Применение электрохимически активированных растворов хлорида натрия для дезифекции объектов, контаминированных возбудителем гриппа

Размещено на http://www.allbest.ru/

Применение электрохимически активированных растворов хлорида натрия для дезифекции объектов, контаминированных возбудителем гриппа птиц

Ваннер Наталья Эдуардовна

Аннотации

В статье представлены результаты испытания эффективности электрохимически активированных растворов хлорида натрия для дезинфекции объектов, контаминированных высокопатогенным вирусом гриппа птиц

This article presents the results of testing the effectiveness of electrochemically-activated solutions of sodium chloride for disinfection of the facilities contaminated with highly pathogenic avian influenza

Ключевые слова: дезинфекция, электрохимически активированные растворы, вирус гриппа птиц

Key words: disinfection, electrochemically-activated solutions, avian influenza virus

Введение

Ветеринарная практика постоянно нуждается в высокоэффективных и экологически безопасных средствах защиты от инфекционных болезней. В настоящее время наметился определенный дефицит в таких средствах защиты, обусловленный значительным сокращением производства традиционных отечественных препаратов и средств их применения. Импортные препараты не могут в полной мере решить проблему дефицита в связи с их высокой стоимостью и не всегда удовлетворительной эффективностью. Создавшееся положение с успехом решается путем использования новейших разработок отечественных ученых в этом направлении. Одна из них - промышленное производство хлора, гипохлорита натрия, водорода, каустической соды при помощи электролиза концентрированных растворов хлорида натрия (поваренной соли). Процесс электрохимической активации жидкости (ЭХА) открыл в 1987 г. В.М. Бахир. Дальнейшие фундаментальные и прикладные исследования ЭХА жидкостей под руководством П.А. Кирпичникова, Б.И. Леонова и В.М. Бахира показали, что электрическая энергия неравновесного электрохимического воздействия может накапливаться и сохраняться в жидкости в форме внутренней потенциальной энергии, которая в период релаксации рационально реализуется в окислительно-восстановительных реакциях [1,2].

Изучение возможности использования ЭХА воды и растворов хлоридов в ветеринарной практике было начато в 1982-1983 гг. во ВНИИВСГЭ и ВНИТИП в тесном контакте с химиками и инженерами КХТИ и ВНИИМТ. На основании исследований реакторов различных типов специалисты ВНИИВСГЭ и ВНИИ медицинской техники установили, что наиболее полно требованиям ветеринарной науки и практики отвечают электрохимические проточные реакторы-модули ПЭМ-3 и созданные на их основе устройства грех типов: установки СТЭЛ для синтеза стерилизующих, дезинфицирующих и моющих растворов, установки "Аквахлор" для синтеза газообразной активированной смеси оксидантов и гипохлорита натрия и установки "Изумруд" для электрохимического кондиционирования и очистки питьевой воды. Установки СТЭЛ (производительностью до 1000 л/ч) позволяют получать растворы трех типов: щелочной католит (моющее средство), кислый анолит (дезинфицирующее средство) и нейтральный анолит моюще-дезинфицирующее средство). Опытами ряда исследователей показано, что анолиты с определенными физико-химическими показателями обеспечивают бактерицидный, спороцидный и вирулицидный эффект [3].

В связи с изложенным целью наших исследований было определить эффективность нейтрального анолита (АНК) и кислого анолита (АК) при дезинфекции объектов ветнадзора, контаминированных вирусом H5N1 гриппа А птиц. дезинфекция натрий птица вирус

Материалы и методы

Для проведения исследований использовали следующие материалы:

- вирус гриппа А птиц подтип H5N1 с биологической активностью 9,75 lg ЭИД 50/мл и 8,75 lg ЛД 50 для цыплят и гемагглютинирующей активностью 1:32. Вирус представляет собой вируссодержащую жидкость куриных эмбрионов (КЭ);

- куриные эмбрионы 8-дневного возраста;

- забуференный физиологический раствор с рН 7,2-7,4;

- эритроциты петуха, 1%-ная суспензия;

- соль поваренная пищевая, ГОСТ Р 51574 от 2000 г., 0,3%-ный раствор;

- вода водопроводная нехлорированная из артезианской скважины;

- спирт-ректификат;

- парафин;

- 5%-ный раствор йода;

- бактериальные среды: МПА, МПБ, среда Сабуро;

- нейтральный анолит (АНК) с рН 7,0 ± 0,5 и концентрацией активного хлора (к.а.х.) 200 и 500 мг/л, полученный из 0,3%-ного раствора пищевой поваренной соли на установке СТЭЛ-60-03;

- кислый анолит (АК) с рН 3,0-4,0 и концентрацией активного хлора 500 мг/л, полученный на установке СТЭЛ-1 OAK;

- щелочной католит с рН 11,0, полученный на установке УДЕЖ;

- пшеница;

- тест-объекты: элементы продукции птицеводства, корм, вода, эмитаторы поверхностей помещений и оборудования объектов ветеринарного надзора (скорлупа куриных яиц, перо и кожа кур, зерно, пластинки черного металла, керамика, дерево, керамическая плитка, кирпич).

Эффективность нейтрального анолита (АНК) в отношении обеззараживания объектов ветеринарного надзора, контаминированных вирусом гриппа А птиц, осуществляли следующим образом. На тест-объекты наносили суспензию вируса и обрабатывали их испытуемым дезинфектантом, а затем выделяли вирус на куриных эмбрионах через различные сроки контакта дезинфектанта с испытуемым объектом.

Для обнаружения вируса гриппа А кур в испытуемых пробах проводили реакцию гемагглютинации (РГА) с аллантоисной жидкостью зараженных куриных эмбрионов. В РГА использовали 1%-ную суспензию эритроцитов петуха.

Для оценки эффективности обеззараживающего действия нейтрального анолита (АНК) на вирус гриппа А птиц к 9 мл этого дезинфектанта с концентрацией активного хлора 200 и 500 мг/л добавляли по 1 мл вируссодержащей аллантоисной жидкости, суспензию тщательно перемешивали и выдерживали при комнатной температуре. Пробы для исследования отбирали через 30 и 60 мин. Чтобы обнаружить вирус гриппа, пробами заражали куриные эмбрионы в аллантоисную полость в дозе по 0,1 мл. Наличие вируса выявляли в реакции гемагглютинации (РГА) с эритроцитами петуха.

При оценке эффективности обеззараживающего действия нейтрального анолита (АНК) на вирус гриппа А птиц, которым контаминировали объекты ветеринарного надзора (дерево, металл, кирпичи, керамику, перо кур, скорлупу куриных яиц, кожу кур), на указанные объекты пипеткой наносили вирус гриппа А птиц из расчета 1 мл/5 см 2 площади и равномерно распределяли по поверхности тест-объекта. После нанесения вируса тест-объекты подсушивали на воздухе: кожу кур 1 ч; скорлупу куриных яиц 20 мин; куриное перо 20 мин; дерево, кирпич, металл и керамику 1,5 ч. По окончании подсушивания на тест-объекты наносили анолит в виде крупнокапельного аэрозоля из расчета 60 мл/м 2 площади и оставляли на контакт. Пробы отбирали через 10, 15, 20, 30, 60, 90, 120 и 180 мин. После окончания экспозиции тест-объекты помещали в чашки Петри со стерильным физиологическим раствором (20 мл) для элюирования вируса с поверхности тест-объектов. Полученными элюатами заражали куриные эмбрионы для установления присутствия вируса. Наличие гемагглютинации свидетельствовало о присутствии вируса в курином эмбрионе, а отсутствие гемагглютинации свидетельствовало об отсутствии соответствующего вируса.

Эффективность обеззараживания зерна проверяли, погружая его пробы в раствор анолита на глубину не менее 5 см от поверхности и при экспозиции от 30 мин до 3 ч. Для выявления вируса материалом проб заражали куриные эмбрионы и через 72 ч инкубации с аллантоисной жидкостью куриных эмбрионов ставили реакцию гемагглютинации.

Чтобы оценить эффективность обеззараживания вируса гриппа А птиц в воде, к 980 мл воды добавляли 20 мл анолита АНК с концентрацией активного хлора 500 мг/л, тщательно перемешивали и вносили 1 мл вируссодержащей аллантоисной жидкости. Все содержимое тщательно перемешивали и ставили на контакт при комнатной температуре. Пробы отбирали через 10 и 45 мин и через 2 ч. Материалами проб заражали куриные эмбрионы для обнаружения вируса гриппа; РГА ставили по общепринятой методике с использованием эритроцитов кур.

Во второй серии опытов с водой к 540 мл воды добавляли 60 мл вируссодержащей аллантоисной жидкости. Контаминированную воду распределяли в шесть проб по 100 мл в стерильные флаконы, а затем в пять флаконов внесли анолит АНК в количестве соответственно 5, 10, 20, 40 и 80 мл. Проба № 6 служила контролем вируса; экспозиция составила 1 ч.

Результаты исследований

Результаты исследований представлены в таблицах 1-6

Таблица 1 Эффективность электрохимически актировированных растворов хлорида натрия при обеззараживании вируса гриппа птиц (H5N1)

Примечание: числитель - число КЭ, в которых выявлен вирус; знаменатель - число зараженных КЭ.

Таблица 2

Эффективность дезинфекции эмитаторов поверхностей помещений и оборудования объектов ветеринарного надзора, контаминированных вирусом гриппа птиц (H5N1) с помощью АНК

Примечание: числитель - число КЭ, в которых выявлен вирус; знаменатель - число зараженных КЭ.

Таблица 3 Эффективность дезинфекции эмитаторов поверхностей объектов ветеринарного надзора, контаминированных вирусом гриппа птиц (H5N1), смешанного с пометом

Примечание: числитель - число КЭ, в которых выявлен вирус; знаменатель - число зараженных КЭ.

* Контроль вируса на всех исследуемых объектах соответствовал приведенным данным

Таблица 4

Эффективность дезинфекции элементов продукции птицеводства, контаминированных вирусом гриппа птиц (H5N1) с помощью АНК

Примечание: числитель - число КЭ, в которых выявлен вирус; знаменатель - число зараженных КЭ.

Таблица 5

Эффективность дезинфекции корма, контаминированного вирусом гриппа птиц (H5N1) с помощью АНК

Примечание: числитель - число КЭ, в которых выявлен вирус; знаменатель - число зараженных КЭ.

Таблица 6

Эффективность АНК при обеззараживании воды, контаминированной вирусом H5N1 гриппа А птиц

Примечание: числитель - число КЭ, в которых выявлен вирус; знаменатель - число зараженных КЭ.

Испытания показали, что нейтральный анолит (АНК) с концентрацией активного хлора 500 мг/л обезвреживает вирус гриппа А птиц в суспензии и на объектах ветеринарного надзора за 30 мин, а в концентрации 10 мг/л в воде убивает вирус гриппа за 45 мин.

В концентрациях от 0,25 до 0,4 мг/л в воде убивает вирус гриппа за 1 ч.

АНК с концентрацией активного хлора 200 и 500 мг/л обезвреживает вирус гриппа А птиц на объектах ветеринарного надзора, контаминированных птичьим пометом и вирусом, за 90 мин.

Кислый анолит (АК) с концентрацией активного хлора 500 мг/л обезвреживает вирус гриппа А птиц в суспензии через 10 мин.

Нейтральный анолит (АНК) безвреден для куриных эмбрионов в дозе 0,1 мл.

Католит обезвредил суспензию вируса гриппа птиц через 10 мин.

В контроле вирусы КЭ погибли, гемаглютинирующий титр вируса в аллантоисной жидкости погибших КЭ составил от 1:32 до 1:128, препараты не контаминированы грибной и бактериальной флорой.

Заключение

Результаты проведенных исследований свидетельствуют о высокой дезинфицирующей активности испытанных хлорсодержащих препаратов в отношении различных объектов ветеринарного надзора, контпминированных высоко патогенным вирусом гриппа А птиц (подтип H5N1).

Список литературы

1. Бахир В.М. Электрохимическая активация. М., ВНИИ мед. Техники, 1992.

2. Бахир В.М. Экономические предпосылки применения в лечебно-профилактических учреждениях электрохимических установок СТЭЛ для синтеза дезинфицирующих и стерилизующих растворов. М., Мед. Алфавит, 2003, № 11, с. 24-25.

3. Закомырдин А.А., Ваннер Н.Э,/Дезинфекция объектов, контаминированных возбудителем высоко патогенного гриппа птиц, электрохимически активированными растворами хлорида натрия// Научно-производственный журнал "Ветеринарный врач" 2012, №5 с. 7-10.

References

1. Bahir V.M. Jelektrohimicheskaja aktivacija. M., VNII med. Tehniki, 1992.

2. Bahir V.M. Jekonomicheskie predposylki primenenija v lechebno-profilakticheskih uchrezhdenijah jelektrohimicheskih ustanovok STJeL dlja sinteza dezinficirujushhih i sterilizujushhih rastvorov. M., Med. Alfavit, 2003, № 11, s. 24-25.

3. Zakomyrdin A.A., Vanner N. Je,/Dezinfekcija ob#ektov, kontaminirovannyh vozbuditelem vysoko patogennogo grippa ptic, jelektrohimicheski aktivirovannymi rastvorami hlorida natrija// Nauchno-proizvodstvennyj zhurnal "Veterinarnyj vrach" 2012, №5 s. 7-10.

Размещено на Allbest.ru