Содержание животных. Общие и специальные методы исследования больных

Зоогигиеническая оценка систем и способов содержания животных. Изготовление распространенных лекарственных форм, применяемых в ветеринарии. Кормление сухостойных коров. Способы введения лекарственных средств. Подготовка к операции и фиксация животного.

Рубрика Сельское, лесное хозяйство и землепользование
Вид отчет по практике
Язык русский
Дата добавления 07.12.2014
Размер файла 883,6 K

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

Различают групповой осмотр (когда осматривают стадо, отару) и индивидуальный (который применяют после выявления подозрительных и больных животных.)

Приступая к осмотру производят сначала общий осмотр, а затем местный.

Общий осмотр - осмотр больного животного с головы до ног, независимо от предположительной локализации болезненного процесса, при этом складывается представление:

?о телосложении,

?упитанности,

?положении тела в пространстве,

?слизистых оболочках,

?о коже и шерстном покрове,

?месте повреждения,

?возбуждении

?угнетении и т.д.

Эти данные являются ориентировочными и уточняются при дальнейшем исследовании.

Местный осмотр - это осмотр той области, которая соответствует локализации болезненного процесса. Во время прохождения практики применяла все виды осмотра.

Пальпация - palpatio - метод исследования основан на чувстве осязания, а также на чувстве объемности (стереометрии). Применяется этот метод с целью изучения физических свойств тканей и органов, топографических соотношений между ними, количества и качества пульса. Различают поверхностную, глубокую и внутреннюю пальпацию.

Пальпацию следует проводить легкими и мягкими движениями рук. Ее начинают со здоровых участков, а затем постепенно переходят на пораженные, сравнивая результаты исследования этих участков с данными, полученными на симметричных участках.

Пальпацию различают непосредственную (ощупывание пальцами рук) и посредственную (с помощью перкуссионного молоточка).

Непосредственная пальпация может быть поверхностная и глубокая.

Поверхностная проводится при помощи одной или обеих рук. Пальцы рук в вытянутом состоянии, движения скользящие, без давления на исследуемый орган. Применяется при исследовании кожи, суставов, грудной и брюшной стенки.

Глубокая пальпация проводится одним - двумя или несколькими пальцами, обеими руками или кулаком. Этот вид пальпации проводится с обязательным давлением на исследуемый орган. Глубокая пальпация бывает проникающая, бимануальная, толчкообразная.

Проникающая проводится одним или несколькими пальцами, которые устанавливаются перпендикулярно к исследуемому органу, и создается сильное давление. Таким образом, исследуются органы грудной, брюшной полостей, кости, мышцы.

Бимануальная обычно проводится обеими руками. Одна рука удерживает орган, а другая исследует пальпируемый орган.

Внутренняя пальпация проводится через прямую кишку (на практике не проводилась) или ротовую полость. Пальпация позволяет установить состояние поверхности органа, его величину, форму, консистенцию, подвижность, температуру, болезненность, степень напряжённости, наполнение, характер содержимого и т.д. Пальпация должна быть сравнительной.

(Метод бимануальной пальпации проводила у кошки Кэтти(10 лет) обнаружено инородное тело размером с 2-х рублевую монету в области кишечника , что позволило определить, что у животного закупорка кишечника, скорее всего шерстью.)

Перкуссия (выстукивание)- метод исследования, осуществляется с целью вызвать колебательные движения исследуемой части тела, чтобы по силе и характеру звука сделать заключение о физическом состоянии органа. Выделяют два вида перкуссии - посредственную и непосредственную.

Непосредственную перкуссию проводят кончиками одного- двух пальцев, согнутых во второй фаланге. Применяют чаще для исследования поверхностных и лобных пазух.

Посредственная перкуссия бывает дигитальной и инструментальная.

Дигитальная перкуссия состоит в том, что указательный или средний палец левой руки плотно прикладывают к исследуемой поверхности, а указательным или средним пальцем средней руки двигая её в лучезапястном суставе, наносят по нему короткие и отрывистые удары. Этот вид перкуссии применяют при исследовании мелких животных и молодняка. Инструментальную перкуссию проводят при помощи плессиметра и перкуссионного молоточка.

Также различают топографическую перкуссию. Применяют для определения величины органов и их границ. Сравнительная перкуссия применяется для установления различных изменений в органах.

Аускультация (выслушивание)- выслушивание звуков, которые возникают при функционировании органа. Аускультацию лучше проводить при полной тишине в закрытом помещении, на стоячем животном, и она должна быть сравнительной. Различают два вида аускультации: непосредственную и посредственную.

-Непосредственная проводится непосредственно ухом врача.

-Посредственная аускультация проводится при помощи твёрдых или гибких стетоскопов, или фонендоскопов, или же стетофонендоскопов.

(Во время прохождения летней практики я осуществляла посредственную аускультацию стетофонендоскопом, применяла его в целях общего осмотра животного.)

Габитус - это внешний вид животного, который определяется телосложением, упитанностью, темпераментом, конституцией и позой.

?Телосложение. Это строение костяка и степень развития мускулатуры. (сильное, среднее, слабое)

?Упитанность. Состояние обмена веществ у животного, которое зависит от кормления, содержания, ухода, эксплуатации (хорошая, удовлетворительная, не удовлетворительная).

?Темперамент. Быстрота и степень реакции на внешние раздражители (сильно неуравновешенный (холерик) - у этих животных процессы возбуждения преобладают над процессами торможения; сильно уравновешенный, подвижный тип - у данного животного процесс торможения уравновешен и животное подвижно; сильно уравновешенный, инертный - у данных животных процесс торможения уравновешен, но они малоподвижны; слабый тип - процесс торможения и возбуждения развит слабо)

?Поза. Различают естественную и вынужденную (вынужденное лежачие, стоячие положение или вынужденное движение)

?Конституция

Исследование слизистых оболочек

Исследовала коньюктиву, слизистые ротовой, носовой полостей, влагалища.

При исследовании определяла цвет, припухание, наложение, влажность, целостность, наличие кровоизлияний, температуру, чувствительность.

Коньюктива(в норме у к.р.с. - матово-красная, у остальных животных - бледно-розовая), носовая полость (в норме бледно-розовая), ротовая полость (в норме бледно-розовая), слизистая влагалища (в норме бледно розовая с незначительной желтушностью), изменение окраски - бледность, гиперемия, цианоз, желтушность.

Исследования кожи и шерстного покрова (определяют длину волос, приглаженность, блеск, степень удержания волоса в коже, эластичность, сечение, поседение, наличие алопеций)

Исследования кожи (цвет (у всех животных бледно-розовая, изменения те же что и на слизистых оболочках), влажность, запах, эластичность (тургор), температура, целостность, наличие кровоизлияний, наличие отеков, подкожная эмфизема, чувствительность.

Исследование лимфоузлов

У к.р.с. - подчелюстные, предлопаточные, коленной складки, надвымяннные.

При исследовании определяют величину, форму, подвижность, состояние поверхности, консистенцию, температуру, болезненность, отграниченность от других тканей.

Термометрия.(гр. therme тепло + metreo измеряю) Большое значение в ветеринарной практике имеет измерение температуры тела - термометрия. Она позволяет обнаружить ранние симптомы болезни, изменение температуры отличается при большинстве инфекционных, инвазионных болезней), позволяет обнаружить осложнения болезни, а также следить за течением болезни, результатами лечения.

Измерение температуры тела производят у животных в прямой кишке, у самок можно измерять во влагалище (но во влагалище она выше, чем в прямой кишке на 0,5оС)

Методы взятия крови, мочи, фекалий и других материалов для лабораторного исследования

Взятие крови у собак и кошек:

В большинстве случаев кровь у собак берут из малой подкожной вены голени, из подкожной вены предплечья или из наружной яремной вены. Предварительно по ходу вен выстригают шерсть, дезинфицируют кожу. После этого накладывают на конечность жгут, сдавливающий вену, не снимают до тех пор, пока не закончат взятие крови.Пальцами руки определяют наполнение и место положения вены. Одноразовой иглой прокалывают вену и постепенно продвигают иглу вглубь тканей .Собирают кровь непосредственно в пробирку из пластмассы, которые покрыты слоем антикоагулянта этилендиаминтетрауксусной кислотой. Пробирки с антикоагулянтом сразу же после наполнения закрываются крышкой и несколько раз переворачиваются (не встряхиваются) для перемешивания крови с антикоагулянтом.Перед извлечением иглы из вены резиновый жгут снимают, пережимают вену пальцем выше места вкола, иглу извлекают, а место в кола некоторое время сдавливают тампоном для предотвращения образования гематомы. В заключении область венепункции дезинфицируют спиртовым раствором.

Взятие мочи у собак и кошек:

Для общего клинического анализа мочу собирают утром в сухую, чистую посуду . Желательно собирать мочу в тот сосуд, в котором она будет доставлена в лабораторию.

Катетеризация мочевого пузыря может быть использованы только в крайних случаях. Перед катетеризацией подбирают катетер в зависимости от вида животного. Катетер тщательно осматривают, чтобы не было никаких шероховатостей, зазубрин, трещин, и проверяют на проходимость. При катетеризации соблюдают правила асептики. Перед введением катетер обильно смазывают жиром, что дает возможность ввести осторожно, не травмируя уретры. Для катетеризации кобелей применяют катетеры длиной 30--45 см и толщиной 2-- 4 мм, верхушка которых овальной или колоколообразной формы. Для катетеризации мелких собак применяют тонкие медицинские катетеры. Приступая к катетеризации мочевого пузыря, особенно у самцов, следует очень осторожно продвигать катетер по уретре. Он может встретить препятствие(мочевые камни), в результате чего возможны травмы уретры и ее разрыв, моча ,полученная с помощью катетера может быть заражена бактериями из отводящих мочевых путей. При катетеризации неизбежен риск занесения инфекции, поэтому иногда используется пункция мочевого пузыря, при выборе этой методики место пункции дезинфицируют, мочевой пузырь фиксируется левой рукой. Игла с насаженным шприцем вводится под углом 45 градусов по белой линии в каудально - дорсальном направлении таким образом, чтобы проткнуть мочевой пузырь слегка каудальнее от «экватора».

Взятие кала у собак и кошек:

Кал собирается в чистую, сухую, одноразовую пластиковую посуду. Кал не должен содержать посторонних примесей (наполнитель).Фекалии у животных берут либо из прямой кишки, либо с земли (или пола) в количестве 4-10 г. При взятии их из прямой кишки на руки надевают тонкие резиновые перчатки.

Вагинальные мазки:

Вагинальные мазки дают существенные сведения относительно имевшей место случки, полового цикла и заболеваний. Проба берется с помощью стерильного ватного тампона со свода влагалища в направлении от краниальной части к каудальной. Тампон с полученным клеточным материалом прокатывается по предметному стеклу.

Оперативная хирургия

Устройство операционной

Операционная должна быть расположена отдельно от других помещений (амбулаторного приема, перевязочной и др.) и служить только для проведения операций.

Помещение должно быть просторным, хорошо освещенным дневным светом и электрическими лампами (бестеневыми, а также специальными светильниками). Его оборудуют так, чтобы можно было легко поддерживать чистоту.

В ООО «ВетЭгида» имеется 1 операционная. Оборудование операционной включает в себя:

- операционный стол конструкции Виноградова,

-столики для хирургического инструментария,

- сухожаровой шкаф для стерилизации инструментов,

-шкаф для хранения инструментов,

- оборудованный ультрафиолетовыми лампами,

- сейф для хранения препаратов.

Для дезинфекции помещения операционной используют ультрафиолетовую лампу, а также ультрафиолетовый бактерицидный облучатель.

Инструменты используемые для хирургических манипуляций:

-скальпели(разная форма),

-ножницы (прямые и изогнутые),

- хирургические пинцеты,

-кровоостанавливающие зажимы,

-иглодержатели (Матье и Гегара),

- кожные и кишечные иглы

ФИКСАЦИЯ СОБАК И КОШЕК.

У собак, чтобы они не могли наносить укусов, завязывают рот полоской марли, марлевым бинтом или тесьмой. Охватывая рот винтом, концы его сначала завязывают в подчелюстном пространстве одним простым узлом, затем окончательно закрепляют бинт на затылке морским узлом.

Собак обычно фиксируют на столе, придавая им необходимое положение.Простой операционный стол для мелких животных изготовляют из дерева: красят белой масляной или эмалевой краской. Крышка стола должна быть вогнута- внутрь или иметь в середине небольшое углубление со стоками для жидкости. В ней же просверливают несколько отверстий для завязывание рта ремней (тесьмы), применяемых для фиксации собак. Под столом на его перекладинах устраивают посредине полку, на которую ставят таз для стока в него жидкостей с крышки стола и сбора использованного перевязочного материала.

Рис. 9. Укрепление собаки на столе: 1--спинное положение; 2--боковое; 3--брюшное.

Для укрепления собаки на столе в спинном положении к ее грудным конечностям в области предплечья привязывают или фиксируют петлей веревки (тесьму). Веревку от каждой конечности пропускают между конечностями и грудью и далее под спину животного на противоположную сторону стола к соответствующему отверстию; подтягиванием за веревку конечность собаки приближают к грудной клетке, после чего завязывают веревку. Тазовые конечности вытягивают и обе привязывают к задней, части рамы стола. Кошек на время операции помещают в специальные кожаные или из плотной материи мешки либо завертывают в кусок плотной материи, оставляя открытым необходимый для операции участок. Еще лучше при всяком методе фиксации надевать на все конечности кошки специальные мешочки (чулки) из прочной ткани и затем фиксировать их соответствующим образом.

Подготовка хирургических инструментов к операции

Предстерилизационную обработку инструментов осуществляют ручным или механизированным способом. Последовательность при ручном способе: предварительное ополаскивание под проточной водой в течение 30 с; замачивание в моющем растворе при полном погружении изделия на 15 мин при температуре раствора 50 °С; мойка в моющем растворе при помощи ерша или ватно-марлевого тампона в течение 30 с; ополаскивание проточной, а затем дистиллированной водой в течение 30 с; сушка в суховоздушных стерилизаторах горячим воздухом при температуре 80--85 °С до полного исчезновения влаги.

Механизированную обработку инструментов проводят в моечных машинах специального назначения для игл, шприцев, инструментов.При стерилизации режущие инструменты для предохранения их от затупления вследствие ударов о другие инструменты нужно обернуть марлей или ватой и стерилизовать отдельно. Для стерилизации скальпелей и ножей можно использовать спирт. Для этого за час до использования их помещают в стерильную емкость и заливают 96%-ным спиртом. Затем емкость закрывают крышкой или стерильным материалом. Шприцы и иглы многоразового использования стерилизуют отдельно от остального инструментария, предварительно промыв их под проточной водой с помощью моющих средств и выдержав в дезинфицирующем растворе согласно Инструкции Министерства здравоохранения ОСТ-85. Шприцы стерилизуют в сухожаровых шкафах в разобранном виде. После стерилизации перед сборкой шприца его детали следует охладить до комнатной температуры. Стерилизация многоразовых шприцев кипячением категорически запрещена!

Металлическую и эмалированную посуду также стерилизуют в сухожаровых шкафах. Таз для мытья рук обжигают с внутренней поверхности спиртом. Для этого в таз наливают 15 -- 20 мл 96%-ного спирта и поджигают его. После этого таз поворачивают так, чтобы пламя обожгло всю его внутреннюю поверхность. После применения инструменты следует очистить, тщательно промыть под проточной водой с помощью моющих средств и замочить в дезинфицирующем растворе (экспозиция согласно Инструкции Министерства здравоохранения ОСТ-85) и осуществить стерилизацию в сухожаровом шкафу. Инструменты, применявшиеся при гнойной операции, особенно анаэробной, обрабатывают и стерилизуют отдельно от остальных инструментов. Щетки после очистки и мытья стерилизуют кипячением в течение 40 мин в отдельном кипятильнике или кастрюле с крышкой. Воду сливают и щетки оставляют в закрытой емкости.

Подготовка операционного поля. 

Операционное поле обмывают теплой водой с мылом, выстригают или выбривают волосы, повторно тщательно обмывают и высушивают полотенцем или феном.

Способ Филончикова. Вначале операционное поле обезжиривают спиртом, эфиром или химически чистым бензином, а затем двукратно протирают 5 или 10%-ным спиртовым раствором йода: первый раз после фиксации животного перед началом обезболивания, а второй -- перед разрезом кожи. Интервал между первой и второй обработкой должен быть не менее 5 мин.

Способ Мыша. Операционное поле трижды протирают 5%-ным водным раствором перманганата калия. Операцию начинают после того, как подсохнет кожа. Этот способ рекомендован при наличии дерматита или паратравматической экземы в оперируемой области.

Способы обеззараживания рук

При обеззараживании рук следует учитывать, что микроорганизмы имеются не только на поверхности кожи, но и в выводных протоках сальных и потовых желез, в волосяных мешочках. При обработке рук антисептическими средствами достигается лишь кратковременная стерильность. Поэтому для стерилизации рук применяют специальные способы, которые включают механическую очистку, дезинфекцию кожи.

Перед началом стерилизации следует коротко остричь ногти и очистить подногтевые пространства рук. При грубой, омозолелой коже, имеющей трещины и заусенцы, надежной стерилизации добиться невозможно.

При мытье кистей и предплечий следует держать руки кистями вверх, чтобы вода стекала в направлении к локтевому суставу. Особенно тщательно моют щеткой подногтевые пространства, околоногтевые валики, межпальцевые складки и боковые поверхности пальцев, кисти и предплечья. Рекомендуется вначале мыть ладонную, а затем тыльную поверхности каждого пальца, межпальцевые промежутки и ногтевые ложа левой кисти, затем таким же образом нужно мыть пальцы правой кисти. После этого последовательно обрабатывают ладонную и тыльную поверхности левой и правой кистей, левого и правого запястий, левого и правого предплечий (на границе средней и верхней третей). Затем протирают ногтевое ложе и струю проточной воды направляют от пальцев к локтю, не касаясь кистями предплечий.

Одним из наиболее распространенных способов обеззараживания рук является способ Спасокукоцкого -- Кочергина, состоящий из четырех этапов. Первый этап заключается в тщательном мытье рук в теплом 0,5%-ном растворе нашатырного спирта с помощью стерильных салфеток в течение 3--4 мин в одном стерильном тазу и 3--4 мин -- в другом. Руки постоянно должны быть погружены в жидкость, каждая часть рук обрабатывается последовательно. Второй этап заключается в просушивании рук стерильным полотенцем. Третий этап состоит в обработке рук в течение 3 мин салфеткой, обильно смоченной 96%-ным спиртом. Четвертый этап -- смазывание кончиков пальцев, ногтевых лож и складок кожи 5%-ным спиртовым раствором йода.

Щетки для мытья рук стерилизуют кипячением в течение 20-- 30 мин. Новые щетки перед употреблением погружают на 12 ч в мыльную воду, тщательно моют, а затем стерилизуют.

В настоящее время все большее распространение получают способы обработки рук с помощью синтетических моющих и антисептических средств. Эти способы, как правило, более быстры и надежны.

В полевых условиях в исключительных случаях возможно применение ускоренных, менее совершенных способов обработки рук.

К таким способам относится протирание рук (после гигиенического мытья) в течение 3 мин салфетками, обильно смоченными одним из следующих растворов:

2%-ным спиртовым раствором йода;

5%-ным водным раствором медного купороса;

0,5%-ным спиртовым раствором бриллиантового зеленого;

96%-ным спиртом в течение 10 мин.

В случае применения этих способов оперируют лишь в стерильных перчатках.

В настоящее время для мытья рук используют 2,4%-ный раствор рецептуры «С-4» (смесь перекиси водорода и муравьиной кислоты).

Сначала руки моют водой с мылом (без щетки) в течение 1 мин, вытирают насухо стерильной салфеткой, а затем их обрабатывают в течение 1 мин в рецептуре «С-4» в эмалированном тазу.

После этого руки вытирают стерильной салфеткой и надевают стерильные перчатки.

Можно обрабатывать руки 0,5%-ным спиртовым раствором хлоргексидина биглюконата в течение 2--3 мин после предварительного их мытья с мылом и последующего протирания стерильной салфеткой.

Стерилизация перчаток осуществляется в паровом стерилизаторе, кипячением в дистиллированной воде или погружением в антисептический раствор. Перед стерилизацией для проверки целости перчатки надувают воздухом и погружают в воду. Выход пузырьков воздуха свидетельствует о наличии в перчатках отверстий. Такие перчатки подлежат замене.

Перед началом стерилизации перчатки пересыпают снаружи и изнутри тальком. В каждый палец вводят полоску марли. Перчатку перекладывают и завертывают марлей.

Стерилизация в автоклаве приводит к быстрой порче перчаток, потере ими эластичности. Поэтому целесообразнее перчатки кипятить в стерилизаторе в дистиллированной воде в течение 40 мин. Дно стерилизатора покрывают марлей, на которой перчатки должны лежать без перегибов. Для работы в перевязочной можно стерилизовать перчатки в растворе Синицына (борная кислота -- 5 г, натрия карбонат -- 75 г, формалин -- 100 г, фенол -- 16,5 г, дистиллированная вода -- 5000 г) в течение 3 ч или в 2%-ном растворе хлорамина в течение 30 мин. Чтобы перчатки не всплывали, в них вкладывают груз.

Простерилизованные перчатки извлекают из раствора стерильным корнцангом, с обеих сторон протирают стерильным полотенцем, пересыпают стерильным тальком и хранят в стерильном биксе завернутыми в стерильную салфетку (полотенце). После операции, не снимая перчаток, их моют теплой проточной водой с мылом. Затем подвергают предстерилизационной очистке, дезинфекции и стерилизации в соответствии с требованиями стандарта и инструкции.

Фармакологическая седация, релаксация и обездвиживание животных перед операцией

В ветеринарной клинике для проведения операций используются следующие миореклаксирующие и анальгезирующие препараты это - Рометар и Золетил.

Рометар:

Фармакологические свойства:

В зависимости от употребленной дозы рометар 2 % обладает успокаивающим, болеутоляющим, обезболивающим и миорелаксационным действиями. Начало действия наблюдают в зависимости от вида животного и способа введения. После внутримышечного введения через 5-30 минут, при внутривенном введении время сокращается до 1 -- 5 минут. Продолжительность успокаивающего действия колеблется у крупного рогатого скота от 30 минут до 5 часов, у лошадей и свободно живущих животных от 30 минут до 1 часа, а у мелких животных 1 - 2 часа. Болеутоляющее действие сохраняется у крупного рогатого скота даже 45 минут, у мелких животных 15-30 минут, у лошадей продолжительность изменчива, миорелаксационное действие наступает через 20 - 50 минут. Начало действия характеризуется понижением головы, верхнего века и нижней губы, ослабленной игрой ушей и частичным выпадением пениса, высшая доза содействует уложению животного и наступлению состояния, похожего на сон.

Показания:

Успокоение животных при разных вмешательствах и обработках как, например, подковка, взятие крови, вакцинация, рентгеновское обследование, введение носовых колец, удаление швов, обработка ранений, в том числе обмен повязки, выпадение влагалища и матки, устранение инородного тела после закупорки пищевода у скота, шитье ран, обработка пениса, сосков, катетеризация, обработка глаз и ушей, введение локальной или общей анестезии и т. д.

Противопоказания:

Высокая стадия беременности, заворот желудка и закупорка пищевода у собак.

Состав и форма выпуска:

В 1 мл инъекционного раствора содержатся 20 мг ксилазина гидрохлорида и вспомогательные компоненты. Флаконы по 50 мл.

Золетил

Состав и форма выпуска:

Лекарственное средство в форме лиофилизированного порошка для инъекций белого или светло-желтого цвета в комплекте с растворителем (вода для инъекций) выпускается в стеклянных флаконах, укупоренных хлорбутаноловыми пробками и закатанных алюминиевыми колпачками.

Каждый флакон содержит в качестве действующего вещества: 125мг тилетамина гидрохлорида и 125мг золазепама гидрохлорида (Золетил 50), или 250мг тилетамина гидрохлорида и 250мг золазепама гидрохлорида (Золетил 100). Вспомогательные вещества -- натрия сульфат и лактоза.

Фармакологические свойства:

Тилетамин -- общий анестетик диссоциативго действия, вызывающий выраженный анальгетический эффект, но недостаточное расслабление мышц. Тилетамин не подавляет глоточный, гортанный, кашлевой рефлексы, не угнетает дыхательную систему.

Золазепам угнетает подкорковые области мозга, вызывая анксиолитическое и седативное действия, расслабляет поперечнополосатую мускулатуру. Золазепам усиливает анестетическое действие тилетамина. Он также предотвращает судороги, вызванные тилетамином, улучшает мышечную релаксацию и ускоряет восстановление после наркоза.Время наступления анестезии после внутримышечного введения индивидуально, поэтому после инъекции препарата следует установить тщательное наблюдение за животным.У кошек начало действия препарата после внутримышечного введения отмечается через 1-7 мин. Продолжительность анестезии зависит от дозы, но максимальный эффект обычно наблюдается через 20-60 мин. Период восстановления после наркоза варьирует от 1 до 5,5ч.

У собак начало действия препарата после внутримышечного введения отмечается в среднем в течение 7,5 мин. Средняя продолжительность анестезии составляет около 30мин, период восстановления -- до 4ч. 

В случае передозировки, а также у очень молодых и старых животных период восстановления более длительный. Действующие вещества Золетила метаболизируются в печени и выводятся с мочой.

Показания к применению:

Общая анестезия при диагностических процедурах и хирургических вмешательствах у кошек и собак.

Порядок применения и дозы:

За 24 часа до анестезии следует снять с животного антипаразитарный ошейник и выдержать 12-ти часовую голодную диету.

За 15 мин до введения препарата рекомендуется подкожно ввести атропина сульфат в дозе: собакам -- 0,1мг/кг массы животного, кошкам -- 0,05 мг/кг массы животного.

Содержимое флакона с порошком разведите прилагаемым растворителем. При внутримышечном введении потеря выпрямительных рефлексов происходит через 3-6 мин, при внутривенном введении -- через 1 мин.

Внутримышечное введение:

Собаки: клинический осмотр -- 7-10мг/кг; кратковременная общая анестезия при малых хирургических вмешательствах -- 10-15мг/кг; длительная общая анестезия при обширных и болезненных хирургических вмешательствах -- 15-25мг/кг.

Кошки: клинический осмотр -- 10мг/кг; длительная общая анестезия при обширных и болезненных хирургических вмешательствах -- 15мг/кг.

Внутривенное введение:

Собаки: клинический осмотр -- 5мг/кг; кратковременная общая анестезия при малых хирургических вмешательствах -- 7,5мг/кг; длительная общая анестезия при обширных и болезненных хирургических вмешательствах -- 10мг/кг.

Кошки: клинический осмотр -- 5мг/кг; длительная общая анестезия при обширных и болезненных хирургических вмешательствах -- 7,5мг/кг.

При необходимости золетил можно ввести повторно в дозе не превышающей 1/3-1/2 от первоначальной дозы.

Золетил не обладает кумулятивным действием и может быть инъецирован повторно, в дозах не свыше 1/3-1/2 от первоначальной дозы. При этом общая доза препарата не должна превышать порога безопасности: 30 мг/кг для собак и 72 мг/кг для кошек; у обоих видов животных минимальной летальной дозой является 100 мг/кг. Длительность наркоза составляет от 20 до 60 мин.

Выход из наркоза: Анальгетическое действие Золетила более длительное, чем вызываемый хирургический наркоз. Выход из наркоза постепенный (2-6 часов) и спокойный при условии отсутствия шума и яркого света. В случаях передозировки, а также у очень молодых и старых животных период восстановления более длительный.

Противопоказания:

Золетил противопоказан животным с заболеваниями поджелудочной железы, при выраженных нарушениях сердечно-сосудистой и дыхательной систем, гипертонии. Животным с заболеваниями почек дозу препарата следует снизить. Золетил проникает через плаценту и может вызывать угнетение дыхания у плода.

Побочные действия:

При введении высоких доз или непереносимости золетила может возникнуть апноэ. Во время пробуждения может наблюдаться рвота, чрезмерная саливация и бронхиальная секреция (если не была проведена премедикация атропином), непроизвольное подергивание мышц, гипертония, ригидность мышц.

При передозировке проводят искусственную вентиляцию легких. Другие симптомы устраняют с помощью симптоматической терапии.

Особые указания:

Одновременное применение золетила и хлорамфеникола пролонгирует анестезию у кошек в среднем на 30 мин.

Одновременное применение золетила с фенотиазином (ацепромазин) вызывает угнетение дыхания и сердечной деятельности. При одновременном применении золетила с барбитуратами или ингаляционными анестетиками дозу последних следует снизить.

Условия хранения:

Список Б. 2 года со дня изготовления при температуре от +5 до +20°С. Раствор хранят 8 дней в тёмном месте при температуре +4°С, при комнатной температуре -- 24 часа.

Способы остановки кровотечения:

Во время учебной практики мною были освоены следующие способы остановки кровотечения:

Кровотечение (Haemorragia) -- излияние крови из поврежденных кровеносных сосудов в ткани, полости организма или во внешнюю среду. Оно является наиболее опасным спутником многих травм, ранений и послеоперационных осложнений, связанных с повреждением крупных кровеносных сосудов. Однако, ранения мелких артериальных сосудов или вен не могут считаться для организма безразличными и при ряде обстоятельств часто бывают причиной возникновения острого малокровия и даже гибели животного. Существуют 3 способа остановки кровотечений:

-- К первой группе относятся профилактические и уменьшающие кровотечение способы остановки кровотечения во время проведения операции. Они заключаются в введении в организм животного перед операцией химических или биологических веществ, повышающих свертываемость крови, наложении жгута или предварительное лигирование сосудов.

-- Вторая группа характеризуется временной остановкой кровотечения. Ее используют в экстренных случаях, когда необходимо оказать первую помощь при кровотечениях. Наиболее простым и эффективным способом временной остановки кровотечения при травме крупных сосудов конечностей является наложение резинового жгута выше места ранения. Его обычно накладывают на область голени и предплечья (там, где нервы хорфю защищены мягкими тканями -- мышцами), чтобы'не вызвать травму нервов и сосудов. Вместо резинового жгута можно пользоваться эластическим бинтом, тесьмой или веревкой:

Жгут обычно накладывают на 2-2,5 часа, зимой -- до 1-го часа.

Жгут можно применять и с целью профилактики кровотечения при операциях на пальце, ампутации хвоста или полового члена.

Временно можно остановить кровотечение тампонадой или пережатием сосуда рукой выше места ранения, или наложением гемостатических пинцетов. При наложении пинцета на кровоточащий сосуд не следует захватывать в зажим вместе с сосудом нервный ствол.

-- Третья группа относится к окончательной остановке кровотечения, которая осуществляется механическим, физическим, химическим и биологическим способами.

При механическом способе остановки кровотечения применяют перевязку (лигирование) сосуда в ране, наложение давящей повязки, тампонаду и др. приемы. Перевязка сосуда в ране является наиболее распространенным и самым надежным способом остановки кровотечения.

Рис. 1. Остановка кровотечения при помощи гемостатического пинцета

Для обнаружения кровоточащего сосуда необходимо раскрыть рану и удалить тампоном кровь с раневой поверхности. Затем сосуд захватывают гемостатическим пинцетом и, убедившись, что он не кровоточит, приступают к его перевязке. Для этого берут нить (лигатуру) длиной 10-15 см и обводят ее вокруг сосуда, затягивают один узел и после снятия пинцета -- другой узел. При ранении крупных сосудов имеется; опасность соскальзывания лигатуры с его культи. В других случаях необходимо перевязать сосуды после предварительного промывания тканей около сосуда, что предупреждает соскальзывание лигатуры. В том случае, когда нет возможности выделить кровоточащий сосуд из окружающих тканей, следует наложить кисетный шов (обкалывание сосуда) и лигировать сосуд вместе с окружающей его тканью:

При кровотечениях из крупных сосудов в глубоких ранах, когда после захватывания сосуда гемостатическим пинцетом наложить лигатуру невозможно, то его необходимо оставить в ране на 24-48 часов (например, при кровотечении из семенного канатика после кастрации лощадей и др. ).Во время операции капиллярное кровотечение останавливают тампоном, из мелких сосудов -- наложением гемостатических пинцетов на 10-15 минут.При повреждении небольших кровеносных сосудов кровотечение можно остановить путем наложения давящей повязки (на конечностях, хвосте и др. ).Кровотечение из глубоких ран области холки, затылка, полостей, глазницы, когда трудно выявить кровоточащие сосуды и их лигировать, применяют тампонаду раны. Полость раны туго заполняют стерильными салфетками, одним куском марли или бинтом. Тампоны укрепляют в ране посредством временных швов. Удаляют их из раны через 24-48 часов.

Физические способы остановки кровотечения

Эти способы основаны на свойстве низких температур вызывать рефлекторное раздражение вазоконстрикторов, вызывающих спазм сосудов, а высоких -- коагулировать балки и ускорять свертывание крови.

При внутренних кровотечениях, например, в подкожную клетчатку, полость сустава и др. , к пораженной области прикладывают резиновый пузырь, наполненный холодной водой, снегом или льдом, на 30 минут. При внутриматочном кровотечении холод накладывают на область крестца, а из носовой полости -- на лобную область и сцинку носа. Однако, этот способ не надежный, его целесообразно применять в сочетании с химическими Способами остановки кровотечения.

При неправильной расчистке и обрезке копытец, когтей у животных часто возникает кровотечение. В этих случаях остановку его осуществляют прижиганием рога раскаленным железом. Металл нагревают до светлокрасного цвета и прикладывают к пораженному участку на 1-2 секунды. Способ надежный и не вызывает побочных явлений.

Химические способы остановки кровотечения:

Эти способы применяют для остановки внутреннего кровотечения, а также с целью профилактики при проведении операции.

В практической ветеринарии наиболее широкое применение нашли кровоостанавливающие вещества общего действия, которые способствуют повышению свертываемости и вязкости крови, а также сокращению (сужению просвета) сосудов.

Кальция хлорид. Кальций играет важную роль в жизнедеятельности организма. Ионы кальция необходимы для осуществления процесса передачи нервных импульсов, для сокращения скелетных и гладких мышц, деятельности мышцы сердца и для свертывания крови.

Кальция хлорид применяют как кровоостанавливающее средство при желудочно-кишечных, легочных, послеоперационных, внутриматочных и других кровотечениях, а также как средство, уменьшающее проницаемость сосудов при геморрагическом васкулите, при воспалительных и эксудативных процессах и др.

В практической хирургии иногда его вводят животным перед оперативным вмешательством для повышения свертываемости крови.

Кальция хлорид применяют внутривенно 10% раствор. 

Доза:

для лошадей и крупного рогатого скота -- 100-150 мл;

собак -- 5-10 мл.

Если при неудачном внутривенном введении часть раствора попадает в подкожную клетчатку, то в этом месте развивается воспаление и некроз тканей. В этом случае с целью профилактики развития патологического процесса, необходимо около места инъекции кальция хлорида ввести 20-40 мл 0,25% раствор новокаина или изотонического раствора хлорида натрия.

Натрия хлорид. Применяется 10% раствор внутривенно как и кальция хлоридов тех же дозах. Введение гипертонических растворов ет"о под кожу не допускается (возможен некроз тканей).

Ихтиол. Для остановки кровотечения применяют водные растворы ихтиола, которые готовят на дистиллированной воде или прокипяченной, подогретой до 50-60°С. Кипятись раствор не рекомендуется, так как при этом разрушаются действующие начала препарата (тиофен). Можно готовить 10% раствор ихтиола впрок, который хорошо хранится и при необходимости из него готовят раствор нужной концентрации. 1%-ный водный раствор ихтиола вводят внутривенно из расчета 1 мл на 3 кг массы животного. Беременным животным применяют 1/2 -- 2/3 принятой дозы. Он обеспечивает хорошую свертываемость крови и быструю остановку кровотечения. Внутривенное введение ихтиола в такой дозе не влияет на вкусовые качества мяса. 3 и 5%-ные растворы ихтиола применяют подкожно в дозе соответственно 2,5 и 1,5 мл на 10 кг массы животного.

Желатин медицинский -- продукт частичного гидролиза коллагена, содержащегося в хрящах и костях животных. Выпускается в виде 10% стерильного раствора в 0,5% растворе натрия хлорида в ампулах по 10 мл. Раствор представляет собой студенистую бесцветную или слабоокрашенную массу, которая при нагревании превращается в жидкость.

Для остановки кровотечения и повышения свертываемости крови применяют только стерильный ампули-рованный раствор, выпускаемый по 10 мл (10% раствор), который применяют по 0,1-1 мл на 1 кг массы животного, подкожно.

Окситоцин. Основным фармакологическим свойством окситоцина является способность вызывать сильное сокращение мускулатуры матки, особенно беременной. Его применяют при атонии матки и при гипотонических маточных кровотечениях.

Выпускается в ампулах по 1 мл, содержащих 5 ЕД окситоцина. Доза при внутримышечном и подкожном введениях крупным животным -- 30-60 ЕД; собакам -- 5-10 ЕД; кошкам -- 3 ЕД.

Питуитрин для инъекций. По действию он близок к окситоцину и применяется для стимуляции родовой деятельности, при маточном кровотечении. Препарат вводят подкожно крупным животным 4- 3-5 мл; свиньям -- 0,5-1 мл; собакам -- 0,1-0,3 мл. выпускается в ампулах по 1 мл (5 ЕД).

Биологические способы остановки кровотечения

Одним из эффективных средств этой группы является свежая лошадиная сыворотка, которую вводят слегка подогретой крупным животным -- по 100-150 мл, мелким -- 10-20 мл внутривенно. Переливание совместимой крови крупным животным -- 0,5-1 литр, мелким - 50-100 мл.

К биологическим гемостатическим средствам относятся:

Губка фибринно-изогенная. Представляет собой пористый фибрин, получаемый из плазмы крови человека. Применяется местно для гемостаза при травмах и операционных кровотечениях. Губку можно оставлять в ране, она постепенно рассасывается.

Форма выпуска -- стеклянные бутылки.

Губка гемостатическая приготовлена из нативной плазмы крови человека и тромбопластина. Применяется местно при различных хирургических операциях для остановки капиллярных и паренхиматозных кровотечений.

Форма выпуска-по 1 г в целлофане или подпергаментной бумаге, упакованных в стерильных металлических коробках.

Губка гемостатическая коллагеновая приготовлена из коллагеновой массы. Оказывает гемостатическое и антисептическое действие, стимулирует регенерацию тканей. Оставленная в ране или полости, полностью рассасывается. Применяется при капиллярном и паренхиматозном кровотечениях.

Выполнение обезболивания и новокаиновых блокад

Обезболивание - выключение болевых ощущений при производстве хирургических операций. Обезболивание при проведении хирургических операций у собак, как и у других животных, является неотъемлемой частью этого процесса. При обезболивании устраняется опасность травматического шока, предотвращается возможность загрязнения раны и упрощается фиксация животного. Обезболивание бывает общее (наркоз) и местное (анестезия). Наркоз необходимо применять лишь при больших и сложных операциях, в остальных же случаях можно ограничиться местным обезболиванием. При сердечно-сосудистых расстройствах, болезнях печени, легких, почек, при истощении и беременности наркоз также противопоказан и операции проводят только под местным обезболиванием.

Местное обезболивание. Хотя большие и сложные операции удобнее производить под наркозом, однако большинство других проводят под местным обезболиванием, которое (по сравнению с наркозом) менее вредно действует на организм животного и легко выполнимо. Из инструментария для проведения местного обезболивания необходим шприц и инъекционные иглы. Из обезболивающих веществ практически оправдывающим себя и получившим широкое применение является новокаин. Концентрация раствора новокаина зависит от вида обезболивания. При инфильтрационном обезболивании применяют 0,1-0,5% растворы, а при проводниковом их концентрация равна 2-3%. Инфильтрационное обезболивание заключается в пропитывании тканей раствором новокаина (или другого анестизирующего вещества), вследствие чего наступает паралич нервных чувствительных окончаний. Обезболивающие растворы вводят непосредственно в подлежащие рассечению ткани, либо в их окружающие. Особенно хорошее обезболивание наступает, если производить (по методу А. В. Вишневского) тугое послойное инфильтрирование тканей. При проведении местного обезболивания растворами новокаина, чтобы избежать отравления животного (кроме обезболивания по методу А. В. Вишневского), нельзя превышать дозировку этого препарата. Максимальной дозой новокаина для собак является 0,025 на 1 кг веса, т. е. для мелких пород:

болонок, карликовых доберман-пинчеров и других - 0,1-0,15;

шпица и таксы - 0,2;

восточно-европейской овчарки, сеттера, пойнтера - 0,4;

дога и сен-бернара - 0,6.

Необходимо помнить, что чем ниже концентрация новокаина, тем выше переносимая доза. Поэтому у старых и жирных собак при больших операциях необходимо пользоваться 0,1 % растворами.Проводниковое обезболивание достигается введением раствора новокаина в толщу нерва или возле него. При этом способе расходуют меньшее количество раствора и делают меньше уколов.

Спинномозговое обезболивание. Люмбосакралъная (пояснично-крестцовая) эпидуралъная анестезия. Инъекцию производят в боковом положении животного. Место вкола должно совпадать с точкой пересечения срединной оси позвоночника и поперечной линии, соединяющей верхушки крыльев подвздошной кости (рис. 43, А). Путем пальпации в.точке пересечения находят верхушку остистого отростка и непосредственно сзади его углубление, которое и соответствует пояснично-крестцовому отверстию. В это углубление вводят иглу перпендикулярно коже на глубину 4-5 см. Проколов междужковую связку (по прекращении сопротивления), вводят медленно, в зависимости от величины собаки, от 2 до 11 мл теплого 2% раствора новокаина.

Рис. Определение точки укола иглы при сакральном обезболивании: 1 - последний поясничный позвонок; 2 - крестцовая кость; А - линия, соединяющая верхушки крыльев подвздошной кости

Пользуясь данным видом обезболивания, можно производить операции на обширных отделах задней части тела, даже на органах брюшной полости.

Сакральная анестезия. Наибольшее применение у собак она находит: при операциях на прямой кишке, вульве, влагалище, тазовых конечностях, задних долях молочной железы и хвосте.

Раствор вводят между крестцовой костью и первым хвостовым позвонком или между первым и вторым хвостовыми позвонками. Ориентиром может быть крестцовый гребень, который у большинства собак прощупывается легко. Сзади этого гребня обнаруживается подвижность хвоста, которая более выражена между первым и вторым хвостовыми позвонками. Ориентиром может служить и поперечная линия, соединяющая тазобедренные суставы. Она проходит между крестцовой костью и первым хвостовым позвонком. Животному придают боковое положение. Количество новокаинового раствора исчисляют по длине позвоночника (от затылка до корня хвоста) собаки. На каждые 10 см длины берут 1 мл 1-1,5-2% раствора новокаина. Таким образом, собаке, имеющей длину 75 см, инъецируют 7,5 мл раствора новокаина. Проколов перпендикулярно кожу, игле придают наклон вперед 45-50°.

Обезболивание наступает через 5-10 минут. Признаками наступающего обезболивания, кроме потери кожной чувствительности тазовой части тела, наблюдается расслабление ануса и половой щели. У самцов часто происходит выпадение из препуциального мешка полового члена. При введении 1% раствора новокаина обезболивание продолжается 30-50 минут; 1,5% - от часа до 1,5 часа. Только у жирных собак иногда затруднительно определить место введения иглы.

При необходимости обезболивания менее обширных областей вместо сакральной анестезии можно блокировать нервы крестцового сплетения путем парасакральной анестезии либо отдельные группы этого сплетения. В последнем случае применяют так называемую пудендалыгую анестезию, при которой блокируется срамной нерв.

Парасакралъная анестезия по способу И. А. Калашника. Собаку фиксируют в правом боковом положении. Иглу толщиной 0,5-0,8 мм и длиной 5-8 см вводят на срединной линии и на середине расстояния между анусом и корнем хвоста.

Проколов кожу, иглу продвигают по вентральной поверхности хвоста, слегка вправо, под углом 6-8° к срединной линии, по направлению к крестцу, не теряя ощущения прикосновения конца иглы к вентральной поверхности крестца. Продвигают иглу, пока ее конец не коснется костного препятствия - промонториума .

Положение иглы при парасакральной анестезии в соединительнотканной щели между вентральной поверхностью хвостовых и крестцовых позвонков с одной стороны и прямой кишкой - с другой

Убедившись, что игла находится вне сосуда, вводят шприцем половинную дозу раствора новокаина, постепенно извлекая иглу под кожу. Когда конец иглы окажется под кожей, ей снова придается положение под углом 6-8° к срединной линии, но уже в левую сторону. Проникнув к промонториуму, начинают инъецировать, постепенно извлекая иглу. При этом последние 4-5 мл раствора надо ввести непосредственно под кожу у места укола. Этой последней инъекцией блокируют хвостовые ветви, иннервирующие кожу под анусом.

Для собаки среднего веса достаточно 25-30 мл 0,5% раствора новокаина. Обезболивание появляется через 5-8 минут и продолжается 1-1,5 часа. Область потери чувствительности: кожа вентральной поверхности хвоста и вокруг ануса, анальный сфинктер, каудальный участок прямой кишки, кожа задней наружной поверхности бедра и промежности, половые губы, клитор, влагалище, а у мужских особей - кожа задней части мошонки и половой член. Наряду с обезболиванием, появляются парезы соответствующих мышц, что проявляется зиянием ануса, расширением прямой кишки, расслаблением половой щели, выпадением полового члена.

При правильном проведении анестезии все операции на означенных областях и органах выполняются безболезненно.

Пудендальная анестезия по способу И. А. Калашника. Анестезия может быть выполнена как на стоячем животном, так и на фиксированном в лежачем положении. После механической очистки и дезинфекции кожи вокруг ануса, путем пальпации отыскивают нижне-задний край хвостового мускула и углубление между ним и внутренним запирательным мускулом. Это углубление находится на расстоянии 2-3 см сбоку от ануса.

В указанной точке справа, перпендикулярно к поверхности кожи, вводят иглу и продвигают ее на глубину 0,5-1 см в толщу рыхлой соединительной ткани. Инъецируют 1% раствор новокаина в количестве 5-10 мл, стремясь при этом распределить раствор на большем пространстве путем поворотов иглы. Также поступают и на левой стороне.

Обезболивание наступает минут через 10 и распространяется на ткани заднего прохода, кожу промежности, задне-внутреннюю поверхность бедер, наружные половые органы, заднюю часть кожи мошонки, за исключением верхнего края заднего прохода, который иннервируется средним геморроидальным нервом. У самцов наблюдается выхождение полового члена из препуциального мешка, а у самок - расслабление вульвы. Продолжительность обезболивания свыше часа.

Новокаиновая блокада может быть короткой (местной) и отдаленной.

Короткая блокада. При применении короткой блокады анестезирующим раствором инъецируют ткани, окружающие очаг поражения.

Этот вид блокады рекомендуется при плохо заживающих язвах, фурункулах, флегмонах, маститах, обморожениях, острых отеках, острых периоститах, тендовагинитах, десмоидитах.

Пользуясь тонкими иглами, инъецируют 0,25% раствором вначале кожу сбоку участка поражения, а затем обильно инфильтрируют ткани, расположенные под основанием очага. Количество раствора зависит от площади поражения. В случае необходимости инъекцию повторяют через 3-4 дня.

Если такую блокаду применяют на конечностях то она получает название циркулярной. В этом случае необходимо блокировать все ткани (выше очага), начиная с кожи и кончая надкостницей.

Из отдаленных блокад заслуживают внимания те, что предложены В. В. Мосиным и И. Я. Тихониным.

Надплевральная блокада чревных нервов по В. В. Мосину. Она предложена с целью предупреждения развития послеоперационных воспалительных процессов брюшины и органов брюшной полости, а также с терапевтической целью при развивающемся воспалительном процессе в брюшной полости и ее органах. Этот вид блокады заключается в введении раствора новокаина в надплевральную клетчатку, окружающую пограничные симпатические стволы и чревные нервы. Блокируются почти все нервные симпатические пути к органам брюшной и тазовой полостей.

Эпиплевралыюе введение раствора новокаина у собак осуществляется следующим образом.

У основания последнего ребра с обеих сторон подготавливают операционное поле. Стерилизуют шприц и две тонкие инъекционные иглы длиной 4-6 см.

Точка вкола инъекционной иглы находится в пункте пересечения переднего или заднего края последнего ребра с дорзалыюй группой позвоночных мышц. 7ДЛЯ определения точки вкола иглы следует указательный палец правой руки продвигать по переднему или заднему краю последнего ребра до момента упора пальца в дорзальную группу позвоночных мускулов. Далее в эту точку вкалывают иглу и продвигают сверху вниз и вперед под углом 20-30° к горизонтальной плоскости тела животного параллельно ребру до ощущения упора конца иглы в тело позвонка. Затем иглу фиксируют в этом положении левой рукой, а правой присоединяют к ней шприц, наполненный раствором новокаина. После этого иглу вместе со шприцем отклоняют на 10-20° к сагиттальной плоскости и, равномерно надавливая на поршень, плавно продвигают вперед до момента свободного вхождения раствора новокаина в эпиплевральную клетчатку. В этот момент необходимо убедиться в правильности положения конца иглы. Для этого следует шприц отъединить от павильона последней. Если конец иглы находится в эшшлсвральной клетчатке, инфильтрированной новокаином, в ее павильоне находится раствор анестетика, который иногда колеблется синхронно с пульсовой волной аорты и актом дыхания. Если конец иглы будет находиться в кровеносном сосуде, из иглы будет вытекать кровь, а если в плевральной полости, то в игле раствора не будет и через нее будет всасываться воздух. В этих случаях необходимо иглу несколько извлечь и ввести ее по вышеописанной методике.

...

Подобные документы

  • Основная клиническая документация, используемая при работе ветеринарным врачом. Методы исследования животных. Подготовка и проведение хирургических операций. Способы введения лекарственных веществ. Санитарно-гигиенические условия содержания скота.

    отчет по практике [1,9 M], добавлен 14.10.2013

  • Поточно-цеховая система содержания сухостойных коров. Кормление сухостойных коров, принципы и обоснование выбора кормов, правила проведения их моциона. Характеристика хозяйства, анализ и разработка предложения по совершенствованию его деятельности.

    курсовая работа [1,8 M], добавлен 19.03.2013

  • Определение значения протеина для организма животного. Роль жиров и углеводов в питании сельскохозяйственных животных. Корма, используемые в рационах коров. Зимнее содержание и кормление дойных коров. Содержание, кормление, разведение коров и свиней.

    контрольная работа [90,1 K], добавлен 08.01.2011

  • Эффективность нормированного кормления сельскохозяйственных животных. Поддерживающее кормление животных, величина поддерживающей части нормы. Структура и составление рационов для животных. Особенности кормления стельных сухостойных коров и нетелей.

    реферат [24,4 K], добавлен 13.12.2011

  • Особенности пищеварения у жвачных животных. Кормление высокопродуктивных дойных и сухостойных коров. Основные корма использующиеся в кормлении высокопродуктивных коров. Грубые, сочные и концентрированные корма. Витаминные препараты, минеральные подкормки.

    курсовая работа [32,1 K], добавлен 29.12.2009

  • Классификация лекарственных веществ. Этнология, клинические признаки и лечение бронхопневмонии телят. Инфекционные болезни, присущие молодняку животных. Профилактика трихомоноза у коров. Средства для коррекции иммунного статуса и продуктивности животных.

    контрольная работа [612,1 K], добавлен 14.12.2010

  • Ветеринария как наука о болезнях животных, диагностике, лечении и профилактике. Предмет изучения общей и частной ветеринарии. Виды болезней, методы их диагностики. Основные показатели у лошади в состоянии покоя. Пути введения лекарственных веществ.

    презентация [2,3 M], добавлен 11.05.2015

  • Нормированное кормление сельскохозяйственных животных. Кормление стельных сухостойных коров, дойных коров в фазу разгара и спада, быков-производителей, телят до шестимесячного возраста, молодняка в послемолочный период и откормочного молодняка.

    курсовая работа [79,8 K], добавлен 17.04.2014

  • Общая и частная подготовка животного к операции. Подготовка рук хирурга, инструментов и материалов. Анатомо-топографические данные оперируемой области, фиксация животного и обезболивание. Послеоперационное лечение, кормление, уход и содержание животного.

    история болезни [35,1 K], добавлен 23.12.2014

  • Лечебные свойства растений, их внешние признаки, подлинность и показатели. Классификация лекарственных сборов по дозированию и медицинскому применению, способы их приготовления и применения. Сборы лекарственных растений, рекомендуемые в ветеринарии.

    реферат [70,5 K], добавлен 18.09.2019

  • Кормление стельных сухостойных коров, рекомендуемые количества питательных веществ. Компоненты рациона молочных коров - грубые корма, концентраты, сенаж, пастбищное содержание. Витаминная питательность кормов, содержание витаминов в основных кормах.

    курсовая работа [47,8 K], добавлен 11.03.2013

  • Кормление стельных коров в сухостойный период. Особенности кормления молочных коров при промышленной технологии. Продолжительность сухостойного периода (время от запуска до отела) принятая в хозяйстве. Кормление и уход за коровами в родильном отделении.

    курсовая работа [107,8 K], добавлен 16.03.2010

  • Необходимость применения лекарств при лечении беременных и лактирующих животных. Фармакокинетика лекарственных средств в системе "самка-плацента-плод". Общие вопросы применения ЛС у беременных животных. Клиническая фармакология у лактирующих животных.

    контрольная работа [24,2 K], добавлен 17.01.2012

  • Показания и противопоказания к ринопластике у быка. Общая и частная подготовка животного к операции. Фиксация быка во время операции. Анатомо-топографические данные оперируемой области. Послеоперационное лечение, кормление, уход, содержание животного.

    курсовая работа [734,5 K], добавлен 03.12.2011

  • Правильное кормление как важнейшее средство профилактики обмена веществ в организме и сохранения здоровья животных. Особенности составления рациона животных в хозяйстве. Влияние кормов на качество продукции. Анализ годовой потребности в кормах для коров.

    курсовая работа [79,5 K], добавлен 06.12.2011

  • Общие требования к кормам животного происхождения. Состав и питательность молочных кормов, использование молочных продуктов в кормлении животных. Особенности применения отходов мясной и рыбной промышленности для кормления сельскохозяйственных животных.

    курсовая работа [22,1 K], добавлен 03.09.2013

  • Методы учета молочной, мясной, шерстной, яичной и рабочей продуктивности животных. Содержание и кормление крупного рогатого скота. Основные условия и техника приготовления доброкачественного силоса и травяной муки. Прогрессивные технологии заготовки сена.

    контрольная работа [37,3 K], добавлен 19.06.2014

  • Элементы системы нормированного кормления животных, их потребности в питательных веществах и энергии. Выбор типа кормления для животных с учётом их вида, возраста, продуктивности. Оптимальные варианты типов кормления и рационов для лактирующих коров.

    курсовая работа [2,1 M], добавлен 22.01.2012

  • Техника фиксации животных. Введение лекарственных веществ. Предубойный клинический и ветеринарно-санитарный осмотр туш. Взятие проб крови на лейкоз и бруцеллез. Вакцинация телят и глубокостельных коров против сальмонеллеза, пастереллеза, хламидиоза.

    отчет по практике [20,3 K], добавлен 16.05.2014

  • Организация кормления высокопродуктивных коров, их потребности в разные периоды лактации; состав рациона. Содержание скота на естественных и культурных пастбищах; загонно-порционная система выпаса животных; водопой, подкормки, дефекты пастбищного корма.

    контрольная работа [835,9 K], добавлен 12.03.2012

Работы в архивах красиво оформлены согласно требованиям ВУЗов и содержат рисунки, диаграммы, формулы и т.д.
PPT, PPTX и PDF-файлы представлены только в архивах.
Рекомендуем скачать работу.