Оптимизация техники проведения полимеразной цепной реакции - полиморфизма длин рестрикционных фрагментов (ПЦР–ПДРФ) для генотипирования овец

Размещено на http://www.allbest.ru/

Донской государственный аграрный университет

УДК 636.4.082.12

06.00.00 Сельскохозяйственные науки

Оптимизация техники проведения ПЦР-ПДРФ для генотипирования овец

Широкова Надежда Васильевна, к. биол. н., научный сотрудник

Колосов Юрий Анатольевич, д.с.-х.н., профессор

Гетманцева Любовь Владимировна, к.с.-х.н., ст. преподаватель

Радюк Анастасия Владимировна, аспирант

Бакоев Некруз Фарходович, аспирант

Персиановский, Россия

Аннотация

Диагностика методом ПЦР-ПДРФ (полимеразная цепная реакция - полиморфизм длин рестрикционных фрагментов) является стандартным анализом точковых мутаций для диагностики аллельного полиморфизма генов-кандидатов, связанных с продуктивными качествами сельскохозяйственных животных. По длине фрагментов (ПДРФ) делают вывод об отсутствии или наличии точковой мутации, а также о гомозиготности или гетерозиготности особи. Целью нашей работы было оптимизация протоколов проведения ПЦР-ПДРФ-анализа для генотипирования овец по гену гормона роста (GH), гену дифференциального фактора роста-9 (GDF9) и гену кальпастатина (CAST)

Ключевые слова: ОВЦЫ, ДНК, ПЦР, ПДРФ, ГЕН GН, GDF9, CAST

Abstract

UDC 636.4.082.12

Agricultural sciences

Optimization techniques for pcr-rflp for genotyping sheep

Shirokova Nadegda Vasilevna, Cand.Biol.Sci. researcher

Kolosov Yuri Anatolyevich, Doctor of Agricultural Sciences, professor

Getmantseva Lyubov Vladimirovna, Cand.Agr.Sci., senior lecturer Raduk Anastasia Vladimirovna, postgraduate student

Bakoev Nekruz Farhadovich, graduate

Don State Agrarian University, Persianovski, Russia

Diagnosis by PCR-RFLP (polymerase chain reaction - polymorphism of the lengths of restriction fragments) is the standard analysis of point mutations for the diagnosis of allelic polymorphism of candidate genes related with productive qualities of farm animals. Along the length of the fragments (RFLP) make a conclusion about the absence or presence of the point mutation, and homozygosity or heterozygosity of the individual. The aim of our work was the optimization of protocols for conducting PCR-RFLP analysis for genotyping sheep for genes of the growth hormone gene differential growth factor and gene of calpastatin

Keywords: SHEEP, DNA, PCR, RFLP, GENE GN, GDF9, CAST

Введение

Полимеразная цепная реакция - экспериментальный метод молекулярной биологии, позволяющий добиться значительного увеличения малых концентраций определённых фрагментов нуклеиновой кислоты (ДНК) в биологическом материале (пробе). Помимо амплификации (увеличения числа копий) ДНК, ПЦР позволяет производить множество других манипуляций с нуклеиновыми кислотами (введение мутаций, сращивание фрагментов ДНК) и широко используется в биологической и медицинской практике, например, для диагностики заболеваний (наследственных, инфекционных), для установления отцовства, для клонирования генов, выделения новых генов [12, 13, 14].

Метод ПЦР основан на многократном избирательном копировании определённого участка ДНК при помощи ферментов в искусственных условиях (in vitro). При этом происходит копирование только того участка, который удовлетворяет заданным условиям, и только в том случае, если он присутствует в исследуемом образце. В отличие от амплификации ДНК в живых организмах, с помощью ПЦР амплифицируются относительно короткие участки ДНК [7].

В обычном ПЦР-процессе длина копируемых ДНК-участков составляет не более 3000 пар оснований. С помощью смеси различных полимераз, с использованием добавок и при определённых условиях длина ПЦР-фрагмента может достигать 20-40 тысяч пар нуклеотидов. Это всё равно значительно меньше длины хромосомной ДНК эукариотической клетки. Например, геном человека состоит примерно из 3 млрд пар оснований [10,11].

Диагностика методом ПЦР-ПДРФ (полимеразная цепная реакция - полиморфизм длин рестрикционных фрагментов) является стандартным анализом точковых мутаций для диагностики аллельного полиморфизма генов-кандидатов, связанных с продуктивными качествами сельскохозяйственных животных. По длине фрагментов (ПДРФ) делают вывод об отсутствии или наличии точковой мутации, а также о гомозиготности или гетерозиготности особи [5, 8].

В настоящее время возрастает интерес к технологиям, основанным на использовании ДНК-маркеров, которые находят широкое применение в национальных селекционных программах ряда стран с развитым животноводством и оказывают значительное воздействие на улучшение состава туши, качество мяса и эффективность производства мяса [1, 2, 3].

В качестве ДНК-маркеров рассматриваются гены, аллельные варианты которых связаны с фенотипическим проявлением экономически важных признаков животных (воспроизводительные качества, вес, рост, выход мяса и т.д.) [4, 5, 6, 9].

На сегодняшний день, в качестве перспективных генов маркеров рассматривают ген кальпастатина отвечающий за мясную продуктивность овец (CAST), ген гормона роста (GН), ген дифференциального фактора роста (GDF9) отвечающий за воспроизводительные качества овец [3].

Целью нашей работы было оптимизация протоколов проведения ПЦР-ПДРФ-анализа для генотипирования овец по гену гормона роста GН, гену отвечающему за воспроизводительные качества GDF9 и гену отвечающему за мясную продуктивность CAST.

Материал и методика исследований

Для проведения молекулярно-генетических исследований у животных были отобраны образцы ткани с ушной раковины площадью 1 смІ. ДНК выделяли с применением набора реагентов DIAtom DNA Prep 100 (ООО «НПФ Генлаб»). Анализ проводили методом ПЦР-ПДРФ (полимеразной цепной реакции - полиморфизм длин рестрикционных фрагментов). ПЦР проводили на амплификаторе «Терцик» (Россия).

Условия ПЦР гена GDF9: первоначальная денатурация - 2 мин при 940С; денатурация 940С - 30с, отжиг 630С - 40с, элонгация 720С - 30 с (35 циклов), завершающая элонгация при 720С 4 мин. ПЦР-ПДРФ анализ фрагмента гена GDF9 длиной 462 н.п., проводили с использованием эндонуклеазы BstHHl (ООО «СибЭнзим-М»).

Условия ПЦР гена GН: предварительная денатурация при 95°С - 5 мин. и далее 33 цикла: 95°С - 45 с, 60°С - 45 с, 72°С - 45с; заключительный синтез при 72°С - 10 мин. Рестрикцию амплифицированного фрагмента проводили эндонуклеазой HaeIII.

Условия ПЦР гена CAST: предварительная денатурация при 95°С - 4 мин. и далее 35 циклов: 94°С - 45 с, 62°С - 45 с, 72°С - 45с; заключительный синтез при 72°С - 7 мин [15]. Рестрикцию амплифицированного фрагмента CAST длиной 622 bp проводили эндонуклеазой MspI.

Размер полученных рестрикционных фрагментов определяли методом электрофореза в агарозном геле с добавлением бромистого этидия.

Результаты исследований и их обсуждение

Для оценки качества работы известного протокола по генотипированию овец по гену дифференциального фактора роста (GDF9) нами были протестированы олигонуклеотидные праймеры:

5'- GAAGACTGGTATGGGGAAATG-3' и

5'- CCAATCTGCTCCTACACACCT-3'

по усовершенствованной нами технике ПЦР-ПДРФ. ПЦР-ПДРФ анализ фрагмента гена GDF9-G1 длиной 462 н.п., проводили с использованием эндонуклеазы BstHHl (ООО «СибЭнзим-М»).

Праймеры инициируют амплификацию фрагмента гена GDF9 длиной 462 н.п., а ПДРФ- BstHHl профиль идентифицирует его генотипы (рис.1).

Для оценки качества работы протокола по генотипированию овец по гену гормона роста GН, нами были протестированы олигонуклеотидные праймеры:

5'-GGAGGCAGGAAGGGATGAA-3' и

5'- GGAGGCAGGAAGGGATGAA -3.

В результате проведения молекулярно-генетических исследования у овец были определены аллельные варианты гена GН (рис.2) и установлены генотипы, представленные фрагментами: 277-, 202-, 110-, 100-, 94-, 68-, 49-, 22- , 8- и 4 н.п. генотип АА; 256-, 202-, 110-, 100-, 94-, 68-, 49-, 22-, 21-, 8- и 4н.п. генотип ВВ и 277-, 256-, 202-, 110-, 100-, 94-, 68-, 49-, 22- ,21-, 8- и 4 генотип АВ.

генотипирование овца маркер праймер

Размещено на http://www.allbest.ru/

Рис. 1. Электрофореграмма результата ПЦР-ПДРФ гена GDF9 в 2% агарозном геле

Обозначения: 10 - ДНК-маркеры 100 bp (СибЭнзим); 1 - генотип AG; 2,3,4 5,6,7,9 - генотип GG; 8 - генотип АG.

Рис.2. Электрофореграмма результата ПЦР-ПДРФ гена GН в 4% агарозном геле

Обозначения: 10 - ДНК-маркеры 100 bp (СибЭнзим); 1,3,8 - генотип AВ; 2,4,6,7,9- генотип АА; 5 - генотип ВВ.

Праймеры инициируют амплификацию фрагмента гена GН длиной 934 н.п., а ПДРФ-HaeIII профиль идентифицирует его генотипы (рис.3). Для оценки качества работы протокола по генотипированию овец по гену CAST нами были протестированы праймеры:

5ґ-TGGGGCCCAATGACGCCATCGATG-3ґ и

5ґ-GGTGGAGCAGCACTTCTGATCACC-3ґ.

Праймеры инициируют амплификацию фрагмента гена CAST овец длиной 622 н.п., а ПДРФ- MspI профиль идентифицирует его генотипы (рис.3).

Рис. 3. Электрофореграмма результатов ПЦР-ПДРФ анализа гена CAST по MspI у овец Обозначения: 1,2,3,6,7,8 - генотип ММ; 4,5- генотип MN; 9- генотип NN.

При наличии сайта рестрикции образуются два фрагмента длиной 336- и 286 bp, что соответствует аллелю М, при отсутствии сайта - длина фрагмента остается без изменения (622 bp).

Вывод

Проведение ПДРФ-анализа позволило идентифицировать генотипы и аллели генов GDF9, GН и CAST по соответствующим ПДРФ- BstHHl, HaeIII, MspI- профилям. Полученные результаты ПЦР-ПДРФ-анализа с праймерами являются удовлетворительными в плане воспроизводительности и идентификации генотипов генов GDF9, GН и CAST овец.

Список литературы

1. Колосов Ю.А., Широкова Н.В. Мясные качества чистопородных и помесных баранчиков разного происхождения // Овцы, козы, шерстное дело.- 2012.- №3.- С 44-46.

2. Колосов Ю.А., Широкова Н.В. Некоторые продуктивные качества молодняка помесных овец // Сборник научных трудов Ставропольского научно-исследовательского института животноводства и кормопроизводства. - 2012.- Т.2.- №1.- C. 53-56.

3. Колосов Ю.А., Засемчук И.В., Дегтярь А.С., Широкова Н.В. Методическое пособие к лабораторно-практическим занятиям по курсу «ОВЦЕВОДСТВО И КОЗОВОДСТВО»// Министерство сельского хозяйства Российской Федерации Департамент научно-технологической политики и образования Донской государственный агарный университет. п. Персиановский, 2011.

4.Колосов Ю.А., Засемчук И.В., Святогоров В.А. Использование генофонда ставропольской породы для совершенствования сальских овец//Сборник научных трудов Всероссийского научно-исследовательского института овцеводства и козоводства. 2012. Т. 2. № -1. С. 48-53.

5. Mihailov N.V., Getmantseva L.V., Bakoev S.U., Usatov A.V. Associations between PRLR/AluI gene polymorphism with reproductive, growth and meat traits in pigs. Cytology and Genetics. 2014. Т. 48. № 5. С. 323-326.

6. Леонова М.А., Гетманцева Л.В., Колосов А.Ю. Распределение частот аллелей и генотипов гена лейкемия ингибирующего фактора у свиней различных пород // Современные проблемы науки и образования. 2015. № 2. С. 534.

7. Гетманцева Л.В. Влияние полиморфизма генов MC4R, IGF2 и POU1F1 на продуктивные качества свиней: Автореф. канд. с.-х. наук, п.Персиановский.- 2012.- 28 с.

8. Szkudlarek-Kowalczyk M., Wiњniewska E., Mroczkowski S. Polymorphisms of calpastatin gene in sheep. Journal of Central European Agriculture, 2011, 12(3), p.425-432 DOI: 10.5513/JCEA01/12.3.934

9. Sutiknoa, M. Yaminc , & C. Sumantric Association of Polymorphisms Calpastatin Gene with Body Weight of Local Sheep in Jonggol, Indonesia Media Peternakan, April 2011, hlm. 1-6 DOI: 10.5398/medpet.2011.34.1.1

10. Saleha Y. M. Alakilli Analysis of Polymorphism of Caplstatin and Callipyge Genes in Saudi Sheep Breeds Using PCR-RFLP Technique Int. J. Pharm. Sci. Rev. Res., 30(1), January - February 2015; Article No. 60, Pages: 340-344

11. S. Georgieva, D. Hristova, I.Dimitrova, N. Stancheva, M. Bozhilova-Sakov Molecular analysis of ovine calpastatin (CAST)and myostatin (MSTN) genes in SyntheticPopulation Bulgarian Milk sheep using PCR-RFLP J. BioSci. Biotechnol. 2015, 4(1): 95-99.http://www.jbb.uni-plovdiv.bg

12. Onur YILMAZ1, Tamer SEZENLER2 , Nezih ATA1 , Yalзэn YAMAN2 , Эbrahim CEMAL1 , Orhan KARACA Polymorphism of the ovine calpastatin gene in some Turkish sheep breeds Turk J Vet Anim Sci (2014) 38: 354-357 doi:10.3906/vet-1401-13

13. Kolosov Yu, Getmantseva L, Shirockova N/ Sheep Breeding Resources in Rostov Region // World Applied Sciences Journal. 2013. Т. 23. № 10.С. 1322-1324.

14. Karagodina N., Y. Kolosov, A. Usatov, S. Bakoev, A. Kolosov, M. Leonova, N.Shirokova, A. Svyatogorova and L. Getmantseva, 2014. Influence of Various Bio-Stimulants on the Biochemical and Hematological Parameters in Porcine Blood Plasma. World Applied Sciences Journal, 30 (6): 723-726.

Размещено на Allbest.ru