Болезни плотоядных и грызунов, сопровождающиеся дермонекротическим симптомом (бактериальный некротический дерматит, дерматофитозы)

Видимые клинические признаки спонтанной трихофитии у плотоядных и грызунов длились от 10 - 25 до 45 - 55 сут. Общая же длительность глубокой (инфильтративно-нагноительной) трихофитии, которая описана выше, может составлять 45 - 75 сут. Более быстрое выздоровление животных, больных глубокой формой трихофитии, по сравнению с таковыми, больными поверхностной формой трихофитии (описано ниже), связано с более значительным в количественном отношении контактом макроорганизма с вирулентным возбудителем, а, следовательно, и с более быстрым формированием напряженного специфического иммунитета.

У выздоравливающих животных, перенесших инфильтративно-нагноительную форму трихофитии, заживление и зарастание микотических очагов волосом обычно происходило от периферии к центру, что объясняется повреждением производящего слоя эпидермиса в центре бывшей грибной колонии. На месте микотических очагов часто встречалось временное нарушение пигментации кожи и волоса.

При поверхностной трихофитии микотические очаги не имели четкого ограничения и нередко захватывали значительную поверхность кожного покрова. Микотический процесс при этом характеризовался или неполным выпадением волоса и локальным образованием мелких корочек (струпьев), или тотальным облысением с образованием обильных чешуек (перхоти), кожных складок и трещин. Как правило, подобную клиническую картину трихофитии регистрировали при внедрении в кожу средне- или слабовирулентного штамма дерматофита. Более глубокое его внедрение в кожу предотвращается вначале неспецифическим, а затем уже и слабым специфическим иммунитетом организма животного. Больное животное при поверхностной трихофитии в большей мере страдает не от самого дерматофита и его метаболитов, а от пересыхания кожи, потери части ее функций, а также от воздействия условнопатогенной микрофлоры. Микотический процесс при поверхностной трихофитии может длиться довольно длительно и составлять примерно 110 - 130 сут. и более от начала заражения.

Экспериментальная трихофития у зараженных высоко- и средневирулентными штаммами дерматофитов животных практически всегда протекала в форме глубокого микоза, но с разными степенью интенсивности и длительностью переболевания. Очаги, как правило, были строго ограничены и процесс не диссеминировал. Это связано с тем, что кожный участок перед аппликацией биомассы штаммов трихофитонов выстригают и тщательно скарифицируют, после чего наносят минимальную искусственную заражающую дозу инфекта, которая значительно превышает по численности элементов гриба естественную. Процесс переболевания ограничивался 45 - 65 сут., так как в ответ на высокие дозы антигена быстрее формируется напряженный и длительный специфический иммунитет.

У выздоравливающих животных, перенесших поверхностную форму трихофитии, заживление и зарастание микотических очагов волосом происходило, как правило, от центра к периферии, что объясняется более ранней элиминацией дерматофита из эпидермиса (центра бывшей грибной колонии) под влиянием возросшей местной неспецифической и специфической резистентности кожи, а также естественной элиминации отмирающих фрагментов кожи и ее дериватов.

Микроспория. Спонтанная микроспория у серебристо-черных лисиц (рис. 5), песцов, хорьков (тхорзофреток), кроликов, домашних собак и кошек, клинически проявлялась аналогично таковой, описанной при трихофитии, но с менее выраженными клиническими признаками и чаще протекала в форме поверхностного микоза.

Рис. 5. Спонтанная микроспория (возб. M. canis) у щенка серебристо-черной лисицы.

Однако установлено, что за последние 20 лет в клеточном пушном звероводстве, кролиководстве, собаководстве и фелиноводстве доля поверхностной формы микроспории снижается, а доля глубокой увеличивается. Это, вероятно, связано с более выраженной адаптацией некоторых штаммов микроспорумов к коже указанных видов животных, а также с увеличением доли осложнений дерматофитозного процесса воздействием условнопатогенной микрофлоры по причине снижения неспецифической резистентности организма пушных зверей вследствие неполноценного кормления, а у собак и кошек - вследствие широко используемого чистопородного разведения.

3.1 Разработка ассоциированной инактивированной вакцины против дерматофитозов (трихофитии, микроспории) плотоядных и грызунов

Из выделенных и идентифицированных изолятов дерматофитов было отобрано по 2 штамма Trichophyton mentagrophytes и Microsporum canis. Методом направленной селекции из указанных штаммов были отобраны колонии, обладающие высокой энергией роста, низкой степенью диссоциации, обильным спороношением и высокой иммуногенностью. Таким образом были получены вакцинные и контрольные штаммы для использования в разрабатываемой вакцине.

Нами было установлено, что формальдегид в растворе 0,032 % концентрации полностью инактивирует разные виды дерматофитов in vitro при температуре от 26 - 28⁰С течение 3 - 5 сут.

Экспериментальные данные указанных исследований были использованы при изготовлении первых лабораторных серий ассоциированной инактивированной вакцины против дерматофитозов плотоядных и грызунов. В дальнейшем же мы отказались от применения формальдегида в качестве инактиватора из-за его негативного свойства денатурировать грибные белковые антигены и белковые структуры макроорганизма в области введения вакцин. Как показали иммунологические исследования на животных, денатурированные антигены не вызывают в макроорганизме формирования достаточно напряженного и длительного иммунитета к дерматофитозам.

Следующим испытуемым инактиватором дерматофитов в вакцине была избрана высокая температура (42 - 50⁰С). Экспозиция была от 24 до 96 час. В итоге мы разработали щадящие режимы температурной инактивации, которые позволили сохранить в грибных клетках изначальные структуры белковых и полисахаридных антигенов, а также остановить их ферментативное саморазрушение.

В первоначальный эксперимент были взяты эпизоотические штаммы дерматофитов T. mentagrophytes и M. canis, а также условнопатогенный для многих видов животных гриб M. gypseum в жидкой питательной среде (пивном сусле). В дальнейшем аналогичные эксперименты были проведены с вакцинными штаммами.

В результате было установлено, что оптимальными режимами инактивации дерматофитов являются температуры 45 - 50⁰С при экспозициях 48 и 24 час. соответственно.

Включение в следующие микросерии вакцины в качестве инактиватора грибов хлоргексидина биглюконата потребовало предварительных исследований его на мико-бактерицидность и безвредность для животных.

Методом серийных разведений (in vitro), было установлено, что хлоргексидина биглюконат в 0,0005 % - ной концентрации инактивируют дерматофиты, многие другие грибы и бактерии в течение 2 - 8 часов.

Предварительно, методом серийных разведений (in vitro), было установлено, что хлоргексидина биглюконат надежно подавляет рост дерматофитов уже при его концентрации в водной суспензии 0,0005 %, а через 8 час. он полностью инактивирует грибы. Этой же концентрации хлоргексидина биглюконата и приведенных выше режимов оказалось достаточно для полной инактивации большинства плесневых и дрожжеподобных грибов, а также некоторых часто встречаемых бактерий родов Staphylococcus, Streptococcus, Proteus, Escherichia и Bacillus.

Водные растворы хлоргексидина биглюконата от меньших до 0,1 % концентраций при парентеральных введениях не вызвали у животных отрицательных реакций.

В результате дальнейших исследований мы установили, что наиболее эффективным способом инактивации вакцинных антигенов является термохимический, включающий последовательную обработку культур дерматофитов хлоргексидина биглюконатом и высокой температурой.

Основные этапы производства вакцины. Технология изготовления вакцины состоит из следующих этапов:

раздельного посева и выращивания культур вакцинных штаммов дерматофитов;

раздельного съема выращенных культур грибов с питательной среды;

раздельного измельчения (гомогенизации) грибной биомассы культур каждого штамма;

стандартизации грибных гомогенатов по определенному содержанию микроконидий;

смешивания стандартизированных гомогенатов дерматофитов в определенном соотношении;

инактивации грибной биомассы добавлением концентрированного раствора хлоргексидина биглюконата;

биологического контроля полноты инактивации;

доведения содержания микроконидий в 1 см³ гомогената до 15 - 25 млн. микроконидий в 1 см³ добавлением стерильного физиологического раствора;

доведения концентрации водородных ионов (рН) в препарате до 7,2 - 7,4;

розлива во флаконы и укупорки;

окончательной ступенчатой инактивации смешанного вакцинного гомогената при температуре от 45 до 55⁰ С в течение 3 суток;

контроля вакцины согласно ТУ;

этикетировки;

упаковки в тару.

Исследования по разработке вакцины показали, что для плотоядных и грызунов оптимальное количество иммуногенного материала находилось в пределах 15 - 25 млн. микроконидий на 1 см³ препарата, а эффективными способами иммунизации - двукратное внутримышечное (в заднебедренную группу мышц) или подкожное (в область грудной стенки) введение препарата сначала с одной стороны, а через 14 - 21 сут. - с противоположной.

Сроки окончательного формирования напряженного поствакцинального иммунитета к трихофитии и микроспории составили: у нутрий и шиншилл 40 - 45 сут., у домашних собак и кошек, песцов и лисиц, хорьков, кроликов и ондатр - 21 - 25 сут.

Сроки формирования поствакцинального иммунитета и его длительность у перечисленных видов животных определены нами методом экспериментального дермального заражения.

Иммунизация вызывает у животных пожизненную устойчивость к трихофитии и иммунитет против микроспории длительностью не менее 12 мес.).

На основании приведенных выше сведений была разработана схема применения вакцины у животных (табл. 4):

Стабильность вакцины проверяли в через 1, 3, 6, 9, 12 мес., 3, 6 и 9 лет хранения при 18 - 25⁰С и через 1 - 24 мес. хранения при температуре 40⁰С. Критериями оценки качества препарата служили внешний вид, стерильность, безвредность для животных и иммуногенность. Ни в одном случае не было установлено отклонений качества вакцины от требований технических условий.

Таблица 4

Схема иммунизации животных

То есть, эндогенные ферментативные процессы отсутствовали, структура антигенов сохранялась, а вакцина длительно сохраняла иммуногенность и стерильность.

С целью большей гарантии качества препарата срок его годности мы ограничили 24 мес, а температуру хранения - от 2 до 25⁰С.

При исследовании тушек кроликов и нутрий, используемых в качестве мясной продукции, в местах внутримышечного введения вакцины были обнаружены незначительные скопления воспалительного экссудата, состоящего из лейкоцитов и грибных клеток. У кроликов воспалительный экссудат был заключен в веретенообразной формы тяжи длиною до 2,5 - 3 см и толщиной в широкой части до 0,5 см, окруженные тонкой полупрозрачной соединительнотканной капсулой. У нутрий очаги были округлой или эллипсовидной формы величиной с горошину, заключенные в непрозрачную соединительнотканную капсулу толщиной до 0,5 - 1,0 мм.

Убой животных проводили через 3, 5, 7, 9, 12, 15 и 20 сут. после иммунизации.

К 15 сут. после иммунизации у кроликов практически не отмечено изменений в мышечной ткани, а у нутрий изменения исчезают к 10 - 20 сут.

Результаты микологических и бактериологических исследований не подтвердили наличие в местах введения инактивированной вакцины жизнеспособных грибов или иных контаминантов.

Исходя из полученных результатов следует вывод, что мясо иммунизированных внутримышечно данной вакциной нутрий и кроликов можно использовать в пищу без ограничений после иссечения места инъекции.

В более ранних исследованиях (А.М.Литвинов, 1984) было установлено, что при иммунизации нутрий живой вакциной МЕНТАВАК сроки поствакцинального ожидания имели место, так как живой вакцинный дерматофит T. mentagrophytes в мышцах указанного вида животных сохранял жизнеспособность и остаточную вирулентность от 7 до 17 сут.

При подкожном введении такая проблема отсутствует, поскольку со снятием шкурок с убитых животных удаляется и место введения препарата.

Терапевтическая эффективность вакцины. В экспериментах использовано 150 кроликов, 197 лисиц и песцов, 425 нутрий, 184 кошки, 240 собак, 27 ондатр, и 34 шиншиллы.

Применение вакцины с лечебной целью проводили в зверохозяйствах Московской, Калининградской, Костромской, Воронежской областей, Республики Татарстан. Лечебная эффективность препарата составила от 90 - 95 % у кошек и собак и до 99,8 % - у остальных видов животных.

Профилактическая эффективность вакцины. Изучение профилактической эффективности препарата проводили в тех же неблагополучных по дерматофитозам пунктах. В экспериментах использовано 103703 лисиц и песцов, 2158 нутрий, 196 кошек, 200 собак, 235 ондатр, 563 шиншиллы и около 2 тыс. хорьков. Профилактическая эффективность вакцины составила 99,8 %.

4. Производственные испытания

4.1 Испытания комплекса мер по ликвидации и профилактике бактериального некротического дерматита клеточных пушных зверей

Производственные испытания разработанных способов лечения, ликвидации и профилактики болезни осуществлены в 17 зверосовхозах Приморского края, в зверосовхозах «Заря» Ленинградской области, «Родники» Московской области, «Судиславский» Костромской области, «Багаевский» Ростовской области, «Бирюлинский» Республики Татарстан, «Повенецкий» и «Пряжинский» Республики Карелия, «Майский» Кабардино-Балкарской Республики и «Вятка» Кировской области с 1985 по 2006 г.г.

В течение двух лет с момента начала испытаний указанные зверохозяйства были оздоровлены от БНД пушных зверей. Путем своевременной выбраковки ослабленного ремонтного поголовья и использования разработанного комплекса предохранительных мер во многих зверохозяйствах поддерживается устойчивое благополучие по бактериальному некротическому дерматиту.

4.2 Испытания комплекса мер по ликвидации и профилактике дерматофитозов клеточных пушных зверей и грызунов

Производственные испытания разработанного комплекса мер по ликвидации и профилактике дерматофитозов плотоядных и грызунов осуществляли на песцах и серебристо-черных лисицах в зверосовхозах «Прозоровский» Калининградской области, «Родники», «Тимоховский» и «Салтыковский» Московской области, «Бирюлинский» и «Раифский» Республики Татарстан, на хорьках - в зверосовхозах «Пушкинский» Московской области и «Ожерелье» Тульской области, кроликах - на кроликофермах зверосовхозов «Прозоровский», «Мамоновский» и «Багратионовский» Калининградской области, «Соловьевский» Сахалинской области, птицефабрики «Череповецкая» Вологодской области, зверосовхозов «Бирюлинский» и «Раифский» Республики Татарстан, Биотехцентра РАСХН Ленинского района и ООО АПГ «Демидово» Егорьевского района Московской области, нутриях - в зверосовхозах «Северинский» Краснодарского края и «Судиславский» Костромской области, ондатрах и шиншиллах - в ООО «ОСП-ЭНЕРГО» Московской области, собаках и кошках - в неблагополучных пунктах Белгородской, Владимирской, Воронежской, Ивановской, Московской, Ростовской, Нижегородской и других областей в 1989 - 2007 г.г.

Большинство из указанных неблагополучных пунктов были оздоровлены от дерматофитозов и в них длительное время поддерживается устойчивое благополучие.

ВЫВОДЫ

1. К бактериальному некротическому дерматиту восприимчивы норки, песцы и енотовидные собаки с 3,5 - 4,5 - месячного возраста.

Заболеваемость животных варьирует от 1,5 до 45 %, летальность - от 3 до 55 %.

2. Факторами, предрасполагающими заболеванию пушных зверей бактериальным некротическим дерматитом служат стрессы и другие патологические состояния, сопровождающиеся угнетением неспецифической резистентности организма.

3. Основной инфекционный этиологический фактор при бактериальном некротическом дерматите пушных зверей - бактерия Staphylococcus aureus.

4. Симптомокомплекс болезни характеризуют: угнетенное состояние, отсутствие аппетита, жажда, облизывание и поедание инородных предметов (стружки, древесной щепы), некроз кожи, а затем глубже расположенных тканей в области конечностей, реже - хвоста и головы.

5. Патологоанатомические и патогистологические изменения при бактериальном некротическом дерматите пушных зверей характерны для стафилококкового сепсиса. У отдельных зверей регистрируют остеопороз конечных фаланг и хвостовых позвонков.

6. У переболевших БНД пушных зверей формируются адаптация к некоторым предрасполагающим заболеванию факторам (авитаминозам, микро- и макроэлементозам) и не достаточно длительный (3 - 6 мес.) иммунитет к заражению стафилококком.

7. Оптимальным способом лечения больных БНД пушных зверей является одновременно используемые двукратные внутримышечные инъекции бициллина - 3 с интервалом 3 суток или левотетрасульфина, или левоэритроциклина с интервалом 7 суток, подкожные инъекции 0,5 %-ных растворов сернокислого цинка и никотиновой кислоты с интервалом 7 суток, а также включение в корм 20 - 25 мг/кг живой массы сернокислого цинка и 10 - 15 мг/кг живой массы никотиновой кислоты в течение 20 - 30 дней. Эффективность способа - 99,5 %.

8. Профилактика БНД пушных зверей осуществляется в течение 2 - 3 последующих лет включением в корм цинковых соединений и никотиновой кислоты в ответственные физиологические периоды в уменьшенных в 2 раза лечебных дозах. Эффективность медикаментозной профилактики - 99,95 %.

9. Дерматофитозы (трихофития и микроспория) у плотоядных пушных зверей (песцов, серебристо-черных лисиц, хорьков), грызунов (кроликов, нутрий, ондатр и шиншилл), домашних собак и кошек, протекающие в форме глубокого (инфильтративно-нагноительного) патологического процесса, сопровождаются некрозом кожи (микотическим некротическим дерматитом).

10. Основными возбудителями дерматофитозов плотоядных пушных зверей, грызунов, домашних собак и кошек служат дерматофиты Trichophyton mentagrophytes (Robin) Blanhard, 1896 и Microsporum canis (Bodin), 1902.

11. Кролики, песцы, лисицы, домашние собаки и кошки подвержены спонтанному заболеванию как трихофитией, так и микроспорией, нутрии, ондатры и шиншиллы - только трихофитией, а хорьки - микроспорией. Соболи и норки устойчивы к заражению дерматофитами.

12. В благополучных по дерматофитозам пунктах при занесении возбудителей дерматофитозов заболеваемость пушных зверей и грызунов может достигать 55 - 75 %, в стационарно неблагополучных - 15 - 35 %.

13. Разработана ассоциированная инактивированная вакцина против дерматофитозов (трихофитии, микроспории) плотоядных и грызунов, формирующая у животных пожизненный иммунитет к трихофитии и устойчивость к микроспории длительностью не менее 12 месяцев.

Терапевтическая эффективность вакцины - 90,0 - 95,5 % у кошек и собак и 99,8 % - у остальных видов животных. Профилактическая эффективность вакцины - 99,8 %.

14. Применение вакцины с 1998 по 2006 г.г. на полутора миллионах животных позволило оздоровить более 30 неблагополучных по дерматофитозам пунктов, сохранить высокое качество шкурковой продукции клеточных пушных зверей и грызунов, предотвратить снижение мясной продуктивности нутрий и кроликов, предупредить заражение дерматофитозами обслуживающего персонала и членов их семей, а также - значительно снизить трудовые затраты ветеринарной службы по борьбе с этими болезнями.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

Ветеринарным науке и практике предложены:

- «Рекомендации о мероприятиях по профилактике и ликвидации некротического дерматита норок», одобренные ГУВ Госагропрома СССР 12.04.1988 г. № 432-3;

- «Рекомендации о мероприятиях по предупреждению и ликвидации бактериального некротического дерматита у пушных зверей», одобренные Департаментом ветеринарии Минсельхозпрода России 13.09.1999 г.;

- «Наставление по применению вакцины МЕНТАВАК при трихофитии пушных зверей и кроликов», утвержденное ГУВ Минсельхоза СССР 04.04.1984 г. № 115-6 а;

- «Методические указания по диагностике дерматофитозов животных», утвержденные Департаментом ветеринарии Минсельхоза России 04.10.2001 г. № 13 - 5 - 02/0202;

- временные НТД на «Вакцину против дерматофитозов (трихофитии и микроспории) пушных зверей, нутрий и кроликов ассоциированную инактивированную», утвержденную Департаментом ветеринарии Минсельхозпрода России 15.05.1998 г.;

- Рекомендации «Ветеринарная защита кроликов на фермах промышленного типа», одобренные Департаментом ветеринарии Минсельхозпрода России 06.05.2000 г.;

- «Технология производства экологически чистого мяса и шкурок кроликов для фермских хозяйств» (2001), одобренная Ученым советом НИИПЗК им. В.А.Афанасьева, международной научно-практической конференцией «Эколого-генетические проблемы животноводства и экологически безопасные технологии производства продуктов питания» (ВИЖ, Дубровицы, 1998 г.) и координационным совещанием РАСХН (НИИПЗК, 2000);

- «Правила по профилактике и ликвидации дерматофитозов животных», утвержденные Департаментом ветеринарии Минсельхозпрода России 11.07.2000 г. № ВП 13.4.1416 - 00.

СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

1. Дерматофитозы // Литвинов, А.М. Болезни кроликов / Шевченко А.А., Шевченко Л.В., Литвинов А.М. - М., ООО «Аквариум-Принт», 2002.- С. 153-159.

2. Литвинов, А.М. Применение вакцины МЕНТАВАК для лечения трихофитии нутрий / А.М. Литвинов // ВИЭВ. Бюл. - М., 1981. - Вып. 42.

3. Литвинов, А.М. Специфическая профилактика трихофитии нутрий / А.М.Литвинов // Пушное звероводство. 1983. -№ 8. - С. 10.

4. Литвинов, А.М. Трихофития нутрий / А.М.Литвинов // Тез. докл. Всесоюзн. школ. молод. учен. - Эстонская ССР, ММЦ «Ноорус», 1983. - С. 154.

5. Литвинов, А.М. Использование вакцины «Ментавак» для борьбы с трихофитией нутрий (расчет экономического эффекта) / А.М. Литвинов // Методич. указания: Определение экономической эффективности использования в звероводстве и кролиководстве результатов научно-исследовательских работ, новой техники, изобретений и рационализаторских предложений. - М., 1984. - С. 70 - 76.

6. Литвинов, А.М.Трихофития нутрий и меры борьбы с ней: Дис. ... канд. вет. наук: 03.00.16 / А.М.Литвинов; ВИЭВ. - М., 1984. - 173 с.

7. Литвинов, А.М. Эпизоотология трихофитии нутрий / А.М.Литвинов // ВИЭВ. Бюл. - М., 1984. - Вып. 54. - С. 28 - 30.

8. Литвинов, А.М. Некротический дерматит норок / А.М.Литвинов // Кролиководство и звероводство.- 1988. - № 4. - С. 48.

9. Литвинов, А.М. Некротический дерматит норок (некоторые вопросы этиологии, патогенеза, симптомокомплекс и патологоанатомическая картина болезни) / Литвинов А.М. // ВИЭВ. Бюл. - М., 1989. - Вып. 72. - С. 87 - 92.

10. Литвинов, А.М. Контагиозные болезни плотоядных пушных зверей / А.М.Литвинов, Н.А. Яременко // Ветеринария. - 1998. - № 11. - С. 3 - 5.

11. Литвинов, А.М. Некротический дерматит у плотоядных пушных зверей / А.М.Литвинов // МГАВМиБ. Тез. докл. конф. «Проблемы инфекцион. и инвазион. болезней в животноводстве на совр. этапе». - М., 1999. - С. 210

12. Литвинов, А.М. Встречаемость дерматофитозов / Литвинов А.М. // Кролиководство и звероводство. - 1999. - № 4. - С. 24 - 25.

13. Литвинов, А.М. Дерматофитозы нутрий и пушных зверей семейства куньих / Литвинов А.М. // Кролиководство и звероводство. - 1999. - № 5. - С. 30-31.

14. Литвинов, А.М. Дерматофитозы кошек и собак / Литвинов А.М. // Ветеринария. - 2000. - № 11. С. 51 - 53.

15. Литвинов, А.М. Дифференциальная диагностика бактериального некротического дерматита пушных зверей / Литвинов А.М. // Кролиководство и звероводство. - 2001. - № 1. - С. 26.

16. Литвинов, А.М. Бактериальный некротический дерматит плотоядных пушных зверей / Литвинов А.М. // Ветеринария. - 2001. - №. 4. - С. 10 - 15.

17. Литвинов, А.М. Лечебно-профилактическая эффективность вакцины МИКОЛАМ при дерматофитозах (трихофитии и микроспории) пушных зверей, собак и кошек / Литвинов А.М. //Ветеринария в звероводстве (Бюллетень ветеринарного врача). - 2001. - № 3. - С. 11.

18. Литвинов, А.М., Дорожкин В.И. Лечение и профилактика бактериального некротического дерматита плотоядных пушных зверей / Литвинов А.М. // Ветеринария в звероводстве (Бюллетень ветеринарного врача). - 2001. - № 1. - С. 5.

19. Литвинов, А.М. Трихофития нутрий и современные методы борьбы с ней / А.М.Литвинов, Л.И.Никифоров // Тр. ВИЭВ. - М., 1987. - Т. 65. - С. 63 - 72.

20. Литвинов, А.М. Диагностика дерматофитозов животных: Методические рекомендации / А.М.Литвинов, Л.И. Никифоров. - М.: РосАКОагро, 2002. - 16 с.

21. Литвинов, А.М. Ветеринарные проблемы звероводства / Литвинов А.М., Яременко Н.А. // Ветеринария. - 2001. - № 5. - С. 3 - 5.

22. Литвинов, А.М. Сокова, В.В., Литенкова, И.Ю., Костюченко, В.Г., Трофимов, Д.В., Герасимова, О.А. Лечебно-профилактическая эффективность вакцины МИКОКАНИФЕЛ при дерматофитозах (микроспории и трихофитии) собак и кошек / Литвинов, А.М. Сокова, В.В., Литенкова, И.Ю., Костюченко, В.Г., Трофимов, Д.В., Герасимова, О.А. // Мат. IV региональной конференции «Золотое кольцо России». - Владимир, 2001. - С. 82 - 83.

23. Литвинов, А.М., Шевченко, А.А., Костюченко, В.Г., Литенкова, И.Ю., Кравченко, В.М., Белик, Е.В. Эффективность опытной вакцины «РАББИВАК» против дерматофитозов (трихофитии и микроспории) и вирусной геморрагической болезни кроликов / Литвинов, А.М., Шевченко, А.А., Костюченко, В.Г., Литенкова, И.Ю., Кравченко, В.М., Белик, Е.В. // Мат. IV региональной конференции «Золотое кольцо России». - Владимир, 2001. - С. 84 - 86.

24. Никифоров, Л.И. Трихофития нутрий, меры борьбы / Никифоров Л.И., Литвинов А.М. // Кролиководство и звероводство.- 1984. - № 5. - С. 21.

25. Сапожникова, А.И. Антигрибная и антибактериальная активность коллагенсодержащего препарата Авикол-Н / Сапожникова, А.И., Кис, И.В., Литвинов, А.М., Искандаров, М.И., Кис, В.И. // Успехи медицинской микологии. - М., Национальная академия медицинской микологии, 2007. - Т. 9. - С. 297 - 300.

26. Саркисов, А.Х. Трихофития нутрий / Саркисов А.Х., Никифоров Л.И., Литвинов А.М. // Ветеринария. - 1985. - № 5.- С.с. 48 - 49.

27. Способ лечения и профилактики бактериального некротического дерматита норок: пат. № 1508373; 02.04.1993 / А.М.Литвинов.

28. Технология производства экологически чистого мяса и шкурок кроликов для фермских хозяйств / В.Н.Александров, В.Н.Помытко, Н.И.Тинаев, Е.А. Тинаева, Т.К.Карелина, Н.А.Балакирев, В.С.Александрова, Т.Л.Чичкова, А.М.Литвинов // НИИПЗК им. В.А.Афанасьева. - Удельная, 2001. - 47 с.

Размещено на Allbest.ru