Риновирусная инфекция

Размещено на http://www.allbest.ru/

НИЖЕГОРОДСКАЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННАЯ АКАДЕМИЯ

Кафедра: «Кафедра зоотехнии и разведение сельскохозяйственных животных»

Практическая работа

по дисциплине

Зоогигиена

Выполнил: студентка группы 40-А

Рахимова Ю. Д.

Проверил: Шкалова И.П.

Нижний Новгород 2015

Введение

Риновирусная инфекция крупного рогатого скота (Bovine rhinovirus infection) Второе название заболевания РИНОВИРОЗ (Rinovirosis) -- это остро протекающее респираторное заболевание, сопровождающееся лихорадкой и поражением верхних дыхательных путей.

В литературе описано пять штаммов риновирусов крупного рогатого скота в перекрестной РН установлено 2 серотипа. Штамм RS-Зх, выделенный в Англии, SD-1 и 181/V, выделенные в ФРГ, и С-07, изолированный в США, относятся к 1-му серотипу, штамм ЕС-11 -- ко 2-му. В 1974 г. на острове Хоккайдо от телят с респираторным заболеванием выделено 5 штаммов риновируса в культуре клеток почки телят. Они оказались антигенно родственны шт. С-07 и RS-3. Кроме того, от крупного рогатого скота выделены штаммы риновирусов (VC-78, VC-79, VC-81, VC-96). Риновирусы КРС обладают ГА способностью.

1. Историческая справка

Впервые вирусная этиология риновирусной инфекции была установлена И. Фостером (1914), однако возбудитель был выделен Ч. Эндрюсом лишь в 1953 г. Позднее Д. Тирелл (1960) выделил целую группу вирусов с аналогичным цитопатическим эффектом, получившую название риновирусов.

Риновирусная инфекция крупного рогатого скота была сначала изолирована в Германии Богель и Бохмом в 1962. Дальнейшая изоляция главным образом связанных вирусов следовала в Германии (Mейр и др., 1965; Вицигман и Шифер, 1966), Соединенные Штаты (Мохэнти и Лилли, 1968), Англия (Язь и Дарбишир, 1969), Япония (Симидзу и др., 1973; Кироги и др., 1974), Италия (Персеши, 1974) и Судан (Еиса, 1980). В настоящее время известно пять штаммов риновирусов крупного рогатого скота. Два выделены в ФРГ, два -- в Англии и один -- в США. Сообщилось о выделении риновирусов КРС на фермах в Италии.

2. Характеристика возбудителя

2.1. Морфология и химический состав

По структуре и химическому составу риновирусы крупного рогатого скота неотличимы от риновирусов человека.

Возбудителя болезни (Bovine rhinovirus) относят к семейству Picornaviridae роду Rhinoviras.

Picornaviridae (от исп. pico - малый, rna - РНК) -это семейство безоболочечных вирусов, содержащих однонитевую плюс РНК. Семейство насчитывает более 230 представителей и состоит из 9 родов: Enteroviras (111 серотипов), Rhinoviras (105 серотипов), Aphtovirus (7 серотипов), Hepatoviras (2 серотипа: 1 человека, 1 обезьяны), Cardiovirus (2 серотипа); Parechovirus, Erbovirus, Kobuvirus - названия новых родов.

Диаметр вируса около 30 нм. Капсид состоит из 12 пятиугольников (пентамеров), каждый из которых, в свою очередь, состоит из 5 белковых субъединиц - протомеров.

Протомеры образованы 4 вирусными полипептидами: VP1, VP2, VP3, VP4. Белки VP1, VP2 и VP3 располагаются на поверхности вириона, а VP4 - внутри вирусной частицы

2.2. Морфология вируса

Bovine rhinovirus - это РНК-геномный вирус, размером 20-40 нм. Капсид состоит из 32 капсомеров, симметрия его икосаэдрическая. Внешняя оболочка у вируса отсутствует.

2.3. Устойчивость вируса.

Риновирусы крупного рогатого скота термолабильны, сохраняют инфекционность при 4 °С, 22 °С и 56 °С соответственно 40, 20 дней и 30 мин. За 8 часов инкубации при 37 °С инфекционность вируса снижается на 90 %.

Одномолярный раствор MgCl2 действует на вирусы неодинаково. Одни штаммы (RS-Зх) раствор не стабилизирует, другие (С-07) стабилизируют. Риновирусы наиболее стабильны при рН 7,0, быстро инактивируются при рН менее 5,0 и более 10,5.Чувствительны к трипсину -- при 15-минутной обработке в дозе 0,25 мг/мл инфекционность шт. RS-Зх снижается на 95 %. Инфекционность вируса снижается и при часовом воздействии на него 1 %-го раствора додецильсульфата натрия.

Антигенная структуравируса не изучена.

2.4. Антигенная активность

У животных-реконвалесцентов риновирусы вызывают образование ВНА в титрах от 1:2 до 1:100 против 100 ТЦД50, которые регулярно выявляются после экспериментальной инфекции на 14-й день позже. Около 48 % КРС в штате Мериленд США имеют ВНА к шт. С-07, выделенному от клинически здорового животного. Гипериммунную сыворотку к риновирусам удается получить только на курах.

возбудитель риновирусный инфекция патогенность

3. Локализация вируса, вирусемия, вирусоносительство и вирусовыделение

В естественных условиях непатогенные штаммы вируса можно выделить из носовой полости клинически здоровых животных. Изолировать вирус из трахеи, бронхов, лимфоузлов и легких не удавалось. При экспериментальной инфекции патогенным шт. ЕС-11 его удавалось реизолировать из легких, трахеи, миндалин и носовых раковин на 4--6-й день после заражения.

Экспериментальная инфекция шт. RS-Зх не удавалась. Однако у всех зараженных телят на 14-й день в сыворотке крови были обнаружены ВНА. В опытах заражения (интратрахеально) 6--8-недельных телят шт. С-07 наблюдали слабовыраженные признаки респираторного расстройства: эмфизему, слабую интерстициальную пневмонию и эозинофильный экссудат, содержащий обломки клеток. Из носовых выделений зараженных животных реизолирован тот же штамм. Очаги воспаления часто были очень мелкие. Некоторые изменения были в лимфоузлах. У телят, зараженных интраназально, вирус был выделен из носового секрета, а у зараженных в трахею вирус не выделялся. При заражении интраназально шт. ЕС-11 телят-гнотобионтов 1-, 3-и 10-дневного возраста наблюдалось клинически выраженное острое респираторное заболевание.

4. Культивирование

Риновирусы КРС довольно трудно культивируются в монослойных культурах. Для их выделения лучше использовать культуры трахеи и носовых раковин. Эти вирусы хорошо растут при 33 С ° во вращающемся барабане. На 4-й день вирус образует бляшки. В качестве ростовой среды применяют сыворотку эмбрионов КРС, так как при использовании сыворотки взрослых животных титр вируса снижается даже после 5-кратного отмывания культуры. В органных культурах титр риновирусов на 7--14-й день инкубации достигает 3--4 lg ТЦД50/0,1 мл. Риновирусы можно культивировать также в первичных клетках ПЭК, БТК и щитовидной железы. В первых пассажах ЦПД вируса, как правило, нет. Шт. ЕС-11 успешно пассировался в культуре клеток ПЭК, после восьми пассажей -- в органной культуре трахеи телят. Титр вируса не превышал 104ТЦД50/мл.

В первичных культурах ЦПИ развивались очень медленно (7--14-й день) и часто непостоянно. При наличии в среде 0,07 % NaHCО3 изменения появлялись быстрее. Риновирусы повреждают клетки органных культур трахеи и носовых раковин, поэтому их считают потенциально патогенными для КРС. Степень ЦПИ зависит от метода инкубации.

Особенности внутриклеточной репродукции не изучены. Бляшки, индуцированные шт. С-07, в первичной культуре клеток почек КРС четкие, диаметром 2--6 мм; шт. 181/V -- мелкие (1--4 мм) и SD-1 -- диаметром 1--2 мм, с нечеткими краями и неполным разрушением клеток в зоне бляшек.

5. Эпизоотологические особенности

5.1. Источники и пути передачи инфекции

Источником инфекции служат больные животные, передача инфекции происходит воздушно-капельным путём.

Вирус поражает только крупный рогатый скот. Резервуаром его являются больные животные или те, у которых болезнь протекает бессимптомно. Возникновение заболевания связано с действием стрессов. Часто поражается молодняк в сборных стадах после привоза и объединения животных в одном помещении. Вирус передается воздушно-капельным путем. Воротами для него являются верхние дыхательные пути.

5.2. Спектр патогенности в естественных условиях

Патогенность всех выделяемых риновирусов для крупного рогатого скота точно не доказана. Болеет только КРС. Вирулентность штаммов КРС различна. Патогенен только один шт. ЕС-11.

5.3. Течение и симптомы

Данная болезнь сопровождается:

- Лихорадкой;

-Снижением аппетита;

-Истечениями из носа;

-Учащением и затруднением дыхания;

-Кашлем;

-Депрессией;

6. Диагностика риновирусной инфекции

Основана на анализе клинико-эпизоотологических данных, выделении и идентификации вируса. Материалом для исследования являются смывы из носовой полости или слизистая оболочка носа и трахеи. Используют культуры клеток трахеи или ПЭК. Вирус идентифицируют в реакции нейтрализации или реакции подавления бляшек в культуре клеток. Болезнь диагностируют по нарастанию вируснейтрализующих антител в крови животных-реконвалесцентов.

Идентификация вируса в реакции нейтрализации:

Реакции нейтрализации основаны на способности специфических гипериммунных сывороток нейтрализовать инфекционное действие гомологичного вируса в культуре клеток, курином эмбрионе, лабораторных животных. Выбор восприимчивой системы определяется свойствами испытуемого вируса. В реакции нейтрализации один из компонентов (вирус или сыворотка) должны быть обязательно известным и применяться в постоянной дозе. Второй (исследуемый) компонент применяется в различных разведениях (титруется).

Постановка реакции нейтрализации в зависимости от цели осуществляется двумя вариантами. Применяют реакцию нейтрализации для выявления и определения титра специфических антител в сыворотках крови переболевших животных. В этом случае реакция нейтрализации ставится с постоянной дозой известного вируса и разными разведениями испытуемых сывороток.

В сыворотках крови вируснейтрализующие антитела накапливаются, как правило, в период реконвалесценции и могут сохраняться в течение многих месяцев и даже лет. Динамика накопления и исчезновения вируснейтрализующих антител определяется в значительной степени биологией вируса.

Компоненты реакций нейтрализации: 1) вирус известного вида (типа) для серологической диагностики заболевания или исследуемый вирус для идентификации; 2) сыворотка, специфическая для идентификации выделенного вируса, или исследуемая сыворотка для серологической диагностики.

Основной вклад в структуру острых респираторных вирусных инфекций вносят вирусы гриппа, парагриппа, респираторно-синцитиальный вирус, коронавирусы, аденовирусы, риновирусы и некоторые энтеровирусы. С точностью идентифицировать респираторные вирусные инфекции можно только при помощи лабораторных методов диагностики. Затруднения при дифференциальной лабораторной диагностике этих инфекций вынуждают вести статистический учет по сумме всех случаев. Выделение вируса в культуре клеток и реакция нейтрализации типоспецифическими сыворотками, считающиеся «золотым стандартом» диагностики, в то же время обладают рядом недостатков, включающих высокую трудоемкость и продолжительность теста. Широкое распространение имеют иммунохимические экспресс-методы выявления вирусных агентов в клинических образцах. Основными их преимуществами являются доступность и простота постановки. Однако, в ряде случаев, они бывают недостаточно информативны и неприменимы в отношении риновирусов и других респираторных вирусов, характеризующихся высоким антигенным разнообразием. В настоящее время для выявления и идентификации респираторных вирусов широко используют молекулярные методы, специфичность которых основана на уникальности нуклеотидных последовательностей вирусных геномов.

7. Профилактика и меры борьбы с инфекцией

У переболевших животных обнаруживают вируснейтрализующие антитела, но в низких титрах. Многие исследователи склонны считать, что при этой болезни важную защитную роль играет локальный клеточный иммунитет слизистой оболочки верхних дыхательных путей и меньшую - уровень гуморальных антител. Средства специфической профилактики и терапии при риновирусной инфекции не разработаны. Проводят общие ветеринарно-санитарные мероприятия, а при появлении болезни животных изолируют и применяют симптоматическое лечение. Одновременно проводят тщательную дезинфекцию мест нахождения животных, применяя общепринятые дезсредства.

Список литературы

1. Вирусные болезни животных: практическое пособие/ Сюрин В.Н., Самуйленко А.Я., Соловьёв Б.В., Фомина Н.В.- Изд-во: ВНИТИБП, 2001. - 928 с.

2. Организация и экономика ветеринарного дела: учебное пособие / Аксенов А.М., Ятусевич А.И., Коновод В.В., Безбородкин Н.С., Русинович А.А.- Изд-во: Белый ветер, - 1324 с.

Размещено на Allbest.ur