Токсичность веществ. Отравления животных и их лечение

Размещено на http://www.allbest.ru/

1. Показатели токсичности веществ

Классификация химических веществ по производственному назначению. Все вещества, которые отрицательно воздействуют на полезных животных и человека, подразделяют на группы по степени их острой или хронической токсичности, уровню функциональной или материальной кумуляции и химической принадлежности.

Критерии токсичности веществ. Химические вещества по токсичности принято характеризовать следующими критериями: ЛД5о (СК5о), ЛД(СК))6, ЛД (СК)84, максимально недействующая доза, или концентрация (макс. НД или макс. НК), минимально действующая доза -- пороговая доза или концентрация (мин. ДД или мин. ДК).

ЛД50, или СК.50, -- доза токсического вещества, вызывающая гибель 50 % особей, получивших ядовитое вещество. Обычно показатель ЛДзо определяют на белых мышах или белых крысах при однократном введении токсического вещества внутрь или наружном применении.

ЛД(СК)]6 и ЛД (СК)84 -- дозы, вызывающие гибель 16 и 84% особей. Эти показатели характеризуют минимально и максимально смертельные дозы, которые определяют расчетным способом при расчете величины ЛД5о

В ветеринарной токсикологии показатель ЛД50 определяют главным образом для птиц (кур, цыплят). Для крупных животных (овец, крупного рогатого скота, лошадей, свиней) целесообразно определять показатель ТД5о -- дозу, вызывающую видимые признаки интоксикации у 50 % особей при однократном введении вещества внутрь или наружном применении.

Максимально недействующая доза, или концентрация (макс. НД или макс. НК), -- максимальная доза, или концентрация, которую можно установить наиболее чувствительными токсикологическими тестами, не вызывающая токсического эффекта. Исключение составляет показатель подавления активности холинэстеразы крови, который является основным биохимическим тестом при токсикологической оценке действия фосфорорганических соединений. Принято считать, что угнетение активности этого фермента до 20 % безопасно для животного. При токсикологической характеристике этих соединений максимально недействующей дозой, или концентрацией, является такая, которая вызывает угнетение активности холинэстеразы крови не более чем на 20 %.

Минимально действующая доза, или концентрация (мин. ДД или мин. ДК), -- пороговая доза, или концентрация, вещества, вызывающая начальные признаки интоксикации, которые можно установить одним или несколькими наиболее чувствительными тестами.

Кроме этих критериев для некоторых веществ, которые могут поступать в организм животных в течение длительного времени, устанавливают такой показатель, как кумуляция. Он характеризуется коэффициентом кумуляции. Кумуляция может быть функциональной и материальной и определяться коэффициентом функциональной или материальной кумуляции.

Коэффициент функциональной кумуляции выражает отношение т/личины ЛДзо при многократном введении вещества внутрь к ЛДзо при однократном его введении тем же способом.

Коэффициент материальной кумуляции выражает отношение уровня содержания остатков вещества в ткани в мг/кг массы к уровню его содержания в корме. Обычно коэффициент материальной кумуляции определяют по той ткани, в которой вещество накапливается или сохраняется в наибольших количествах. Например, для липоидофильных пестицидов хлорорганической группы такой коэффициент определяют по жировой ткани, а для ртутьсодержащих соединений -- по почкам.

Для химических веществ, предназначенных для наружной обработки животных (инсектоакарициды), определяют кожно-оральный коэффициент.

Колено-оральный коэффициент -- отношение величины ЛД5о (ТД5о) при однократном наружном применении к ЛД5о (ТД5о) при однократном введении внутрь.

Показатели токсичности. Единой классификации химических веществ по их токсичности для животных нет. Однако существует классификация, принятая для пестицидов. Она может быть принята и для других химических соединений или элементов, обладающих выраженной биологической активностью. В соответствии с этой классификацией пестициды по токсичности делят на четыре группы в зависимости от показателей ЛД5о для белых мышей или белых крыс при однократном их введении внутрь:

I. Сильнодействующие ядовитые вещества -- ЛД5о до 50 мг/кг;

И. Высокотоксичные -- ЛД5о 50--200 мг/кг;

III. Среднетоксичные -- ЛД5о 200--1000 мг/кг;

IV. Малотоксичные -- ЛД5о более 1000 мг/кг. Аналогичное разделение биологически активных веществ на группы может быть проведено для птиц при определении для них показателя ЛД50-

Степень токсичности веществ для рыб определяют по показателю СК50 -- концентрации, вызывающей гибель 50 % особей при 72--96-часовом их воздействии. В. В. Метелев с соавт. (1971) предложил классификацию Дон-Херти (1951), в соответствии с которой все вещества по токсичности для рыбы по показателю СК5о делят на пять групп:

I. Высокотоксичные --до 1 мг/л;

II. Сильнотоксичные -- 1 -- 10 мг/л;

III. Умеренно токсичные -- 10--100 мг/л;

IV. Слаботоксичные -- 100--1000 мг/л;

V. Очень слаботоксичные вещества -- более 1000 мг/л. Степень токсичности ядохимикатов для пчел определяют по индексу, который представляет собой отношение концентрации пестицида, применяемого для обработки сельскохозяйственных культур, к суммарному показателю контактного и кишечного действий токсиканта на пчелу (С.С.Назаров, 1967). Однако такой индекс труднодоступен для определения и может колебаться в значительных пределах, так как концентрация и норма расхода пестицида могут меняться в зависимости от вида вредителей и характера самих обработок (крупнообъемное, малообъемное и ульт-рамалообъемное опрыскивания). Поэтому с определенной долей условности вещества по токсичности для пчел делят на группы по величине ЛД50 на пчелу при топикальном нанесении пестицида на среднеспинку насекомого в виде ацетонового раствора:

I. Высокотоксичные -- до 1 мкг/особь;

II. Среднетоксичные -- 1 -- 10 мкг/особь;

III. Малотоксичные -- 10--100 мкг/особь;

IV. Нетоксичные -- больше 100 мкг/особь.

По кожно-резорбтивной токсичности вещества делят на три группы (Л. И. Медведь, 1977) по результатам исследований на крысах или кроликах:

I. Резко выраженная токсичность -- ЛД5о меньше 300 мг/кг, кожно-оральный коэффициент меньше 1;

II. Выраженная токсичность -- ЛД5о 300--1000 мг/кг, кожно-оральный коэффициент 1--3;

III. Слабовыраженная токсичность -- ЛД5о более 1000 мг/кг, кожно-оральный коэффициент больше 3.

Например, если ЛД50 при поступлении через кожу составляет 300 мг/кг массы животного, а при введении в желудок -- 400 мг/кг, то кожно-оральный коэффициент будет равен 0,75, т. е. меньше единицы.

При изучении кожно-резорбтивной токсичности на крупных животных для препаратов, предназначенных для наружного применения, обычно определяют коэффициент безопасности -- концентрацию раствора или эмульсии пестицида, вызывающей начальные клинические признаки интоксикации или оказывающей действие на кожу в рабочей концентрации, рекомендованной для борьбы с эктопаразитами.

По этому показателю препараты делят на три группы:

I. Высокоопасные -- коэффициент безопасности до 3;

II. Умеренно опасные -- до 3--5;

III. Малоопасные -- более 5.

По функциональной кумуляции яды делят на четыре группы (Л. И. Медведь, 1977):

I. Сверхкумуляция -- коэффициент кумуляции меньше 1; П. Выраженная -- коэффициент кумуляции 1--3;

III. Умеренная -- коэффициент кумуляции 3--5;

IV. Слабовыраженная -- коэффициент кумуляции более 5.

Коэффициент кумуляции -- отношение суммарной дозы вещества, вызвавшей гибель 50 % подопытных животных при многократном введении, к дозе, вызвавшей гибель 50 % животных при однократном воздействии.

Функциональную кумуляцию обычно определяют на белых мышах или крысах. Для этого исследуемые вещества в течение 4 мес вводят натощак в желудок животных в дозах, равных 1/10, 1/20, 1/50 ЛДзо, установленных в острых опытах. Практика показывает, что величина коэффициента функциональной кумуляции может колебаться в значительных размерах в зависимости от дозы.

В ветеринарной токсикологии наибольшее значение имеет материальная кумуляция. От ее уровня зависит санитарное значение яда, характеризующее степень накапливания его в тканях животных и проникновение в продукты питания животного происхождения.

Например, при введении телятам с кормом гамма-изомера ГХЦГ в количестве 5 мг/кг корма в жире было обнаружено максимальное содержание остатков этого вещества, равное 25 мг/кг ткани. Коэффициент материальной кумуляции гамма-изомера ГХЦГ составит 25/5 = 5.

По этому показателю все ядовитые вещества делят на четыре группы:

I. Сверхкумуляция -- коэффициент материальной кумуляции более 5;

II. Выраженная -- коэффициент от 1 до 5;

III. Слабая -- коэффициент от 0,1 до 1,0;

IV. Очень слабая -- коэффициент меньше 0,1. Токсические вещества, относящиеся по степени материальной кумуляции к группе I, нецелесообразно допускать к применению в ветеринарной практике, а также для обработки кормовых или других культур, продукты переработки которых идут в корм сельскохозяйственным животным. К этой группе относится очень ограниченное количество токсических веществ: ДДТ; некоторые соединения диенового синтеза; препараты, содержащие мышьяк и ртуть. Препараты группы II допускаются к применению на сельскохозяйственных животных, кормовых и технических культурах, используемых в корм животным, на лугах и пастбищах с установлением регламентов их применения. Соединения групп III и IV не представляют большой санитарной опасности и могут быть допущены без ограничений для обработки кормовых культур, лугов и пастбищ, если по токсичности они относятся к группе средне- и малотоксичных веществ. Если их токсичность соответствует токсикантам групп I и II, они могут быть допущены для обработки растений, используемых в корм животным, только после изучения динамики остатков на растениях и установления соответствующих регламентов. Применение соединений групп III и IV на сельскохозяйственных животных независимо от токсикологической принадлежности допускается только после установления регламентов их использования.

2.ХОС (этиология, патогинез, лечение)

Хлорорганические соединения (ХОС) применяются в сельскохозяйственном производстве в качестве пестицидов и инсектицидов. Большинство ХОС являются стойкими соединениями, высокотоксичны, обладают кумулятивным свойством.

Различают сильнодействующие ХОС (хлорсмесь, гамма-изомер гексахлорана), высокотоксичные (дихлорэтан, гекса-хлорбутадион и др.), среднетоксичные (ДДТ, ДДД, полихлорпинен и др.) и малотоксичные (тедион, фталан, дилор и др.). ХОС проникают в организм через дыхательный и пищеварительный тракты, неповрежденную кожу. Выделяются через пищеварительный тракт, с мочой и молоком.

Этиология. Отравление наступает при скармливании кормов, протравленных ХОС, а также при нарушении методики обработки животных.

Патогенез. ХОС оказывают многогранное токсическое действие на все системы организма, однако наиболее сильно поражаются центральная нервная система и печень. Воздействуя на нервную ткань головного мозга, ХОС раздражают ее, способствуя этим накоплению в ней нервных медиаторов. Последние обусловливают изменение функционального состояния всех отделов нервной системы, способствуют появлению судорог, нарушению функций дыхательного центра.

В печени ХОС проникают в гепатоциты и обусловливают нарушение всех основных функций печени.

Важнейшей токсической особенностью ХОС является то, что они легко вступают в комплексные соединения с белками, что ведет к блокированию естественных антиоксидантов, снижается активность тиоловых ферментов, играющих важнейшую роль в нейтрализации токсинов.

Симптомы. Отравление ХОС протекает в острой и хронической форме.

При острой форме отравление первоначально проявляется возбуждением животного, сменяющимся впоследствии угнетением. Дыхание учащенное, обильная саливация, проявляющаяся на фоне клонико-тонических судорог периферической мускулатуры. По мере развития заболевания начинают проявляться парезы и параличи конечностей, сердечно-сосудистая и дыхательная недостаточность.

Хроническое течение отравления ХОС протекает при общем угнетении, диарее, прогрессирующем исхудании, мышечной дистонии. На этом фоне отмечается понижение рефлекторной чувствительности, а в тяжелых случаях наблюдаются клонико-тонические судороги, атаксия, впоследствии - парезы и параличи.

Патологоанатомические изменения. При вскрытии обнаруживают катарально-геморрагический гастроэнтерит, кровоизлияния под эндо- и эпикардом, в печени, почках и подкожной клетчатке, застойную гиперемию легких.

При хроническом отравлении отмечается жировая дистрофия паренхиматозных органов, отечность слизистых и серозных оболочек, мозговой ткани и других органов. Может отмечаться увеличение селезенки.

Диагноз. При постановке диагноза учитывают анамнез, клиническое проявление заболевания, результаты вскрытия и химико-токсикологического исследования.

При химико-токсикологическом анализе обязательно исследуют жировую ткань, где всегда наиболее высокая концентрация ХОС.

Дифференциальный диагноз. Необходимо прежде всего исключить заболевания, протекающие с преимущественным поражением нервной системы.

Лечение. Прежде всего следует провести промывание рубца. В качестве раствора для промывания используют 2- 3%-ный натрий углекислый или 0,5%-ный натрия гидрокарбонат. Назначают также солевые слабительные, жженую магнезию коровам - 10-15 г, овцам - 5-10 г.

Нервные явления снимают применением успокаивающих и наркотических средств. Эффективно внутривенное введение 7%-ного раствора хлоралгидрата в дозе корове - 50-75 мл/кг, натрия тиопентала 5-10%-ный раствор в дозе 25-30 мг/кг, подкожно аминазин в 2,5%-ном растворе 1-2 мг/кг. Эффективно внутривенное введение метионина в дозе 25 мг/кг, глютатиона 100 мг/кг, аскорбиновой кислоты 5 мг/кг в сочетании с глюкозой. Применяют сердечные препараты. При отравлении ХОС противопоказано использование молока в качестве адсорбирующего и растительных масел в качестве слабительного, поскольку они способствуют всасыванию ХОС.

Профилактика заключается в соблюдении правил применения и хранения инсектицидов, пестицидов и гербицидов. Срок использования сельскохозяйственных культур для кормления животных после обработки ХОС должен быть не менее 21 дня. Некоторые препараты ХОС (гексахлоран) нельзя использовать для обработки лактирующих и убойных животных.

3.Отравление животных охратоксином

Грибами -- продуцентами охратоксинов -- являются грибы родов Aspergillus и Penicillium. Первые сообщения о токсичности для уток продуктов жизнедеятельности гриба A. ochraceus сделаны Скоттом в 1965 г. В последующие годы было проведено большое количество исследований по выделению в чистом виде продуктов жизнедеятельности этого гриба, расшифровке химической структуры выделенных микотоксинов, изучению их биологической активности, условий токсинообразования, методов определения в различных биологических субстратах. Охратоксины были названы по виду гриба -- первого продуцента этого микотоксина.

Из культуры гриба A. ochraceus выделено четыре охратоксина --А, В, С и D. Наибольшее санитарно-токсикологическое значение имеет охратоксин А. Он хорошо растворяется в ацетоне, бензоле, ацетонитриле, хлороформе, спиртах. При взаимодействии с железа хлоридом образует окрашенный в красный цвет комплекс, прочные комплексы -- с щелочами.

Основные грибы-продуценты охратоксинов -- грибы A. ochraceus и P. veridicatum. В странах с теплым климатом корма наиболее часто контаминированы охратоксином гриба A. ochraceus, в странах умеренного климата -- гриба P. veridicatum. Оптимальная температура субстрата, при которой идет наибольшее токсинооб-разование при культивировании, для грибов A. ochraceus 28 °С и для грибов P. veridicatum 20 °С.

По данным Н. В. Волкова (1980), из 316 изолятов грибов, выделенных в пяти свиноводческих комплексах Украины, 106 штаммов (33,5 %) были отнесены к грибам A. ochraceus. Из этого количества четыре изолята образовали охратоксин А.

Грибы -- продуценты охратоксина А -- достаточно часто обнаруживают в кормах в России, однако случаев заболевания животных зарегистрировано очень мало. Это связано с отсутствием чувствительного и специфичного метода определения охратоксина А в кормах.

В последнее время охратоксикоз А был установлен в ряде свиноводческих хозяйств Курской и Белгородской областей (Г. П. Кононенко с соавт., 1999).

Охратоксины, так же как и другие микотоксины, сравнительно быстро разрушаются в организме животных. Однако имеются сообщения, что микотоксин в зависимости от дозы может задерживаться в мышечной ткани и в мышцах свиней до 2 нед, в печени до 3 и в почках до 4 нед. Поэтому необходимо установить срок убоя животных после последнего случая поступления микотокси-на в организм в 4 нед. Не исключена также вероятность выделения микотоксина с молоком в случае поступления его в организм с кормами в сравнительно больших количествах.

Охратоксин А относится к высокотоксичным соединениям -- ЛД5о для лабораторных животных при однократном введении внутрь 20--28 мг/кг массы животного, для цыплят 7-дневного возраста 11 --15мт/кг. Микотоксин обладает выраженной кумуляцией. Наиболее чувствительны к нему свиньи, особенно молодые, затем птицы.

При содержании микотоксина в кормах 0,2--0,4 мг/кг корма у свиней даже при длительном кормлении не отмечено клинических признаков интоксикации, но замечены снижение прироста массы животных и полиурия. Для цыплят субтоксическая доза составляет 0,6--0,8 мг/кг корма, токсическая -- 1,5--2,0 мг/кг. При увеличении содержания охратоксина А в кормах до 5 мг/кг у свиней и цыплят были выражены признаки отравления и гибель отдельных животных.

Токсикодинамика. Недостаточно выяснена. Охратоксин А преимущественно действует на почки, поэтому в Дании, где впервые был зарегистрирован этот микотоксикоз у свиней, его назвали «микотоксическая нефропатия свиней». Установлено, что охратоксины, поступая в кровь, сравнительно быстро связываются с ее белками.

Возможно, попадая в кислую среду почек, микотоксин освобождается и проявляет свое нефропати-ческое действие.

Клиника. Хронический охратоксикоз, который чаще бывает в практических условиях, проявляется очень слабо. У животных возрастает жажда, выражены полиурия, снижение прироста массы. В крови в некоторых случаях отмечают лейкоцитоз, увеличение количества лимфоцитов, снижение базофилов. У цыплят наблюдают общее угнетение, взъерошенность перьев, снижение продуктивности. По данным некоторых авторов, на скорлупе яиц появляются желтые пятна.

Лечение. Специфических методов лечения нет. Прежде всего из рациона следует исключить корма, содержащие охратоксин А или же пораженные плесенью. Эффективно введение в корма различных адсорбентов, таких, как цеолиты, глаукониты и др.

Патологоанатомические изменения. Наиболее характерно при охратоксикозе поражение почек. Как правило, они увеличены, капсула местами соединена с корковым слоем. На разрезе корковый слой бледный; под капсулой могут быть кисты размером 1 -- 2 мм. При гистологическом исследовании отмечают некроз клеток проксимальных канальцев, разрастание, соединительной ткани в корковом слое.

В брюшной полости иногда находят повышенное содержание жидкости. В отдельных случаях увеличена печень и некротически изменены ее клетки.

Ветсанэкспертиза. При вынужденном убое животных в случае охратоксикоза органы и ткани, и прежде всего почки, необходимо исследовать на присутствие микотоксина. МДУ охратоксина в мясе и субпродуктах не установлен. При обнаружении остатков микотоксина тушу и внутренние органы утилизируют.

4. Цели и задачи химико-токсикологического анализа в ветеринарии

отравление животное химический вещество

Весь материал, подлежащий исследованию на присутствие в нем ядовитых веществ, направляется в соответствующие лаборатории для химико-токсилогического анализа.

Объектами для исследования могут быть разнообразные вещества - как жидкие (вода, содержимое ЖКТ, части органов, моча, рвотные массы), так и твердые (соскоб со стен и пола, остатки сухого корма).

Исследования могут быть произведены как в лабораториях ветеринарного подчинения (химико-токсилогические отделы областных ветеринарно-бактериологических лабораторий), так и в других специальных учреждениях (лаборатории судебной медицины, институты судебной экспертизы).

Учреждение, куда поступает для исследования такой материал, принимает только при наличии соответствующей документации:

- письменное отношение с указанием, что пересылается, от кого и на что именно необходимо исследовать

- сопроводительные материалы - постановление суда, следственных органов о производстве экспертизы с точной формулировкой поставленных перед исследователем вопросов, копия протокола судебно-ветеринарного вскрытия, копия истории болезни.

- могут быть приложены и другие документы, ориентирующие химика в характере и направлении исследования.

В задачу токсиколога-химика входит не только установление наличия того или иного вещества относимого к категории «ядов», но и количество последнего. Поэтому исследования могут быть качественными и количественными. В данном случае понятие «яд» является условным, так как в зависимости от обнаруженного количества одно и то же вещество может быть признано или не признано ядом. Поэтому, в частности, и необходима история болезни (или другие документы), где бы было указано, какие лечебные средства вводились данному животному при жизни. Например, обнаружение ртути в исследуемом патологическом материале может дать повод к предположению об отравлении сулемой, тогда как животному с лечебной целью незадолго перед смертью был дан каломель в качестве слабительного средства.

Задача химического исследования в данном случае, помимо особой ответственности, оказывается отличной от обычных исследований и в том отношении, что нередко приходится прибегать к особо чувствительным методам, с помощью которых можно обнаружить малые количества искомого вещества в больших количествах присланного материала. В связи с этим при собирании и направлении материала для исследования должны быть учтены предъявляемые в подобных случаях требования, касающиеся техники отбора проб и их упаковки.

Весь материал, подлежащий направлению на химико-токсилогическое исследование, должен быть упакован в чистую тару (стеклянную, деревянную, бумажную). Особенно необходимо обратить внимание на безупречную чистоту стеклянной посуды, к которой могли в прошлом храниться медикаменты (ртутные, мышьяковые). Объемистые корма (сено, солома) могут быть упакованы в пакеты, причем, если этот материал следует и для ботанического анализа, желательно, чтобы растения в большей мере сохранили свою структуру.

Обязательным условием упаковки является опечатывание всего направляемого материала сургучной печатью с составлением одновременного особого акта или внесением в протокол судебно-ветеринарного вскрытия указаний об отборе патологического материала.

При взятии проб должны быть учтены количества, необходимые для исследования, и соблюдены условия, ограждающие направляемый материал от загрязнения. Например, нельзя обмывать, ронять на землю части органов, брать материал надо безукоризненно чистыми инструментами, закрывать склянки новыми корковыми пробками, предварительно прокипяченными. Все банки снабжаются этикетками и сопроводительной описью содержимого в каждой из них.

Особое внимание обращают на фиксирование патологического материала, в частности в тех случаях, когда отравление было вызвано органическими ядами (алкалоиды, гликозидами). Если не представляется возможным по времени года, температурным условиям и близости расстояния, лучше всего патологический материал вообще не фиксировать (замороженное состояние, быстрая доставка). При необходимости фиксирования материал заливают только ректификованным спиртом и прилагают в таком случае «образец» фиксатора в количестве до 100 мл.

Количества направляемого материала для исследования различны в зависимости от того, что подлежит исследованию. Мелких животных и птиц можно направлять в виде целых трупов. У крупных животных берут пробы весом 250-500 г от каждого органа, вместе с содержимым полых органов. Пробы из кишечника, мочевого пузыря удобно отшнуровывать шпагатом и, не вскрывая, класть в общую банку. Сердце, почку, головной мозг в зависимости от величины берут и целиком, или часть. Необходимо брать несколько кусочков спинного мозга и трубчатой кости. Рвотные и каловые массы, мочу, слюну собранные при жизни животного, направляют в количествах, которые удалось собрать, но не свыше 500 г каждого наименования.

Объемистый и зерновой корм также направляют для лабораторного исследования в количествах в среднем до 1 кг каждого наименования. Остатки не съеденного корма, воды, объедки, если подозревается в них содержание ядовитых веществ, направляют также в количестве не свыше 1 кг от каждого наименования.

В препроводительной к пробам корма указывается, от каких количеств они взяты (приблизительные вес или объем запасов), условия хранения, запах, цвет и другие сведения характеризующие общие качества корма (подмоченность, загнивание)

В принятии материала лабораторие6й выдается расписка, а результаты анализа сообщаются в письменной форме через соответствующее, различное для каждого исследования время.

При отправлении патологического материала в лабораторию на химико-токсилогический анализ следует учесть, что отдельные органы и ткани имеют неодинаковое диагностическое значение в смысле обнаружения в них ядовитых веществ. В печени могут быть обнаружены ядовитые веществе при отравлении тяжелыми металлами, фтором в острых случаях, цианидами и бартитуратами. Затем следуют по своей значимости почки. В них при отравлении тяжелыми металлами и особенно медью и молибденом могут быть обнаружены ядовитые вещества. Легкие представляют интерес для обнаружения ядовитых веществ, поступающих в организм при вдыхании воздуха. Содержимое желудка и преджелудков имеет значение при исследовании во всех отношениях, однако обнаружение ядовитых веществ химическим путем в нем возможно только в течение первых суток, в кишечнике же ядовитые вещества иногда обнаруживаются значительно позже (до 2 дней). Исследование крови очень важно при отравлении нитратами и нитритами. В моче может быть обнаружен мышьяк, цинк и фтор. Мышцы представляют наименьший интерес по содержанию ядовитых веществ, они подвергаются исследованию обычно при сильном разложении паренхиматозных органов. Жир содержит инсектициды.

Список литературы

1. Арестов И.Г., Толкач Н.Г. Ветеринарная токсикология: Учеб./ Под ред. И.Г Арестова. - Мн.: Ураджай. 20W. - 343с.

2. Баженов С.В. Ветеринарная токсикология. - Л.: Колос. 1%4. - 376с.

3. Внутренние незаразные болезни крупного рогатого скота / П.С. Ионов. Л.А. Кабыш. И.И. Тарасов и др.; Под ред. П.С. Попова. - 4-е изд., перераб. и доп. - М.: Агропромиздат, I9K5. -383с.

4. Внутренние незаразные болезни сельскохозяйственных животных / И.Г. Шарабрин, В.А. Аликаев. Л.Г. Замарин и др.; Под ред. И.Г. Шарабрина. - 6-е изд., испр. и доп. - М.: Агропромиздат. 1986. - 527с.

5. Вскрытие животных и дифференциальная патоморфологическая диагностика болезней: Учеб. пособие/ М.С. Жаков, B.C. Прудников, И.Л. Анисим и др. - Мн.: Ураджай, 1998. -263с.

6. Патологическая анатомия сельскохозяйственных животных Л.В. Жаров, В.П. Шишков. М.С. Жаков и др.; Под ред. В.П. Шишкова, А.В. Жарова. - 3-е изд., перераб. и доп. - М.: Колос, 1995. -543с.

7. Практикум по патологической анатомии сельскохозяйственных животных: Учеб. пособие/ М.С. Жаков. B.C. Прудников. И.А. Анисим и др. - Мн.: Ураджай. 1997.- 304с.

Размещено на Allbest.ru