Анализ использования лабораторных животных

Размещено на http://www.allbest.ru/

Введение

Лабораторные животные - это группа мелких видов, в основном млекопитающих животных, широко используемых в различных областях биологии, медицины и ветеринарии для проведения научных и других специальных исследований (особенно: в микробиологических, вирусологических, серологических, фармакологических, эпидемиологических и эпизоотологических и др.).

К лабораторным животным относятся: белые мыши (используется до 70% от всех млекопитающих лабораторных животных), кролики (до 20%), морские свинки (8%), белые крысы (2%), а также хомяки, кошки, собаки, птица и эмбрионы птиц (куры, голуби - 4,5%), реже другие животные, не являющиеся в общепринятом понятии лабораторными: обезьяны, амфибии, рептилии, мини-свиньи, бараны и лошади, если нет других чувствительных биологических моделей.

Применение лабораторных животных в целом в последние годы повсеместно снижается из-за их дороговизны и возросшего влияния движения в защиту животных, однако потребность в них по-прежнему остается высока.

Лабораторные животные используются в основном в следующих целях:

проведение научных исследований по разработке и испытанию новых лечебно-профилактических, биологических и химиотерапевтических препаратов;

контроль различных препаратов на безопасность применения (безвредность);

диагностические исследования (биопробы) при инфекционных болезнях, изоляция, идентификация и типизация их возбудителей;

учебно-демонстрационные цели.

1. Дерматофитозы

Дерматофитозы - группа поверхностных грибковых преимущественно хронических болезней многих видов животных, характеризующихся появлением на коже головы и тела округлых пятен, покрытых корками или лишенных волоса.У лабораторных животных регистрируют в зависимости от возбудителя две болезни - трихофитоз и микроспороз. Возбудителями этих болезней являются грибы-дерматофиты. Мицелий грибов не отличается устойчивостью. Споры же весьма устойчивы: в патологическом материале (кожа, волосы) при высушивании они сохраняются до двух лет, также длительно на холоде. Достаточно устойчивы к действию дезинфектантов: они погибают при воздействии сухого жара в 110° через 30 минут; 5%-ного сернокарболового раствора при 50° - через 30 минут, кипячении - за несколько минут.

Возбудители трихофитоза. Белые мыши и крысы, хомяки, морские свинки заражаются чаще возбудителем Trichophyton (Т) mentagrophytes; кролики - T. mentagrophytes или T. verrucosum.

Т. mentagrophytes представляют собой грибы, образующие мелкие споры размером 3-5 мкм, мицелий ветвящийся, микроконидии округлые или овальные диаметром 2-4 мкм, артроспоры отсутствуют, макроконидии булавовидные размером 5-10 Ч 30-50 мкм. Колонии культур на сусло-агаре или агаре Сабуро растут быстро: с 4-5 до 14-16 дн., белые, кремовые, темно-желтые, с порошистой или бархатистой поверхностью.

T. verrucosum образуют более крупные (до 8 мкм) споры, мицелий ветвистый, микроконидии овальные или грушевидные размером 1-3 Ч 2-8 мкм, артроспоры округлые, макроконидии удлиненные размером 3-8 Ч 20-50 мкм. Споры располагаются в основном на поверхности волоса, образуя у его основания характерный споровый чехол. Колонии на питательных средах, медленно растущие (зрелые появляются на 15-25 дн.) белого, серого цветов. Поверхность колоний кожистая, складчатая или бугристая; края ровные, паутинистые или лучистые.

Возбудители микроспороза. Белые мыши и крысы, морские свинки, хомяки и кролики восприимчивы в основном к Microsporum (М) canis, и M. gypseum. (морские свинки также - к M. fulvum и M. distortum).

М. сanis - образует мелкие споры (диаметром 2-3 мкм), мозаично располагающиеся на поверхности и внутри волоса. Мицелий гриба ровный, ветвящийся; микроконидии (1-3 Ч 1,5-5 мкм) единичные, овальные, грушевидные; макроконидии многочисленные, веретеновидные размером 10-15 Ч 50-85 мкм, состоящие из 4-12 клеток, двухконтурные. Колонии гриба на средах белые, сероватые, бежевые, с бархатистой поверхностью быстрорастущие на питательных средах для грибов.

M. gypseum имеет аналогичные споры; мицелий ровный, септированный; микроконидии грушевидные или удлиненные с расширенными концами (3-5 Ч 2,5-3,5 мкм); макроконидии толстые, веретенообразные или цилиндрические с 4-6 перегородками (25-60 Ч 10-20 мкм). Колонии быстрорастущие розовато-желтого цвета, плоские бархатистые или мучнистые.

Эпизоотологические данные. К заболеванию трихофитозом и микроспорозом восприимчивы все лабораторные животные, мышевидные грызуны, пушные звери, кошки, собаки. Молодые животные более восприимчивы. Источником возбудителя инфекции в виварии являются больные и переболевшие животные, факторами передачи - зараженные ими корма, подстилка, клетки и разные предметы. Основной путь заражения лабораторных животных - непосредственный контакт с больными животными, в том числе дикими грызунами, и с зараженными ими предметами. Для микроспороза характерна определенная осенняя сезонность. Болезнь опасна для человека.

Клинические признаки.

Трихофитоз. Инкубационный период 5-30 дней. У лабораторных животных поражения чаще всего обнаруживаются на коже головы (возле носа, глаз), ног, шеи, спины; могут быть и на других местах. На пораженных участках вначале наблюдается шелушение кожи и обламывание волос близко от поверхности кожи, вследствие чего образуются типичные пятна (алопеции). Затем на них появляются маленькие, быстро засыхающие пузырьки, покрывающиеся серовато-белыми сухими корками. Участки поражения постепенно увеличиваются, расширяясь к периферии. Болезнь протекает хронически, может длиться больше года. Общее состояние больных обычно не нарушается; при очень сильных поражениях животные худеют. У кроликов возможна сливная форма с поражением всего тела, выпадением шерсти, зудом, истощением.

Микроспороз. Инкубационный период 20-50 дней. Длительность болезни несколько недель. Клинические признаки у лабораторных животных сходны с проявлением трихофитоза, однако поражения в целом более поверхностные (доброкачественные), без гнойного воспаления кожных фолликулов, могут поражаться отдельные волосы.

Диагностика. При постановке диагноза учитывают характерные клинические признаки. От других сходных болезней основное отличие - ломкость волоса, характерный вид плешин с обломанными, как бы остриженными волосами, отсутствием язв эрозий, и пр. Для лабораторного подтверждения диагноза необходимо проведение микроскопического исследования: взятый с периферии пораженного участка соскоб кожи и корни волос расщепляют на предметном стекле, наносят 1-2 капли 25-30%-ного раствора едкого натрия или калия, подогревают, помещают в 50%-ный водный раствор глицерина, накрывают покровным стеклом и микроскопируют. Обнаружение особенностей мицелия грибов и характерно расположенных спор возбудителя подтверждает клинический диагноз. При необходимости проводят микологическое исследование (посевы на сусло-агар или среду Сабуро, выращивая культуры при температуре 25-28оС) и дифференцируют возбудителей по скорости роста и характеру колоний грибов. Для дифференциальной диагностики трихофитоза и микроспороза используют люминесцентный метод диагностики. При облучении в затемненном помещении животных или волос пораженных возбудителем микроспороза люминесцентной лампой - наблюдают характерное желто-зеленое свечение пораженных участков. При трихофитозе такое свечение отсутствует.

Меры профилактики и борьбы. Для предупреждения заболевания проводят общие мероприятия по недопущению заноса возбудителей инфекции. В неблагополучных питомниках и вивариях вводят ограничения, проводят общие ветеринарно-санитарные и противоэпизоотические мероприятия. В виварии (питомнике) проводят общий клинический осмотр животных, больных изолируют и уничтожают, целесообразно уничтожение всех лабораторных животных зараженных партий (клеток).

При проведении индивидуального или группового лечения наиболее эффективно местное применение противогрибковых мазей или эмульсий. Для общего лечения применяют гризеофульвин 2,5 мг/100 г массы тела в течение 2 недель или другие фунгицидные препараты (нитрофунгин, микосептин и др.). Для специфической иммунопрофилактики и терапии болезни у кроликов применяют вакцины «Ментавак», «Миковак», «Тримивак» и другие.

При уходе за больными животными, убое, вскрытии, снятии и первичной обработке их шкурок необходимо проводить мероприятия против рассеивания возбудителя инфекции и соблюдать меры личной профилактики. Для дезинфекции применяют: горячий 3-5%-ный раствор щелочи, 3-5%-ный формалин, 1-2%-ную салициловую кислоту в течение 30 мин; для металлических частей клеток - огонь паяльной лампы.

Кожные заболевания у морских свинок являются очень частой причиной обращения к ветеринару.

2. Алопеция (облысение)

Алопеция без зуда может быть генерализованной или проявляться только на отдельных участках тела. Такая алопеция может появиться у морских свинок любого возраста. Облысение участков тела может стать следствием стресса. Стрессовая ситуация часто может быть обусловлена тем, что вместе содержатся два самца. Кроме того, причиной может явиться содержание большого количества морских свинок на маленьком пространстве. Возможная терапия состоит в устранении стрессовой ситуации.

Другая причина алопеции поедание самими животными своей шерсти. Если животные еще не полностью облысели и их шкура выглядит объеденной, постановка диагноза не представляет сложностей. Из рассказа владельцев чаще всего выясняется, что животные получали мало сена или не получали его вовсе. Таким образом, содержание в пище грубых волокон оказывается недостаточным, что заставляет животных поедать собственную шерсть. Единственной необходимой терапией в таких случаях является скармливание животным достаточного количества сена.

Еще одна форма алопеции встречается исключительно у самок. Выпадение волос на обоих боках бывает вызвано кистой яичника. Терапия заключается в стерилизации пораженных животных.

3. Эктопаразиты

Власоеды и вши. Если при поражениях кожи наблюдается сильный зуд, необходимо обследовать кожу и шерсть животного на предмет обнаружения эктопаразитов. Для этого нужно воспользоваться лупой. Если причиной поражения являются вши, то в шерсти будут очень хорошо различимы «гниды» - яйца длиной 0,5 - 0,8 мм грушевидной формы, которые приклеиваются к шерсти секретом, выделяемым женскими особями. Сами же насекомые так крепко вцепляются в шерсть, что удалить их при помощи щетки невозможно.

У морских свинок встречаются также и власоеды, особенно часто Gyropus ovalis и Gliricola procelli. Эти власоеды имеют длину около 1 мм, живут в шерсти и являются очень подвижными. Они питаются чешуйками кожи, выделениями из желез, некоторые также сосут кровь. Их жизнедеятельность в верхних слоях кожи становится причиной сильного зуда. трихофитоз алопеция свинка власоед

Власоедов и вшей можно легко уничтожить с помощью контактных инсектицидов. Рекомендуется купание в 0,15%-ном растворе метрифоната или 0,5%-ном растворе бромоциклена. Это лечение должно производиться 2--3 раза с интервалами в 8 дней, чтобы предотвратить повторное заражение вылупившимися личинками. Одновременно с лечением животных необходимо промыть клетки препаратом или обработать специальным порошком или спреем.

Мышиная вошь (Polyplax serrata) и крысиная вошь (Ро1ур1ах spinrlosa) прикрепляют откладываемые яйца на шерстинках. Они питаются кровью животного-хозяина. Часто это приводит к аллергическому воспалению кожи с сильным зудом. Клещи могут быть переносчиками заразных болезней (гемобартонеллез).

Клещи. Чаще всего морские свинки бывают поражены клещами вида Hydrodiskoides или различными видами Sarcoptes. Иногда у морских свинок встречаются и другие виды клещей, однако сообщения ограничиваются, как правило, лишь единичными случаями.

Поражение клещами характеризуется сильным зудом, при сильном поражении в далеко зашедшей стадии могут наблюдаться уплотнение кожи, дерматит, образование складок на коже, сопровождающееся выпадением шерсти. Животные худеют, так как становятся очень беспокойными и отказываются принимать пищу. Нередко поражения клешами приводят к смерти. Сильный зуд вызывается активностью клещей в верхних слоях кожи. Если Chirodiskoides cati обитают на волосках у самой кожи, то клещей вида Sarcoptes и Notoedres cuniculi можно обнаружить только под кожей. Поэтому Chirodiskoides cati могут быть обнаружены с помощью полоски прозрачной липкой ленты, которую прижимают к коже, а затем наклеивают на предметное стекло и исследуют под микроскопом. Чтобы констатировать наличие клещей Sarcoptes или Notoedres cuniculi, необходимо сделать соскоб. Для этого нужно срезать с поверхности кожи маленький кусочек. Затем с пробы кожи скальпелем осторожно соскабливают слой за слоем. С лезвия скальпеля частички кожи помещают на предметное стекло и смешивают с несколькими каплями 10%-ного раствора едкого кали. Предметное стекло помещают в сырую среду (маленькую емкость, в которую кладут сырые полоски марли, чтобы достичь высокой влажности воздуха). Раствор едкого кали должен воздействовать на пробы кожи в течение 24 часов. После этого клещей можно увидеть на предметном стекле.

Терапия при поражении клещами состоит в купании животных в 0,5%-ном растворе бромоциклена. Процедуру необходимо повторить три раза с недельными перерывами. Шансы на выздоровление тем выше, чем раньше начато лечение. В поздней стадии поражение клещами часто не поддается лечению. Очень важно, чтобы лечению были подвергнуты все животные, а не только отдельные особи. При одновременном содержании кроликов и морских необходимо подвергнуть лечению также и кроликов, т.к. некоторые виды клещей, например Sarcoptes cuniculi поразить оба вида животных.

Блохи. Иногда у морских свинок можно обнаружить собачьих блох, в особенности, если в доме живет собака или кошка, которые являются источником заражения. Если у кошки или собаки обнаружены блохи, то морских свинок также необходимо подвергнуть лечению. Морские свинки могут быть поражены и человеческими блохами.

Живущие на открытом воздухе морские свинки, как кошки, собаки или человек, иногда могут быть поражены иксодовыми клещами. Лечение состоит в простом удалении клещей. После этого место укуса необходимо дезинфицировать.

Из 8 известных в Европе видов блох у кроликов часто встречается Spilopsyllus cuniculi. Блохи вызывают сильный зуд так питаются исключительно кровью животных, на которых паразитируют. Блохи не привязаны к определенному типу крови, они приспособились к определенному образу жизни хозяев. Так, например, кроличьи блохи развивают только в гнезде кролика, где у них достаточно времени (пока крольчиха выкармливает детенышей), чтобы отложить яйца и чтобы из них вылупились личинки. Блохи кролика разносят вирус миксоматоза. Борьба с блохами ведется при помощи купания в 0,15%-ном растворе метрифоната или 0,5%-ном растворе бромоциклена. Вместо лечения купанием или в добавление к нему зверей можно обрабатывать порошком из пульверизатора. Лечение нужно повторить 2-3 раза с интервалами в 8 дней, чтобы предотвратить повторное заражение вылупившимися личинками.

Необходимо подвергнуть лечению все поголовье кроликов, а также и других живущих в доме животных - морских свинок, собак, кошек.

Борьбе с блохами надо придавать большое значение, так как они переносят многие инфекционные заболевания (например, миксоматоз).

Личинки мух. В теплые летние месяцы у морских свинок, кроликов, которые содержатся на открытом воздухе, в маленьких ранках или на воспаленных в результате поноса участках кожи вокруг анального отверстия можно обнаружить личинок мух. Пораженные участки необходимо основательно промыть тепловатой водой и после этого дезинфицировать. На промытые участки нужно нанести пудру с антибиотиками или мазь на цинковой основе.

Клещи. Cheyletiella parasitivorax относятся к хищным клещам. Кроме кроликов они встречаются у кошек, зайцев и собак. Эти клещи охотятся на клещей других видов, которых они ловят своими похожими на когти ротовыми органами и убивают. Если клещей-жертв недостаточно, то Cheyletiella parasitivorax питаются частицами кожи животных, на которых они паразитируют.

Сильный зуд у кроликов вызывают также Psoroptes cuniculi, Notoedres cuniculi, Sarcoptes cuniculi и Demodex cuniculi. Животные становятся беспокойными, худеют и в конечном итоге отказываются принимать пищу. При сильном поражении могут возникнуть уплотнение кожи, дерматиты, начать выпадать волосы. Сильное поражение клещами может привести к смерти животного. Зуд вызывается перемещением клещей в верхнем слое кожи. Для установления диагноза необходимо сделать соскоб. Для этого с поверхности кожи срезают маленький кусочек. Потом скальпелем осторожно соскребают кожу слой за слоем, скальпелю частицы кожи стряхивают на предметное и смешивают с несколькими каплями раствора едкого кали. Предметное стекло помещают в сырую среду (высокую влажность воздуха можно создать в каком-нибудь сосуде, выложив его стенки смоченными в воде полосками марли или бинтом). В растворе едкого кали соскоб кожи выдерживается в течение 24 часов, после чего на предметном стекле под микроскопом можно увидеть клещей. Пораженных клещами животных купают в 0,15%-ном растворе метрифоната или 0,1%-ном растворе бромоциклена. Лечение нужно повторять 3 раза с недельными перерывами. Для поддерживающей терапии используют порошок. Шансы на выздоровление тем выше, чем раньше началось лечение. В поздней стадии поражение клещами в большинстве случаев не поддается лечению. При поражении клещами также необходимо подвергнуть лечению все поголовье кроликов При одновременном содержании кроликов и других животных например морских свинок, их тоже надо лечить.

Мыши и крысы являются животными-хозяевами для многих видов клещей. Назовем основные из них: Муоbia musculi, Ratfordia affinis, Zmyocoptis musculinus, Notoedres muris. Поставить диагноз можно только с помощью микроскопии. Соскоб кожи ничего не дает для верификации диагноза, так как большинство мышиных клещей живет на коже, а не в коже зверька. Клещи Demodex и Sarcoptes у мышей не встречаются. В терапевтических целях также можно использовать дихлофос (ДДВФ). Покрытые тонким слоем дихлофоса полоски можно разместить вне клетки. Из полосок будет выходить газ, смертельный для эктопаразитов.

Клещей можно успешно уничтожить, сделав животным 2 инъекции ивермектина, 200 мг/кг массы тела с промежутком в 1 неделю.

4. Язвенный пододерматит

У кроликов с особенно большим весом или у тех, которых держат на неподходящей подстилке -- проволочной сетке или жестком дереве, могут возникнуть изменения на плюсне. Причиной этих покрытых толстой коркой язв является некроз вследствие сдавливания. Возможна вторичная инфекция Staphylococcus aureus. При этом под коркой скапливается гной. Так как нагрузка пораженных конечностей причиняет боль, кролики становятся беспокойными, переступают с одной лапы на другую или увеличивают нагрузку на переднюю часть тела.

Лечение в основном заключается в изменении условий содержания животных. Их нужно держать на мягкой и сухой подстилке. Инфицированные раны обрабатывают антибиотиками. Повязки с мазью на основе цинка и рыбьего жира ускоряют выздоровление.

5. Мочевая гангрена и влажный дерматит

Если кроликов держат на сырой, испачканной мочой подстилке, у них может возникнуть сильное покраснение на коже живота и на слизистой оболочке анального и полового отверстий. На пораженных участках выпадают волосы, образуется коричневая корка. Причина этого постоянное раздражение мочой, в том числе разлагающейся. Животных необходимо тщательно очистить, после чего пораженные места обрабатывают мазью на основе цинка и рыбьего жира.

6. Дерматит, вызываемый недостатком биотина

Биотин, или витамин Н, синтезируется в организме кишечными бактериями. Если долго давать животному антибиотики, это может привести к разрушению микрофлоры кишечника, в том числе и бактерий, синтезирующих витамин Н. Это приводит к недостаточному обеспечению организма биотином, в результате чего возникает дерматит. Начинают выпадать волосы, кожа гиперемированная, уплотняется и зудит, на поврежденные участки кожи попадает бактериальная инфекция, возникают мокнущие и гноящиеся повреждения.

Помимо лечения пораженных участков кожи следует устранить и саму причину болезни. Должна быть заново восстановлена микрофлора кишечника. Для этого смешивают в химическом стакане кал здоровых мышей с небольшим количеством воды и перорально вводят суспензию больному зверьку с помощью одноразового шприца. Таким образом животное получает кишечные бактерии.

Список литературы

1. Петрухин И.В. Домашний ветеринар. М.: «Воскресенье», 1993 г.

2. Петер К. Бергхов. Мелкие домашние животные. Болезни и лечение. М.: «Аквариум», 1999 г.

3. Сидорчук А.А., Глушков А.А. Инфекционные болезни лабораторных животных. М.: МГАВМиБ, 2002.

Размещено на Allbest.ru