Показатели жизнеспособности и роста куриных эмбрионов при воздействии красным светом

Размещено на http://www.allbest.ru

Размещено на http://www.allbest.ru

Установлено, что биологическое действие света зависит от проницаемости и поглощаемости лучистой энергии тканями живых систем. Чем меньше длина волны, тем в более поверхностных слоях они поглощаются. Исходя из этого , наименьшей способностью проникновения в глубину тканей обладают ультрафиолетовые лучи. С увеличением длины волны от видимых и далее по направлению к инфракрасным, последние проникают в более глубокие слои тканей.

В трудах некоторых учёных указывается на высокую терапевтическую эффективность красного света при лечении различных заболеваний; на улучшение роста и развития животных, оказывают стимулирующее действие на заживление ожогов, регенерацию костной ткани, регенеративно- восстановительные процессы в ране, восстановление мышечных волокон, слизистых оболочек, периферических нервов, длительно незаживающих ран и трофических язв, течение восстановительных процессов.

В связи с вышеизложенным по нашему мнению важное значение имеет поиск наиболее эффективных источников монохроматического когерентного поляризованного красного света и монохроматического красного света.

Из источников лазерного красного света наиболее изученным является применение света гелий-неонового лазера ЛГН-104 в птицеводстве, биологии и медицине.

Материал и методика исследований:

Работа выполнена на кафедре инфекционных и инвазионных болезней, экспериментальная часть работы выполнена в условиях бройлерной птицефабрики «Северо-Осетинская», где разводят птицу кросса «Смена».

Обоснование степени эффективности стимулирующего действия лазера «Матрикс», требует сравнение с известным биотическим средством - светом гелий - неонового лазера ЛГН- 104.

Облучение эмбрионов и суточных цыплят источниками когерентного и некогерентного красного света проводили в изготовленной экспериментальной установке (рис. 1).

Рис. 1

эмбрион лучистый когерентный биологический

Техническая характеристика установки.

Установка для обработки эмбрионов и цыплят состоит из металлического каркаса (1) на котором укреплены гелий-неоновый лазер ЛГН-104 (2) блок питания лазера ЛГН-104 (3), электродвигатель сканирующего устройства (4) сканирующего устройства (5) , газоразрядная лампа ДНЕСГ-500 (6), Инфракрасные лампы ИК-220 -250 (7), блок питания и регулирования лазера «Матрикс» (8) излучающее устройство лазера «Матрикс» (9) электродвигатель транспортирующего устройства (10), редуктор (11), подставки для лотков с эмбрионами и цыплятами со стороны пульта управления и принятия лотков из камеры подсветки после облучения (12), цепной транспортер (14) пульт управления (15) кассеты оптических фильтров (16).

Работа установки. Посредством пульта управления (15) подаётся напряжение в установку. Тумблером ТВ-1 и ТВ-2 включаются лазер ЛГН-104 (2) и лазер «Матрикс», ТВ-3- газоразрядные лампы ДНЕСГ-500 (6), ТВ-4 - блок питания лазера ЛГН-104, кнопкой подсветка лампы ИК-220-250 и через 5 минут установка готова к эксплуатации.

Для организации светообработки лотки с инкубационными яйцами (13) или суточными цыплятами (20), подаются на подставке (12) со стороны пульта управления (15), посредством электромагнитного пускателя (19) включается электродвигатель транспортирующего устройства (10) который через редуктор (11) приводит в движение цепной транспортер (14) и передвигаясь камера подсветки (17) облучается источниками красного света.

Для организации опытов, формировались 5 групп яиц - аналогов: одного возраста, одной массы, по 144 яиц, из которых:

I группа служила контролем,

2 группу облучали лазером «Матрикс» (л=630нм, плотность мощности оптического потока - 20 мВт),

3 - гелий-неоновым лазером ЛГН-104 (л=632нм. Плотность мощности 50 мВт/см2 .

4 - красным светом газоразрядной лампы ДНЕCГ-500 (л =630-650 нм., в максимуме поглощения 640 нм, средней дозой - 23,1 эрг) и 5 группу - лампой ИК-220-250 (л=730-1300нм, мощность 220-250Вт в оптимальных экспозициях по 3 минуты, определенные экспериментальным путем.

В такой же последовательности, в тех же экспозициях обрабатывали развивающихся эмбрионов в возрасте 6, 12, 18 дней и суточных цыплят.

По истечении 6 дней инкубирования яиц из каждой подопытной группы брали по 5 эмбрионов, овоскопировали их, отмечали границы воздушной камеры, размещали в лотки для яиц в горизонтальном положении, настиланные полиэтиленовой плёнкой, затем после отстаивания в течение 30 минут вскрывали остроконечными глазными ножницами, начиная с воздушной камеры таким образом, чтобы доступ к эмбриону был свободным. Пипеткой отсасывали надзародышевую жидкость, фильтровальной бумагой высушивали ткани вокруг зародыша, накладывали на зародышевый диск кольцо из фильтровальной бумаги, после чего надрезали желточную оболочку и изолировали зародыш в чашки Петри, вскрывали оболочки зародыша, извлекали его, прополаскивали в воде и размещали в бюксы с крышкой, взвешенные заранее, затем взвешивали, измеряли длину зародыша, подкладывая под бюксу линейку. Исследования проводили под лупой.

Оставшиеся эмбрионы облучали по той же схеме через 12 и 18 суток инкубации. Исследования морфологических показателей повторяли на 12 и 18-дневных эмбрионах и суточных цыплятах.

Результаты инкубации, исследования динамики роста эмбрионов исследовали общепринятыми методами.

Полученный цифровой материал подвергнут статистической обработке по Стьюденту (Е.К. Меркурьева, 1990) методом анализа с применением программы «Statistica - 6» фирмы Microsoft.

Результаты исследований.

Инкубационный отход из неоплодотворённых яиц по сравнению с 1 группой был ниже во 2 группе в 1,25 раз (Р< 0,05), в 3- в 1,29 раз (Р< 0,05), в 4 - 1,08 (Р>0,05) и в 5группе - в 1,15 раз (Р>0,05). По показателю выбраковки эмбрионов по причине кровяных колец, более существенны во 2 и 3 опытных группах, где различия составили 0,6 и 0,4 эмбриона соответственно, в то время как в 4 и 5 опытных группах аналогичные различия составили 0,2 и 0,3 эмбриона.

Аналогичные результаты зарегистрированы по показателю выбраковки инкубационных яиц по причине замерших эмбрионов (2,5-0,3).Обратная закономерность зарегистрирована по отходу цыплят при выводе, когда некондиционных, слабых цыплят и калек при одинаковых показателях в опытных группах (3,0-3,2 голов) в конкретной был меньше в контрольной на 0,2-0,4 бройлера.

Инкубационный отход из количества неоплодотворённых яиц, кровяных колец, замерших эмбрионов, задохликов, некондиционных, слабых цыплят и калек составил в контроле 27,9 шт., что по сравнению с группой эмбрионов, облученных лазером «Матрикс» больше на 5,6 единиц (Р< 0,05), лазером ЛГН-104 - на 6,3( Р< 0,01), лампой ДНЕСГ-500 - на 2,1 (Р>0,05) и лампой ИК- на 3,7 единиц.

Выводимость кондиционных цыплят составляет в контрольной группе 116,1 голов, что ниже группы воздействия лазером « Матрикс»- на 4,82% лазера ЛГН-104- на 5,43%, лампы ДНЕСГ-500- на 1,81% и лампы ИК- на 3,19%.

Результаты светообработки инкубационных яиц перед закладкой для 104 лампами ДНЕСГ-500 и ИК вносят существенные коррективы на эмбриональное развитие птицы, которые позволяют сделать следующие выводы:

- облучение инкубационных яиц и развивающихся эмбрионов с интервалом 6 дней монохроматическим когерентным красным светом лазеров « Матрикс» и ЛГН- 104, монохроматическим красным светом газоразрядной лампы ДНЕСГ- 500 в диапазоне испытуемого лазера и инфракрасной лампой ИК-220-250 и стимулируют жизнеспособность цыплят- бройлеров в натальном периоде онтогенеза;

- на показатель общего инкубационного отхода яиц более результативно отразилось применение света лазеров ЛГН- 104 и « Матрикс», когда по сравнению с контролем был ниже на 6,3 единиц и 5,6 единиц в то время как с группой облучения яиц лампой ДНЕСГ - 500- на 2,1 единицы (Р< 0,05) и с группой облучения лампой ИК 220-250 - на 3,7 единиц;

- применение света лазера «Матрикс» и лазера ЛГН- 104 более эффективно отразились на эмбриональной жизнеспособности птицы. Выводимость инкубационных яиц составила 84,5 и 85,0%, что более результативно, в которых различия составили по сравнению с контрольной группой 3, 9 - 4, 4% с группой воздействия светом лампы ДНЕСГ - 500- 3, 4 и 3, 6% (Р< 0,05); и лампы ИК 220-250- 1, 3 и 1, 8 соответственно.

Показатель длины 6-дневных эмбрионов составил 15, 2±0,84 мм в контрольной группе, а различия с опытными группами колебались в пределах 0,6-1,6 мм (P>0,05).

У 12-дневных эмбрионов более высокие параметры длины отмечены во 2, 3 группах, где различия с контрольной группой составили 7,59 и 6,96 %, у 18-дневныхэмбрионов показатель больше контрольной группы на 2,80 мм, во 2 группе на 3,00 мм в 3, на 2,2 в 4 и на 2,6 мм в 5 группе (P>0,05).

В показателях длины, наличия движений и пуха у эмбрионов 6-дневного возраста особых существенных изменений не было. У 12-дневных эмбрионов отмечено повышение роста. Если длина эмбриона в контроле составила 31,6 мм то во 2 группе она была выше на 5,92%; в 3-на 5,30 %; в 4-на 2,18 %; в 5- на 4,05 %.

При осмотре всех подопытных зародышей отмечено хорошее развитие, голова направлена в сторону воздушной камеры. Хорошо выражены кровеносные сосуды. Патологических изменений в морфологическом состоянии эмбрионов не установлено.

На 18 день исследований у всех подопытных групп отмечено движение без особых различий.

Динамика приростов живой массы цыплят-бройлеров при облучении эмбрионов и суточных цыплят красным светом вносит определенные коррективы в показателях роста эмбрионов.

Приросты живой массы цыплят-бройлеров при облучении красным светом.

В приростах живой массы 6-дневных эмбрионов существенных различий не отмечено в подопытных группах, и они составили по массе эмбрионов от 0,528 до 0,57 0г, по среднесуточным приростам от 0,088 до 0,095 г/сут.

Показатели приростов живой массы 12-дневных эмбрионов по сравнению с контролем были выше во 2 группе на 1,038 г, в 3- на 1,044 г, в 4- на 0,536 г и в 5 - на 0,822 г, по среднесуточным приростам показатели составили 0,087 г; 0,087 г; 0,045 г; и 0,069 г/сутки соответственно.

Аналогичные показатели прироста живой массы и среднесуточных приростов установлено и у 18-дневных эмбрионов с той разницей, что различия показателей были более существенны. По завершении эмбрионального периода развития живая масса суточных цыплят по сравнению с контролем была выше. Во 2 группе- на 1,86 г (P<0,05); в 3 - на 1,95 г (P<0,05); в 4 - на 1,04 г (P>0,05)и в 5 группе - на 1,35г .(P<0,05), cреднесуточные приросты живой массы соответственно - на 0,089 г; 0,093 г; 0,050 г и 0,065 г/сутки.

Результаты приростов живой массы и среднесуточных приростов бройлеров при облучении красным светом инкубационных яиц перед инкубацией , эмбрионов на 6, 12 и 18 День развития показали следующее:

- обработка эмбрионов красным светом при всех режимах стимулирует рост бройлеров в процессе натального онтогенеза и различия с контрольной группой носят динамичный характер;

- показатели приростов живой массы бройлеров были более высокие при воздействии светом лазеров ЛГН-104 и «Матрикс», когда к показателю контрольной группы на всех стадиях развития бройлеров были выше на 7,95 и 7,39% соответственно, в то время как в группе воздействия газоразрядной лампы ДНЕСГ-500 и лампы ИК-220-250 различия составили +3,03 и +2,08% у 6-дневных эмбрионов и в конце выращивания соответственно на 4,72 и 4,95% и на 2,64 и 3,43%.

- за эмбриональный период развития живая масса зародышей наиболее интенсивно возрастала в группах применения света лазеров ЛГН-104 и «Матрикс», чем в контрольной и в группах воздействия светом ламп ДНЕСГ-500 и ИК 220-250;

- в эмбриональном онтогенезе различия приростов живой массы контроля и опытных групп возрастало с кратностью лучистых воздействий.

Размещено на Allbest.ru