Инфекционные заболевания у телят
Возбудитель диплококковой инфекции молодняка. Выделение и идентификация культур стрептококков. Идентификация стрептококков и энтерококков (диплококков) на уровне видов и серологических групп. Получение вакцины и сыворотки против диплококковой септицемии.
Рубрика | Сельское, лесное хозяйство и землепользование |
Вид | контрольная работа |
Язык | русский |
Дата добавления | 14.09.2016 |
Размер файла | 631,5 K |
Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже
Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.
Размещено на http://allbest.ru
ВВЕДЕНИЕ
инфекция диплококковый энтерококковый молодняк
Кокковые инфекции широко распространены среди животных и человека. Патогенные микроорганизмы шаровидной формы, вызывают гнойно-воспалительные процессы в различных органах и тканях живого организма. Иногда эти процессы сопровождаются септицемией и септикопиэмией. По характеру роста и питательных средах и морфологии возбудителей заболеваний разделяют на три группы: стафилококки (семейство Micrococcaceae), стрептококки (семейство Streptococcaceae) и диплококки. К последним относятся пневмококки (семейство Streptococcaceae), менингококки и гонококки (семейство Neisseriaceae).
Основным и постоянным признаком всех патогенных кокков является способность вызывать образование гноя, за что их называют пиогенными, или гноеродными. По тинкториальному признаку кокки делятся на грамположительные (стафилококки, стрептококки и пневмококки) и грамотрицательные (менингококки и гонококки).
В группу стафилококков входят бактерии, которые при делении клеток образуют в различных направлениях беспорядочные скопления кокков в виде гроздьев винограда. Они вызывают абсцессы, панариции, сепсис, маститы, фурункулезы и другие болезни.
Стрептококками называют кокки, образующие при делении цепочки, напоминающие ожерелье. Они вызывают мыт у лошадей, суставолом у жеребят, маститы и инфекционный катар влагалища у коров, нефриты, ревмокардит, эндокардит, рожу, скарлатину и другие болезни человека.
Образующиеся при делении клетки спаренные кокки являются представителями группы диплококков. Они могут быть бобовидной, ланцетовидной, и круглой формы. Вызывают диплококковую септицемию у телят, ягнят и поросят; крупозную пневмонию (пневмококки), менингит (менингококки), гнойно-воспалительные процессы мочеполовых путей (гонококки), абсцессы, ангину, плевриты, ползучую язву у человека.
Из кокковых инфекций среди животных чаще регистрируют диплококковую септицемию телят, ягнят и поросят, маститы и эндометриты коров, овец и свиней, а так же мыт лошадей.
Пневмококки широко распространены в природе. У здоровых животных обнаруживается на слизистых оболочках дыхательных путей, пищеварительного тракта, половых органов. Телята, ягнята, поросята, заразившиеся от матери, становятся источником возбудителя инфекции для остального молодняка, что приводит к развитию энзоотии. Заражение происходит через желудочно-кишечный тракт и дыхательные пути. Болезнь характеризуется септицемией, поражением легких (лобулярная пневмония) и желудочно- кишечного тракта.
1.ОПИСАНИЕ ВОЗБУДИТЕЛЯ
Возбудитель диплококковой инфекции Str. Pneumonia был выделен в 1871г. Л.Пастером из слюны ребенка, погибшего от бешенства. В чистой культуре пневмококки выделили в 1886г. Френкель и Вексельбаум, которые установили роль пневмококка в этиологии крупозной пневмонии. В нашей стране заболевание у животных было впервые установлено в 1932г. в Алма-Атинской области.
Микроспория. В мазках, окрашенных по Граму и Романовскому-Гимзе, S.pneumoniae имеет форму парных кокков, наружные концы слегка ланцетовидно заострены, окрашиваются грамположительно. В мазках из пораженной ткани хорошо заметна капсула, покрывающая оба кокка. В культурах капсула не образуется. В мазках из культуры часто располагается короткими цепочками. Размер кокков 0,5 - 1,5 мкм. Неподвижный, спору не образует.
В организме пневмококки образуют хорошо выраженную капсулу, которая утрачивается при культивировании на искусственных питательных средах, но сохраняется на средах с сывороткой или кровью.
Культивирование. Пневмококки размножаются в аэробных и анаэробных условиях при 36-38°С и рН 7,2-7,6. Для их выращивания применяют среды, содержащие 0,5% глюкозы и 5% крови животных. На МПА образуют мелкие прозрачные колонии с голубым оттенком; в МПБ - помутнение; на сывороточном агаре появляются мелкие прозрачные колонии, напоминающие капельки росы. Колонии свежевыделенных культур диплококка на кровяном агаре мелкие, круглые, прозрачные, окруженные зоной б-гемолиза (зеленая зона), в полужидком агаре - хлопьевидный рост, в желатине - рост по уколу без разжижения.
Биохимические свойства. Ферментируют с образованием кислоты: глюкозу, лактозу, сахарозу, салицин, инулин, мальтозу. Не разжижает желатину, не образует индол, молоко свертывает. Патогенные пневмококки растворяются в желчи, в желчнокислых солях. Отношение пневмококков к желчи и разложение инулина имеют дифференцирующее значение (что отличает от других видов стрептококков).
Токсинообразование. На полужидком агаре с кровью и мальтозой токсин, вызывающий смертельное отравление котят при пероральном введении.
Антигенная структура. В характеристике видовой специфичности имеет определенное значение нуклеопротеиновый антиген который расположен в глубине цитоплазмы пневмококков. Ближе к поверхности клетки находится видоспецифический соматический полисахаридный С-антиген. На поверхности цитоплазмы находится типоспецифический протеиновый М-антиген.
Внутри вида Str. Pneumoniae имеются 84 серовара, агглютинирующихся только соответствующими типовыми сыворотками.
Антигенная структура пневмококков под влиянием различных физических и химических факторов может быстро изменяться, что сопровождается формированием на агаре переходных, а затем шероховатых колоний, потерей капсул, вирулентности, гемолитических и иммуногенных качеств, а также повышением биохимической активности.
Устойчивость. Диплококк малоустойчив. Нагревание при 55°С вызывает гибель культуры через 10 минут. Во внешней среде погибает в течение 3-4 недель. В качестве дезинфектантов используют формалин, гидроокись натрия, известь. Пневмококки легко подвергаются аутолизу вследствие высокой активности их внутриклеточных ферментов.
Патогенность. Наиболее чувствительны к пневмококкам белые мыши и кролики. Подкожное введение небольших доз культуры вызывает гибель мышей от септицемии в течение 12-36 часов. При заражении слабовирулентными культурами развиваются длительно протекающие хронические заболевания. Патогенными пневмококки являются также для крупного и мелкого рогатого скота, собак, крыс и других животных.
Диплококк патогенен для мышей, кроликов, поросят, ягнят, телят, а при введении в сосок молочной железы - для овец, свиней, коров.
Наиболее вирулентны свежие культуры пневмококка, выделенные из трупов молодняка, павшего от диплококковой инфекции (при токсикосептической форме). Токсины специфичны, т.е. нейтрализуются только противодиплококковой сывороткой.
Лабораторная диагностика.
В лабораторию направляют трупы молодняка или паренхиматозные органы, трубчатые кости, суставы, кровь сердца в запаянных пипетках, головной мозг. При подозрении на диплококковый эндометрит или мастит у взрослых животных исследуют выделения из половых органов и молоко.
Учитывая малую устойчивость возбудителя материал должен быть доставлен не позднее 6 часов после гибели или убоя животного при условии транспортировки его в термосе со льдом (4-6°). При более высокой температуре срок доставки материала не должен превышать 2-3 часа.
Диагноз ставят на основании микроскопического исследования выделения чистой культуры и результатов биопроб.
Биопробу ставят на белых мышах, которые после внутрибрюшинного или подкожного заражения гибнут через 16-48 ч.
Микроскопическое исследование исходного материала.
Готовят мазки, окрашивают по Граму, при подозрении на наличие капсулообразующих стрептококков препараты окрашивают на капсулы по Романовскому-Гимза, Ольту и др. Мазки из молока можно окрашивать по Граму, используя методы, нивелирующие присутствие жира и белка
Клетки S.pneumoniae в окрашенных препаратах овальные или сферические, размером 0,5-1,25 мкм, обычно парные, причем соприкасающиеся стороны клеток уплощены, а наружные вытянуты и заострены (ланцетовидный диплококк). Также клетки могут располагаться одиночно, короткими цепочками, окружены капсулой.
Результаты микроскопического исследования, с учетом полиморфизма бактерий на фоне лекарственной терапии, имеют ориентировочное диагностическое значение.
2.ВЫДЕЛЕНИЕ И ИДЕНТИФИКАЦИЯ КУЛЬТУР СТРЕПТОКОККОВ
Посев материала и питательные среды, культивирование.
Стрептококки - факультативные анаэробы. Исследуемый материал высевают на кровяной, глюкозно-кровяной агар (кровь барана или крупного рогатого скота), глюкозно-сывороточный МПБ (рН 7,4-7,8). Контаминированный материал засевают на селективные среды: агар с антибиотиками, азидом натрия; образцы молока целесообразно высевать на среду Эдварда для выявления гемолиза и гидролиза эскулина.
Для обнаружения энтерококков используют специальные селективные среды: молочно-полимиксиновая среда Калины, желчно-кровяной агар Беленького и др. Посевы инкубируют при 37-38°С в течение 24-48 часов.
Характер роста стрептококков на питательных средах.
На клюкозо-кровяном агаре стрептококки в основном растут в виде мелких, прозрачных или слегка мутноватых колоний с ровными краями, как правило окруженных зоной гемолиза. Различают б и в-гемолитические стрептококки. Гемолиз типа б: неполный гемолиз, часто с зеленоватым оттенком за счет перехода гемоглобина в метгемоглобин, далее обычно находится узкая зона в-гемолиза.
В-гемолиз - полный гемолиз эритроцитов. Отсутствие разрушения эритроцитов и гемоглобина обозначают как г-гемолиз.
S.pneumoniae на глюкозо-кровяном агаре образует круглые диаметром 0,5-1,5 мкм, полупрозрачные, плоские, с приподнятым центром и краями колонии. Если культивирование проводится в аэробных условиях, обязателен б-гемолиз с зеленоватым оттенком, при анаэробной инкубации - в-гемолиз. По внешнему виду колонии похожи на колонии других зеленящих стрептококков. Могут встречаться мукоидные колонии - более крупные, с блестящей поверхностью, слизистой консистенции. В сывороточно-глюкозном бульоне растет с равномерных помутнением среды, с образованием пылевидного осадка.
Идентификация стрептококков и энтерококков на уровне видов и серологических групп.
После дифференциации стрептококков от стафилококков и микрококков и разделения на группы стрептококки, энтерококки (плюс стрептококки серологической группы D) приступают к их видовой и серогрупповой идентификации.
Видовую идентификацию стрептококков и энтерококков проводят путем изучения ферментативных характеристик (гидролиз эскулина, гиппурата, расщепление инулина, маннита, раффинозы, салицина, сорбита, лактозы, трегалозы, рекципя Фогес-Проскауера ), особенностей гемолитической активности (б-,в-гемолиз, САМР-тест), способности к росту на средах с 6,5% натрия хлорида. При этом может быть использован набор тестов, позволяющий дифференцировать основные патогенные виды стрептококков и энтерококков, выделяемых от животных.(см. таб.1)Либо с учетом видового происхождения материала используют меньшее количество признаков, что делает возможность идентифицировать основные виды стрептококков, выделяемые от данного вида животных.
При идентификации S.pneumoniae , помимо критериев, изложенных в таблице, определяют чувствительность к лизису клеток стре5птококка желчью (желчными кислотами) и чувствительность к оптохину.
Для проверки на желчеустойчивость 2-3 мл исследу6емой культуры, выращенной на сывороточном бульоне, засевают в 5 мл 10%-ного желчного бульона. Среда становится мутной и ее помещают на час в термостат.
Клетки S.pneumoniae растворяются, среда становится прозрачной, зеленящие стрептококки, сходные по типу колоний и гемолиза, не растворяются в желчи. При получении нечетких результатов пробирки оставляют при комнатной температуре на 18-20 часов и затем производят окончательный учет. Можно просто положить крупинку сухой желчи на исследуемую колонию. Колонии S.pneumoniae растворяются и исчезают. При наличии натрия таурохолата смешивают равные объемы 10%-ного раствора соли и бульонной культуры, клетки пневмококков растворяются, и смесь становится прозрачной через 10-15 минут.
Чувствительность S.pneumoniae к оптохину (этилгидрокупреин НCl ) используют для дифференциации от других зеленящих стрептококков. Для этого применяют коммерческие бумажные диски с оптохином. Испытуемую культуру засевают на кровяной агар, помещают на поверхность среды диски с оптохином и культивируют 24 часа при 37°. Как положительный результат расценивают задержку роста от 14 мм и более (при диске 6 мм), что характерно для S.pneumoniae. При отсутствии таких дисков может быть использован следующий метод: исследуемую культуру засевают на глюкозо-кровяной агар с оптохином (1:50000), инкубируют при 37-38°С в течение 20-24 часов. S.pneumoniae на этой среде не растет.
Для видовой дифференциации энтерококков используют тесты. Представленные в таблице.
Серологическая идентификация стрептококков и энтерококков
В клеточной стенке многих стрептококков присутствует термостабильный полисахаридный антиген «С». В соответствии с его антигенными вариантами по системе Лансилд стрептококки в РП подразделяют на серологические группы, которые обозначают заглавными буквами латинского алфавита.
Известно более 20 серологических групп стрептококков. Некоторые виды стрептококков (S.pneumoniae) не содержат С-полисахарид и не могут быть классифицированы по системе Лансфилд. Иммунные серогрупповые стрептококковые сыворотки производит и высылает по заявкам ВГНКИ ветпрепаратов. За рубежом для этих целей имеются коммерческие препараты, позволяющие устанавливать серогрупповую принадлежность в пределах серогрупп A,B,C,F,G в тесте латексагглютинации или серогрупп A,B,C,F,G в реакции коагглютинации на стекле, ИФА, а также выявлять антигены непосредственно в материале.
Определение серогрупповой принадлежности испытуемой культуры стрептококков реакции преципитации проводят следующим образом. Стрептококки выращивают в бульоне Хоттингера с 1% глюкозы при 37°С в течение 20 часов. В стеклянные центрифужные пробирки переносят 9 мл выращенной культуры, центрифугируют при 4000 об/мин. 25 минут. Недостаточную жидкость удаляют, к осадку добавляют 0,3-0,4 мм 0,2 NHCl, суспендируют и выдерживают смесь в кипящей водяной бане 10 минут.
Затем пробирки охлаждают водой, добавляют в каждую пробирку каплю 0,04% - ного спиртового раствора фенолфталеина и затем по каплям добавляют 0,2 N раствор NaOH до приобретения раствором бледно-розовой окраски (кислота нейтрализована). Далее смесь вновь центрифугируют, надосадочную жидкость используют как растворимый антиген в РП.
Техника постановки реакции пре6ципитации. Берут от пастеровских пипеток капилляры диаметром 0,5-1,0 мм, опускают капилляр концом в флакон с сывороткой и набирают в него сыворотку на длину капилляра 1-1,5 см. Удаляют избыток сыворотки с кончика капилляра, погружают его в пробирку с антигеном и набирают равное количество антигена. Капилляр переворачивают таким образом, чтобы смесь оказалась в середине капилляра, и закрепляют его вертикально в куске пластилина. Через 5 минут учитывают результат. Положительная реакция: образование хлопьев или резкое помутнение в середине столбика.
Стрептококковая септицемия новорожденных телят, поросят, ягнят
Возбудитель - преимущественно в-гемолитический стрептококк S.zooepidemicus серогруппы С. Остро протекающая болезнь с септической или метастатической формой течения и поражениями в области пупочного канатика. Чаще заболевают телята, нередко - поросята и ягнята. Возникает болезнь во время родов или после них. Более всего подвержены заболеванию животные - гипотрофики или с врожденными пороками развития.
К причинам и предрасполагающим факторам появления инфекции относится неполноценное кормление беременных, несоблюдение ветеринано-санитарных правил содержания животных и гигиены родов. Заболевание возникает, если культя пуповины непосредственно после родов соприкасается с загрязненным стрептококками полом, подстилкой или руками животноводов.
При заболевании отмечают сильные болевые ощущения в области пупочного канатика, последний отекает; при нажатии из отверстия пупочного кольца вытекает жидкий зловонный гнойный экссудат. При отсутствии лечения развиваются септицемия или гнойные метастазы в разных органах, в том числе в суставах.
При вскрытии находят признаки гнойно-фибринозного полиартрита, метастатические абсцессы в печени, почках и головном мозге, а также в лимфатических узлах.
Энтерококковая (диплококковая) септицемия телят, ягнят, поросят и жеребят
Возбудитель болезни - стрептококк серогруппы D (энтерококк). Болезнь протекает сверхостро, остро, подостро и хронически и проявляется в виде пневмонии, энтерита, полиартрита и сепсиса.
По локализации процесса различают септико-токсическую, легочную, кишечную, суставную и смешанную формы проявления болезни. Инкубационный период 1..2 дня и реже до 1 нед. Для ягнят характерно сверхострое и острое течение болезни; для телят, поросят и жеребят - острое и подострое.
При сверхостром течении (септико-токсической форме)молодняк отказывается от корма, появляется мышечная дрожь, температура тела повышается до 42°С. Дыхание учащено, отмечают хрипы, выделение из носовых отверстий пенистой жидкости, фекалии жидкие, с примесью крови. Животные погибают в течение нескольких часов. При остром и подостром течении у телят и жеребят отмечают повышенную температуру тела, учащенный пульс и дыхание, слабость, пониженный аппетит, нередко артриты. Если не оказать помощь, животные погибают за 2..3 дня. Хроническое течение энтерококковой септицемии характерно для телят и жеребят старше 2…4 мес, для ягнят и поросят старше 1..2 мес. У больных появляются вялость, серозно-слизистое и гнойное истечение из носа, болезненный кашель, аппетит понижен.
При легочной форме устанавливают плеврит, сухие и влажные хрипы. Кишечная форма проявляется диареей с выделением слизи и крови. Болезнь иногда продолжается до 2 мес. Переболевшие животные отстают в росте и развитии.
При патологоанатомическом исследовании в брюшной полости обнаруживают геморрагический экссудат. На слизистой оболочке сычуга кровоизлияния, печень и селезенка отечны и увеличены. В легких уплотнения, гнойники, спайки плевры и сердечной сумки. В синовиальной жидкости суставов обнаруживают хлопья фибрина, изъязвления хрящей. Патологические изменения иногда локализуются как в органах дыхания, так и в органах пищеварения, а также суставах.
При патогистологическим исследовании у больных поросят обнаруживали диффузный гнойный менингит и инфильтрацию мозговых оболочек нейтрофилами. Наиболее частыми макроскопическими поражениями центральной нервной системы были гиперемия сосудов мозговых оболочек и умеренное увеличение количества спинно-мозговой жидкости. При стрептококковой септицемии у поросят в патологической морфологии доминируют застойно-геморрагические явления, геморрагический гастроэнтерит, геморрагический лимфаденит, мелкие очаги некроза в печени , селезенке и др. органах. Отмечали также фибринозно-гнойный перикардит, геморрагический некротический миокардит, клапанный эндокардит.
Стрептококковый полиартрит ягнят
Возбудитель - стрептококк серогруппы С, серовариант S. Dysgalactiae agnellorum. Болезнь сопровождается опуханием суставов, нарушением опорной и двигательной функций конечностей и септицемией. Болеют 3..7-дневные ягнята, реже в возрасте до 30 дней. Основной источник возбудителя инфекции - больные и переболевшие маститом, эндометритом стрептококковой этиологии животные. Различают острое и хроническое течение болезни.
При остром течении болезни отмечают сильное угнетение, потерю аппетита, слабость, хромоту, утрату двигательной и опорной функций конечностей, сепсис и гибель в течение 3..10 сут.
Для хронического течения характерны хромота и опухание суставов, чаще всего запястных и заплюсневых. Ягнята часто лежат (не могут стоять). Болезнь продолжается 1…2 мес. При искусственном заражении 3..5-суточные ягнята заболевают в 100% случаев и погибают при остром течении через 2…5 дней.
При патологоанатомическом исследовании выявляют следующие изменения. Печень темно-вишневого цвета, ломкая. На эпикарде кровоизлияния. В запястном, плечевом суставах содержится 1…5 мл мутной жидкости серо-белого цвета. При хроническом течении болезни суставная сумка отечная, утолщенная, количество жидкости в пораженных суставах может достигать 100мл.
Стрептококковая пиемия жеребят («суставолом»)
Возбудитель - S.pyogenes equi. Болезнь характеризуется поражением пуповины и суставов, лихорадочным состоянием и образованием метастатических абсцессов в разных органах. Жеребята заражаются через пуповину при рождении или вскоре после него (через разорванные, но еще не закрывшиеся пупочные сосуды), чаще в случаях несоблюдения санитарно-гигиенических правил во время родов или послеродовом периоде (грязные пол и подстилка, обрывание и перевязка пуповины грязными руками, использование нестерильных инструментов).
Течение и клиническое проявление. Первые симптомы болезни проявляются у жеребят в возрасте от 1,5 до 4 нед. Характеризуются учащением дыхания, двигательными шумами и хрипами, а также кашлем, связанным с развитием пневмонии. Клинические признаки варьируются в зависимости от локализации и степени выраженности метастатических абсцессов. Смертность от осложнений достигает 10%. Могут развиться гортанная эмпиема, миокардит, пневмония. Осложнения возникают в 10…20% случаев. После вскрытия гнойных подчелюстных или заглоточных лимфатических узлов животные выздоравливают.
При остром течении болезни наиболее характерно утолщение пуповины, при сдавливании которой выделяются гной или гнилостная со зловонным запахом кровянистая жидкость. Жеребенок больше лежит, так как опухшие суставы болезненны и затрудняют движение.
Основной признак хронического заболевания - гнойное воспаление скакательных, коленных и запястных суставов. Иногда помимо суставов поражаются сухожилия мышц (сгибателей) конечностей. У некоторых больных возникает диарея, такие жеребята становятся вялыми, истощенными и отстают в росте. При появлении метастазов болезнь затягивается на недели, поражаются новые суставы, и вскоре такие животные погибают.
Патологоанатомическое исследование. Отмечают, что пуповина опухшая и затвердевшая, пупочные вены расширены и утолщены, во внутреннем кольце - абсцессы, тромбы, распавшиеся в виде серо-желтых или грязно-зеленых зловонных масс. При диссеминации возбудителя возникают абсцессы в разных органах (печени, селезенке, легких, передней камере глаза). При остром течении болезни помимо опухшей пуповины обнаруживают незначительные кровоизлияния под серозные оболочки.
Диагностика и дифференциальная диагностика. Для постановки диагноза на стрептококкоз необходимо учитывать эпизоотологические данные, клинические признаки, патологоанатомические изменения. Окончательный диагноз устанавливают лабораторными методами.
В лабораторию направляют кровь из сердца, печень, селезенку, головной мозг и трубчатую кость. При поражении дыхательной системы также должны быть исследованы кусочки легкого, взятые на границе здоровой и пораженной тканей, средостенные лимфатические узлы, при артритах - синовиальная жидкость. Трупы мелких животных направляют целиком. При обычной температуре срок доставки материала не должен превышать 2-3 часа. Патологический материал берт только от животных, для лечения которых не применяли антибиотики. Для пожизненной диагностики, кроме того, применяют посев из крови животных.
Лабораторная диагностика стрептококкоза включает: 1)микроскопию мазков-отпечатков из патматериала; 2) выделение культуры возбудителя на питательных средах с последующей идентификацией с применением стрептококковых групповых диагностических сывороток в серологических реакциях (преципитации, коагглютинации, латекс-агглютинации и др.); 3) определение патогенности.
В настоящее время выпускают различные коммерческие наборы диагностикумов для серотипирования патогенных стрептококков.
Мазки - отпечатки из патматериала окрашивают по Граму и Романовскому-Гримзе или Ольту. Идентификацию возбудителя проводят на основании морфологических, с тинкториальных, культуральных и гемолитических свойств. Патогенные свойства выделенных культур определяют на белых мышах.
Лабораторный диагноз на стрептококковую инфекцию считают установленным при получении одного из следующих показателей:
1) Выделение из патологического материала культуры стрептококков, патогенной для белых мышей;
2) Гибель зараженных суспензией патматериала лабораторных животных и выделение из органов культуры со свойствами, характерными для стрептококков, если даже в посевах из исходного материала культуры возбудителя не выделено.
При дифференциальной диагностике стрептококкозов не обходимо исключить эшерихиоз, сальмонеллез, пастереллез, анаэробную дизентерию, аденовирусную, респираторно-синцитиальную и хламедиозную инфекции.
Иммунитет, специфическая профилактика. После переболевания молодняка стрептококкозом формируется активный иммунитет продолжительностью до 1 года, но животные длительное время остаются бактерионосителями.
Для специфической профилактики стрептококкоза (диплококковой септицемии) телят, ягнят, поросят применяют: вакцину против энтерококковой инфекции телят, ягнят и поросят; вакцину против пастереллеза, паратифа и диплококковой септицемии поросят; вакцину депонированную против стрептококкоза свиней серогрупп С и D,а так же формолгидроокисьалюминевую вакцину против стрептококкоза крупного рогатого скота.
Для профилактики стрептококкоза жеребят применяют: убитую бетапропиолактоном ГОА-вакцину из S.equi или концентрированный очищенный экстракт М-протеина S.equi.
Получение вакцины
Для изготовления вакцины производственные штаммы диплококков выращивают в реакторах на элективной питательной среде (полужидкий ага и бульон Хоттингера) с последующей инактивацией культур формалином (0,4%). Используют типичные по культурально - морфологическим свойствам штаммы D.septicus, выделенные от телят, ягнят и поросят.
Полученная формолвакцина представляет собой желтоватого или коричневатого цвета опалесцирующую жидкость.От каждой серии вакцины госконтролер биофабрики берет по нескольку флаконов в начале, середине и в конце расфасовки и подвергает бактериологическому и биологическому контролю, после чего делает заключение о годности выпускаемого препарата.
Для проверки вакцины на стерильность берут пять образцов и проводят высевы во флаконы, содержащие по 50 мл МПБ и бульон Хоттингера, во флаконы с 50 мл МППБ под вазелиновым маслом и в пробирку с полужидким агаром. Высевы помещают в термостат. Через 5 суток из каждого флакона делают пересевы на две пробирки с полужидким агаром, две пробирки МПА и МПБ и выдерживают в термостате 5 суток. При наличии роста бактерий вакцину бракуют.
Из флаконов, отобранных для проверки на стерильность, делают мазки, окрашивают их и микроскопируют. Вакцина не должна содержать посторонней микрофлоры.
Для испытания на безвредность вакцину вводят подкожно морским свинкам массой 200-300г в дозе 5 мл. В течение десяти суток все животные должны оставаться живыми.
На активность вакцину проверяют путем вакцинации 15 белых мышей массой до 16-20г. Перед инъекцией вакцину подогревают до температуры 37°С и вводят каждой мыши внутрибрюшинно подтитрованной смертельной дозой диплококка. Одновременно заражают пять контрольных мышей, имеющих кондиции, одинаковые с иммунизированными мышами. Для заражения используют вирулентный штамм диплококка, выращенный в течение 24-30 ч на полужидком агаре. Вакцину считают активной, если из 15 вакцинированных мышей после заражения погибает не более трех мышей при гибели всех контрольных.
Сыворотка против диплококковой септицемии телят, ягнят и поросят
Получение сыворотки. Лечебную сыворотку получают из крови воловпродуцентов, гипериммунизированных убитыми и живыми культурами септического диплококка телят, ягнят и поросят. Это прозрачная или слегка опалесцирующая жидкость желтоватого цвета, иногда с красноватым оттенком. Ее применяют с профилактической и лечебной целью при диплококковых инфекциях телят, ягнят и поросят.
В процессе гипериммунизации сыворотку проверяют на активность, а по окончании - на стерильность, безвредность и активность согласно техническим условиям.
Для повышения качества вакцины и лечебной сыворотки, выпускаемых биологической промышленностью, необходимо решить ряд актуальных вопросов, касающихся: получения типоспецифических агглютинирующих сывороток; изучения антигенного родства между производственными штаммами диплококков; подбора наиболее иммуногенных штаммов из числа полевых патогенных диплококковых культур, наиболее распространенных среди сельскохозяйственных животных различных зон страны, с введением их в состав производственных; разработки количественного метода контроля иммуногенных свойств формолвакцины и сыворотки; использования стандартных питательных сред и усовершенствования технологии производства этих биопрепаратов.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
В данной курсовой работе мною были собраны материалы на тему: «Возбудитель диплококковой инфекции молодняка». Кокковые инфекции широко распространены среди животных и человека. Патогенные микроорганизмы шаровидной формы, вызывают гнойно-воспалительные процессы в различных органах и тканях живого организма. Из кокковых инфекций среди животных чаще регистрируют диплококковую септицемию телят, ягнят и поросят. В работе подробно описано получение вакцины и сыворотки против возбудителя.
СПИСОК ИСПОЛЬЗУЕМОЙ ЛИТЕРАТУРЫ:
1. Ветеринарная микробиология и иммунология/Н.А.Радчук, Г.В.Дунаев, Н.М.Колычев и др.; под ред. Н.А.Радчука. - М.:Агропромиздат, 1991. - 383с., [4]л. Ил.: ил. - (Учебники и учеб. Пособия для студентов высш. учеб. заведений).
2. Микробиология: Учебное пособие.- СПб.: Издательство «Лань», 2011.-496с.- (Учебники для вузов. Специальная литература)
3. Микробиологическая диагностика бактериальных болезней животных: Справочник/Сост.:Д.И. Скородумов, В.В.Субботин, М.А.Сидоров, Т.С.Костенко. - М.: ИзографЪ, 2005. - 653с.
4. Вет.препараты: Справочник/Сост.: Ю.Ф.Борисович, Л.В.Кириллов; Под ред. Д.Ф.Осидзе - М.:Колос. 1981.- 448с., ил.
Размещено на Allbest.ru
...Подобные документы
Потребность телят и молодняка в энергии, питательных и биологически активных веществах. Оценка влияния кормления на здоровье телят, молодняка крупного рогатого скота и их последующую продуктивность. Режимы кормления телят в молозивный и молочный периоды.
курсовая работа [29,7 K], добавлен 08.01.2014Определение наличия колострального иммунитета у новорожденных телят. Применение гипериммунной сыворотки. Клинические признаки и патологоанатомические изменения при парагриппе-3. Методы диагностики и лечения больных животных, профилактика и меры борьбы.
дипломная работа [70,3 K], добавлен 10.04.2017Технология изготовления сальмонеллезных вакцин против паратифа поросят и телят. Производственные штаммы - контроль свойств, поддержание и хранение. Производственное выращивание культур сальмонелл. Контроль сухих живых вакцин против сальмонеллеза.
контрольная работа [92,4 K], добавлен 13.04.2012Определение парвовирусной инфекции телят. Историческая справка, степень опасности и ущерб. Возбудитель болезни, эпизоотология, патогенез, течение, клиническое проявление. Патологоанатомические признаки, диагностика, профилактика, лечение, меры борьбы.
реферат [12,7 K], добавлен 26.09.2009Группа инфекционных болезней, общих для животных и человека. Бруцеллез - инфекционная, хронически протекающая болезнь. Описание симптомов бруцеллеза у Гиппократа. Источник возбудителя инфекции - больные бруцеллезом животные, характеристика возбудителя.
курсовая работа [86,4 K], добавлен 13.12.2010Этиологическая роль вирусных респираторных инфекций в возникновении, развитии и распространении бронхопневмоний молодняка сельскохозяйственных животных. Ветеринарно-санитарное состояние хозяйства. Санитарно-гигиенические условия содержания телят.
курсовая работа [41,4 K], добавлен 21.01.2017Острая инфекционная болезнь молодняка сельскохозяйственных животных колибактериоз. Акт ветеринарно-санитарного и эпизоотологического обследования телятника. План мероприятий по ликвидации колибактериоза телят в хозяйстве, объяснительная записка к плану.
отчет по практике [19,7 K], добавлен 25.11.2011Нормы кормления телок и племенных бычков. План роста и потребность молодняка в основных элементах питания. Кормление телят в молочный период. Гигиена скармливания молочных кормов. Кормление молодняка крупного рогатого скота старше 6-месячного возраста.
реферат [32,0 K], добавлен 13.12.2011Критические иммунологические периоды при выращивании телят. Применение отваров для профилактики болезней и с целью повышения продуктивности. Интенсивное формирование молочной продуктивности у телок. Технология выращивания телят до 20-дневного возраста.
курсовая работа [53,8 K], добавлен 29.03.2014Изучение способов содержания телят и оценка влияния условий содержания на рост и развитие молодняка крупного рогатого скота. Оценка хозяйственно-финансового состояния СПК "им. Свердлова". Экономическая эффективность условий содержания телят в колхозе.
дипломная работа [237,0 K], добавлен 28.07.2013Развитие патологических процессов при диспепсии. Механизм развития расстройств пищеварения у молодняка. Симптомы диспепсии новорожденных животных. Патологоанатомические изменения. Дифференциальная диагностика заболевания. Проведение лечебных мероприятий.
реферат [24,4 K], добавлен 01.05.2011Нормированное кормление сельскохозяйственных животных. Кормление стельных сухостойных коров, дойных коров в фазу разгара и спада, быков-производителей, телят до шестимесячного возраста, молодняка в послемолочный период и откормочного молодняка.
курсовая работа [79,8 K], добавлен 17.04.2014Характеристика диспепсии телят. Клинические признаки, диагностика, лечение и меры борьбы с ней. Анализ состояния животноводства в хозяйстве. Характеристика его ветеринарно-санитарного состояния и мероприятий, проводимых по профилактике болезней молодняка.
курсовая работа [90,4 K], добавлен 20.01.2015Характеристика станции по борьбе с болезнями животных. Бруцеллез - хроническая инфекционная болезнь млекопитающих, возбудитель заболевания. План мероприятий против бруцеллеза, особенности его составления. Течение, симптомы, меры борьбы и профилактика.
курсовая работа [86,7 K], добавлен 12.04.2012Клинические проявления коронавирусной инфекции у телят, ее патогенез и степень опасности для жизни животного. Постановка диагноза и возможность лечения заболевания, специфическая профилактика хозяйств. Меры борьбы с инфекцией и опасность ее для человека.
реферат [13,0 K], добавлен 26.09.2009Выращивание телят в период от рождения до 2 месяцев. Кормление и содержание телят при ручной выпойке с использованием индивидуальных и групповых поилок и при выращивании под коровами-кормилицами. Организация летнего кормления и содержания телят.
курсовая работа [31,0 K], добавлен 05.10.2008Кормление и содержание новорожденных телят в профилактории. Требования к условиям выращивания молодняка крупного рогатого скота до шестимесячного возраста. Роль в рационе молока и растительных кормов. Правила использования заменителей цельного молока.
курсовая работа [711,4 K], добавлен 19.06.2011Протокол патологоанатомического вскрытия трупа животного. Этиология, патогенез и клиническая картина диспепсии у телят; диагностика заболевания. Направления патматериала на бактериологическое, гистологическое и химико-токсикологического исследования.
курсовая работа [36,3 K], добавлен 26.03.2014Возбудитель трихоцефалеза, эпидемиология, профилактика заболевания. Профилактика трихинеллеза - острого гельминтоза человека и млекопитающих. Телязиоз - инвазионное энзоотическое заболевание животных. Патогенное воздействие телязий на организм молодняка.
реферат [31,1 K], добавлен 13.01.2010Продуктивность кур-несушек, пораженных инфекционным бронхитом. Основные источники инфекции. Постановка биопробы, идентификация вируса и серологические исследования. Вакцинация, профилактика и меры борьбы. Патологоанатомические и гистологические изменения.
реферат [27,8 K], добавлен 25.05.2013