Организация ветеринарного дела

Этиология. Возникает на почве травмирования и инфицирования слизистой при родовспоможении, оперативном отделении последа, выпадении матки. Микробы попадают в половые органы при осеменении, при вагинальном исследовании, с подстилки и предметов ухода. Предрасполагают к заболеванию матки ослабление резистентности организма, скудное неполноценное кормление, отсутствие моциона.

Клиническая картина. у больного животного при пальпации через прямую кишку устанавливают флюктуацию матки, болезненность, повышение местной температуры.

Лечение. Рекомендовали изоляцию от здоровых животных, улучшение условий содержания и кормления. Применяют ректальный массаж матки. Назначили фуразолидоновые свечи в количестве 4 штуки, внутримышечное введение антибиотиков- Тиломаг в дозе 10 мл.

Серозный мастит (Mastitis serosa).

Серозное воспаление вымени характеризуется гиперемией, большим выпотом серозного экссудата и эмиграцией лейкоцитов, преимущественно в междольковую ткань. Этот вид воспаления вымени развивается после травм, вследствие неправильного машинного доения, как осложнение застойного отёка, при проникновении микробов через кожные покровы, гематогенным или лимфогенным путём из половых органов, желудочно-кишечного тракта. Возбудителями серозного мастита могут быть стрептококки, стафилококки, кишечная палочка и другие. Острый мастит чаще развивается в первые дни послеродового периода при атонии матки с задержкой и разложением лохий, при воспалительных процессах эндометрия гнойного, фибринозного и дифтеритического характера.

Клинические признаки - пораженная четверть увеличена, горячая на ощупь и болезненная. Отек может локализоваться преимущественно в какой-либо одной четверти вымени. Иногда он захватывает правую или левую половину вымени и редко все вымя.

Клинически признаки имеют много общего с застойным отеком, но отличаются от последнего сильной краснотой кожи, повышением местной температуры и болезненностью. Консистенция вымени каменистая, плотная. Нередко увеличиваются надвымянные лимфатические узлы.

Молочная продуктивность снижается, но внешне качество молока в начале не изменяется. Позднее, когда в патологический процесс вовлекаются секреторные отделы железы, молоко становится жидким и содержит хлопья.

Прогноз- при разрешении патологического процесса воспаление исчезает через 7-10 сут. Возможен переход в хроническое течение.

Лечение- использовали легкий массаж снизу вверх не реже 2-3 раз в сутки по 15-20 мин. Внутрицистерольно мастицид, колимаст, диеномаст, внутримышечно тиломаг 10 мл., диоксидин 20 мл., повтор через 12 часов.

Таблица № 4

Сводная таблица по разделу Акушерско- гинекологических заболеваний

Заболевания	КРС	Лошади	Свиньи	Собаки	Кошки
Задержание последа	1
Неполное задержание последа	1
Субклинический мастит	5
Серозный мастит	2
Сужение соскового канала	1
Родовспоможение	1
Эндометрит	1
Итого: 8

Заключение

1. Во время производственной практики встречалась с акушерско-гинекологическими заболеваниями, научилась отделять послед, оказывать помощь при залеживании и т.д.

2. Принимала участие в лечебно-профилактических мероприятиях акушерско-гинекологических заболеваний.

5. Профилактическая и лечебная работа в области «Инфекционных заболеваний»

В основном противоэпизоотических мероприятий лежит профилактика (предупреждение) инфекционных болезней. Это- одна из главных задач каждого ветеринарного специалиста. Болезнь всегда легче предупредить, нежели бороться с нею. Есть и потенциально опасные болезни, которые могут распространиться при ослаблении внимания к проведению профилактических мероприятий, не допущены вспышки инфекционных заболеваний.

Противоэпизоотических мероприятия носят комплексный характер, то есть воздействуют на все звенья эпизоотической цепи.

В период производственной практики, я участвовала в проведении противоэпизоотических мероприятий, таких как аллергическое исследование на туберкулез, вакцинация телят против сальмонеллеза, вакцинации свиней против лептоспироза, паратуберкулез КРС; взятии крови от КРС для исследования на лейкоз, бруцеллез; вакцинации КРС против сибирской язвы и эмкара; вакцинации лошадей против сибирской язвы; против пастерелеза КРС, против трихофитии крс, вакцинация собак против чумы и бешенства.

Трихофития (Стригущий лишай).

- инфекционная болезнь животных и человека, характеризующаяся у животных появлением на коже участков с обломанными волосами, покрытых корками и чешуйками.

Возбудитель. Грибы рода Trichophyton.

Эпизоотические данные. Болеют животные всех видов. Наиболее восприимчив молодняк. Источник инфекции - больные и переболевшие животные. Факторы передачи - инфицированные помещения, инвентарь. Заражение животных происходит путем прямого и непрямого контакта. Регистрируется в любое время года, но чаще в осенне-зимний период. Этому способствует снижение резистентности организма животных, различные нарушения в содержании и кормлении.

Клиническая картина. Поражения кожи в виде шелушащихся круглых безволосых или как бы с коротко остриженным волосом пятен; пятна сливаются, образуя обширные поражения. У КРС пятна обычно покрыты корками, похожими на абсест, толщиной иногда до 1 см. в последующем они отпадают и остаются облысевшие места. Первичные очаги чаще возникают вокруг глаз, на носу, ушах; распространяются на кожу головы, шеи, конечностей.

Лечение. Обжиганием с 5% йодом. Лечебная доза ЛТФ-130 по5мл

Профилактика. Вакцинация нарождающегося поголовья: КРС- вакциной ЛТФ-130 (иммунитет наступает через месяц и сохраняется практически пожизненно).вакцинирована: 76 голов (телята).

Вакцинация крупного рогатого скота против лептоспироза -

Применяли вакцину поливалентную «ВГНКИ» против лептоспироза животных серогрупп: Помона, Тарассови, гриппотифоза, Сейро. «Для животных». Серия 05, контроль 15, от 05.2009 до 05.2010. Вакцину вводили внутримышечно в дозе: до 6 мес. - 4 мл; 1-2 года - 8 мл; взрослым - 10 мл. Всего вакцинировано 158 голов.

Вакцинация свиней против лептоспироза

Аллергическая диагностическая проба крупного рогатого скота на туберкулез - применяли туберкулин очищенный (ППД), «для млекопитающих», стандартный раствор. Серия 20, срок годности 12.2016. Внутрикожно вводили 0,2 мл туберкулина безыгольным инъектором в области средней трети шеи. Место введения выстригли и обработали 70% спиртом. Читку реакции производили через 72 часа, измеряли кутиметром. Положительно реагирующих нет. Всего исследовано- 236 голов.

Вакцинация собак против чумы плотоядных - применяли «Мультикан-6», серия №2, годна до 08.2016. Вводили внутримышечно в дозе 2 мл крупным породам. Место введения обработали 70% спиртом. Всего вакцинирована 26 голов.

Вакцинация кошек и собак против бешенства - применяли вакцину « Мультикан-8», серия №1, дата выпуска 01.16, годна до 07. 16. Вводили внутримышечно в дозе 2 мл. место введения обработали 70% спиртом.. Всего вакцинирована 26 голов.

Взятие крови у крупного рогатого скота на бруцеллез и лейкоз - кровь брали с яремной вены. Пробирки наполняли до середины. Всего взято крови у КРС - 111, у телят текущего года рождения -49.

Вакцинация против пастереллеза крупного рогатого скота.

При этом использовали формолвакцину КРС и буйволов полужидкую гидроокисьалюминиевую. Производства ставропольской биофабрики. Серия:9 дата изготовления: 08.14г. годна 08.15г. в одном флаконе 20 условных доз. Метод введения внутримышечно дозе 5 мл. Вакцинирована 25 голов.

Таблица №5

Профилактика и лечение инфекционных болезней

Виды мероприятий	Крс	Телята	Свиньи	Кошки	собаки
Взятие крови на лейкоз и бруцеллез	111
вакцинации КРС против сибирской язвы	412
Вакцинация против эмкара
Аллергическое иссл на tbs	412
Вакцинация против чумы					25
Вакцинация против бешенства					26
Вакцинация против трихофитии	76
Вакцинация против пастерелез	25
Вакцинация против Лептоспироз	236		9
Вакцинация протв Сальмонеллез	148
Итого:1480

Заключение

В Жабыльском наслеге активно работают ветврачи, которые во время проводят противоэпизоотические мероприятия. Населенный пункт считается благополучным.

6. Профилактическая и лечебная работа в области «Инвазионных заболеваний»

Эпизоотологическое состояние инвазионных заболеваний животных стабилизоровалось, за счет проведения своевременных. Профилактических обработок.

В ветеринарном участке с. Нуораганах в основном благополучное село в улусе.

При прохождении практики я участвовала в массовых дегельминтизациях:

Обработка сифункулятоза КРС, дегельминтизация собак на гельминты и кокцидиоз, дегельминтизация свиней на гельминты, дегельминтизация кошек на гельминты и кокцидиоз. Брали фекалии на исследование гельминтозы, кокцидиозы- кошек, мрс, собак. У лошадей на гельминтозы, диктиокулезы и отправили в лаборатории.

Сифункулятоз (Вшивость)

Заболевание, вызываемые паразитированием на теле животных вшей отряда Siphunculata, вид Haematopinines suis.. Сплющенное в дорсовентральном направлении тело, мелкие бескрылые насекомые желтого или серо-коричневого цвета с темной полосой на каждом боку. С маленькой пятнистой головой, заканчивающийся ротовым аппаратом колюще-сосущего типа. Передвигаются медленно, на мощных конечностях имеется по одному коготку. Они слепы.

Весь жизненный цикл вшей проходит на теле животного. Они развиваются с неполным метаморфозом. Из яиц через 12-20 суток выводятся личинки. В течение 7-14 суток они трижды линяют и становятся половозрелыми. Через 1-7 суток по достижению половой зрелости самка приступает к откладке яиц.

Источники заболевания - больные животные.

Болезнь характеризуется зудом, дерматитами, выпадением и сваливанием шерсти, беспокойством и снижением продуктивности.

Лечение: телят опрыскивали раствором бутокс 1:4000 с интервалом 10 суток.

Таблица № 6

Профилактическая работа по паразитологии

Виды Мероприятий	Крс	Лошади	собаки	Кошки	Свиньи
Обр. сифункулятоза	102проф
Дегельминтизация на гельминты	2пробы	95проб 24проф	47проф 2 пробы	1проф	6 проб 4 проф
Дегельминтизация на кокцидиоз	2пробы		2 пробы
Диктиокаулез	75проф
Итого:253 профилактическая мероприятия 109 проб отправили в лаборатории

7. Работа по ветеринарно-санитарной экспертизе

Ветеринарно-санитарная экспертиза - это одна из отраслей, которая изучает методы санитарно- гигиенического труда исследования пищевых продуктов и технического сырья, определяет правила их ветеринарно-санитарной оценки. Основные объекты изучения ВСЭ: пищевые продукты и сырье, получаемое от убоя сельскохозяйственных животных, а также молочные продукты и молоко, яйца, растительные продукты.

Ветеринарная служба улуса в лице заведующих ветучастков, ветлечебниц, группы госветнадзора проводит осмотр и ветеринарно- санитарную экспертизу кроме местной продукции сельскохозяйственных животных.

Оценка продуктов животноводства осуществляется лабораторией ветеринарно - санитарной экспертизы, которая находится в улусном центре.

Ветеринарной службой надзора заполняются следующие документы:

· Форма 1 - ветеринарное свидетельство, выдается на живой груз;

· Форма 2 - свидетельство, выдается на продукты животного происхождения;

· Форма 3 - свидетельство, выдается на техническое сырье и корма;

· Форма 4 - ветеринарная справка выдается ветеринарным специалистом на все виды подконтрольных грузов, переводимых только на территории района (города).

При прохождении практики в Мегино- Кангаласской ветеринарно-испытательной лаборатории хорошо отработала методы исследования мяса, органолептические методы молока. Научилась работать с приборами, делали порядок отбора проб для бактериологического, микробиологического и химического исследования мяса.

Реакция на пероксидазу (бензидиновая проба)

Реактивы:

1. на 0,2% спиртовой раствор бензидина;

2. 1% раствор перекиси водорода.

Техника:

В пробирку наливают 2 мл фильтрата мясной вытяжки, добавляют 5 капель раствора бензидина и 2 капли 1% раствора перекиси водорода. Содержимое проб бирки взбалтываем 2-3 раза и реакцию учитываем сразу же или в течение 3 минут.

Учет реакции:

Вытяжка из свежего мяса здоровых животных сразу приобретает (в течение 1-2 минут) голубовато-синий цвет, переходящий в бурый (положительная реакция).

Вытяжка из несвежего мяса цвет не меняет или через несколько (более 3 минут) минут появляется голубовато-зеленый цвет, быстро переходящий в бурый (отрицательная реакция).

Определение содержания амино-амиачного азота

Реактивы:

1. 1% спиртовой раствор фенолфталеина.

2. 0,1 N раствор едкого натра.

3. продажный формалин (40%), нейтрализованный по фенолфталеину.

Техника:

В колбу вносят 10 мл фильтрата мясной вытяжки, добавляют 40 мл дистиллированной воды и 3 капли раствора фенолфталеина. Содержимое колбы титруют 0,1 N раствором едкого натра до слабо розового окрашивания. Затем добавляют 10 мл нейтрализованного формалина. После исчезновения розовой окраски индикатора, проводят повторное титрование децинормальным раствором едкого натра до слабо-розовой окраски.

Учет реакции:

Свежее мясо - содержимое аминоаммиачного азота в 10 мл допускается до 1,24 мг (мясо кроликов от 0,98-1,82 мг).

Реакция с сернокислой медью в бульоне

Реактивы:

5%-ный водный раствор сернокислой меди.

Техника:

20 г. фарша заливают по 60 мл. дистиллированной воды, перемешивают. Колбу ставят в кипящую водяную баню на 1 мин. Фильтруют через плотный слой ваты толщиной не менее 0,5 см. в пробирку, помещенную в стакан холодной водой. В пробирку наливают 2 мл. бульона и добавляют три капли 5%-ного раствора сернокислой меди. Пробирку встряхивают 2-3 раза и ставят в штатив. Через 5 минут отмечают результат реакции.

Учет реакции:

Свежее мясо - фильтрат бульона прозрачный;

Мясо сомнительной свежести - в фильтрате бульона образуются хлопья;

Несвежее мясо - в бульоне образуется осадок из хлопьев или желе.

Бактериологическое исследование

Одним из показателей, по которым судят о санитарном состоянии мяса и его доброкачественности, является степень микробного обсеменения. Наличие микробов в мясе предопределяет его сравнительно быструю порчу при хранении и, что самое главное - создает опасность возникновения у людей пищевых токсикоинфекций и токсикозов.

Для микробиологических исследований нами исследованы пробы мышечной ткани и колбасных изделий, на микробное число, на обнаружение энтеробактерий групп кишечной палочки, сальмонелл, патогенных стафилококков, протей и клостридий.

Отбор проб и бактериологическое исследование

Отобранные пробы мышечной ткани, освобождали от пленок и соединительной ткани и погружали в спирт на 3-5 минут, затем обжигали над пламенем горелки.

Из проб предварительно делали мазки отпечатки, окрашивали по Грамму и микроскопировали. Одновременно с исследованием мазков с соблюдением правил асептики производили посев каждой отдельной пробы материала на селективные и дифференциальные среды для выделения сальмонелл, E. Coli, клостридий.

Определение общего количества микробов. Набирают 1 мл 10³ разведения и заливают МПА на 72 часа. Производят подсчет количества колоний в чашке Петри и сверяют с нормативом.

Определение сальмонелл. Наличие бактерий из рода сальмонелл подверждали определением соответсвующих биохимических и свойств культур. При отсутствии подозрительных колоний при первичном прямом посеве на селенитовый бульон, делали высевы со сред обогащения на селективные среды (висмут сульфит агар). Сальмонеллез на среде ВСА выростает в виде черных круглых колоний, разьедающих среду насквозь.

Определение кишечной палочки. Сперва засевали на среду Кесслера, далее пересев на элективные среды (среду Эндо).

Из колоний, характерных для бактерий групп кишечных палочек, приготавливали мазки, окрашивали по Грамму и микроскопировали.

Определение анаэробных микробов. (Клостридии и протей)

Посев на среду Вильсон-Блэр. При наличии рости пересев на среду среду Китт-Тароцци, изучение выросших культур, микроскопию мазков из колоний (клостридии).

Посевы на агаре, с последующим отвивом отдельных подозрительных колоний в пробирки на аэробные среды. Для дальнейшего изучения, выделенные культуры анаэробов пересевали со среды Эндо на дифферинциальные среды: Гисса, Кристенцена, Клиглера, Симмонса, а также на МПА (протей).

Дифференциация патогенного протея проводится реакцией на индол.

Определение количества бактерий в молоке.

Редуктазная Проба. В пробирку наливают 20 мл молока и добавляют 1 мл раствора метилёнового синего, после чего еe плотно закрывают пробкой, перемешивают содержимое и помешают в водяную баню, термостат (редуктазник) при температуре 38-40 С, наблюдая за временем обесцвечивания метиленового синего через 20 мин, 2 ч, 5,5 ч.

При ускоренном способе определения редуктазной пробы в пробирку наливают метиленового синего 1 мл добавляют 9 мл дист. воды. Раствор готовят перед постановкой реакции, закрываем пробирки смешиваем, переворачиваем пробирки по обесцвечиванию, в водяной бане 37 градусов сельция 1/10 определяем класс молока.

Класс Молока	Продолжительность обесцвечивания	Количество бактерий в 1 мл молока млн.
IV очень плохое	40 минут	Более 20
III плохое	2,5	До 20
II удовлетворительное	3,5	До 4
I хорошее	Более 3,5	До 0,5

Вывод: Анализ молока производится для сдачи в молокозавод для дальнейшей переработки и реализации.

Определение кислотности молока. В колбу вместимостью 100 мл отмеривают 20 мл дистиллированной воды и 10 мл молока+ 3 фенолфталеина. Смесь перемешивают и титрируют раствором едкого натрия до появления слабо- розового окрашивания.

Кислотность молока в градусах тернера (Т) находят умнажением объема мл расствора едкого натрия затраченного на нейтрализацию кислот, содержащихся в определенном объеме продукта на 10.

Кислотность молока в норме 16= 21 С.

Определение рН мяса. 10 гр. Фарша + 100 мл дист. воды ставим на 30 минут. Затем берем 0,6 мл фильтрата + 0,1 мл паранитрофенола, сравниваем по цвету с пробирками Мила- Эмиса.

- мясо свежее

- сомнительной свежести

- не свежее мясо.



8. Работа по патологической анатомии

В Жабыльском ветеринарном участке проводятся вскрытия всех умерших животных. Вскрытие проводят подворно. После того, как было, произведено вскрытие павшего животного от какого-либо заболевания трупы сжигают.

Техника взятия патологического материала.

Для получения полноценных патологических препаратов большое значение имеет правильность взятия и фиксации патматериала. Кусочки для исследования необходимо брать из свежих трупов. Материал из полежавших трупов не является полноценным, а в ряде случаев совершенно непригоден для гистологического исследования в силу значительных изменений тканей.

Толщина кусочков для исследований не должна превышать 0,5-1 см. При взятии материала необходимо учитывать анатомическое строение органов. Так, кусочки из почки нужно брать с таким расчетом, чтобы попадали оба слоя, корковой и мозговой. Из органов имеющие однородное строение можно брать из любых мест.

Взятые кусочки по возможности нужно быстрее фиксировать. Промывать их в воде до фиксации не следует.

Фиксация преследует цель:

1. Закрепить прижизненные изменения, произошедшие в ткани

2. Предотвратить посмертные изменения

3. Подготовить ткань к дальнейшим методам обработки (приготовление к окрашиванию срезов). Количество фиксирующей жидкости должно превышать объем взятых кусочков в 10-15 раз независимо от того, чем фиксируется материал. Из наиболее распространенных, доступных и универсальных фиксажей следует указать на формалин. Применяют обычно 10-20 % раствор формалина (обычно 40%).

В зимнее время для пересылки профиксированного патматериала нужно использовать 10%, раствор формалина на 70% спирта.

Продолжительность фиксации в растворах формалина кусочков толщиной до 4,5 см при комнатной температуре 24°С - 48 часов.

В термостате при температуре 36-38°С кусочки фиксируются в течении 15-18 часов, а при ускоренном методе нужно нагревание фиксирующей жидкости вместе с кусочками примерно до 80-90°С, фиксация продолжается 5-8 минут, однако доводить жидкость до кипения не допускается, так как материал подвергается варке.

После фиксации кусочки промывают в течении нескольких минут в воде. Затем режут или подвергают заливке.

Хранить профиксированные кусочки рекомендуется 5% растворе формалина в темном месте, так как на свету выгорает формалиновый пигмент.

Формалин при длительном хранении приобретает кислую реакцию, что отрицательно сказывается на срезах. Нейтрализовать его можно при помощи измельченного мела.

Направление патологического материала.

Материал для исследования может быть переслан с наручным. Свежий материал для исследования пересылается в большом количестве жидкости, а предварительно профиксированные маленькие кусочки в небольшом количестве жидкости, например в пробирке.

Патологический материал для исследования необходимо направлять с сопроводительной. В которой указывается характер патологического материала, чем фиксирован, от кого он взят, на что проводить исследования, данные клинического исследования, если они имеются, данные патологоанатомического вскрытия (протокол).

И данные эпизоотического состояния хозяйства, района.

Не рекомендуется один и тот же патологический материал пересылать в несколько лабораторий для исследования.

Морфологические изменения характерны для процесса, могут оказаться только в одной части объекта, а в другой изменений может не быть, отсюда и результаты исследования будут различными.

Диагноз. В основном ставится комплексным методом:

- клинического исследования (осмотр, пальпация, перкуссия, аускультация и термометрия) с обязательным изучением условий содержания, кормления и обстоятельств возникновения и развития болезни;



Заключение

Практику прошла по программе и в назначенный срок. Во время практики поддержали ветеринарные специалисты и в лаборатории, которые постоянно давали ценные советы, контролировали.

Снижение потерь в животноводстве и увеличения продуктов животного происхождения во многим зависит от правильной постановки профилактической и лечебной работы. Лечебно- профилактические, противоэпизоотические, санитарные мероприятия проводятся по плану. Плановые лечебно профилактические работы выполнены 100%, противоэпизоотические и ветеринарно- санитарные мероприятия на 100%.

Успех ветеринарной работы, может быть, достигнут, если проводимые мероприятия строятся с учетом технологии производства и при своевременном выявлении или лечении больных животных. Лечебная эффективность ветеринарного пункта составляет 100%.

Для предупреждения возникновения болезни необходимо обращать внимание на состояния скотопомещений. Недостаточное освещенность в зимний период, плохая вентиляция, избыточная влажность, сквозняки, а также неполноценное кормление, снижают их устойчивость к различным заболеваниям.

Практическая работа в Жабыльском ветучастке интересная и многообразная, так как имеются все виды животных.

Хотелось бы, чтобы нашей профессии уделялось больше внимания, так как от качества нашей работы зависит не только здоровье животных, но и здоровье людей. В моей врачебной работе большую роль сыграли теоретические знания во время лекционных практических занятий на факультете ветеринарной медицины.



Список использованной литературы

1. Ветеринарно - санитарная экспертиза продуктов животноводства, Житенко П.В., Боронков М.Ф. Москва: Колос, 2000г.

2. Внутренние незаразные болезни сельскохозяйственных животных, Анохин Б.Н., Данилевский В.М. Москва: Агропромиздат, 1991г.

3. Вскрытие и патоморфологическая диагностика болезней животных, Жаров А.В., Иванов И.В. Москва: Колос 2000г.

4. Ветеринарная рецептура с основами терапии и профилактики, справочник - Абуладзе Н.И., Данилевский В.М. Москва, Агропромиздат, 1998-384с.

5. Ветеринарная паразитология, Шевцов А.А. Москва: Колос, 1965- 42с.

6. Ветеринарное акушерство и гинекология, Студенцов А.П., Шипилов В.С. и др. Москва: Агропромиздат, 1986. 48 с.

7. Организация и экономика ветеринарного дела, Никитин И.Н., Шайхамонов М.Х. Москва: Колос, 1996г.

8. Общая хирургия, Лебедев А.В., Лукьяновский В.А. Москва: Колос, 2000. 488 с.

9. Практикум по ветеринарно - санитарной экспертизе с основами технологии продуктов животноводства, Макаров В.А., Боровков М.Ф., Ермолаев А.П. и др. Москва: ВО Агропромиздат, 1995г.

10. Руководство по общей эпизоотологии, под редакцией Бокулова И.А., Третьякова А.Д. Москва: Колос, 1979. 424 с.

11. Справочник ветеринарного врача, под редакцией Гавриша В.Г., Калюжного И.И. Ростов-на-Дону: издательство «Феникс», 1990 г.

Размещено на Allbest.ru

...