Размещено на http://www.allbest.ru/

Министерство образования и науки Российской Федерации

ФГОБУ ВПО УрГСХА

Кафедры частного животноводства, экологии и зоотехнии

Методическое пособие

для студентов специальности «зоотехния» на дисциплине «Зоогигиена с основанием проектирования животноводческих объектов РФ»

Санитарно-гигиенические методы исследования кормов

Содержание

• Введение
• 1. Методы исследования качества грубых кормов
• 2. Методы исследования качества корнеплодов
• 3. Методы исследования качества силоса и сенажа
• 4. Методы исследования качества муки, комбикормов, зерна
• 5. Токсико-микологический контроль качества кормов
• 6. Определение поваренной соли в мясо-костной (рыбокостной) муке. Определение кислотного и йодного числа в жирах
• Литература

Введение

Система кормопроизводства, предусматривающая полноценное кормление животных, призвана удовлетворять их потребность не только в калориях и энергии, определяемых кормовыми нормами, но и в необходимом количестве и надлежащем соотношении различных питательных веществ - полноценном белке, углеводах, жирах, минеральных веществах, микроэлементах и витаминах. Несбалансированность рационов по питательным веществам, а также низкий и чрезмерно обильный уровень кормления - основные причины нарушения обмена веществ в организме животных, приводящих к заболеваниям.

Недоброкачественные корма нередко вызывают хронические, подострые и острые формы кормовых отравлений, когорте приводят к значительному отходу животных, особенно молодняка (телята, поросята, цыплята).

Целью настоящего методического указания является ознакомить студентов с методами определения качества кормов.

В данных методических указаниях в основном приведены наиболее простые и экспресс-методы анализа кормов.

1. Методы исследования качества грубых кормов

ОЦЕНКА КАЧЕСТВА СЕНА.

При качественной оценке грубых кормов особое внимание обращают на цвет, запах, ботанический состав.

Влажность сена не должна превышать 15%. Сено с меньшей влажностью при сгибании ломается, при скручивании издает треск, листья превращаются в труху. Если влажность выше 17% , то при скручивании листья и стебли выделяют влагу, общается холод, такое сено мягкое.

ЦВЕТ.

Доброкачественное сено зеленое, с различными оттенками. При наличии в сене клевера оно буроватого цвета. Люцерновое - ярко-зеленое, бобовое - буровато-зеленое, если сено пересушено, оно светло-желтого цвета. Сено, длительное время находящееся под дождем, становится бурого цвета. На стеблях и листьях такого сена можно обнаружить грибковый налет различных оттенков.

ЗАПАХ.

Сено имеет специфический запах пахучих трав (донник, полынь, ромашка к др.) При длительном хранении сено подвергается самосогревании и приобретает затхлый, плесневый, гнилостный запах. В сомнительных случаях берут небольшую порцию сена, помещают в колбу с горячей водой, плотно закрывают предметным стеклом и через 2-3 минуты определяют запах сена.

ЗАПЫЛЕННОСТЬ является результатом пересушивания сена и поражения его грибами. Запыленность определяют встряхиванием клочка сена, взятого из середины скирда. При встряхивании доброкачественного сена пыль едва заметна.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ ПОВАРЕННОЙ СОЛИ В СЕНЕ.

10 г измельченного сена помещают в химический стакан, куда наливают 10 мл дистиллированной воды, фильтруют. К фильтрату добавляют 3 капли 10% AgNO3. Появление белого осадка указывает на содержание соли в сени.

Сено (травяная мука), содержащие соль 0.9% пригодны для скармливания животным. Большое содержание соли (больше 0,9%) в травяной муке может вызвать отравление.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ АЛКАЛОИДОВ.

Алкалоиды, как вещества со свойствами оснований, дают с кислотами простые и комплексные соли, часто плохо растворимые в воде. Подобным образом ведут себя белки и продукты их распада. Поэтому реакции на осаждения алкалоидов бесспорны только в случае отрицательного результата. Положительный результат должен быть подтверди реакцией хотя бы с тремя-четырьмя реактивами.

После того, кок при ботаническом анализе корма были установлены растения, содержащие алкалоиды, их наличие подтверждают качественной групповой пробой: измельчают около I г растений (сена), содержащих алкалоиды, переносят в колбочку или пробирку. Наливают 7 мл 1% -го раствора уксусной кислоты, подогревают до кипения и охлаждают (до 15 мин), часто взбалтывая. Содержимое колбы фильтруют. Одну - две капли фильтрата наносят на чистое предметное стекло и добавляют 1-2 капли водного раствора йода (реактив Бушарда: 1 г кристаллического йода и 2 г йодистого калия, растворенные в 50 мл воды). Появление бурого или красно-бурого осадка при смешивании капель фильтрата и реактива свидетельствует о наличии алкалоидов.

Эту же реакцию можно провести с реактивом № 2: 10 мл азотной кислоты, разведенной 1:1, 4 г основного азотнокислого висмута и 50 мл насыщенного раствора йодистого кадия. При аналогичном смешивании 1-2 капель фильтруют с 1-2 каплями реактива № 2 появляется оранжево или кирпично-красный осадок.

Содержимое алкалоидов можно определить с помощью реактива № 3: 10 г вольфрамовокислого натрия растворяют в 50 мл воды и подкисляют азотной кислотой. При аналогичном смешивании 1-2 капель фильтрата с 1-2 каплями реактива 3 алкалоиды осаждаются в виде аморфных хлопьев.

Для определения алкалоидов используют и реактив №4: 150 г молибденовокислого аммония растворяют в 1 л азотной кислоты, разбавленной 1:1, смесь нагревают, а зятем прибавляют 20%-ный раствор фосфорнокислого натрия (двуметаллическая соль) до тех пор, пока не перестанет образовываться осадок. Раствор отстаивают 12 ч, после чего его сливают, о осадок промывают несколько раз водой и растворяют в возможно малом объеме 20% -го раствора соды. Полученный раствор выпаривают в водяной бане (в фарфоровой чашке) досуха и удаляют аммонийные соли осторожным прокаливанием. Остаток растворяют в воде (90 мл воды на 10 г осадка), раствор фильтруют и подкисляют азотной кислотой до тех пор, пока образующийся в начале осадок снова не растворится.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ ГЛЮКОЗИДОВ.

В пробирку наливают 1 мл дистиллированной воды, 3-4 капли бычьей желчи, 1 мл концентрированной серной кислоты. На эту смесь наслаивают 1 мл фильтрата. В присутствие глюкозидов появляется кроваво-красное кольцо.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ ЭФЕДРИНА.

Эфедрин содержится в хвойнике обыкновенном. В пробирку берут 1 мл фильтрата, 1 мл 10% раствора NaOH, 0,1 мл 5% растворе СuSO4,. В присутствии афедрина появляется синее окрашивание.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ ПРОТОАНЕМОНИНА.

В пробирку берут 2 мл фильтрата, 3-4 капли нитроируссида натрия, 2-3 капли 10% раствора NaOH. В присутствии протоанемонина появляется красное окрашивание.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ АЛКАЛОИДОВ С ПОМОЩЬЮ СПЕЦИАЛЬНЫХ ИНДИКАТОРНЫХ БУМАЖЕК.

В свежих зеленых растениях присутствие алкалоидов можно определить с помощью специальных индикаторных бумажек. Для их приготовления используют хроматографическую бумагу, нарезанную на полоски, которые погружают в раствор следующего состава: 20 мл 20% -ой уксусной кислоты, в 25 мл которой растворено 0,42 г основного азотнокислого висмута; 20 мл дистиллированной воды, в которой растворено 8 г йодистого калия, 60 мл 40% -го раствора уксусной кислоты. Бумажные полоски извлекают из раствора, высушивают (лучше в подвешенном положении) при комнатной температуре.

На сухую индикаторную бумажку накладывают свежесрезанный край растения и выдавливают из него (можно пинцетом или другим инструментом) несколько капель сока. Через 10-30 секунд на бумажке появляется оранжево-красное пятно или кайма, свидетельствующая о наличии алкалоидов.

БИОЛОГИЧЕСКАЯ ПРОБА.

50-100 г сена, корневища, других частей растения или корма, или же 100-200 г содержимого желудка экстрагируют крепким спиртом. Спиртовой экстракт выпаривают в водяной бане до появления на поверхности специфических, иногда подкрашенных в желтоватый цвет, капель. Добавляют 1-2 мл эфира и взбалтывают. Окончательное извлечение алкалоидов производят этиловым эфиром.

0,5 мл эфирного экстракта вводят под кожу лягушке. При наличии в экстракте алкалоидов или глюкозидов развиваются клонические или тонические судороги. Ставят также кожную пробу на кролике.

БОТАНИЧЕСКИЙ АНАЛИЗ СЕНА.

Качество сена зависит or ботанического состава. Нэвеску и 100 или 200 г разбирают на следующие группы:

- злаковые растения;

- бобовые растения;

- несъедобные травы;

- прочие съедобные травы;

- ядовитые и средние травы.

Сено не должно содержать более 1% вредных к ядовитых трав. Все ядовитые растения делятся на группы по внешним клиническим признакам, которые появляются у животных при их поедании (табл.1)

Таблица 1. Определение наличия ядовитых растений по признакам проявившегося отравления. Основными клиническими признаками являются: поражение или возбуждение ЦНС.

Только возбуждение	Возбуждение и др. признаки	Только угнетение	Угнетение и др. признаки
1. Омежник 2.Белодонник 3.Белена черная 4.Дурман 5.Вех ядовитый	1. Полынь 2. Болотный богульник 3. Лютики 4. Ветреница 5. Калужница 6. Пижма	1.Чистотел 2.Бутень 3.Хвощи 4. Плевел 5.Болиголов 6.Собачья петрушка	1. Кирказон 2. Безвременник 3.Чемерица 4. Борцы

Основные клинические признаки поражения ЦНС

Поражение сердца	Только пищеварения	Пищеварения u дыхания	Поражение печени
Ландыш	Продеска	Гудявник	Крестовник
Горицвет	Молочай	Жаруха	Люцин
Вороний глаз	Куколь	Горчица	Полистрел
Наперстянка	Зверобой	Желтушник
	Паслен
	Вьюнок

2. Методы исследования качества корнеплодов

Корнеплоды широко используются в кормовом балансе животных и требуют контроля за их качеством. При оценке корнеплодов ограничиваются осмотром и лабораторными исследованиями.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ НИТРАТ-НИТРИТНЫХ СОЕДИНЕНИЙ.

В практике свиноводства нередки случаи отравления животных вареной или запаренной свеклой, в которой при медленном остывании образуются нитрат-нитритные вещества. Срезу после варки и остывания свекла безвредна, но она может стать ядовитой через 5-6 часов после запарки или варки. Отравляющее действие нитрат-нитритов заключается в том, что они нарушают окислительную способность крови. При тяжелых отравлениях это приводит к гибели животных.

Пробу из 15 г свекловичной мякоти помещают в колбу, заливают 50 мл дистиллированной воды и кипятят 15 минут, фильтруют. Фильтрат выпаивают в фарфоровой чашке (исключается пригорание осадка). На осадок кладут несколько кристалликов дифениламина и 2-3 капли концентрированной серной кислоты. В присутствии значительных количеств нитрат-нитритов появляется синее окрашивание, при малом содержании - розовое.

Появление слегка синеватого окрашивания дает основание сокращать нормы скармливания свеклы свиньям, в интенсивно синего - исключать свеклу из рациона.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ СОЛАНИНА В КАРТОФЕЛЕ.

Глюкоалкалоид соланин содержится в зеленой ботве (0,14-0,85?%), в клубнях при их прорастании (до 4,7%), позеленевших клубнях.

Отравлению соланином подвержены преимущественно свиньи и кролики. Различают две формы отравления соланином: нервную и желудочно-кишечную.

Нервная форма возникает при поедании проросшего картофеля, а желудочно-кишечная при кормлении картофельной ботвой. Для профилактики отравления соланином позеленевшие и проросшие клубни картофеля необходимо после удаления проростков проварить I час, а воду слить. Ботву можно включать в рацион не более 3 кг не голову в сутки.

Проведение анализа.

С клубня картофеля делает срез толщиной 1-2 мм. Срез помещают в фарфоровую чашку и наносят на него 3-4 капли концентрированной уксусной кислоты, 2-3 капли концентрированной серной кислоты и 3-4 капли 5% перекиси водорода. При наличии соланина на срезе появляется красное или темно-малиновое окрашивание.

3. Методы исследования качества силоса и сенажа

Предварительную оценку качества силоса проводят в местах хранения или заготовки, где определяют его структуру, цвет, запах, признаки заплесневеют, гниения и т.п. Качество силоса контролирует органолептическим методом, проводят лабораторный анализ, ставят биологическую пробу ни животных. Средние пробу для лабораторного анализа берут в разных местах с глубины 20 см после снятия верхнего слоя (всего около 2 кг силосной массы в банку с притертой пробкой).

ЦВЕТ.

Хороший силос по своему цвету должен напоминать растения, из которых он готовится. Цвет силоса оценивают в баллах (табл.2)

Таблица 2. Оценка цвета силоса

Цвет	Балл
Зеленый	3	Доброкачественный силос должен быть желтого, желтовато -зеленого, коричнево- зеленого, светло-коричневого оттенков.
Коричневый или желтый	2
Черно-зеленый	1
Черный	0

ОПРЕДЕЛЕНИЕ ВЕЛИЧИНЫ Ph.

Навеску свежего силоса массой 5-6 г, взятую из объединенной пробы, помещают в химический стакан вместимостью 50 мл. В стакан приливают дистиллированную воду с таким расчетом, чтобы обеспечить полное смачивание порции силоса, настаивают в течение одного часа, измеряют pH с помощью Рн-метра. При определении величины pH силоса мои о также использовать силосный индикатор. Он готовится из следующих компонентов:

- реактив 1

метилрот - 0,1 г

спирт ректификат 96% - 300 мл

дистиллированная вода - 200 мл

-реактив 2

бромкрезолпурпур - 0,1 г

едкий натрий 0,03 и раствор - 3,7 мл

дистиллированная вода - 500 мл..

Реактивы 1 и 2 хранятся отдельно и перед употреблением смешиваются в соотношении 3 части реактива 1 и 1 часть реактива 2. Для исследования величины pH берут 10 - 1-го силосной массы в химический стакан и заливают 5О-6О мл дистиллированной воды. Настаивают 10-15 минут и отмеривают 1-2 мл настоя, переносят в фарфоровую чайку и добавляют 2-3 капли силосного индикатора. Через 2-3 минуты определяют цвет жидкости и устанавливают величину pH по таблице 3.

Таблица 3

Окраска жидкости после добавления индикатора	Величина рН
Красная	4,2 и ниже
Красно-оранжевая	4,2 - 4,6
Оранжевая	4,6 - 5,1
Желтая	5,1 - 6,1
Желто-зеленая	6,1 - 6,4
Зеленая	6,4 - 7,2
Золено-синяя	7,2 - 7,4

ЗАПАХ.

Оценку силоса по его запаху проводит в баллах (табл. 4)

Таблица 4. Оценка силоса по запаху

Запах силоса	Балл
Ароматный, фруктовый, слабо-кислый, хлебный	4
Уксусный, огуречный	3
Резко уксусный	2-1
Затхлый, навозный	0

ВКУС.

Качественный силос имеет слабокислый и кислый приятный вкус.

Резкий кислый вкус говорит о порче силоса.

КОНСИСТЕНЦИЯ.

В силосе хорошего качества сохраняется структура растений и их консистенция.

РЕАКЦИЯ СИЛОСА.

В производственных условиях для определения pH пользуются универсальной индикаторной бумагой. Полоску индикаторной бумаги погружают в силосную кассу и сравнивают окраску со шкалой (pH по шкале в пределах 1-10).

ОБЩАЯ КИСЛОТНОСТЬ.

Определяется общей вытяжке силоса. Для получения вытяжки в литровую колбу вносят 1OO г силоса и 750 мл дистиллированной воды. Тщательно взбалтывают и доливают воду до метки, через 4-5 часов фильтруют. К 100 мл фильтрата добавляют 5 капель фенолфталеине и фильтруют 1 раствором NaOH. Количество 1 к раствора щелочи, израсходованное на нейтрализацию фильтрата (расчет на 100 г силоса) и будет показывать общую кислотность я градусах.

В доброкачественном силосе общая кислотность должна быть не более 20-22.

ОПРЕДЕЛЕНЕИЕ АММИАЧНЫХ СОЕДИНЕНИЙ В СИЛОСЕ.

В пробирку берут 10 мл фильтрата, 10 капель реактива Несслера. В присутствии аммиачных соединения появляется желтое окрашивание, а выпадение коричнево-красного осадка - на значительное содержание их, что свидетельствует об ухудшении качества силоса.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ СУЛЬФАТОВ.

В пробирку наливают 10 мл фильтрата, 6 капель соляной кислоты (1:3), 10 капель 10% Васl2. Появление белой мути или осадка указывает на наличие сульфатов, что свидетельствует о загрязнении силоса экскрементами животных или землей.

КАЧЕСТВЕННАЯ ПРОБА НА АММИАК.

Содержание аммиака в силосе служит показателем гнилостного разложения белка.

Способ определения реактивом эбери (1 часть концентрированной соляной кислоты + 3 части 96% О2Н5ОН + 1 часть эфира). Пробирку закрывают пробкой с продушенной через нее проволокой, к которой прикрепляют кусочек силоса и опускают в пробирку. Реакцию наблюдают: при наличии в силосе свободного аммиака, около кусочка образуется беловатый туман (хлористый аммоний).

ОПРЕДЕЛЕНИЕ СЕРОВОДОРОДА.

Измельченную пробу силоса (16-20 г) помещают в колбу и заливает 10% Нсl так, чтобы силосная масса покрылась слоем кислоты. Опускают в колбу полоску фильтровальной бумаги, смоченной щелочным раствором уксусно-кислого свинца.

Учет реакции:

Первая степень: Свинцовая бумага осталась белой, H2S отсутствует.

Вторая степень: Побурение кончика бумаги - следы H2S

Третья степень: Побурение распространенно, появляется металлический налет на бумаге (указывает на наличие H2S ).

ОПРЕДЕЛЕНИЕ ХЛОРИДОВ.

В пробирку берут 10 мл фильтрата, 3 капли концентрированной азотной кислоты, 10 капель 5% AgNO3. При наличии хлоридов появляется белый осадок.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ МАСЛЯНОЙ КИСЛОТЫ.

В доброкачественном силосе не должно содержаться масляной кислоты. 100 ил фильтрата наливают в фарфоровую чашку и выпаривают до объема 10-15 мл. К сгущенному фильтрату доливают 2 мл 1 и раствора Hcl. Жидкость наливают в цилиндр, куда добавляют 1C мл насуленного раствора Cacl2 или Kcl 40 мл керосина (бензина, бензола). Отстаивают, из верхнего прозрачного слоя берут 20 мл, добавляет 100 мл прокипяченной дистиллированной воды, 2-3 капли 1% фенолфталеина и титруют 0,1 н раствором Ва(0Н)2 до розовой окраски. При этом учитывают, что I мл 0,1 н раствора Ва(0Н)2 эквивалентен 0,008 г масляной кислоты.

Содержание масляной кислоты в 100 г силоса рассчитывают по формуле:

Х = (А*Б 0,008 10) / 20

где X - содержание (г) масляной кислоты в 100 г корма;

А - количество 0,1 н раствора Ва(0Н)2 затраченного на титрование 20 мл отстоя, в мл;

В - объем, занимаемый в цилиндре смесью фильтрата с добавками;

10 - поправочный коэффициент, за счет выпаривания фильтрата;

20- мл, объем прозрачного слоя.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ СИНИЛЬНОЙ КИСЛОТЫ.

20 г силоса растирают в ступке с 50 мл дистиллированной воды до кашицеобразной массы. Фильтруют (на предметное стекло наносят 3-4 капли фильтрата). Нагревают на пламени горелки предметное стекло с фильтратом до образования каемок, затем добавляют 2 капли Нсl (1:3), 2 капли 5 % Fecl3. При наличии цианидов появляется кроваво-красное окрашивание.

ИССЛЕДОВАНИЕ СИЛОСА НА ПРЕДМЕТ ОБНАРУЖЕНИЯ ТОКСИКНА БОТУЛИЗМА.

100 г силоса помещают л колбу, куда добавляют I л стерильного физиологического раствора. Взбалтывают, через минут выливают в стерильную ступку и пестиком растирают до кашицеобразной массы, центрифугируют, фильтруют. Прозрачную жидкость нагревают до 80°С и вводят внутримышечно 2 мл фильтрата морской свинке. При наличии ботулинического токсина в силосе, морская свинка погибает через 2-4 суток после введения фильтрата.

Примечание: оценку качеств сенажа проводят по методикам, используемым при оценке качества силоса.

ХИМИЧЕСКОЕ КОНСЕРВИРОВАНИЕ СИЛОСА.

Чтобы уменьшить потери питательных веществ корма, нужно как можно быстрее остановить жизнедеятельность растительных клеток. Лучшим химическим консервантом можно считать то вещество, которое инактивирует функции окислительно-восстановительных ферментов, не влияя на функции гидролитических ферментов, играющих впоследствии существенную роль при переваривании и ферментации корма в желудочно-кишечном тракте животного.

В настоящее время для консервирования влажных кормов предложено достаточно много химических препаратов. В основном это кислоты (соляная, серная, фосфорная, муравьиная, бензойная, молочная и сорбиновая), а также сухие препараты (пиросульфит натрия, бисульфат натрия и глауберовая соль).

Муравьиная кислота (НОООН - бесцветная жидкость. Поступает в продажу 85%-ой концентрации. В количестве 2-4 кг не 1 т массы (в зависимости от вида растений) вносится с помощью ГАН - 10, АН а других машин. Перед внесением муравьиную кислоту (85% -ой концентрации) разбавляют водой в соотношении 1:5. Муравьиная кислота проявляет свое консервирующее действие не только путем подкисления корма, но и за счет бактериостатичности. Сна не подавляет деятельности молочных бактерий, задерживает развитие гнилостных микроорганизмов и бактерий типа кишечной палочки.

Муравьиная кислота, обеспечивая надежную сохранность корма, в процессе силосования частично (до 40%) распадается на углекислоту и метан и полностью разрушается в преджелудках жвачных животных.

Молочная кислота (CH3CHOHCOOH) - хороший консервант для консервирования зеленых кормов, особенно с высоким содержанием белка. Хорошие результаты получаются при добавлении ее в количестве 1% к силосуемой массе.

Как сорбиновая кислота, она довольно дорога и применять ее невыгодно.

Пиросульфит (метабисульфит натрия Na2S2O5). - бесцветный порошок с запахом окислов серы. Препарат вносят из расчета 4-5 кг на 1 т растительной массы, равномерно распределяя его по всей поверхности консервируемых растений. Препарат тормозит бродильные процессы и угнетает жизнедеятельность маслянокислых и гнилостных микроорганизмов. Безвреден для животных.

Бисульфат натрия (NaHSO4) - белый порошок без запаха, гигроскопичен. Рекомендуется для консервирования трfв (кроме сахаристого сырья) в количестве 6-10 кг на 1т. Препарат подавляет развитие гнилостных бактерий, слабо действует на молочнокислые бактерии, стимулирует развитие дрожжей.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ КИСЛОТНОСТИ БАРДЫ.

К 10 мл барды добавляют 90 мл дистиллированной воды и 3 капли фенолфталеина. Титруют 0,1 н раствором NaOH до слабо-розового окрашивания.

Кислотность в градусах определяют по формуле:

Х = ^ / 6

где:

А - количество мл 0,1 и растворе NаОН, пошедшего на титрование.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ САХАРА В ПОТОКЕ.

13,03 г патоки , 5 мл NaОН (32 г NaОН не 1 л Н2О + 5 мл Pb(No3)2 + 1 л Н2О). Фильтруют и считает на рефрактометре.

4. Методы исследования качества муки, комбикормов, зерна

ОПРЕДЕЛЕНИЕ СПОРЫНЬИ В ЗЕРНЕ.

В фуражном зерне допускается примесь спорыньи не более 1%. Берут 10 г зерна, 100 мл 28% Nacl. При положительной реакции рожки спорыньи всплывают.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ ПРИМЕСИ СЕМЯН ЯДОВИТЫХ РАСТЕНИЙ.

Из средней пробы зерна выбирают и определяют семена ядовитых растений, используя табл. 5.

Таблица 5. Ядовитые растения

Наименование растений	Форма семени	Размеры, мм	Окраска
Куколь	почковидная	5x2,5x2	темно-коричневый
Плевел опьяняющий	зерно овса	6,7x2x2,5	светло-зеленый
Горчак	яйцевидная	5-7хЗ,5хЗ,5	темно-коричневая
Белена	почковидная	1,5х1,2х0,8	желто-серая
Болиголов	яйцевидная	3,5x1,5x1,5	светло-коричневая
Василек	яйцевидная	3,3х2x1,8	зеленоватая
Молочай	яйцевидная	2,5x1,5x1,5	серая
Жимолость	трехгранная	2,2x1,2x1,5	черно-серая
Горчица	шаровидная	1x1,25	темно-коричневая
Дурман	округлая	3-3,5xI,4	черная
Гулявник	овальная	0,8x0,4x0,5	бурая

ОПРЕДЕЛЕНИЕ ПОРАЖЕННОСТИ ЗЕРНА АМБАРНЫМИ ВРЕДИТЕЛЯМИ.

Берут 15 г зерна, помещают в колбу, 2 которую наливают 500 мл 1% раствора KMnО4. Через 45 секунд раствор сливают, зерно окрашенное в черный цвет.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ СВЕЖЕСТИ ЗЕРНА.

Свежесть зерна выражается в градусах:

3,5 - 4,5° - начинается процесс порчи зерна;

5,5° - зерно опасно для хранения;

7,5° - испорченное верно;

9,5° - непригодное зерно.

В колбу берут 6 г зерна, 40 мл дистиллированной воды, 3-5 капель фенолфталеина и титруют 0,1 н раствором NaOH до слабо-розового цвета. Вычисляют по формуле:

Х = (А х 20) / 10

где X - градусы свежести зерна;

А - количество 0,1 н раствора NaOH , пошедшего на титрование;

20 - коэффициент перерасчета. Один градус кислотности соответствует 1 мл 1 н раствора NaOH в пересчете на 100 г зерна (навеска 5 г зерна);

10 - коэффициент, т.к. взят 0,1 н раствор NaOH.

ОЦЕНКА МУКИ.

ЦВЕТ.

В средней пробе мучнистых кормов (отруби, мук») определяют цвет, рассыпая корка на черной бумаге. Серо-белые оттенки свидетельствует о лучшем качестве, а темные о плохом.

ЗАПАХ.

Должен быть приятным, хлебным. Затхлый и гнилостный запах свидетельствует о порче зерна.

ВКУС.

Не должен быть ни кислым, ни горьким.

ВИД МУКИ.

В пробирку берут 2 г муки, 10 мл смеси (96 мл 70° спирта +5 мл концентрированной Hcl ). И ставят на 5 минут в кипящую водяную баню.

Желтый цвет - мука пшеничная;

Красный цвет - мука ржаная;

Желто-красный - мука ячменная;

Зеленовато-желтый - овсяная мука;

Бледно-желтый - просяная' мука.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ В МУКЕ СЕМЯН КУКОЛЯ.

В колбу берут 10 г муки, 40 мл хлороформа, 1 мл 96° спирта, фильтруют. К фильтрату добавляют 2 каши концентрированной При наличии семян куколя появляется желтый цвет.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ В МУКЕ СЕМЯН ПЛЕВЕЛА ОПЬЯНЯЮЩЕГО.

В колбу берут 10 г муки, 100 мл 35° спирта, через 20 минут фильтруют. Фильтрат с примесью плевела опьяняющего имеет зеленоватый цвет, неприятный запах.

ОЦЕНКА КАЧЕСТВА КОМБИКОРМОВ.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ МУЧНИСТЫХ ВРЕДИТЕЛЕЙ В КОМБИКОРМЕ.

В пробирку берут 1 г комбикорма, 4 мл бензина, 5 мл хлороформа, 2-3 капли метиленовой сини. Вредители всплывают на поверхность.

При их наличии комбикорма к скармливанию не допускаются.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ СПОРЫНЬИ В КОМБИКОРМЕ.

В пробирку берут 1 г комбикорма, 7 мл хлороформа, 2 мл этилового спирта. При отстаивании спорыньи в виде частиц черного цвета всплывают.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ ОБЩЕЙ КИСЛОТНОСТИ.

В колбу берут 25 г комбикорма, 250 мл дистиллированной воды,

10 минут взбалтывают, фильтруют. Берут 25 мл фильтрата, 2 капли фенолфталеина и титруют 0,1 н раствором NaOH до слабо-розового цвета. Вычисляют по формуле:

К = (А х п х 40) / 10

где К - градусы кислотности;

А - количество 0,1 н раствора NаOH поведшего на титрование;

п - поправочный коэффициент на титр

ОПРЕДЕЛЕНИЕ СОДЕРЖАНИЯ ПЕСКА В КОМБИКОРМЕ.

5 г добавляет в колбу с 5О мл четыреххлористого углерода. Колбу закрывают сверху предметным стеклом на 15 минут. После чего четыреххлористый углерод осторожно выливают из колбы. Затем в колбу добавляют 10 мл 10% HCl и покрыв колбу предметным стеклом, помещает в кипящую водяную баню на 15 минут, фильтруют. Вычисляют:

Х = ((m₁-m₂ ) / m₂) х 100% ,

где m₁ - масса фильтрата до высушивания;

m₂ - масса фильтрата после высушивание при температуре 80° 10 минут.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ ПОВАРЕННОЙ СОЛИ В КОМБИКОРМЕ.

Сущность метода заключается и осаждении белковых веществ раствором азотной кислоты, титрование хлоридов в кислой вытяжке по фольграду. Навеску комбикорма 2 г переносят в колбу и наливают в нее 20 мл 10% HNO3, приливает 100 мл дистиллированной , воды. Для анализа берут 5О мл раствора над осадком. К раствору добавляют насыщенного раствора железоаммонийных квасцов и добавляю 10 мл титрованного 0:05 н раствора AgNO3. Титруют 0,05 н раствором роданистого аммония до слабо-оранжевого цвета.

Расчет:

Х = (( А х Т₁ - Б х Т₂ ) 0,002922 х y х 100) / (В х М)

где: А - количество 0,05 н раствора АgNОз

В - количество 0,05 н раствора роданистого аммония, прошедшего на титрование;

T₁ - поправка к титру AgNO 3

Т_{2 -} поправка к титру роданистого аммония ;

0,002922- количество Nacl, соответствующее 1 мл 0,05 н AgNO3,

y - объем жидкости в колбе;

В - количество раствора, взятое ка титрование;

М - месса навески, г.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ НИТРАТОВ (качественная проба).

В пробирку берут 10 мл фильтрата, 1 мл реактива Грисса и помещают в водяную баню на 15 минут при температуре 80° С. При нагревании нитратов появляется розовое окрашивание.

ЭКСПРЕСС-МЕТОДЫ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ДДТ, ГЕКСАХЛОРА И ТИОФОСА В КОМБИКОРМАХ.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ ДДТ

В пробирку берут 0,1 г корма, 2 мл 0.5% NaOH, помещают в водяную баню при температуре 80° С на 10 минут, затем добавляют 5 мл дистиллированной воды, 3-4 капли 10% НN03, 3 капли 1% АgNO3,

Образование творожистого осадка указывает ив наличие ДДТ.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ ГЕКСАХЛОРАНА.

В пробирку помещают 2 г корма, 10 мл 96° спирта, 2 капли 1% AgNO3. Появление белой мути указывает на присутствие гексахлорана.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ ТИОФОСА.

в пробирку помещают 2 г корма, 10 мл 96° спирта. Фильтруют.

На предметное стекло наносят 1 каплю фильтрата, 2 капли 15% NaOH

ОПРЕДЕЛЕНИЕ ТМТД В КОМБИКОРМЕ.

ТМТД - ядохимикат, тетраметилтиуродисульфат

10 г корма, 20 мл 0,5% NaOH, встряхивают (шутель - аппарат) - 15 минут, затем заливают 10 мл гексана и встряхивают 30 минут. Фильтруют через двойной бумажный фильтр и к фильтрату прибавляет 0,2 г селикогеля и встряхивают 60 секунд.

Положительная реакция - ведений цвет, вследствие образована тиурамана меди. Чувствительность метода 150 мкг в пробе, что составляет 1/16 честь минимальной нормы протравливания.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ ГРАНОЗАНА В ЗЕРНЕ.

Гранозан - препарат, используемый для протравливания семян. Берут в колбу 50 г зерна. В горло колбы помещают индикаторную бумажку, которая в присутствии гранозана окрашивается в розово-красный цвет. Колбу закрывают не 15 минут. Параллельно ставят пробу с заведомо чистым зерном. Чувствительность пробы 0,1 г/кг сухого зерна.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ НИТРАТОВ В КОМБИКОРМАХ.

Приготовление реактивов.

а) 0,5 г сульфаниловой кислоты растворяют в 150 мл 12% СН₃С00Н

б) 0,1 г - нафталанина растворяют (при нагревании) в 20 мл дистиллированной воды, фильтруют и смешивают со 150 мл 12% СН3СООН. Перед употреблением часть раствора «а» смешивают с равной по объему частью раствора «б».

Приготовление стандартного раствора нитрита Na

0,15 г нитрита Na высушивают до постоянного веса при температуре 80°. NaNO2 растворяют в 1 л дистиллированной воды. 1 мл раствора соответствует 0,100 мг (100 мкг) NO2.

Приготовление рабочего раствора нитрита Na .

25 мл раствора наливают в колбу и доводят до 500 мл путем

добавления дистиллированной воды. 1 мл = 0,0050 мг (6 мкг) NO2.

Приготовление спиртового раствора нитрата калия

Растворяют 1,630 г нитрата калия в дистиллированной воде 1 л.

1 мл = 1 мг NO3

Приготовление рабочего раствора нитрата калия.

1 мл стандартного раствора нитрата калия добавляет в колбу со 100 мл 12% СН₃С00Н. 1 мл - 0,010 мг (10 мкг) NО3.

Затем строят калибровочную кривую для определения иодатов и используют ФЭК (длина волны 540 нм), кюветы 10 мл при зеленом светофильтре.

Таблица 6. Нормы содержания нитратов и нитритов в кормах

Вид корма	мг на I кг корма
	нитраты по NO3	нитриты по NO2
Комбикорм для КРС	500	10
Комбикорм для свиней и птицы	200	5
Сено, солома	500	10
Зеленые корма	200	10
Картофель	300	10
Свекла	800	10
Силос, сенаж	300	10
Зернофураж	300	10
Травяная мука	800	10
Жмыхи и шроты	200	10

Количественный ионометрический метод определения нитратов.

Ионометр типа ЭВ-74 ,'рН-метр, милливольтметр (pH - 340 и pH -121). Ионоседективные нитритные электроды. (Способ определения аналогичен, что и при анализе зерна, комбикорма. Табл. 7).

Таблица 7. «ПДК» на нитраты в продуктах растениеводства

Наименование продуктов растениеводства	Содержание нитратов в кг/кг
Картофель	250
Капуста	900
Морковь	250-400
Салат	2000
Кабачки	400
Свекла	400
Огурцы	1400
Томаты	150
Дыни	150
Арбузы	90

Быстрое обнаружение нитратов в кормах с помощью прибора «Нитротест». Прибор прост в обращении и дает однозначный ответ: превышает или не превышает содержание нитратов в продуктах предельно допустимую концентрацию (ПДК).

Проверяемый продукт нарезают ножом небольшими кусочками в стаканчик, который помещают в пресс из комплекта. После отжатия сока вскрывают полиэтиленовый пакет с индикаторной бумагой, достается одна полоска, набирается пипеткой сок и капается на полоску. Затем из штатива прибора берется соответствующая данному продукту ампула со стандартом и выдавливается капля рядом с каплей сока. Окраска полностью развивается через 3-5 минут. Если окраска от сока бледнее окраски от стандарта, значит содержание нитратов в данном продукте меньше ПДК.

ИСТОЧНИКИ НИТРАТ-НИТРИТНЫХ ЗАГРЯЗНЕНИЙ И МЕХАНИЗМ ИХ ДЕЙСТВИЯ НА ОРГАНИЗМ ЖИВОТНЫХ.

Нитритные удобрения: Натриевая селитре, калийная селитра, кальциевая селитра.

Аммиачные удобрения: NH₃, NH₄OH, аммоний хлористый, аммоний сернокислый.

Аммиачно-нитратные удобрения: Аммиачная селитра, аммония натрий сернокислый.

Амидные удобрения: Мочевина, кальция циамид.

При скармливании жвачным животным азот - фиксирующих растений (кукуруза, подсолнечник) в многокамерном желудке происходит превращение нитратов в нитриты и далее окиси азота и NH₃ не только за счет редуцирующих ферментов рубца, но и за счет растительных редуцирующих ферментов, поступающих вместе с кормами.

Высокими накоплениями нитратов отмечается: кормовая свекла, подсолнечник, кукуруза, картофель, люцерна, клевер, капуста, люпин, ячмень и овес.

Голодные животные, а также больные при колибактериозе и сальмонеллезе более чувствительны к нитратам, чем здоровые. Чувствительность телят к нитратам значительно возрастает при одновременном применении лечебных ннтрофурановых препаратов. Механизм токсичного действия заключается в превращении их в рубце жвачных животных в нитриты, которые блокируют геминовые железосодержащие дыхательные ферменты. В крови образуется высокий уровень метгемоглобина, возникает острая гипоксия и асфикция. Блокада цитохромоксидазы обуславливает торможение транспорта электронов в дыхательной цепи цитохромов, понижение образования молекулярного кислорода и острое нарушение функции центральной нервной системы.

Нитраты угнетают сосудодвигательный центр, что ведет к падению кровяного давления и коллапсу, накопление NН₃, вызывает возбуждение и паралич центральной нервной системы. Хроническая интоксикация животных нитратами обусловлена кислородным голоданием жизненноважных органов и тканей, и сопровождается понижением обмена веществ, снижением воспроизводительной функции, пониженной резистентности молодняка, возникновением дистрофических явлении, изрушением обмена РНК, ДНК.

ТОКСИЧЕСКОЕ ДЕЙСТВИЕ НИТРАТОВ.

Крупный рогатый скот: Беспокойство, слюнотечение, рвотное движение, тимпания, затрудненное дыхание, аритмия пульса, жажда, нарушение координаций движения. Летальный исход.

Свиньи: Беспокойство, рвота, слюнотечение, кожа облезлая, животное зарывается в подстилку, находится в боковом положении, понижение температуры тела. Летальный исход.

Хроническая интоксикация нитратами чаще наблюдается у взроослого крупного рогатого скота (чаще встречаются аборты у коров).

Лечение отравлений:

I. Аскорбиновая кислота 5% в/в в дозе 0,1 мл на I кг массы тела животного.

При хроническом отравлении КГС в рацион необходимо включить препараты магния (окись магния - до 20 г млм магний SO₄, - до 5О г), фосфорно-кальциевые минеральные подкормки, а также препараты вита мина А и корма, богатые каротином.

5. Токсико-микологический контроль качества кормов

животное корм нитритный микологический

ОПРЕДЕЛЕНИЕ ТОКСИЧНОСТИ ЗЕРНОФУРАЖА.

5 г зернофуража после измельчения помещают а колбу с притертой пробкой, заливают 10 ил ацетона и экстрагируют при встряхивании на шуттель-аппарате в течении 2-х часов. Экстракт фильтруют через бумажный фильтр и фарфоровую чайку и выпаривают под тягой. Сухой остаток растворяют в 5 мл ацетона, переносят в стеклянную колбу, доливая туда воду 500 мл из аквариума. В колбу помещают5Ь рыбок гуппи и наблюдают за ними в течение 24 часов, результаты через 1,2,4,8, и 24 ч. Если корм не токсичен, за одни сутки погибает не более одной рыбки (20%), очень слабо токсичен - через 12-24 часа погибает 2-3 рыбки (40-60%), токсичен - через 1-2 часа гибнет 5 рыбок (100%). Контролем служит 1% раствор ацетон, в котором рыбки должны оставаться живыми в течение 3-х суток.

Определение токсичности комбикорма путем постановки кожной пробы на кролике.

Готовят экстракт из комбикорма. В колбу берут 5О г комбикорма, добавляют спирт + эфир (1:3), бензол с таким расчетом, чтобы раствор покрывал пробу корма на 2-3 см, отстаивают 24 часа. Затем жидкость сливают.

Для опыта используют белого кролика. Выстригают персть сбоку (3x6 см²). Стеклянной палочкой втирают экстракт. Затем производят учат кожной реакции:

- 1 степень - покраснение, шелушение, исчезающее через 1-2 дня поели нанесения экстракта;

- 2 степень - покраснение, болезненность, желтоватые пузырьки. Корма 1-2 степени считаются слаботоксичными.

- 3 степень - покраснение, утолщение, болезненность (корм токсичный);

- 4 степень - покраснение, сильный отек, язвы (корм очень токсичный).

МЕТОД РАЗЛИВКИ (среда Чапека.)

10 г комбикорма помещают в колбу, куда добавляют 100 мл воды. Встряхивают 2 минуты. Готовят разведение 1:100, 1:1000, 1:10000. Производят высев из разведения 1:10000 на среду Чапека, разлитую в 5 чашек (на дно чашки no 1 мл в неостывшую расплавленную среду). Рост колоний учитывает через 3,5 и 9 суток после высева. Подсчитывают колонии и вычисляют по формуле:

X = 10000 / 5

где X - количество токсических грибов в 1 г комбикорма;

- количество, выросших колония на 5 чашках из разведения 1:10000.

Затем берут иглой частицу колонии (гриба) на предметное стекло, добавляют 1 каплю 96° этилового спирта 1 каплю глицерина и 1 каплю воды. Покрывают предметным стеклом и при малом увеличении микроскопа определяют вид гриба, пользуясь атласом патогенных грибов. (Саркисов А.Х. Атлас патогенных грибов для сельскохозяйственных животных и птиц.-М., 1953).

ОПРЕДЕЛЕНИЕ ТОКСИЧНОСТИ КОРМОВЫХ ДРОЖЖЕЙ.

Берут навеску дрожжей 100 г в колбу с 300 мл ацетона, встряхивают на шуттель-аппарате 2-3 часа, фильтруют. Добавляют 2,5 мл растительного масла и выпаривают на водяной бане до исчезновения запаха ацетона. Для опыта используют 5 белых мышей (18-20 г весом), с помощью шприца вводят 0,5 мл экстракта. Наблюдают за мышами 3 суток. В случае отсутствия надежа мышей, убивают эфиром и вскрывают. В качестве контроля 5 мышам вводят растительное масло 0,5 мл.

Учет токсичности.

Корм нетоксичен - мыши живые, при вскрытии у убитых патологоанических изменений нет.

Корм слабо токсичен - мыши живы, при вскрытии у убитых геморралисеское воспаления желудочно- кишечного тракта, чаще очаговое.

Корм токсичен - гибнут все или 1 мышь, при вскрытии геморралическое воспаление желудочно-кишечного тракта, дегенерация печени, почек или кровоизлиянии в паренхиматозных органах.

ЭКСПРЕСС - МЕТОД ОПРЕДЕЛЕНИЯ ТОКСИЧНОСТИ КОРМОВ.

Тест-объект.

Инфузория тетрахимена пириформис.

Приготовление углеводно-солевой дрожжевой среды.

1OO мл дистиллированной йоды, 1,5 г глюкозы, 0,1 г морской соли,

0,1 г дрожжевого экстракта. PH доводят до 7-7,6 и стерилизуют ь кипящей воде 30 минут.

Сохранение маточной культуры инфузорий.

Культуру тетрахимены пириформис поддерживают в пептонной среде: на 100 мл дистиллированной воды берут 2 г пептана, 0,5 г глюкозы, 0,1 г дрожжевого экстракта, 0,1 г морской соли. pH = 7-7,5. Среду разливают по 2 мл в пробирки с пробками и стерилизуют при 1 атм. ЗО мин. Пересев культур производят через каждые 4-5дней стерильной бактериологической петлей.

Консервация тетрахимены периформис.

Готовят 5% раствор глюкозы, затем разливают по 10-20 мл на плоскодонные колбочки (объем на 50 мл) сдоем не выше 1 см, стерилизуют при 0,5 атм.20 минут, охлаждают, вносят 0,5-1,0 мл культуры тетрахимены пириформис, выращенной на пептонной среде в течение 3 суток. Хранят колбы в затемненном месте при комнатной температуре 60 дней.

Подготовка образца к исследованию.

5 г комбикорма, зерна (измельченного), 20 мл ацетона, экстрагируют и выпаривают до полного исчезновения запаха ацетона

Проведение исследования.

К экстракту из корма приливают 10 мл углеводно-дрожжевой среды и фильтруют. Для анализа отбирают по 3-5 мл фильтрата во флаконы из-под антибиотиков и вносят 0,1-0,2 мл 3-5 суточной культуры инфузорий и оставляют при комнатной температуре в защищенном месте от прямых лучей (солнечных).

Учет и оценка результатов.

Черев 3,10,30 минут и 1,2,3, часа учитывают эффект биопробы в капле нанесенной пипеткой на предметное стекло, под микроскопом (увеличение 7+10) путем осмотра всего объеме капля и всех ее слоев.

Наблюдения проводят не фоне контроля - среде углеводно-дрожжевая.

Сильно-токсичные корма - гибель тетрахимены пириформис в первые 5 минут (в первые секунды происходит ускорение движения с последующим замедлением, гибелью и лизисом инфузорий ).

Токсичные корма - гибель инфузорий наступает черев 10-30 мин.

Слабо - токсичные корма - гибель инфузорий наступает в течение трех часов. При этом происходят изменения формы тетрахимены - вакуолизация. Движения инфузорий угасают ,наступает атаксия и они лизируются.

Не токсичные корме - гибели и каких-либо морфологических изменений не возникает даже при наблюдении за ними в течение 24 часов

ОПРЕДЕЛЕНИЕ ТОКСИЧНОСТИ КОМБИКОРМОВ (биопроба на белых мышах).

10 г комбикорм, добавляют к 30 ил ацетона и экстрагируют при встряхивании на шуттель-аппарате в течение 30 минут. Фильтруют. Экстракт выпаривают на водяной бане до объема 50 мл. На одну пробу берут 4 белых мышей массой 18-20 г. Стерильным шприцем набирают экстракт и вводят подкожно 0,2 мл. Контроль - 4 мыши и подкожно 0,2 мл стерильного растительного масла. Наблюдают за мышами 3 суток. В случае отсутствия падежа мышей убивают (усыпляют эфиром) и вскрывают внутреннюю сторону бедра конечности, а затем бедро, под кожу которого экстракт не введен. Отмечают отсутствие иди наличие воспалительного процесса, характеризующегося местным полнокровием сосудов, инфильтрацией подкожной соединительной ткани, наличие экссудата, припухлости.

Корм не токсичен - все мыши живые, на месте инъекции нет воспалительного процесса.

Коры слабо-токсичен - все мыши живы, но у 2-4 наличие воспалительных процессов на месте инъекций.

Корм токсичен - гибель хотя бы одной мыши и наличие воспалительного процесса у всех остальных мышей.

Введение экстракта белым мышам в желудок.

Пробы исследуемого корма измельчают, заливают стерильным физиологическим раствором в соотношении 1:2 - 1:5 (в зависимости от вида корма). Оставляют при температуре 4-6° С на 24 часа, периодически перемешивая. После отстаивания массу отжимают, а вытяжку фильтруют через марлевый фильтр. Полученную таким образом вытяжку вводят по 0,5 мл ежедневно 3-4 мышкам в течение трех дней с помощью зонда в желудок, натощак. В качестве зонда можно использовать шприц с тупой слегка изогнутой иглой длиной 3-4 см.

Пробы на бородках кyp.

Готовят спиртово-эфирные экстракты в соотношении 1:2. Экстрагируют измельченный корм в речение 24 часов. Сливают и выпаривают до полного исчезновения запаха эфира и спирта. После этого экстракт разбавляют: к 0,5 мл экстракта добавляют 4,5 мл стерильного подсолнечного масла. Масляный экстракт вводят в одну из бородок курицы в дойн 0,1-0,2 мл. В другую бороздку вводит масло.

Ha мести введения экстракте из токсичного корма отмечают воспаление, отек, кровоизлияние или даже некроз. Толщину бородки можно замерить кутиметром. На контрольной бородке изменений нет. Через 3-4 часа не бородке развивается горячий диффузный отек. Толщина бородки постепенно увеличивается в 3-0 раз, достигая максимума через 20-24 часов. Если экстракт был резко токсичным, на месте образования отека отмечается кровоизлияние, придающее бородке сине-фиолетовый цвет. Рассасывание отека 4-8 дней.

Оценку реакции проводят по наличию изменения. Если диффузный отек бородки наступил черев 4-24 ч, толщина ее увеличилась до 8 мм и больше, в на вторые сутки в центре отеке возникло кровоизлияние с последующем развитием некроза реакция считается резко положи - тельной.

Когда же диффузный отек появляется через 24 часа, толщина бородки 5-8 мм, в кровоизлияние и некроз не развиваются - реакция положительная. В случае, если через 24 часа появляется только ограниченная припухлость бородки, а ее толщина не более 4 мм - реакция считается отрицательной.

БИОПРОБА.

Ее используют как единственный метод подтверждения диагноза, когда микологическими исследованиями установлено наличие грибов в кормах, среди которых один вид гриба токсичен, а лабораторные методы не дают положительного результата. Для установления токсичности такого корма его скармливают наряду с доброкачественным кормом двум группам Сне менее 3-х голов в группе животных). Суточную норму кормов заменяют исследуемым и скармливают его подопытным животным в течение 10 дней. При постановке биопробы группы животных содержат изолировано. Контрольной группе скармливают заведомо доброкачественный корм. Следует учитывать, что токсикоз проявляется быстрее, если пораженный корь скармливать подопытным животным на голодный желудок, т.е. после 5-6 часовой голодной диеты. Дачу воды не ограничивают.

Биопроба считается положительной, если животные, которым скармливают корм, заболевают или отказываются от него, в то время как животные контрольной группы ведут себя локально.

Токсичность многих кормов можно установить методом скармливания их таким сравнительно чувствительным к токсикозам животным как цыплята, утята, голуби, морские свинки.

Положительными показателями бюпробы при отравлениях токсическими грибами считают: пониженный аппетит, поражение центральной нервной системы, нарушение координации движений, дрожь, угнетение или возбуждение, аборты, расстройства желудочно-кишечного тракта, скрежет зубами, стоматит, рвота у свиней, а также повышение температуры тела на 1-5° С. У цыплят, утят наблюдают цианоз гребня и сережек, сонливость, понос, анемии, параличи, судороги. Резко токсичные корма могут вызывать гибель подопытных животных без проявления клинических признаков.

Если после скармливания исследуемого корма животные не гибнут в течение 10 дней, то их убивают и вскрывают. На вскрытии павших или убитых животных устанавливают катаральное воспаление желудочно-кишечного тракта, иногда кровоизлияния и дегенеративные изменения в паренхиматозных органах. У птиц, кроме того, выражен гепитит различной интенсивности в зависимости от степени токсикоза: цвет печени оранжевый, желтый. Степень токсичности корма можно оценить по результатам биопробы с данными таблицы 8.

Таблица 8. Оценка степени токсичности исследуемого корма

Степень токсичности корка	Погибшие животных (в группе 5 голов)	Время гибели, ч
	число	%
Не токсичный	Не более 1	20	До 24
Слабо токсичный	Не более 5	100	10-24
Токсичный	Не более 5	100	1-10

6. Определение поваренной соли в мясокостной (рыбокостной) муке. Определение кислотного и йодного числа в жирах

ОПРЕДЕЛЕНИЕ ПОВАРЕННОЙ СОЛИ.

В колбу берут 10 г мясо - костной или рыбо-костной муки, 50 мл дистиллированной воды. Настаивают 10-15 минут, фильтруют. К фильтрату добавлял 2 капли КС2О4. Титруют 0,1 и AgNO₃

1 мл 0,1 н AgN0₃ = 0.0058 мг Nacl

Х = ((А х 0,0058 х 50) / (10 х 20)) х 100

где А - количество 0,1 н AgNO3, пошедшего на титрование;

Х - % Nacl в корне.

Высший сорт муки - 3%

- 1 сорт - 4%

- 2 сорт - 5%

МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ КАЧЕСТВА ТЕХНИЧЕСКИХ ЖИРОВ.

Технические жиры используются в животноводстве, как источники энергии, незаменимых жирных кислот, витаминов А, Д, Е. Они должны удовлетворять определенным гигиеническим требованиям.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ КИСЛОТНСГО ЧИСЛА.

Кислотное число - это степень распада жировой молекулы.

Рыбий жир - 2,25.

Масла растительные - 0,5-0,7.

Животный жиp - до 0,2.

В колбу берут I г жира, 10 мл смеси (спирт + эфир) (1:2),

5 капель фенолфталеина. Титруют 0,1 н NaОН до слабо-розового цвета. Вычисляют по формуле:

Х= А х 5,6 х К) / е

где К - поправочный коэффициент 0,1 н NаОН;

е - навеска корка;

5,6 - коэффициент;

А - количество щелочи, пошедшей на титрование.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ ЙОДНОГО ЧИСЛА ЖИРА.

0,03 - свежий жир

0,06 - жир сомнительной свежести

0,1 - испорченный жир

В колбу берут 1 г жире, 10 мл хлороформа, 10 мл концентрированной уксусной кислоты, 0,5 мл насыщенного раствора Кс1. Колбу помещают на 3 минуты в затемненное место. Затем в колбу добавляет 100 мл дистиллированной воды, 1 мл крахмала и титрует 0,01 н до обесцвечивания. Вычисляют:

Х = (A х 0,00127 х 100) / Н

где :1 мл 0,01 н растворе Na2S2O3 = 0,00127;

Н - навеска корфу

100 - количество мл дистиллированной воды;

А - количество мл 0,01 в раствора, пошедшего на титрование.

Литература

1. Лебедев П. Т. Методы зоологической оценки кормов. - Рязань, 1984.

2. Судаков В.Г. Санитарно-гигиенические методы исследования кормов. - Свердловск, 1984.

3. Храбустовский И.Х., Даммук М.В., Онегов А.П. Практикум по зоогигиене.= М.,1991

4. Гигиена сельскохозяйственных животных. (Под ред. А.Ф. Кузнецова и М.В. Демчука. Кн. 1 из 3. - М: ВО Агропромздат, 1991.

В.Г. Судаков, Г.А. Сюндюков, С. И. Оболенская

Санитарно-гигиенические нормы исследования кормов. Методическое пособие.

Редактор М.А. Сиськова.

Подписано в печать 14.04.1994. Формат 60 x 34 ; 1/1C

Объем 1,8 печ.л. Тираж 100 экз. Заказ 856

620219 г. Екатеринбург, ул. К. Либкнехта, 42 ,Уральский сельскохозяйственный институт.

Цен № 4 АООТ «Полиграфист», г. Екатеринбург, ул. Тургенева, 20.

Размещено на Allbest.ru

...