возбудитель проникает в капилляры и в эритроциты [3]. Процесс фагоцитоза в месте внедрения возбудителя начинается уже в 1-е сутки после заражения. Паразит распространяется по кровеносной и лимфатической системе и через 48-72 часа развивается генерализованный процесс, что ведет к изменению биохимических структур тканей и развитию благоприятных условий для размножения возбудителя. Имеются сообщения о способности клеток крови фагоцитировать бабезии и эритроциты, пораженные ими [19].
В эритроцитах происходит размножение бабезий и анаплазм. При этом отмечается лизис эритроцитов, который обусловлен не только воздействием паразитов, но и появлением антиэритроцитарных антител [3,4].
Клинические проявления заболевания возникают когда число пораженных эритроцитов достигает 3-5%. При разрушении эритроцитов в кровь попадают продукты жизнедеятельности паразитов и гетерогенные протеины, что обусловливает мощную пирогенную реакцию и другие общетоксические проявления. Нарастающая анемия сопровождается выраженной тканевой гипоксией и нарушениями микроциркуляции. В почечных капиллярах оседают клеточные оболочки («тени») эритроцитов и свободный гемоглобин, что приводит к развитию гемоглобинурии и острой почечной недостаточности. При массивном лизисе эритроцитов развиваются нарушения пигментного обмена с накоплением в крови преимущественно непрямого билирубина. Всё это приводит к истощению и гибели животного [3, 15, 43].
1.3 Клинические признаки заболевания и его лабораторная диагностика
При бабезиозе инкубационный период составляет от 8 до 18 дней. Больные животные угнетены, отказываются от корма, у некоторых замечена мышечная дрожь. Дыхание поверхностное, учащенное, пульс ускорен. Появляется лихорадка постоянного типа, температура тела достигает +42 0С. При тяжелом течении болезни животное лежит или передвигается с трудом. У больных наблюдается сильная жажда. Цвет слизистых оболочек бледный, с желтушным оттенком. У животных наблюдается чередование поноса и запора. Моча имеет красный цвет (гемоглобинурия) [ 42,8].
Количество эритроцитов в крови снижается до 4-5 млн. в 1 мм3, гемоглобина - на 20-30 % вследствие быстрого разрушения эритроцитов из-за размножения в них паразитов. Переболевание овец длится 4-9 дней. При благоприятном исходе больные овцы выздоравливают медленно [10]. Бабезиоз также ведет к изменению количества белка и соотношения белковых фракций в сыворотке крови [6].
У больных животных при бабезиозе отмечают кратковременное снижение в крови содержания Т- и В-лимфоцитов [3].
У собак при бабезиозе наблюдали полное изменение форм эритроцитов- пойкилоцитоз. Основными формами эритроцитов являлись акантоциты, стоматоциты, шизоциты и их периферическая вакуолизация [14].
При анаплазмозе инкубационный период колеблется от 8 до 40 дней. Температура держится в пределах +40 - +410С в течение от одного до пяти - восьми дней, затем наступает ремиссия до пяти дней. В последующем температура вновь повышается, что совпадает с появлением в крови небольшого количества паразитов. Болезнь длится 15-40 дней. Гибель чаще наступает на 3-8 день [10, 2, 43].
При тяжелом течении заболевания быстро наступает общее угнетение, слабость, вялость мышц. Животные, несмотря на наличие аппетита, худеют, подолгу лежат. Основным патогномоничным симптомом при анаплазмозе является выраженная анемия. Цвет слизистых оболочек бледный, во время повышения температуры появляется желтушность, затем она исчезает, а сильная бледность («фарфоровые слизистые») остается еще длительное время (1-1,5 месяца).У животных сильно увеличиваются и твердеют лимфоузлы (в 2-3 раза). Восстановление лимфатических узлов до нормы происходит через 2-4 месяца после переболевания [16 ].
Во время болезни наблюдается учащенное сердцебиение, аритмия, тахипноэ. Желудочно-кишечный тракт находится в состоянии атонии. В начале болезни наблюдаются запоры, которые сменяются поносами. У больных животных сильная жажда. Цвет мочи светло-желтый или почти бесцветный. Кровь водянистая, количество эритроцитов снижается до 1-3 млн. в 1мм3, лейкоцитов до 3-4 тыс. в 1 мм3, в крови преобладают большие и малые лимфоциты при общем угнетении кроветворения. На протяжении 18 месяцев носительства анаплазмы сохраняют свою патогенность [10].
Диагноз на кровепаразитарные заболевания овец и других животных ставят на основании эпизоотологических наблюдений, клинических и патананатомических исследований, а также обязательного микроскопического исследования мазков крови и мазков-отпечатков из паренхиматозных органов павших животных [10, 4, 16].
Кровь для исследований берут из краевой вены уха. Для мазка стараются использовать первую каплю крови, так как в ней содержится максимальное количество паразитов. Мазки окрашивают методом Романовского-Гимза.
За последние годы сотрудниками Крымской опытной станции для диагностики кровепаразитарных заболеваний овец был апробирован и применен метод люминесцентной микроскопии. Наличие высококачественных люминесцентных микроскопов, синтез и изготовление высококачественных флюорохромов сделало возможным применение люминесцентного анализа для разработки более эффективных приемов диагностики. Накопленный опыт применения люминесцентной микроскопии как медицинскими, так и ветеринарными специалистами, указывает на значительные преимущества этого метода, которые складываются из контрастности изображения, быстроты и несложности выполнения, высокой чувствительности, цветности изображения и специфичности [10 ].
Морфологически в окрашенных по Романовскому-Гимза препаратах не всегда можно с достоверностью определить видовую принадлежность паразита. Особую трудность в микроскопической диагностике представляют анаплазмы, которые часто необходимо отличать от телец Жоли и базофильной зернистости эритроцитов.
При использовании люминесцентного метода мазки из крови готовят общепринятыми методами. Фиксацию производят метиловым спиртом, но допускается использование ацетона, 1-5%-ного нейтрального формалина. Окрашивают мазки акридиновым оранжевым в разведении 1:1000 на 0,1н HCl, время экспозиции 1-3 минуты. Просмотр препаратов проводят на люминесцентном микроскопе.
Anaplasma ovis в препаратах из крови больных животных после окраски акридиновым оранжевым светится ярким золотисто-зеленым цветом, не наблюдается каких-либо выступов или «хвостов», однако паразиты крупнее, чем в препаратах окрашенных по Романовскому.
У Babesia ovis при окрашивании акридиновым оранжевым цвет свечения меняется в зависимости от времени экспозиции. При окрашивании в течение 10-30 секунд ядро приобретает зеленоватый цвет, а протоплазма - оранжевый. При экспозиции 1-5 минут весь паразит светится ярким золотисто-оранжевым цветом [ 10].
Таким образом метод люминесцентной микроскопии для исследовательских и диагностических целей при кровепаразитарных заболеваниях овец является наиболее точным и эффективным.
Для более полного определения эпизоотической ситуации по кровепаразитарным заболеваниям используют также исследование клещей на зараженность пироплазмидами.
Шабанов А.М. использовал цитохимический метод (НСТ тест), который использовался как рутинный гематологический тест для определения резистентности организма. С развитием патологического процесса от момента заражения происходит активация внутриклеточных ферментных систем. У больных животных уменьшается содержание в крови эозинофилов, лимфоцитов (максимально к 5-м суткам) и увеличивается полиморфомоноцитоз, полинуклеароз. Отмечается выраженная реакция на патологический процесс со стороны моноцитарной системы как по морфологическим, так и по цитохимическим показателям [39].
При постановке диагноза у людей используют реакцию непрямой иммунофлюоресценции. Диагностический титр при однократном исследовании не менее 1:256. Применяют также реакцию связывания комплемента.
При невысокой паразитемии иногда используют биологический метод, при котором кровь больного вводят спленэктомированным животным. Спустя 2-4 недели у животных развивается заболевание и бабезии легко выявляются в мазке крови [3].
1.4 Лечебно-профилактические мероприятия при анаплазмозно-бабезиозной инвазии овец
До настоящего времени остается неясным, насколько продолжителен иммунитет при гемоспоридиозах и как долго сохраняется возбудитель в организме переболевших животных. Известно, что по характеру иммунитета гемоспоридиозы относятся к таким заболеваниям, при которых после острого приступа болезни, если животные выздоравливают, вырабатывается нестерильный иммунитет. Поскольку организм в данном случае остается зараженным, он легко переносит новое инвазирование тем же возбудителем. Если же организм освобождается от паразита, то он становится восприимчивым к повторному заражению. Следовательно, при гемоспоридиозах иммунитет существует до тех пор, пока длится инвазия, и затухает вместе с ней. Такой иммунитет был назван Сержаном еще в 1924 году «премуницией». Учитывая данную особенность было предложено предохранять животных от гемоспоридиозов использованием живых вакцин [18].
Наряду с вакцинацией используется противоклещевая обработка животных в сочетании с химиопрофилактикой [5]. Для химиотерапии и химиопрофилактики предложен ряд препаратов, которые способствуют или препятствуют сохранению иммунитета против кровепаразитов.
Исследователи изучали влияние азидина, диамидина и гемоспоридина на иммунитет при экспериментальном бабезиозе и пироплазмозе овец. В результате чего установили, что при использовании азидина у овец, больных бабезиозом и пироплазмозом, стойкий иммунитет не формируется - при повторном заражении спустя 25-90 дней почти все животные вновь заболевают. Возможно, под воздействием азидина бабезии и пироплазмы утрачивают инвазированность и не обеспечивают напряженного иммунитета, хотя препарат антителообразования не подавляет [ 26].
При применении диамидина устойчивого иммунитета больные животные не приобретали - при повторном заражении спустя 25-90 дней после введения диамидина почти все овцы вновь заболевали. Вероятно, диамидин, подавляя развитие бабезий и пироплазм, препятствует выработке активного иммунитета [26 ].
А при лечении гемоспоридином у овец, больных бабезиозом и пироплазмозом, образуется достаточный иммунитет, обеспечивающий устойчивость животных к повторному (через 25-90 дней) заражению. Гемоспоридин не освобождает организм от бабезий и не изменяет нормального течения иммунно-биологических процессов, происходящих в организме больных овец [5].
При изучение эффективности противопротозойных препаратов в комбинации с пролонгаторами было установлено, что комбинации противопротозойных препаратов азидин в дозе 0,0035 г/кг и беренил-гранулят- 0,005 г/кг с пролонгаторами (пепсин и поливиниловый спирт - 2% растворы и аэросил 2 г на животное) не дают стойкого профилактико-лечебного эффекта, особенно если преобладает анаплазмозная инвазия. При преобладании в крови анаплазм (до 81%), наиболее эффективным среди общепринятых схем лечения протозойных инвазий есть препарат окси-100, который необходимо вводить двукратно с интервалом в 21 суток в дозе 0,15 см3/кг живой массы.
Также эффективен препарат «Золг», который вводят овцам в дозе 0,002 г/кг с профилактической целью в период массового нападения клещей-переносчиков. Препарат способствует лёгкому течению анаплазмозно-бабезиозной инвазии с задержкой появления анаплазм в крови до 25 суток.
«Золг» относится к среднетоксическим веществам. При введении овцам или кроликам подкожно или внутримышечно в дозе 10,0 мг/кг (что в пять раз больше терапевтической), не вызывает клинических признаков токсикоза и существенных изменений со стороны количества эритроцитов, гемоглобина, лейкоцитов, активности АЛТ, АСТ и щелочной фосфатазы, которые остаются в пределах физиологических колебаний [24].
Также при поражении овец анаплазмозом эффективно одновременное введение имизола в дозе 0,02 мл/кг и сульфапиридазина натрия в дозе 50 мкг/кг [12].
В качестве специфической терапии при анаплазмозе можно применять антибиотики тетрациклинового ряда: террамицин или тетрациклин в дозе 5000-10000 ЕД/кг в разведении 1:10 на 1-2%-ном растворе новокаина, внутримышечно, 4-6 дней подряд с интервалом в 24 часа. Хорошие результаты дает введение террамицина внутривенно в 1-1,5%-ном растворе на 40%-ной глюкозе в дозе 10-15 мг/кг, 3-4 раза с интервалом в 12-24 часа.
Биомицин и биоветин показали хороший терапевтический эффект при применении внутрь индивидуально в виде водной суспензии: биомицин - овцам - 5-7,5 мг/кг, биоветин овцам - 25-30 мг/кг 5-6 дней подряд, один раз в сутки. Растворы антибиотиков готовят перед применением. Также применяют витамины и микроэлементы [36].
Также для сельскохозяйственных животных применяют байофлай, неозидин М. Они применяются для эктопаразитов [28,29,31]
В целях предупреждения заражения мелкого рогатого скота кровепаразитами проводят комплекс организационно-хозяйственных и профилактических мероприятий: комплектовать отары только здоровыми животными из хозяйств, благополучных по пироплазмидозам и анаплазмозу овец; не проводить перегруппировку овец на пастбищах и зимних стоянках без разрешения ветеринарного врача хозяйства; обеспечивать содержание овцепоголовья в незаклещеванных помещениях; всех овец, поступающих в хозяйство, карантинировать в течение 30 дней. В овцеводческих хозяйствах, где используют естественные и искусственные пастбища, проводить смену выпасов с учетом биологии клещей и сроков их паразитирования на животных. При обнаружении клещей-переносчиков на отдельных животных или появлении единичных случаев заболевания всю отару подвергать химиопрофилактике через каждые 15 дней до прекращения угрозы возникновения заболевания. На второй день после применения химиопрепаратов овец обработать акарицидами против клещей. Заклещеванные кошары, загоны после тщательной механической очистки, заделки щелей, трещин обработать акарицидами. Профилактическую дезакаризацию помещений проводить не менее 3-4 раз в год. Уничтожение клещей в биотопах, на пастбищах проводить путем мелиорации, раскорчевки кустарников, уничтожения сорняков, распашки целинных и залежных земель, посева культурных трав. В овцеводческих помещениях, особенно в условиях промышленных комплексов, в загонах и на окружающей территории проводить систематическую борьбу с мышевидными грызунами - прокормителями переносчиков [35].
2. Собственные исследования
2.1 Материал и методы исследований
Исследования проводили на базе ЧП «Селяметов» Раздольненского района АР Крым в течение 2009-2010 гг., на кафедре микробиологии, эпизоотологии и ветсанэкспертизы ЮФ НУБиП Украины «КАТУ».
Материалом для изучения паразитарной ситуации по анаплазмозно-бабезиозной инвазии служили овцы следующих половозрастных групп:
· Овцематки - 150 голов;
· Ярки прошлого года рождения - 55 голов;
· Ягнята текущего года рождения - 115 голов;
· Бараны-производители - 10 голов;
· Откормочное поголовье - 40 голов.
Всего 370 голов.
С целью изучения эпизоотологии анаплазмозно-бабезиозной инвазии использовали данные лабораторных журналов Красноперекопской государственной межрайонной лаборатории ветеринарной медицины и ежемесячные и годовые ветеринарные отчёты Раздольненской государственной лечебницы ветеринарной медицины. Также проводили клиническое обследование поголовья хозяйства.
Комплекс клинических исследований состоял из наблюдений за общим состоянием животных, термометрии, измерения частоты пульса и дыхания, изучения окраски слизистых оболочек, характера (цвета) мочи, а также работы пищеварительной системы.
Наличие возбудителей кровепаразитарных инвазий у овец, а также экстенсивность и интенсивность анаплазмозно-бабезиозной инвазии определяли на основании исследований мазков крови.
Кровь от овец для исследований брали из краевой вены уха. Для мазка старались использовать первую каплю крови, так как в ней содержится максимальное количество паразитов. Мазки после предварительного высушивания и фиксации в этиловом спирте окрашивали методом Романовского-Гимза.
По рекомендации ВОЗ, для определения численности кровепаразитов (степени паразитемии) можно руководствоваться впечатлением от просмотра, если:
· при 5-минутном просмотре толстой капли можно обнаружить не более 10 паразитов, это ориентировочно соответствует от 5 до 50 возбудителей в 1 мкл;
· паразитов немного, но они попадаются в первых же полях зрения - 50 - 500 в 1 мкл;
· паразиты есть почти в каждом поле зрения, часто по несколько штук - 500 - 5000 в 1 мкл;
· паразитов много, все поле усеяно ими - более 5000 в 1 мкл.
Изучение сезонной динамики анаплазмозно-бабезиозной инвазии проводили на овцематках и их ягнятах (с первых дней жизни). У ягнят и овцематок отбирали кровь из краевой вены уха, делали мазки, окрашивали и определяли паразитэмию (число поражённых эритроцитов в 20 полях зрения). Также осматривали животных на наличие иксодовых клещей. Интенсивность и экстенсивность анаплазмозно-бабезиозной инвазии определяли ежемесячно на протяжении года. В опыте было 10 овцематок и 12 ягнят.
Для выявления источников и факторов передачи возбудителей кровепаразитарной инвазии проводили изучение наличия переносчиков - иксодовых клещей и других членистоногих (кровососущие мухи, комары, слепни, мошки, овечья кровососка) и их заражённость простейшими. Для этого собирали членистоногих. Из яичников и слюнных желез иксодовых полунасыщенных и сытых самок клещей, снятых с овец, готовили мазки-отпечатки, окрашивали их по Романовскому-Гимза.
Подлежащего вскрытию клеща обмывали дистиллированной водой, обсушивали фильтровальной бумагой и вскрывали бритвой надрезая хитин по наружному краю тела, приподнимая его вверх и удаляя. На вскрытом клеще, после отодвигания в сторону слепых ветвей кишечника темного цвета, хорошо виден яичник, имеющий форму толстого тяжа, густо покрытого яйцевыми фолликулами. Отыскав яичник, часть его захватывали пинцетом и наносили на предметное стекло с каплей 0,9% раствора HCl. Затем препаровальной иглой раздавливали яичник до однородной массы и распределяли по стеклу тонким слоем диаметром с 10-копеечную монету.
Слюнные железы расположены по бокам тела клеща и занимают пространство между хоботком и перитремами. Железы желтовато-белого цвета и имеют вид виноградной кисти. Слюнные железы захватывали пинцетом и осторожно переносили на чистое обезжиренное предметное стекло в каплю воды, после чего препаровальной иглой осторожно раздавливали железу до однородной массы.
Приготовленные мазки высушивали в течение 1-2 часов при комнатной температуре, фиксировали в метиловом спирте в течение 10 минут и окрашивали по методу Романовского-Гимза. Для диагностики просматривали 200 полей зрения в каждом мазке под иммерсионной системой (х900) [10].
Изучали сравнительную эффективность противопротозойных препаратов для лечения анаплазмозно-бабезиозной инвазии у овец. Испытывали препараты - азидин, окси-100, «Золг». В опыте использовали 20 ягнят отобранных по принципу аналогов (возраст 5-6 месяцев, с клинической картиной анаплазмозно-бабезиозной инвазии - угнетение, лихорадка, анемия видимых слизистых оболочек, понос), а также на основании положительных результатов исследований мазков крови. Животных разделили на 3 опытные и 1 контрольную группы по 5 голов в каждой.
Животным первой группы применяли азидин. Препарат вводили подкожно в дозе 0,0035 г/кг массы тела в область холки.
Овец второй группы обрабатывали препаратом окси-100, который вводили подкожно в дозе 2 мл на 10-20 кг живой массы животного, в течение 3-5 дней.
Животным третьей группы применяли препарат «Золг» в дозе 0,002 г/кг массы тела внутримышечно.
Контрольную группу ягнят специфическими препаратами не обрабатывали. Одновременно проводили симптоматическое лечение ягнят всех групп:
- для восстановления гомеостаза, гемопоэза и уменьшения анемии вводили цианкобаламин(Вит. В 12) внуртимышечно в дозе 10-20 мг/кг массы тела животного (450 мг на одно животное - 1мл 0,05% раствора), один раз в день, три дня подряд.
- для нормализации окислительно-восстановительных процессов и рН, снижения количества недоокисленных продуктов использовали 10% раствор хлорида кальция в дозе 200 мл один раз в день с 5% глюкозой в дозе 1 мл.
- для нормализации работы желудочно-кишечного тракта, для расслабления сфинктеров и эвакуации химуса вводили настойку чемерицы в дозе 4 мл на голову с 0,5 л воды.
Сравнительную лечебную эффективность испытываемых препаратов оценивали по результатам клинического обследования и контрольных исследований мазков крови. Определяли экстенсэффективность (ЭЭ испытуемых препаратов.
Результаты исследований обработали статистически при помощи программы «Stat SF».
2.1.1 Характеристика препаратов
«ЗОЛГ»- Solgum препарат содержит 96 % диамидина. Мелкокристаллический порошок серо-розового цвета, без запаха, хорошо растворимый в воде, нерастворимый в органических растворителях, несовместим с новокаином. Растворы препарата разрушаются при стерилизации.
Фармакологическое действие: золг активен в отношении возбудителей пироплазмидозов, в том числе пироплазмозов, бабезиоза, нутталлиоза. Действие препарата Золг основано на ингибировании метаболизма полиаминов у кровепаразитов. После парентерального введения терапевтическая концентрация препарата в крови достигается через 18 - 24 часа и удерживается в крови на пироплазмостатическом уровне в течение 2 - 3 недель. Накапливается Золг в основном в почках и печени, выводится из организма в течение 25 дней. Золг относится к умеренно токсичным для теплокровных животных препаратам, в рекомендуемых дозах не оказывает местно-раздражающего и сенсибилизирующего действия.
Показания: лечение и профилактика пироплазмоза, бабезиоза крупного и мелкого рогатого скота; пироплазмоза и нутталлиоза лошадей.
Дозы и способ применения: препарат вводят животным в форме 1 - 10 % водного раствора подкожно или внутримышечно с соблюдением правил асептики и антисептики. С лечебной целью при пироплазмидозах препарат применяют в дозе 0,002 г/кг массы животного в форме 1 - 7 % раствора: крупному рогатому скоту и мелкому рогатому скоту внутримышечно или подкожно однократно; лошадям - внутримышечно двукратно с интервалом 24 часа.
Противопоказания: запрещается применение препарата Золг дойным животным.
Производитель: «СПОФА» Чехия.
ОКСИ 100. стерильный раствор для инъекций - Для ветеринарного использования. Состав в 1 мл раствора:
Окситетрациклин гидрохлорид..............................................100 мг
Наполнитель........................................................................ до 1 мл
Описание: по внешнему виду Окси-100 представляет собой прозрачный раствор, светло-коричневого цвета.
Высокую чувствительность к препарату проявляют: Proteus spp., Pseudomonas spp., Campylobacter, Mycoplasma, Rickettsia, Chlamidia, Anaplasma sp.
Перед применением препаратов следует проверить чувствительность возбудителей к окситетрациклину.
Противопоказания: нельзя применять одновременно с кортикостероидами и эстрогенами. В связи с выраженным снижением антибактериального эффекта окситетрациклина, препарат не рекомендуется применять одновременно с антибиотиками пенициллинового и цефалоспоринового ряда, а также совместно с хинолонами.
Побочные эффекты: в месте введения могут отмечаться эритема и зуд, которые быстро проходят. В случае необходимости (устойчивые аллергические реакции) рекомендуется внутривенное введение препаратов кальция (хлористый кальций).
Дозировка и способ применения: препарат вводят внутримышечно или подкожно, один раз в сутки. Взрослым животным назначают 1 мл Окси-100(r) на 10 - 20 кг живой массы животного. Курс лечения 3-5 дней. Молодым животным назначают 2 мл препарата на 10 - 20 кг живой массы животного, в течение 3-5 дней.
Период полного выведения препарата из организма животных:
мясо животных 12 дней, молоко 5 дней.
Производитель: «Интерхими» Нидерланды
АЗИДИН (Azidinum) Синоним: беренил. Противогемоспоридиозное средство. Представляет собой легкий аморфный порошок от желто-оранжевого до оранжевого цвета со слабым запахом. Хорошо растворим в воде.
ПОКАЗАНИЯ. Применяют как химиотерапевтическое средство при бабезиозе, пироплазмозе и франсаиеллезе крупного рогатого скота, пироплазмидозах овец и су- ауру трипаносомозе всех животных, угнетая в них синтез ДНК
ДОЗИРОВКА. Подкожно и внутримышечно в форме 7% -ного водного раствора или на растворе 5 % глюкозы двукратно с интервалом 24 ч в дозе 0,003--0,0035 г на 1 кг массы животного. С профилактической целью вводят в дозе 0,002 г на 1 кг массы 1 раз в 10--14 дней. Слабым и истощенным животным его применяют в половинной лечебной дозе дважды с интервалом 12 часов.
Производитель: «Бровафарма» Киевская область.
2.2 Характеристика хозяйства
ЧП «Селяметов» Раздольненского района АР Крым расположено в степной части полуострова в сорока километрах от районного центра и в девяносто километрах от областного центра.
Ближайшая железнодорожная станция - г. Евпатория для отправки и приёма вагонных грузов и пассажиров находится в тридцати пяти километрах.
ЧП Селяметов находится в неблагоприятных климатических условиях в засушливой зоне. Климат умеренно-теплый, с жарким засушливым летом и мягкой влажной зимой. Число часов солнцестояния в год - не выше 2300. Среднегодовая температура воздуха 10,2є С. За год выпадает в среднем 370 мм осадков, за лето и осень - 200 мм. Наблюдаются северо-восточные суховеи. В летний период западные и юго-западные суховеи приносят осадки. Почвы хозяйства красно-коричневые и южные черноземы. Грунтовые воды залегают на глубине 50 - 60 метров.
Основным направлением хозяйства является животноводство, которое представлено овцеводством.
Поголовье овец составляет 370 голов. Валовое производство баранины за 2009 год - 20 т, реализационная цена 1 кг баранины за 1 кг - 25 грн.
Поголовье овец на 1.01.10 г.: (курдючная порода)
o овцематки - 150 голов.
o ярочки прошлого года рождения- 55 голов.
o ягнята 2009 года рождения- 115 голов.
o Бараны-производители - 10 голов.
o овцы взрослые (откорм)- 40 голов.
Итого: 370 голов.
Осеменение маток на овцеферме проводится естественным путём (на 15 маток 1 баран). В среднем срок использования овцематок 8 лет. Всего за 2009 год получено 115 ягнят.
Овцеферма расположена в 6-ти км от пгт. Новоселовское. Способ содержания овец - пастбищно-стойловый, т.е. овца выпасается в течение всего года с подкормкой в зимний период.
Зимой животных содержат в кошаре, которую можно классифицировать как общую. Она предназначена для размещения различных половозрастных групп и рассчитана на 500 - 600 голов. Продольной осью кошара стоит с севера на юг. Внутри она разделена переносными щитами и постоянными перегородками на отделения для взрослого поголовья и молодняка. В кошаре имеются секции для содержания овцематок с новорожденными ягнятами (тепляк) и секция для группового содержания овцематок с ягнятами в течение первого месяца после ягнения. Также на территории есть подсобное помещение для обслуживающего персонала.
Кормовая база достаточная для обеспечения рационов кормления. Раздача кормов производится вручную. Вентиляция в помещении приточно-вытяжная естественная. Овец осеменяют естественным путем баранами-производителями. В случку допускают животных, достигших физиологической зрелости (старше года). Ягнение приходится на февраль-март.
Уборка навоза проводится вручную. Вода подвозная. Кошара не электрифицирована.
Дезинфекция в кошаре осуществляется один раз в год, в основном дезинфекцию проводят 10 %-ным раствором хлорной извести, после предварительной механической очистки. Навоз биотермически не обеззараживается, а вывозится в поле. Стрижка овец осуществляется вручную. Стригут овец в мае.
Зооветеринарная служба в хозяйстве представлена: ведомственным ветеринарным врачом ветеринарной медицины от Раздольненской районной государственной лечебницы ветеринарной медицины.
На овцеферме, согласно плану профилактических и противоэпизоотических мероприятий, проводятся не регулярные профилактические обработки против диктиокаулёза, мониезиоза, анаплазмоза, бабезиоза, вакцинация против сибирской язвы. Также проводят купку овец в мае после стрижки для профилактики саркоптоза, нападения иксодовых клещей и накожных паразитов, а также против зачервления ран.
Один раз в год отбирают кровь для диагностического исследования на бруцеллёз и инфекционный эпидидимит, а также фекалии для исследования на диктиокаулёз и мониезиоз
2.3 Результаты исследований
2.3.1 Эпизоотологическая ситуация по анаплазмозно-бабезиозной инвазии овец в ЧП Селяметов Раздольненского района
Согласно данным отчёта Крымского ветеринарного отдела установлено, что в 1989 году в области было 8 неблагополучных пунктов по бабезиозу овец, которые располагались на территории 4 районов - Белогорского, Ленинского, Красногвардейского и Черноморского (табл. 2.3.1.1). Регистрировали три пика заболеваемости овец - в июне, июле и августе. При этом было отмечено заболевших животных - 1379 овец, павших - 25. В 1990 году число неблагополучных пунктов сократилось до 5 и они располагались на территории 3 районов: Белогорского, Ленинского и Черноморского. При этом было зарегистрировано заболевших - 3292 животных, павших - 4. В 1991 году насчитывался один неблагополучный пункт в АР Крым в Ленинском районе. Количество заболевших овец при этом составило 57, а павших - 19. В 1992 году установили наличие анаплазмозной и бабезиозной инвазии у овец на территории Белогорского и Ленинского районов (табл. 2.3.1.1 и 2.3.1.2). Число заболевших животных за этот период составило 411 животных. Падежа овец не наблюдали.
Таблица 2.3.1.1 Эпизоотическая ситуация на территории тринадцати районов по бабезиозу овец
Район |
Количество неблаг. Пунктов |
Годы |
||||||||||
1989 -1993 |
1994 - 1998 |
1999 - 2003 |
2004 - 2008 |
2009 |
||||||||
Заб. |
пало |
заб |
пало |
заб |
пало |
заб |
пало |
заб |
пало |
|||
Белогорский |
3 |
2294 |
9 |
520 |
14 |
920 |
5 |
664 |
8 |
96 |
9 |
|
Ленинский |
1 |
1463 |
32 |
1574 |
21 |
764 |
18 |
908 |
12 |
111 |
1 |
|
Красногвардейский |
2 |
666 |
11 |
1198 |
28 |
1301 |
14 |
960 |
12 |
99 |
3 |
|
Черноморский |
2 |
2274 |
7 |
877 |
11 |
1015 |
6 |
625 |
7 |
90 |
- |
|
Бахчисарайский |
1 |
- |
- |
123 |
1 |
165 |
2 |
101 |
1 |
59 |
- |
|
Симферопольский |
2 |
3000 |
13 |
289 |
10 |
154 |
5 |
145 |
2 |
48 |
- |
|
Советский |
1 |
- |
- |
243 |
1 |
256 |
2 |
189 |
3 |
97 |
1 |
|
Красноперекопский |
3 |
- |
- |
143 |
1 |
132 |
3 |
122 |
1 |
100 |
1 |
|
Джанкойский |
2 |
- |
- |
167 |
10 |
159 |
8 |
142 |
5 |
133 |
2 |
|
Первомайский |
1 |
- |
- |
563 |
24 |
423 |
3 |
134 |
2 |
78 |
1 |
|
Сакский |
2 |
- |
- |
256 |
12 |
234 |
1 |
221 |
3 |
101 |
1 |
|
Нижнегорский |
3 |
- |
- |
546 |
32 |
432 |
5 |
301 |
3 |
231 |
1 |
|
Кировский |
1 |
4321 |
34 |
1278 |
23 |
543 |
15 |
345 |
2 |
298 |
4 |
Таблица 2.3.1.2 Эпизоотическая ситуация на территории тринадцати районов по анаплазмозу овец
Район |
Кол. Неблагпун |
Годы |
||||||||||
1989 - 1993 |
1994 - 1998 |
1999 - 2003 |
2004 - 2008 |
2009 |
||||||||
Заб. |
пало |
заб |
пало |
заб |
пало |
заб |
пало |
заб |
пало |
|||
Белогорский |
3 |
444 |
2 |
520 |
14 |
1137 |
9 |
802 |
11 |
96 |
9 |
|
Ленинский |
1 |
306 |
2 |
1296 |
21 |
764 |
18 |
908 |
12 |
111 |
1 |
|
Красногвардейский |
2 |
387 |
3 |
1199 |
28 |
1301 |
14 |
960 |
12 |
99 |
3 |
|
Черноморский |
2 |
390 |
1 |
631 |
11 |
916 |
6 |
1638 |
8 |
90 |
- |
|
Бахчисарайский |
1 |
- |
- |
123 |
1 |
165 |
2 |
101 |
1 |
59 |
- |
|
Симферопольский |
2 |
3000 |
13 |
289 |
10 |
154 |
5 |
145 |
2 |
48 |
- |
|
Советский |
1 |
- |
- |
243 |
1 |
256 |
2 |
189 |
3 |
97 |
1 |
|
Красноперекопский |
3 |
- |
- |
234 |
1 |
132 |
3 |
122 |
1 |
100 |
1 |
|
Джанкойский |
2 |
- |
- |
167 |
10 |
159 |
8 |
142 |
5 |
133 |
2 |
|
Первомайский |
1 |
- |
- |
563 |
24 |
423 |
3 |
134 |
2 |
78 |
1 |
|
Сакский |
2 |
- |
- |
256 |
12 |
123 |
1 |
221 |
3 |
101 |
1 |
|
Нижнегорский |
3 |
- |
- |
546 |
32 |
432 |
5 |
301 |
3 |
231 |
1 |
|
Кировский |
1 |
4321 |
34 |
132 |
3 |
543 |
15 |
143 |
1 |
298 |
4 |
Из таблицы 2.3.1.1 - 2.3.1.2 видно, что бабезиоз и анаплазмоз регистрировали практически во все годы начиная с 1989 в 13-ти регионах, кроме Красноперекопского, Джанкойского, Первомайского, Сакского, Бахчисарайского, Советского, Нижнегорского районах в 1989-1993 гг., в которых анаплазмоз и бабезиоз не регистрировали.
С распадом советского союза сократилась численность крупных овцеводческих хозяйств и появилось множество мелких частных предприятий, которые насчитывают от 20-30 до 1000 и более голов овец. Появление частных хозяйств привело к изменению эпизоотической ситуации по паразитарным заболеваниям, так как профилактические обработки и мероприятия перестали проводиться своевременно и должным образом. Всё это привело к тому, что с 1994 года анаплазмозная и бабезиозная инвазии у овец стали регистрироваться практически во всех степных и предгорных районах Крыма с различной степенью интенсивности и экстенсивности поражения животных. В том числе данные заболевания у овец были отмечены и в Раздольненском районе в нескольких хозяйствах (табл. 2.3.1.3).
Таблица 2.3.1.3 Количество неблагополучных пунктов по анаплазмозу и бабезиозу в Раздольненском районе
Годы |
Количество неблагополучных пунктов |
||
Бабезиоз |
Анаплазмоз |
||
1989 - 1993 |
13 |
2 |
|
1994 - 1998 |
13 |
10 |
|
1999 - 2003 |
11 |
10 |
|
2004 - 2008 |
11 |
11 |
|
2009 |
1 |
1 |
Согласно данным таблицы 2.3.1.3 максимальное количество неблагополучных по бабезиозу овец пунктов зарегистрировано в 1989 - 1998 гг. - 13. Наиболшее число пунктов в которых установлен анаплазмоз было в 2004 - 2008 гг. - 4 пукта.
Изучая эпизоотическую ситуацию по анаплазмозно-бабезиозной инвазии овец в ЧП «Селяметов» провели анализ документов первичного ветеринарного учёта и отчетности.
Согласно данным ветеринарной отчётности за прошедшие 5 лет установлено, что хозяйство является стационарно неблагополучным по анаплазмозной и бабезиозной инвазиям и заболевания здесь регистрируются ежегодно с различной степенью экстенсивности (табл. 2.3.1.4 - 2.3.1.6). Однако гибели от гемоспоридиозов в ЧП «Селяметов» не отмечали.
Таблица 2.3.1.4 Пораженность овец анаплазмозной инвазией в ЧП «Селяметов» (по данным лабораторных исследований)
Группы животных |
Кол-во обследов. животных |
Заражённость животных |
||||||||||
2005 |
2006 |
2007 |
2008 |
2009 |
||||||||
гол. |
% |
гол. |
% |
гол. |
% |
гол. |
% |
гол. |
% |
|||
Овцематки |
150 |
14 |
9,3 |
12 |
8 |
10 |
6,7 |
6... |
Подобные документы
Изучение распространения вольфартиозной инвазии у овец. Анализ особенностей биологии и экологии вольфартовой мухи. Сравнение эффективности разных инсектицидов по отношению к личинкам мухи. Лечебно-профилактические мероприятия при тканевом вольфартиозе.
дипломная работа [8,3 M], добавлен 11.11.2014Морфология и виды возбудителей заболевания эймериоза у овец. Стадии биологического цикла развития возбудителя и эпизоотология заболевания. Патогенез и клиническая картина, дифференциальная диагностика, методы лечения и профилактики эймериоза у овец.
реферат [313,1 K], добавлен 24.08.2011Характеристика бруцеллеза овец и коз. Противоэпизоотические мероприятия. Эпизоотологическое обследование территории Шушенского района. Комплекс противоэпизоотических мероприятий против бруцеллеза мелкого рогатого скота в хозяйствах Шушенского района.
курсовая работа [2,5 M], добавлен 19.04.2017Эпизоотология, патогенез, морфология возбудителя и биологический цикл развития эймериоза - инвазионного заболевания животных и человека. Дифференциальная диагностика. Лечение и профилактика. Мероприятия по борьбе с инвазией, проведенные в хозяйстве.
курсовая работа [247,7 K], добавлен 03.02.2015Понятие и основные причины возникновения контагиозной эктимы овец и коз как инфекционной болезни, при которой образуются узелки, пустулы и везикулы на коже губ и слизистой оболочке ротовой полости. Диагностирование и лечение данного заболевания.
презентация [110,5 K], добавлен 22.11.2013Стронгилятозы овец – комплекс гельминтозных заболеваний. Возбудитель и его жизненный цикл, эпизоотологические данные. Патоморфологические изменения и клиническая картина. Диагноз и дифференциальный диагноз. Плановые диагностические обследования овец.
контрольная работа [15,9 K], добавлен 25.11.2011Общее описание и сравнительная характеристика разнообразных пород овец, выращиваемых на территории современной России. Оценка мясной и шерстяной производительности каждой из них. Основные требования к климатическим условиям овец различных пород.
презентация [4,6 M], добавлен 17.06.2015Основной вид продуктивности овец. Русские, степные и романовские шубные овчины. Современные нормы кормления овец. Роль протеина в полноценном питании овец. Особенности кормления овцематок. Пастбищное содержание овец. Рационы для баранов-производителей.
реферат [29,5 K], добавлен 30.11.2010Породы овец, их характеристика. Шерстная и молочная продуктивность овец, ее разновидности и значение. Процесс промышленного доения овец. Продолжительность жизни овец и срок их использования. Особенности пастбищного содержания и кормления животных.
презентация [2,6 M], добавлен 28.06.2012Нагул и откорм молодняка, состав рациона. Характеристика романовских овец, их адаптивность к различным условиям. Отбор ягнят на племя, показатели качества шерсти. Принципы организации проверки барканового качества потомства. Повышение плодовитости овец.
курсовая работа [123,2 K], добавлен 24.01.2011Противоэпизоотические мероприятия, проводимые на станциях по борьбе с болезнями овец. Общая и специфическая профилактика. Характеристика шалинской районной станции и зоны ее обслуживания. Диагностические исследования. Профилактические мероприятия.
курсовая работа [18,3 K], добавлен 02.06.2004Характеристика особенностей природно-климатических и кормовых условий ПХ племхоза "Руслан". История и методика создания жанааркинского типа овец сарыаркинской грубошерстной курдючной породы овец. Обзор продуктивно-племенных качеств исходного поголовья.
дипломная работа [3,8 M], добавлен 22.05.2015Структура и качественная оценка породного состава стада овец. Состояние кормовой базы, обеспеченность овец кормами. Экономические показатели производства продукции овцеводства. Экономическая эффективность разведения эдильбаевских овец различных возрастов.
дипломная работа [84,3 K], добавлен 26.06.2013Возбудитель данной болезни, ее эпизоотология и патогенез. Клинические признаки и течение заболевания. Патологоанатомические изменения, лабораторная и дифференциальная диагностика. Профилактика и меры борьбы с копытной гнилью овец, методы лечения.
реферат [20,3 K], добавлен 22.02.2014Мясо — второй важный продукт овцеводства. Состояние и динамика производства мяса в мире и в России. Показатели мясной продуктивности овец, методы их оценки и повышения. Методы селекции. Влияние паратипических факторов на мясную продуктивность овец.
курсовая работа [952,5 K], добавлен 05.02.2009Характеристика различных видов пастбищ для овец. Характеристика ветеринарно-санитарных мероприятий на ферме. Техника подготовки и перевода овец на летнее содержание. Расчет необходимой площади пастбищ, количество инвентаря и средств механизации.
курсовая работа [53,7 K], добавлен 05.05.2009Распространение инвазионных болезней среди домашних и диких млекопитающих животных. Биология развития ценуроза овец, вызываемого личиночной стадией ленточного гельминта. Эпизоотологические данные, патогенез и иммунитет, диагностика и лечение заболевания.
курсовая работа [1,2 M], добавлен 01.04.2012Первостепенные источники инвазии для человека. Возрастная динамика описторхоза и дипилидиоза. Различия в экстенсивности и в интенсивности заражения кошек в районах с различной степенью урбанизации. Воспалительная реакция в тонком кишечнике кошек.
статья [193,4 K], добавлен 18.07.2013Протокол вскрытия трупа животного, эпикриз, этиология, возбудитель неконтагиозной токсикоинфекции овец и коз. Эпизоотологические данные, течение болезни, ее дифференциальный диагноз и лечение, иммунитет. Профилактика и меры борьбы с брадзотом овец и коз.
курсовая работа [35,9 K], добавлен 11.03.2010Определение лечебной эффективности различных препаратов при мониезиозе овец в условиях Западно-Казахстанской области. Видовой состав и степень инвазированности животных цестодозами пищеварительного тракта. Эффективность противогельминтозных мероприятий.
курсовая работа [3,8 M], добавлен 25.12.2014