Гематологические показатели и воспроизводительная способность первотелок с задержанием последа
Разработка методов профилактики задержания последа у первотелок после завершения второй стадии родов. Применение антибиотических средств стимуляции спонтанного отделения плаценты. Выявление и лечение патологии, контроль состояния больных животных.
| Рубрика | Сельское, лесное хозяйство и землепользование |
| Вид | статья |
| Язык | русский |
| Дата добавления | 24.11.2017 |
| Размер файла | 37,4 K |
Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже
Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.
Размещено на http://allbest.ru
Гематологические показатели и воспроизводительная способность первотелок с задержанием последа
Д.С. Ходыкин
2010
Введение
Из всех осложнений родового акта у первотелок задержание последа наиболее широко распространено. Это заболевание является частой причиной развития воспалительных процессов в родовых путях, последующего снижения продуктивности и воспроизводительной способности и нередко приводит к преждевременной выбраковке животных.
В Республике Беларусь основным методом лечения коров с задержанием последа является оперативное (мануальное) отделение оболочек. Однако при таком методе лечения повреждаются ткани матки, происходит инфицирование их, и это способствует развитию тяжелой формы метрита или параметрита. Эти осложнения могут сопровождаться изменением общего состояния животных, нарушением его гомеостазиса.
В зарубежной практике чаще используются консервативные методы лечения больных животных. Они сводятся к применению нейротропных веществ, гормональных и других биологически активных лекарственных средств с целью стимуляции спонтанного отделения плаценты. При отсутствии эффекта последующее лечение животных осуществляется путем однократного или регулярного применения антибиотических средств, которые вводятся в матку для предотвращения развития микроорганизмов, разложения (гниения) плаценты и развития тяжелого воспалительного процесса. Для однократного применения используют препараты в форме антисептической жидкости, а при многократном применении вводят в матку препараты в форме таблеток, палочек, суппозиториев и т.д.
Цель работы - выяснить характер изменений гематологических показателей и определить уровень воспроизводительной способности первотелок с задержанием последа с учетом применяемого способа лечения.
Анализ источников
В зарубежной практике иногда после выявления заболевания лечение животного не предпринимается до тех пор, пока не проявятся признаки метрита [13, с. 297; 14, с. 414]. Хотя у ряда коров репродуктивная функция восстанавливается и без лечения, но такая практика не очень популярна из-за вероятности развития воспалительных процессов в половых органах и токсемии.
Оперативное отделение последа, независимо от того, в какое время оно проводится, считается потенциально опасным для животного [11, с. 74; 14, с. 413], так как повреждаются обширные участки матки, и это создает предпосылки для интенсивного инфицирования тканей.
Нередко ослабевает резистентность животного. И на фоне нарушения сократительной функции матки и задержки в ее полости лохий и разрушающихся тканей, возникают условия для быстрого размножения микроорганизмов, усиления их вирулентности и развития тяжелого воспалительного процесса. Срок присутствия микроорганизмов в матке увеличивается.
Поэтому при этой патологии наиболее популярным становится консервативное лечение.
Первым этапом его является стимулирование сократительной функции матки механическим воздействием на нее (массаж через прямую кишку, осторожное скручивание свисающей части последа и потягивание из стороны в сторону), электрическими стимулами или введением специфически действующих гормональных и других средств.
Ряд авторов для предупреждения задержания последа или стимулирования отделения его рекомендует коровам вводить внутримышечно простагландин Ф2а или синтетический аналог его с 30 ЕД окситоцина не позднее 2-3 ч после рождения плода, а также карбохолин 0,01% - 1,5 мл, прозерин 0,5% - 1,5 мл, ацеклидин - 3-5 мл, 1%-й раствор сферофезина бензоната - 4-10 мл, 1%-й раствор бревиколлина [3, с. 528-529; 12, с. 47-51].
Введение антибиотических веществ направлено на предотвращение развития в матке инфекции и воспалительного процесса и проявления признаков токсемии или септицемии. Рекомендовано два способа. Один способ заключается в ежедневном введении в матку болюсов (суппозиториев, палочек и т.д.), содержащих антибиотики, до отделения оболочек.
Другой заключается в однократном введении большого объема (3-4 л) раствора антибиотических веществ в матку через 24-36 ч после родов [10, с. 114]. Оба способа дают удовлетворительные результаты.
Это убедительно доказано и работами кафедры физиологии, биотехнологии и ветеринарии УО «Белорусская государственная сельскохозяйственная академия [1, с. 9 и 8, с. 6-11]. После отделения оболочек необходимость последующего лечения будет зависеть от отсутствия или проявления осложнений.
Все предлагаемые консервативные методы профилактики задержания последа после завершения второй стадии родов требуют определенных экономических затрат и не всегда гарантируют положительный исход.
Для прогнозирования проявления патологии или контроля состояния больных животных анализ крови является одним из наиболее распространенных клинико-лабораторных исследований в ветеринарной практике. Изучение показателей периферической крови составляет общепринятый компонент диагностического обследования и регулярного наблюдения за животными [6].
Кровь беременных животных претерпевает значительные изменения. Общее количество ее к концу беременности увеличивается на 20-25%. С увеличением сроков беременности повышается содержание эритроцитов, лейкоцитов, гемоглобина.
По данным А.А. Сысоева (1978), в течение 4 мес. стельности количество эритроцитов повышается с 5,64-5,77·1012/л до 6,00·1012/л. Число лейкоцитов в 1 мес. стельности составляет 7,37·109/л, во время родов достигает 8,57·109/л. первотелка плацента животное антибиотический
Увеличивается количество гемоглобина до 100 г/л, в начале беременности - 94 г/л. Отмечается распад эритроцитов, при этом освобождается железо, необходимое для бурного роста плода [5, с. 54].
Изменения содержания гемоглобина в крови в течение беременности отражают потребность матери и плода в гемоглобине и способность последнего к усвоению кислорода.
На первом этапе беременности, когда образуется плацентарный круг кровообращения и постоянно возрастают потребности зародыша в кислороде, содержание гемоглобина в материнской крови падает, т.к. он используется для построения гемоглобина плода. Это же происходит и в момент максимального роста плода (7-9-ый месяц стельности).
В середине беременности, когда существует хорошая плацентарная связь, а рост плода ограничен, а также в самом конце беременности, вследствие начала дегенеративных изменений в плаценте, может иметь место повышение уровня гемоглобина в крови. Увеличение же насыщенности эритроцитов гемоглобином необходимо для более эффективного переноса кислорода зародышу.
Снижение содержания гемоглобина и эритроцитов во время беременности может быть связано с гидремией и увеличением объема циркулирующей крови после установления плацентарного кровообращения [4; 9, с. 113-120].
Лейкоциты крови играют в организме защитную, трофическую и транспортную роль. Количество их в крови у первотелок составляет 4,5-12·109/л. Различные факторы внешней или внутренней среды могут привести как к лейкоцитозу, так и к лейкопении. По мнению ряда авторов, у стельных животных, особенно в конце стельности, наблюдается физиологический лейкоцитоз [6; 2, с. 56-58].
А.А. Сысоев (1978) отмечал, что по количеству лейкоцитов в крови можно судить об уровне защитных механизмов организма. В начале беременности количество лейкоцитов в периферической крови снижается, затем оно несколько повышается и достигает высокого уровня во время родов. Общее количество лейкоцитов в крови коров во время беременности находится в пределах 5,74-5,95·109/л. После родов количество лейкоцитов снижается [2, с. 56-58].
Методы исследования
Работа выполнена на кафедре физиологии, биотехнологии и ветеринарии УО «Белорусская государственная сельскохозяйственная академия» и РУП «Учхоз БГСХА».
По мере отелов и выявления задержания последа формировали две группы первотелок черно-пестрой и голштинской породы (по 26 животных).
Лечение первотелок 1-й группы проводили консервативным методом с применением экспериментального препарата - суппозиториев, в состав которых входили линкоспектин, тилазина тартрат, гентамицин сульфат и витамин В1. Начинали лечение с первого-второго дня после завершения второй стадии родов (чаще через 6-18 ч).
После подготовки животного суппозитории (в количестве 2-3 шт.) вводили в матку между эндометрием и хорионом. Повторяли введение 2-4 раза с промежутком 24-48 ч до отделения оболочек.
В ряде случаев животным дополнительно вводили окситоцин в дозе 50-70 ЕД. До и после введения суппозиториев наружные половые органы и свисающую часть последа обрабатывали дезинфицирующим раствором. Если в течение суток послед не отделялся самостоятельно, то делали массаж матки через прямую кишку, подтягивая ее за свисающую часть последа.
В случае отсутствия успеха и при массаже матки введение суппозиториев повторяли. После извлечения последа (или его спонтанного отделения) суппозитории опять закладывали в матку, а если руку уже невозможно было ввести в матку из-за сужения канала ее шейки, то свечи осторожно проталкивали через цервикальный канал в полость матки под контролем указательного пальца руки.
У животных второй группы проводили оперативное отделение плодных оболочек с последующим введением в полость матки фуразолидоновых палочек в количестве 3-4 шт. Отделение проводили через 6-24 ч с момента выведения плода (как правило, через 8-14 ч).
При проявлении клинических признаков эндометрита (спустя 8-15 дней после отела) лечение животных обеих групп продолжали путем внутриматочного введения жидких лекарственных форм.
Животным 1-й группы применяли комплекс антибиотических веществ, традиционно используемых в хозяйстве (n=15, группа 1а) или тилозинокар (n=11, группа 1б). Лечение животных 2-й группы продолжали путем применения комплекса антибиотических веществ.
Контроль состояния внутренних половых органов осуществляли периодически (в 1-5, 10-15, 20-25 и 30-35-ый дни после отела) путем ректальной пальпации до полного выздоровления животного и завершения инволюции. Диаметр шейки определяли, как описано Медведевым Г.Ф. [9, с. 56-58].
Для оценки физиологического состояния подопытных первотелок определяли содержание клеток крови (эритроцитов и тромбоцитов) и гемоглобина с помощью гематологического анализатора Medonic CA 620 (Швеция). Количество лейкоцитов определяли методом подсчета их в камере Горяева [4 и 6].
Лейкограмму определяли методом визуальной микроскопии сухих, фиксированных, окрашенных по Романовскому-Гимза мазков крови с дифференцированным подсчетом лейкоцитов и выражением лейкограммы как процентного отношения между отдельными видами лейкоцитов крови [4].
Кровь для исследования брали за 1-2 мес. до отела, затем за 7-4 дней до отела и в день отела, а в последующем - на 11-13, 24-27 и 40-45-ый дни после отела.
Математическая обработка данных проведена с использованием стандартных программ. Корреляционный анализ показателей крови сделан в целом по всем подопытным животным по двум периодам: до отела (первые 3 исследования) и после отела (последующие 3 исследования), а также в отдельности по двум группам и по каждому исследованию.
В работе приводятся наиболее значимые корреляционные связи между гематологическими показателями и между ними и показателями воспроизводительной способности животных, а также характер линейных изменений гематологических показателей по периодам.
Основная часть
Содержание эритроцитов и тромбоцитов и концентрация гемоглобина в крови подопытных животных показаны в табл. 1 и 2.
Количество эритроцитов на протяжении исследований варьировало от 5,9 до 7,0·1012/л. У животных 2-ой группы за 1-2 мес. до отела количество их было значительно меньше, чем у животных 1-ой группы (Р<0,05). Однако за 4-7 дней до отела различия сгладились и не были существенными. Отсутствовали различия между группами и в день отела, т.е. до начала лечения.
В это время содержание их у животных обеих групп было существенно меньше (6,4 и 6,2·1012/л), чем за 1-2 мес. до отела (6,9 и 6,5·1012/л; Р<0,05). Но наиболее низкие показатели отмечены на 11-13-ый день после отела (5,9-6,1·1012/л). В послеродовой период количество эритроцитов у животных 2-ой группы почти не изменилось, а у животных 1-ой группы несколько снизилось. В конце опыта различия между группами были очень незначительными.
Среднеклеточный объем эритроцитов выражает отношение объема эритроцитов к их числу в одном и том же объеме крови. Величина отношения может изменяться в течение жизни.
В нашем опыте при первом исследовании средний объем клеток был выше у животных второй группы (Р<0,01). Но за 4-7 дней до отела этот показатель у животных 1-ой группы значительно увеличился (Р<0,05). Поэтому различия между группами в это время и в день отела отсутствовали.
В послеродовой период явно выраженные изменения этого показателя наблюдались только у животных 1-ой группы. У них сначала наблюдалось увеличение показателя к 11-13-му дню, затем существенное снижение, особенно выраженное у животных 1а группы. В конце опыта различия между группами практически исчезли.
Ширина распределения эритроцитов, относительная (в %) и абсолютная, является количественной оценкой разброса эритроцитов по объему. Она наглядно в цифрах помогает выяснить степень анизоцитоза. Рассчитывается из кривой распределения эритроцитов. В нашем опыте относительная величина была довольно стабильной у всех подопытных животных. Лишь при первом исследовании значительно ниже она была у нетелей 2-ой группы (Р<0,05).
Абсолютный показатель, напротив, у них был выше (Р<0,05). Заметные изменения его наблюдались в течение первого месяца после отела и происходили в соответствии с изменениями среднеклеточного объема эритроцитов. На 40-45-ый день после отела различия между группами отсутствовали.
Таблица 1. Содержание эритроцитов и концентрация гемоглобина в крови подопытных животных.
|
Показатели |
n |
Период исследования крови |
||||||
|
За 1- 2 мес. до отела |
За 7-4 дней до отела |
В день отела |
11-13-й день после отела |
24-27-й день после отела |
40-45-й день после отела |
|||
|
Количество эритроцитов, 1012/л |
1 1а 1б 2 |
6,9 ± 0,1 7,0 ± 0,2 6,8 ± 0,2 6,5 ± 0,1 |
6,7 ± 0,1 6,8 ± 0,2 6,6 ± 0,2 6,4 ± 0,1 |
6,4 ± 0,2 6,4 ± 0,3 6,4 ± 0,3 6,2 ± 0,1 |
6,0 ±0,2 5,9 ± 0,1 6,1 ± 0,3 6,1 ± 0,1 |
6,1 ± 0,1 6,1 ± 0,1 6,0 ± 0,2 6,1 ± 0,1 |
6,1 ± 0,1 6,0 ± 0,2 6,1 ± 0,1 6,2 ± 0,1 |
|
|
Средний объем эритроцита, fl |
1 1а 1б 2 |
43,4 ± 0,6 43,3 ± 0,8 43,6 ± 0,8 45,8 ± 0,4 |
45,5 ± 0,6 46,2 ± 0,5 44,7 ± 1,1 45,2 ± 0,4 |
45,6 ± 0,9 46,4 ± 1,3 44,7 ± 0,9 45,6 ± 0,5 |
47,3 ± 0,6 47,0 ± 0,8 47,7 ± 0,9 45,4 ± 0,6 |
43,4 ± 0,4 42,7 ± 0,5 44,3 ± 0,6 44,7 ± 0,6 |
44,2 ± 0,6 43,4 ± 0,5 45,4 ± 1,2 44,2 ± 0,5 |
|
|
Ширина распределения эритроцитов, % |
1 1а 1б 2 |
19,8 ± 0,3 19,8 ± 0,3 19,8 ± 0,4 18,8 ± 0,2 |
19,1 ± 0,2 18,8 ± 0,2 19,5 ± 0,4 19,1 ± 0,2 |
19,5 ± 0,5 19,8 ± 0,7 19,2 ± 0,3 18,8 ± 0,2 |
18,8 ± 0,2 18,9 ± 0,3 18,8 ± 0,3 18,7 ± 0,2 |
19,3 ± 0,1 19,5 ± 0,2 19,1 ± 0,2 19,0 ± 0,2 |
19,1 ± 0,1 19,2 ± 0,2 19,0 ± 0,2 19,0 ± 0,1 |
|
|
Ширина распределения эритроцитов, абсолют. |
1 1а 1б 2 |
32,6 ± 0,5 32,4 ± 0,6 32,8 ± 0,6 34,0 ± 0,4 |
34,0 ± 0,5 34,4 ± 0,4 33,4 ± 0,8 33,7 ± 0,3 |
34,7 ± 1,1 35,8 ± 1,8 33,1 ± 0,7 33,7 ± 0,5 |
35,5 ± 0,5 35,3 ± 0,7 35,7 ± 0,8 33,5 ± 0,6 |
32,2 ± 0,4 31,7 ± 0,5 32,9 ± 0,5 33,3 ± 0,5 |
32,9 ± 0,5 32,1 ± 0,4 33,9 ± 1,1 32,4 ± 0,5 |
|
|
Гематокрит, % |
1 1а 1б 2 |
29,9 ± 0,5 30,1 ± 0,5 29,6 ± 0,9 28,9 ± 0,5 |
30,4 ± 0,7 31,5 ± 0,9 28,9 ± 0,9 29,2 ± 0,5 |
29,3 ± 1,2 29,8 ± 1,8 28,6 ± 1,1 28,5 ± 0,4 |
28,5 ± 0,8 27,9 ± 0,6 29,3 ± 1,8 27,7 ± 0,4 |
26,5 ± 0,6 26,2 ± 0,6 26,8 ± 1,0 27,6 ± 0,5 |
26,9 ± 0,6 26,1 ± 0,8 27,8 ± 0,9 28,0 ± 0,5 |
|
|
Концентрация гемоглобина, г/л |
1 1а 1б 2 |
106,0 ± 2,3 106,2 ± 2,1 105,7 ± 3,9 101,6 ± 1,7 |
111,2 ± 1,9 113,9 ± 2,8 107,7 ± 1,8 104,4 ± 1,6 |
106,6 ± 3,6 107,4 ± 5,4 105,5 ± 3,8 106,1 ± 1,7 |
102,0 ± 3,0 99,7 ± 2,0 105,2 ± 6,5 102,7 ± 1,7 |
97,4 ± 2,3 95,7 ± 2,6 99,9 ± 3,8 102,7 ± 1,4 |
97,6 ± 2,0 96,9 ± 3,0 98,6 ± 2,5 104,1 ± 1,6 |
|
|
Среднеклеточный гемоглобин, пг |
1 1а 1б 2 |
15,4 ± 0,2 15,3 ± 0,2 15,5 ± 0,3 16,2 ± 0,1 |
16,5 ± 0,2 16,7 ± 0,1 16,2 ± 0,4 16,1 ± 0,1 |
16,7 ± 0,3 16,8 ± 0,4 16,5 ± 0,3 16,6 ± 0,2 |
16,9 ± 0,2 16,8 ± 0,2 17,1 ± 0,3 16,8 ± 0,2 |
16,0 ± 0,2 15,6 ± 0,2 16,6 ± 0,3 16,8 ± 0,2 |
16,1 ± 0,2 16,1 ± 0,2 16,1 ± 0,4 16,5 ± 0,2 |
|
|
Среднеклеточная концентрация гемоглобина, г/л |
1 1а 1б 2 |
354,2 ± 2,4 353,3 ± 2,1 355,3 ± 4,2 351,4 ± 1,9 |
363,6 ± 2,6 362,7 ± 2,9 364,7 ± 4,4 352,1 ± 2,3 |
366,7 ± 3,2 364,0 ± 4,0 370,1 ± 4,8 364,7 ± 3,5 |
359,0 ± 2,5 358,3 ± 3,1 359,8 ± 4,0 367,8 ± 3,6 |
368,9 ± 3,6 365,7 ± 4,5 373,7 ± 5,1 375,1 ± 4,8 |
365,1 ± 3,3 371,5 ± 3,9 356,4 ± 4,4 376,5 ± 4,1 |
Таблица 2. Содержание тромбоцитов в крови подопытных животных
|
Показатели |
n |
Период исследования крови |
||||||
|
За 1-2 мес. до отела |
За 7-4 дней до отела |
В день отела |
11-13 день после отела |
24-27 день после отела |
40-45 день после отела |
|||
|
Количество тромбоцитов, 109/л |
1 1а 1б 2 |
254,5 ± 16,9 259,2 ± 20,2 248,3 ± 22,0 207,1 ± 12,6 |
228,9 ± 13,3 211,9 ± 11,8 250,5 ± 24,1 220,3 ± 12,2 |
217,2 ± 12,8 200,0 ± 15,3 239,2 ± 18,1 200,3 ± 14,6 |
238,7 ± 15,3 239,9 ± 18,2 237,0 ± 26,4 226,3 ± 15,5 |
269,7 ± 20,2 277,1 ± 25,5 258,6 ± 29,5 231,1 ± 23,2 |
245,9 ± 15,5 258,1 ± 20,7 229,3 ± 22,5 220,5 ± 16,8 |
|
|
Средний объем тромбоцитов, фл. |
1 1а 1б 2 |
6,8 ± 0,1 6,8 ± 0,2 6,7 ± 0,1 6,9 ± 0,1 |
6,7 ± 0,1 6,9 ± 0,1 6,5 ± 0,1 6,8 ± 0,1 |
6,9 ± 0,1 6,9 ± 0,1 7,0 ± 0,1 6,8 ± 0,1 |
6,9 ± 0,1 6,8 ± 0,1 7,1 ± 0,1 6,9 ± 0,1 |
7,0 ± 0,1 7,0 ± 0,03 7,0 ± 0,1 6,7 ± 0,1 |
6,8 ± 0,1 6,7 ± 0,1 6,9 ± 0,1 6,6 ± 0,1 |
|
|
Ширина распределения тромбоцитов, % |
1 1а 1б 2 |
9,1 ± 0,2 9,1 ± 0,2 9,0 ± 0,2 9,3 ± 0,1 |
9,0 ± 0,1 9,2 ± 0,1 8,7 ± 0,1 9,2 ± 0,1 |
9,3 ± 0,1 9,3 ± 0,1 9,4 ± 0,2 9,1 ± 0,1 |
9,3 ± 0,1 9,2 ± 0,1 9,5 ± 0,1 9,2 ± 0,1 |
9,4 ± 0,1 9,4 ± 0,1 9,4 ± 0,2 9,0 ± 0,1 |
9,2 ± 0,1 9,1 ± 0,2 9,3 ± 0,2 8,9 ± 0,1 |
|
|
Компактный объем тромбоцитов, % |
1 1а 1б 2 |
0,11 ± 0,01 0,11 ± 0,01 0,12 ± 0,02 0,11 ± 0,01 |
0,13 ± 0,01 0,13 ± 0,01 0,12 ± 0,02 0,12 ± 0,01 |
0,13 ± 0,01 0,12 ± 0,01 0,15 ± 0,02 0,10 ± 0,01 |
0,13 ± 0,01 0,12 ± 0,01 0,14 ± 0,02 0,12 ± 0,01 |
0,17 ± 0,02 0,19 ± 0,02 0,15 ± 0,02 0,13 ± 0,02 |
0,12 ± 0,01 0,11 ± 0,01 0,13 ± 0,02 0,10 ± 0,01 |
|
|
Большие тромбоциты, % |
1 1а 1б 2 |
11,5 ± 0,6 12,5 ± 0,4 10,6 ± 0,7 10,9 ± 0,4 |
10,5 ± 0,5 10,8 ± 0,7 9,9 ± 0,2 10,7 ± 0,3 |
10,4 ± 0,7 10,2 ± 0,9 10,6 ± 1,1 10,2 ± 0,3 |
11,3 ± 0,5 10,5 ± 0,6 12,3 ± 0,7 10,7 ± 0,4 |
11,1 ± 0,4 10,8 ± 0,4 11,7 ± 0,7 10,2 ± 0,2 |
10,9 ± 0,7 10,5 ± 0,5 11,4 ± 1,1 9,7 ± 0,2 |
Таблица 3. Содержание лейкоцитов и лейкограмма в крови подопытных животных
|
Показатели |
n |
Период исследования крови |
|||||||
|
За 1- 2 мес. до отела |
За 7-4 дней до отела |
В день отела |
11-13 день после отела |
24-27 день после отела |
40-45 день после отела |
||||
|
Количество лейкоцитов, 109/л |
1 1а 1б 2 |
7,8 ± 0,1 7,8 ± 0,1 7,9 ± 0,1 7,9 ± 0,1 |
8,2 ± 0,1 8,2 ± 0,1 8,2 ± 0,2 8,1 ± 0,1 |
8,8 ± 0,1 9,0 ± 0,1 8,6 ± 0,2 8,7 ± 0,2 |
8,3 ± 0,1 7,9 ± 0,1 8,8 ± 0,2 8,6 ± 0,2 |
7,7 ± 0,1 7,6 ± 0,1 7,9 ± 0,2 8,1 ± 0,1 |
7,4 ± 0,1 7,4 ± 0,1 7,4 ± 0,1 7,8 ± 0,1 |
||
|
Базофилы, % |
1 1а 1б 2 |
0,04 ± 0,03 0 0,09 ± 0,08 0,1 ± 0,05 |
0,04 ± 0,03 0,07 ± 0,06 0 0,04 ± 0,03 |
0,12 ± 0,06 0,07 ± 0,06 0,20 ± 0,1 0,10 ± 0,05 |
0,12 ±0,06 0,13 ± 0,09 0,09 ± 0,08 0,10 ± 0,05 |
0,15 ± 0,07 0,13 ± 0,09 0,20 ± 0,1 0,1 ± 0,05 |
0,04 ± 0,03 0 0,09 ± 0,08 0 |
||
|
Эозинофилы, % |
1 1а 1б 2 |
4,4 ± 0,2 4,3 ± 0,3 4,6 ± 0,3 4,0 ± 0,2 |
3,9 ± 0,2 3,9 ± 0,2 3,8 ± 0,3 3,8 ± 0,2 |
4,1± 0,3 3,7 ± 0,2 4,6 ± 0,5 3,9 ± 0,2 |
4,0 ± 0,2 4,1 ± 0,3 3,9 ± 0,3 4,1 ± 0,2 |
6,4 ± 0,4 6,5 ± 0,6 6,3 ± 0,4 7,3 ± 0,4 |
6,8 ± 0,4 6,6 ± 0,6 7,1 ± 0,4 8,3 ± 0,3 |
||
|
Нейтрофилы, % |
Миелоциты, % |
1 1а 1б 2 |
0,04 ± 0,03 0,07 ± 0,06 0 0,04 ± 0,03 |
0 0 0 0,04 ± 0,03 |
0,04 ± 0,03 0 0,09 ± 0,08 0,1 ± 0,05 |
0,04 ± 0,03 0,07 ± 0,06 0 0,04 ± 0,03 |
0 0 0 0,1 ± 0,05 |
0 0 0 0,04 ± 0,03 |
|
|
Юные, % |
1 1а 1б 2 |
0,4 ± 0,1 0,4 ± 0,2 0,4 ± 0,1 0,5 ± 0,2 |
0,3 ± 0,1 0,4 ± 0,2 0,3 ± 0,1 0,4 ± 0,1 |
0,3 ± 0,1 0,3 ± 0,1 0,3 ± 0,2 0,7 ± 0,2 |
0,3 ± 0,1 0,4 ± 0,2 0,2 ± 0,1 0,4 ± 0,1 |
0,15 ± 0,07 0,2 ± 0,1 0,09 ± 0,08 0,4 ± 0,1 |
0,12 ± 0,06 0,07 ± 0,06 0,2 ± 0,1 0,4 ± 0,2 |
||
|
Палочкоядерные, % |
1 1а 1б 2 |
4,1 ± 0,2 4,2 ± 0,2 4,0 ± 0,2 4,4 ± 0,2 |
4,5 ± 0,2 4,9 ± 0,3 4,0 ± 0,2 3,3 ± 0,2 |
5,2 ± 0,3 5,4 ± 0,4 4,8 ± 0,4 5,8 ± 0,3 |
3,8 ± 0,2 4,1 ± 0,2 3,4 ± 0,2 3,0 ± 0,1 |
3,6 ± 0,2 3,5 ± 0,3 3,6 ± 0,3 3,3 ± 0,2 |
3,4 ± 0,1 3,4 ± 0,2 3,4 ± 0,2 3,2 ± 0,2 |
||
|
Сегментоядерные, % |
1 1а 1б 2 |
27,9 ± 0,6 28,5 ± 0,7 27,2 ± 0,9 27,5 ± 0,9 |
33,6 ± 0,7 33,5 ± 0,8 33,6 ± 1,3 34,1 ± 0,8 |
34,8 ± 0,9 35,5 ± 0,8 34,0 ± 1,7 35,0 ± 0,8 |
28,2 ± 0,7 27,7 ± 0,9 28,8 ± 1,2 28,2 ± 0,7 |
24,5 ± 0,6 24,9 ± 0,9 23,9 ± 0,8 24,1 ± 0,8 |
23,7 ± 0,7 23,5 ± 0,7 23,9 ± 1,4 23,8 ± 0,7 |
||
|
Лимфоциты, % |
1 1а 1б 2 |
59,5 ± 0,6 59,1 ± 0,7 60,1 ± 1,1 59,5 ± 1,1 |
54,2 ± 0,8 53,7 ± 0,8 55,0 ± 1,4 54,8 ± 1,0 |
52,0 ± 1,0 51,7 ± 1,2 52,5 ± 1,7 50,9 ± 1,0 |
59,4 ± 0,8 59,3 ± 0,8 59,5 ± 1,6 60,0 ± 0,8 |
61,3 ± 0,7 60,8 ± 1,1 62,1 ± 0,6 61,0 ± 0,8 |
62,1 ± 0,7 62,4 ± 0,7 61,7 ± 1,4 60,1 ± 0,5 |
||
|
Моноциты, % |
1 1а 1б 2 |
3,5 ± 0,2 3,5 ± 0,2 3,6 ± 0,3 4,0 ± 0,2 |
3,4 ± 0,2 3,5 ± 0,2 3,3 ± 0,3 3,5 ± 0,2 |
3,4 ± 0,1 3,3 ± 0,2 3,5 ± 0,2 3,5 ± 0,2 |
4,2 ± 0,2 4,2 ± 0,3 4,1 ± 0,3 4,2 ± 0,2 |
3,9 ± 0,2 4,0 ± 0,3 3,8 ± 0,3 3,8 ± 0,2 |
3,8 ± 0,2 4,0 ± 0,2 3,6 ± 0,3 4,1 ± 0,2 |
Гематокрит - часть объема крови, приходящаяся на долю эритроцитов. Гематологический анализатор определяет гематокрит с точностью до 1% из-за невозможности полного удаления плазмы между клетками. Величина гематокрита у подопытных животных изменялась незначительно.
Содержание гемоглобина в крови нетелей в последние два месяца стельности и в день отела было выше, чем в послеродовой период. Максимальным оно было за 7-4 дней до отела. В это время у животных первой группы величина его была существенно больше, чем на 11-13, 24-27 и 40-45-й дни после отела (Р<0,01). Существенным было различие за 7-4 дней до отела и между группами: выше содержалось гемоглобина в крови у животных 1-ой группы (Р<0,01). В день отела различия между группами отсутствовали.
Повышение уровня гемоглобина в крови в самом конце беременности, очевидно, происходит вследствие начала дегенеративных изменений в плаценте. Среднее содержание гемоглобина в эритроците постепенно увеличивалось до 11-13-го дня послеродового периода у всех подопытных животных. Однако значения показателя варьировали в пределах 15,3-17,1 пг, что свидетельствует о не высоком содержании гемоглобина в нормальном по объему эритроците и, возможно, о слабой степени гипохромии, которая считается истинным показателем недостатка железа в организме.
Среднеклеточная концентрация гемоглобина в эритроците увеличивалась к моменту отела, а у животных 2-ой группы - к 40-45-му дню после отела. Различия между группами были существенными за 7-4 дней до отела (Р<0,01), на 11-13 и 40-45-й день после отела (Р<0,05). До родов ниже этот показатель был у животных 2-ой группы, а после отела - у животных 1-ой группы, что может быть связано с отрицательным воздействием антибиотических веществ, применяемых ими в первые дни после отела чаще, чем животными 2-ой группы.
Корреляционный анализ показал, что содержание эритроцитов и гемоглобина у подопытных животных в течение последних двух месяцев стельности существенно не изменялось, но среднеклеточный гемоглобин увеличивался (r= -0,27; P<0,01).
В этот период с увеличением количества эритроцитов средний объем их уменьшался (r= -0,39; P<0,01); уменьшалась и абсолютная ширина распределения эритроцитов (r= -0,32; P<0,01), а относительный показатель их увеличивался (r= 0,53; P<0,01). Увеличению эритроцитов сопутствовало увеличение гематокрита (r= 0,74; P<0,01), количества тромбоцитов (r= 0,27; P<0,01) и концентрации гемоглобина в крови (r= 0,73; P<0,01), но среднеклеточный гемоглобин уменьшался (r= -0,32; P<0,01).
Концентрация гемоглобина не зависела от среднего объема эритроцитов, но с объемом эритроцитов среднеклеточный гемоглобин коррелировал положительно (r= 0,75; P<0,01), а среднеклеточная концентрация гемоглобина отрицательно (r= -0,27; P<0,01).
В послеродовой период средний объем эритроцитов и гематокрит уменьшались (r= -0,24; P<0,01 и r= -0,15; P<0,05). Наблюдалось также снижение среднеклеточного гемоглобина (r= -0,17; P<0,05) и абсолютной ширины распределения эритроцитов (r= -0,22; P<0,01).
С увеличением числа эритроцитов относительная ширина их распределения, гематокрит и концентрация гемоглобина в крови увеличивались (r= 0,45, 0,76 и 0,79; P<0,01).
Средний объем эритроцитов проявлял прямую корреляционную связь с абсолютной шириной распределения эритроцитов, гематокритом, средним объемом тромбоцитов, шириной распределения тромбоцитов, процентом больших тромбоцитов, концентрацией гемоглобина в крови и среднеклеточным гемоглобином (r= 0,89, 0,47, 0,28, 0,34, 0,48, 0,32 и 0,74; P<0,01). Отрицательная связь объема эритроцитов была с относительной шириной их распределения и среднеклеточной концентрацией гемоглобина (r= -0,22 и -0,38; P<0,01).
Концентрация тромбоцитов до родов не изменялась, однако процент больших клеток уменьшался (r= 0,30 P<0,01). Меньше содержалось тромбоцитов в день отела (217,2 и 200,3 тыс./мм3), а наибольшее количество их было на 24-27-й день после отела (269,7 и 231,1 тыс./мм3 соответственно у животных 1-ой и 2-ой групп). Однако существенное различие было лишь у животных 1-ой группы. Более высокое содержание тромбоцитов у них наблюдалось во все периоды исследования, но достоверным различие между группами было только за 2 мес. до отела (P<0,05).
В послеродовой период отмечалось уменьшение среднего объема тромбоцитов (r= -0,16; P<0,05), а другие изменения не были существенными. Проявлялась положительная корреляция концентрации тромбоцитов со средним и компактным объемом их, а также с процентом больших клеток (r= 0,18, 0,50 и 0,16; P<0,05-0,01).
Содержание лейкоцитов в крови подопытных животных представлено в табл. 3.
В конце беременности число лейкоцитов увеличивалось (r= -0,26; P<0,05). Максимальное содержание их было в день отела - 8,8-8,7·109/л. В это время у животных 1-ой группы их было существенно больше, чем за 1-2 мес. и за 7-4 дней до отела (P<0,05 и P<0,01), а у животных 2-ой - больше, чем за 7-4 дней до отела (P<0,01).
Особенно заметно было увеличение сегментоядерных нейтрофилов и в целом нейтрофилов (r= -0,51 P<0,01 и r= -0,44 P<0,01). Количество палочкоядерных нейтрофилов и лимфоцитов уменьшалось (r= 0,21; P<0,05 и r = 0,37; P<0,01). Взаимосвязь относительного содержания лимфоцитов и нейтрофилов (в т.ч. сегментоядерных нейтрофилов) отрицательная, высоко достоверная (r= -0,96 и -0,91; P<0,01). Увеличению миелоцитов сопутствовало увеличение юных нейтрофилов (r= 0,43; P<0,01 и r= 0,22; P<0,05). А с увеличением юных нейтрофилов увеличивался и процент палочкоядерных (r= 0,31 P<0,01), а также базофилов и эозинофилов (r= 0,35 P<0,01 и r= 0,23 P<0,05). Различия между группами по общему числу лейкоцитов и их отдельным формам были не существенными.
В послеродовой период, напротив, отмечалось снижение лейкоцитов (r= -0,54 P<0,01), причем наиболее существенное палочкоядерных и сегментоядерных нейтрофилов (r= -0,47 и -0,69 P<0,01), при одновременном увеличении эозинофилов и лимфоцитов (r= 0,64 и 0,56; P<0,01). Максимального значения содержание эозинофилов достигало к 40-45 дням. У первотелок 2-й группы оно составило 8,3±0,3%. Снижение содержания лейкоцитов в основном было обусловлено снижением сегментоядерных нейтрофилов (r= 0,47; P<0,01).
Увеличение содержания эозинофилов сопровождалось снижением всех форм нейтрофилов (r= -0,51; P<0,01) и в наибольшей мере палочкоядерных и сегментоядерных (r= -0,32 и -0,47; P<0,01). Но наиболее выраженное снижение нейтрофилов (в т.ч. палочкоядерных и сегментоядерных) было связано с увеличением лимфоцитов (r= -0,93, -0,90 и -0,57; P<0,01). Очевидно, в этот период в связи с бактериальной обсемененностью и развитием воспалительного процесса в матке ярко проявились реакции клеточного и гуморального иммунитета.
Показатели воспроизводительной способности первотелок после выздоровления приведены в табл. 4.
Таблица 4. Воспроизводительная способность подопытных животных.
|
Показатели |
1 группа |
2 группа |
|||
|
в среднем |
1а |
1б |
|||
|
Осеменено коров, всего |
26 |
15 |
11 |
26 |
|
|
в том числе плодотворно: n |
26 |
15 |
11 |
21 |
|
|
% |
100 |
100 |
100 |
80,8 |
|
|
Оплодотворилось после 1-го осеменения, % |
80,7 |
80,0 |
81,8 |
47,6 |
|
|
Интервал от отела (дней) до: первого осеменения |
75,1 ± 6,9 |
53,3 3,6 |
104,9 10,0 |
101,7 14,5 |
|
|
оплодотворения |
85,9 ± 7,3 |
61,0 5,3 |
119,9 7,9 |
159,8 18,9 |
|
|
Индекс осеменения |
1,19 ± 0,08 |
1,20 ± 0,10 |
1,18 ± 0,10 |
1,95 ± 0,20 |
Первое осеменение подопытных животных было проведено в различные сроки. Наиболее коротким интервал до осеменения был у коров 1а группы - 53 дня.
Такой показатель даже короче стандарта (65 дней). Животные 1б и 2-й групп были осеменены значительно позднее - через 105 и 102 дня, что связано прежде всего с более поздним восстановлением у них половой цикличности. После первого осеменения оплодотворилось 80,7% животных 1-й группы и 47,6% животных 2-й группы. Различие между 1а и 1б группами незначительное. Для оплодотворения всех животных 2-й группы потребовалось 1-4 осеменения, а 1-й группы - 1-2 осеменения. Индекс осеменения составил соответственно 1,95 и 1,19. Различие существенное (P<0,01).
Интервал от отела до оплодотворения у коров 1-й группы не превысил стандарта и на 73,9 дня оказался короче, чем у животных 2-й группы (Р<0,01). Но минимальным он был у животных 1а группы - 61 день. Различие по этому показателю с животными 1б группы существенное (Р<0,01). Это можно объяснить многократностью введения в матку большого объема тилозинокара животным 1б группы, что, как правило, задерживает проявление половой цикличности и в целом отрицательно влияет на репродуктивную способность животных.
Проведение корреляционного анализа гематологических показателей до отела и после отела и показателей воспроизводительной способности позволило выявить ряд существенных связей.
Интервал от отела до оплодотворения отрицательно коррелировал со среднеклеточной концентрацией гемоглоина до отела (r= -0,17 P<0,05) и в день отела (r= -0,30 P<0,01). В день отела и на 40-45-й день после отела компактный объем тромбоцитов также отрицательно коррелировал с интервалом до оплодотворения (r= -0,28 P<0,01 и r= -0,29 P<0,01). Отрицательная корреляция этого интервала проявлялась и с содержанием палочкоядерных нейтрофилов до отела (r= -0,26 Р<0,05).
Увеличение юных нейтрофилов после родов сопровождалось увеличением интервала от отела до оплодотворения и индекса осеменения (r=0,26 и 0,26 Р<0,01). Такой же характер связи этих показателей воспроизводительной способности проявлялся с содержанием юных нейтрофилов в день отела (r=0,40 Р<0,01 и 0,30 Р<0,05) и на 40-45 день после отела (r=0,39 и 0,49 Р<0,01). Связь интервала до оплодотворения с содержанием миелоцитов на 40-45 день после отела также была существенной (r=0,35 Р<0,05).
Иной характер связи проявляли интервал от отела до плодотворного осеменения и индекс осеменения с содержанием палочкоядерных за 7-4 дней до отела (r= -0,39 Р<0,01 и r = -0,29 Р<0,05) и сегментоядерных нейтрофилов на 40-45 день после отела (r = -0,29 и -0,28 Р<0,05).
Заключение
У первотелок с задержанием последа морфологические показатели крови и концентрация гемоглобина в конце стельности и после отела изменялись в пределах нормы. В конце стельности и в день отела гемоглобина содержалось больше, чем в послеродовой период. Максимальным содержание его было за 7-4 дней до отела. По мере приближения родов наблюдалось увеличение среднеклеточного гемоглобина (P<0,01) и числа лейкоцитов (P<0,05), особенно сегментоядерных нейтрофилов (P<0,01). Количество палочкоядерных нейтрофилов и лимфоцитов уменьшалось (P<0,05 и P<0,01). Концентрация тромбоцитов не изменялась, однако процент больших клеток также уменьшался (P<0,01). В послеродовой период, напротив, отмечалось снижение лейкоцитов (P<0,01), причем наиболее существенное - палочкоядерных и сегментоядерных нейтрофилов (P<0,01), при одновременном увеличении эозинофилов и лимфоцитов (P<0,01). Средний объем эритроцитов и гематокрит уменьшались (P<0,01 и P<0,05). Снижались также среднеклеточный гемоглобин (P<0,05) и абсолютная ширина распределения эритроцитов (P<0,01).
Различия между группами по изученным показателям, как правило, не были существенными. Однако среднеклеточная концентрация гемоглобина в эритроците после отела ниже была у животных 1-ой группы, что может быть связано с более частым применением антибиотических веществ в первые дни после отела.
При консервативном способе лечения первотелок основные критерии плодовитости соответствовали стандарту. Наилучшие показатели достигнуты при использовании суппозиториев и комплекса антибиотических веществ (1а группа). Многократное применение тилозинокара для устранения осложнений хотя и обеспечивало высокий уровень оплодотворяемости после первого осеменения, но задерживало проявление половой цикличности и удлиняло период от отела до оплодотворения (1б группа). После мануального отделения последа срок до первого осеменения увеличивался, снижалась оплодотворяемость, удлинялся интервал от отела до оплодотворения.
Воспроизводительная способность животных проявляла тесную корреляционную связь с рядом изученных показателей крови. С увеличением среднеклеточной концентрации гемоглобина до отела интервал до оплодотворения уменьшался. Уменьшение интервала было связано также с увеличением компактного объема тромбоцитов и содержания сегментоядерных нейтрофилов на 40-45 день после отела. Увеличение юных нейтрофилов в послеродовой период и миелоцитов на 40-45 день после отела сопровождалось увеличением этого показателя и индекса осеменения.
Характер этих связей указывает на важность обеспечения матки до отела кислородом и интенсивности проявления клеточного иммунитета после отела для обеспечения метаболических процессов и структурных изменений в половых органах и последующего оплодотворения.
(Поступила в редакцию 23.03.10)
Литература
1. Бегунов, В.С. Эффективность различных препаратов при медикаментозном лечении задержания последа у коров / В.С. Бегунов // Исследования молодых ученых в решении проблем животноводства: сб. науч. тр. Междунар. науч.-практ. конф. молодых ученых и преподавателей сельскохозяйственных учебных заведений и научно-исследовательских учреждений. Витебск, 2001. С. 9.
2. Валюшкин, К.Д. Акушерско-гинекологическая диспансеризация коров и нетелей: учеб. пособие / К.Д. Валюшкин, А.Р. Камошенков. Смоленск, 2005. С. 56-58.
3. Валюшкин, К.Д. Акушерство, гинекология и биотехника размножения животных / К.Д. Валюшкин, Г.Ф. Медведев. Минск: Ураджай, 2001. С. 528-529.
4. Карпуть, И.М. Гематологический атлас сельскохозяйственных животных / И.М. Карпуть. Минск: Ураджай, 1986. 183 с.
5. Копытин, В.К. Основы повышения плодовитости коров / В.К. Копытин, В.С. Шипилов. Смоленск, 2004. С. 54.
6. Кудрявцев, А.А. Клиническая гематология животных / А.А. Кудрявцев, Л.А. Кудрявцева. М.: Колос, 1974. 399 с.
7. Медведев, Г.Ф. Совершенствование клинического (ректального) метода исследования воспроизводительных органов. Интенсиф. произв. мол. и говяд. // Сб. науч. тр. БСХА. 1985. Вып. 130. С. 56-60.
8. Методические указания по комбинированному лечению задержания последа у коров: рекомендации / Г.Ф. Медведев, Н.И. Гавриченко, В.С. Бегунов [и др.]. Молодечно: ОДО Евроконтакт, 2005. 12 с.
9. Романенко, Н.И. Физиолого-биохимический статус высокопродуктивных коров холмогорской породы / Н.И. Романенко [и др.] // Селекция сельскохозяйственных животных на устойчивость к болезням и повышение естественной резистентности / ВНИИплем. М., 1989. С. 113-120.
10. Bearden, H. Joe. Applied Animal Reproduction / H. Joe Bearden, John W. Fuquay // 3rd ed. 1992. 352 p.
11. Retained fetal membranes in large animals // The Merck Veterinary Manual. 2003. P. 74-79.
12. Mollo, A. The use of oxytocin for the reduction of cow placental retention, and subsequent endometritis / A. Mollo, M.C. Veronesi, F. Cairoli, F. Soldano // Anim. Reprod. Sci. 1997. Vol. 48. №1. P. 47-51.
13. Geoffrey, H. Veterinary Reproduction & Obstetrics / Geoffrey H. Arthur, David E. Noakes, Harold Pearson, Timothy J. Parkinson // Seventh Edition. W.B. Saunders Company Ltd. 1996. P. 291-301.
14. Arthur?s Veterinary Reproduction and Obstetrics / Edited David E. Noakes, Timothy J. Parkinson, C.W. Gary. England. Eighth Edition. 2001. W.B. Saunders Comp. Ltd. 868 р. (Reprinted 2007)
Аннотация
Гематологические показатели и воспроизводительная способность первотелок с задержанием последа. Д.С. Ходыкин
В статье рассмотрены характер изменений гематологических показателей и уровень воспроизводительной способности первотелок с задержанием последа при консервативном способе лечения. Отмечена тесная корреляционная связь с рядом изученных показателей крови.
С увеличением среднеклеточной концентрации гемоглобина до отела интервал до оплодотворения уменьшался. Уменьшение интервала было связано также с увеличением компактного объема тромбоцитов и содержания сегментоядерных нейтрофилов на 40-45 день после отела. Увеличение юных нейтрофилов в послеродовой период и миелоцитов на 40-45 день после отела сопровождалось увеличением этого показателя и индекса осеменения.
Annotation
Hematologic indices and reproductive ability of the first-aid with delayed afterbirth. D.S. Hodykin
The article examines the character of changes of hematological indicators and the level of reproductive ability of first-calving cows with retention of placenta with conservative method of treatment. We have noted close correlation with a number of examined indicators of blood.
With increased average-cell concentration of hemoglobin before calving, the interval before fertilization decreased. Interval decrease was related also to the increase of compact volume of platelets and the content of segment-nuclear neutrophils on the 40-45th day after calving. Increased number of young neutrophils in after-birth period and of myelocytes on the 40-45th day after calving was accompanied by an increase of this indicator and insemination index.
Размещено на Allbest.ru
...Подобные документы
Причины задержания последа после родов у животных. Диагноз и консервативные методы лечения, применение антибиотиков и сульфаниламидных препаратов, стимулирование защитных сил больного животного. Оперативные методы лечения задержания последа у коров.
курсовая работа [57,3 K], добавлен 04.05.2009Причины задержания последа у животных: недостаточная сократительная способность, полное отсутствие сокращений матки. Анализ схемы органов размножения коровы. Особенности консервативных методов лечения при задержании последа у коров, применения трицилина.
реферат [532,3 K], добавлен 21.05.2012Погрешности в кормлении и содержании беременных животных. Задержание последа. Консервативные и оперативные методы лечения задержки последа у коров. Стимулирование защитных сил больного животного. Роль задержания последа в происхождении бесплодия.
лекция [52,9 K], добавлен 28.03.2009Классификация основных видов задержания последа: полное, неполное и частичное. Анатомо-топографические данные области патологического процесса. Этиология, патогенез и клинические признаки болезни. Оказание помощи животным по удалению последа из матки.
курсовая работа [488,9 K], добавлен 26.12.2013Форма вымени, основные морфологические особенности вымени и сосков, их связь с продуктивностью, молокоотдачей, состоянием и приспособленностью к эффективной дойке. Влияние конструкций и режимов работы доильного аппарата на молочную продуктивность коров.
контрольная работа [24,1 K], добавлен 28.04.2010Описание клинических признаков патологического процесса. Предлежание и позиция плода. Исправление членорасположения плода. Наложение петель на конечности и голову плода. Восстановление сократительной способности матки и профилактика задержания последа.
история болезни [93,1 K], добавлен 13.06.2015Диагностика маститов у коров в период лактации, признаки ее клинической выраженности. Диагностика по молоку из каждой четверти вымени. Бактериологическое исследования молока. Лечение коров, больных маститами, особенности профилактики заболевания.
дипломная работа [105,8 K], добавлен 03.12.2011Стресс-факторы и их влияние на физиологическое состояние и состав крови животных. Показатели осеменения коров. Повышение резистентности организма и биохимические показатели крови после лечения. Результаты экономической эффективности лечебных мероприятий.
дипломная работа [82,0 K], добавлен 04.05.2009Продолжительность беременности у разных животных. Основные этапы развития эмбриона и плода. Особенности протекания родового процесса: предвестники, стадии, методы подготовки животных, правила родовспоможения. Послеродовой период. Уход за новорожденным.
реферат [28,4 K], добавлен 13.03.2013Причины скручивания матки у животных. Клинические признаки, постановка диагноза. Способы раскручивания матки. Выпадение матки как признак осложнения родов. Причины возникновения патологии, ее клинические признаки. Классификация воспалений молочной железы.
реферат [27,8 K], добавлен 24.12.2014Анализ фактической специализации, размера и сочетания отраслей производства на предприятии. Разработка прогноза по продуктивности молочного скота. Планирование прироста удоя молока в зависимости от качества и количества ежегодно вводимых первотелок.
курсовая работа [228,1 K], добавлен 01.11.2014Кетоз: сущность, причины возникновения, этиология и патогенез. Лечение кетоза у больных животных. Методы профилактики данного заболевания. Кетоз суягных овец. Формы проявления кетозов, их характеристика. Методика диагностики субклинического кетоза.
реферат [27,8 K], добавлен 17.05.2012Изучение Алиментарной анемии, заболевания животных, характеризующегося расстройством кроветворения вследствие дефицита в организме железа, нарушением обмена веществ. Описания патогенеза, симптомов, методов профилактики и лечения больных анемией поросят.
реферат [32,2 K], добавлен 07.12.2011Профилактические методы предупреждения отравления животных, птиц, рыб, полезных насекомых. Химико-токсикологический контроль качества кормов, пастбищ, воды для животных. Характеристика отравлений животных неорганическими и органическими соединениями меди.
контрольная работа [17,4 K], добавлен 25.06.2010Распространение зооантропонозной природноочаговой инфекционной болезни сельскохозяйственных животных. Характер развития инфекционного процесса при некробактериозе. Течение и симптомы болезни. Лечение больных животных, специфическая профилактика.
реферат [26,0 K], добавлен 26.01.2012Характеристика черно-пестрой породы скота. Факторы, обуславливающие эффект селекции. Разведение по линиям. Генофонд сельскохозяйственных животных. Генеалогическая группа Анштурма. Отбор первотелок по удою, массовой доле жира, белка и молочного жира.
курсовая работа [102,6 K], добавлен 22.01.2015Инфекционная контагиозная остро протекающая болезнь домашних, диких животных и птицы. Длительность инкубационного периода. Лечение животных, больных пастереллезом. Естественный иммунитет при пастереллезе. Мероприятия по профилактике и ликвидации.
реферат [27,6 K], добавлен 26.01.2012Описание конструкции и экстерьера животных черно-пестрой породы и создание приобского молочного типа черно-пестрых коров. Общая характеристика хозяйственной деятельности ФГУП УОХ "Пригородное" и сравнительная характеристика молочной продуктивности коров.
дипломная работа [1,6 M], добавлен 28.07.2013- Разработка проекта-плана повышения молочной продуктивности стада за счет селекции на 5 летний период
Популяционная генетика и ее значение в селекции. Научные основы воспроизводства стада. Отбор и подбор в молочном скотоводстве, разведение по линиям и семействам. Требования к отбору коров-первотелок. План подбора на ближайший период и его обоснование.
курсовая работа [66,4 K], добавлен 19.07.2014 Диагностика патологии органов дыхания, организация профилактики и лечения сельскохозяйственных животных. Зимнее-весенние вспышки бронхопневмонии среди телят 2-3-х месячного возраста. Этиология и патогенез болезни. Характеристика хозяйства СПК "Русь".
курсовая работа [43,9 K], добавлен 19.08.2010
