Искусственное воспроизводство аборигенных промысловых рыб в полевых условиях посредством мобильного инкубатора

Размещено на http://www.allbest.ru

Размещено на http://www.allbest.ru

Истощение биологических ресурсов водоема, а именно рыбных, негативно сказывается на экосистеме всего водоема, так как рыбы являются основополагающим звеном в пищевой цепи и круговороте веществ их среды обитания [1, С. 266]. Основными причинами сокращения рыбных ресурсов являются, экологические факторы, а также антропогенное влияние в целом [2, С. 5], [3, С. 22]. Поэтому для восполнения сокращающихся численности популяций рыб искусственное воспроизводство приобретает все больший интерес в экологическом и экономическом плане.

Во многих рыбохозяйственных водоемах зачастую недостаточное количество производителей приводит к уменьшению уровня самовоспроизводительной способности. В связи с этим для восполнения численности популяций различных видов рыб необходимо применять искусственное воспроизводство, как в естественных, так и в искусственных условиях.

В современной аквакультуре одной из важнейших задач является разработка и совершенствование биотехники искусственного воспроизводства. Формирование ремонтно-маточного стада, способного воспроизвести рыбопосадочный материал для восполнения численности рыб [4, С. 72], [5, С. 61].

Перспективным направлением по зарыблению рек является разработка биотехники воспроизводства аборигенных видов рыб обитающих в естественной среде с применением передвижного мобильного инкубатория, позволяющего в отдаленных естественных водоемах производить искусственное размножение данных видов рыб.

Исследования проводились в старицах реки Урал в Акжаикском районе Западно-Казахстанской области в рамках программы грантового финансирования Комитета науки МОН РК по теме ИРН AP05134862 «Разработка мобильного инкубатория и биотехники воспроизводства аборигенных промысловых видов рыб», объект исследования - мобильный инкубатор и производители сазана Урало-Каспийской популяции.

Для проведения инкубации оплодотворенной икры аборигенных промысловых рыб использовался разработанный мобильный инкубатор.

Для отлова рыб применялись ставные сети размерами ячей от 70 до 90 мм. Отлов производился в весенний период во время нерестового хода производителей сазана. Отловленных производителей отсаживали в садки, помещенные в естественный водоем, разделяя по половой принадлежности. Температура воды при выдерживании в садках находилась в пределах 20-22°C. Определение рыбоводно-биологических показателей производителей проводили в соответствии руководством [6, С. 17]. Гипофизарные инъекции проводили в соответствии с рекомендациями [7, С. 7], [8, С. 105], [9, С. 68], [10, С. 2]. В качестве предварительной и разрешающей инъекции применяли раствор ацетонированных гипофизов сазана с периодичность в 12 часов. В соответствии с готовностью производителей к нересту проводили прижизненный отбор проб. В первую очередь получали половые продукты от самок, затем от самцов. Полученную сперму отбирали в просушенные стеклянные пробирки. Затем полученные половые продукты смешивали, проводя осеменения. Для активации сперматозоидов использовалась вода с естественного водоема. После проведения искусственного оплодотворения, для обесклеивания икры использовали нежирное молоков концентрации 0,3 л на 5 л воды. Последующую инкубациюикры проводили на аппарате «Вейса», в течении всего периода инкубации следили за температурным и кислородным режимами, значения которых находились в пределах 20-22°C, значение кислорода от 5 до 7 мг/л.

Нами разработана рациональная структурно-технологическая схема мобильного инкубатория по воспроизводству аборигенных видов рыб с применением инкубационных аппаратов (рис. 1).

Рис. 1 - Рациональная структурно-технологическая схема мобильного инкубатория по воспроизводству аборигенных видов рыб с применением инкубационных аппаратов: Примечание: мобильный инкубаторий включает в себя следующее оборудование: насос (1), фильтр тонкой очистки (2), бассейны для воды (3) и мальков (7), насос центробежный (4), сосуды стеклянные (5), электрогенератор (6), терморегуляторы (8 и 9), раму-каркас стойки (10)

Бассейны выполнены из полимерного материала и соединены между собой по дну полипропиленовыми трубами. Материал, используемый для изготовления рамы - стойки - металлические трубы. Стеклянные инкубационные сосуды установлены в раме - стойке, имеющей два гнезда, одно из которых удерживает нижнюю часть, а другое - среднюю часть сосуда, причем инкубационные сосуды установлены в строго вертикальном положении. Вода к инкубационным сосудам подается центробежным насосом по распределительной полипропиленовой трубе. Сброс воды из инкубационных сосудов происходит через сливной носик, сделанный в железном обруче, обтягивающем верхние края сосуда и установленные другим концом, в прорези, выполненные в сливной трубе. В сливной трубе установлены два шаровых крана для регулирования подачи воды в бассейны. Напор воды в инкубационных сосудах регулируется шаровым краном, установленным на распределительной трубе над бассейном. Терморегулирующие элементы установлены в бассейнах и находятся на поверхности воды при помощи пенопласты.

В зависимости от этапа инкубации икры, мобильный инкубаторий работает в одном из двух режимов (рис. 2):

Рис. 2 - Расположение оборудования мобильного инкубатория

1. Режим инкубации икры до выклева личинок. При данном режиме шаровой кран, установленный на сливной трубе над бассейном для мальков, находится в закрытом, а над бассейном для воды в открытом положении.

Вода насосом (помпой) 1 из водоема по полимерным шлангам поступает через фильтр тонкой очистки 2 в бассейн для воды, где происходит ее подогрев терморегулирующими элементами. Из бассейна вода подается центробежным насосом через распределительную трубу в инкубационные сосуды 5 с икрой. Поток воды поднимает вверх помещенную в инкубационные сосуды икру и в верхней части сосуда напор ослабевает, вследствие чего икринки начинают постепенно опускаться, где подхватываются струями воды и вновь вовлекаются вверх. Так на протяжении всего периода инкубации икра находится во взвешенном состоянии. Сброс воды из инкубационных сосудов происходит через сливной носик в железном обруче, откуда она по сливной трубе через открытый кран поступает в бассейн для воды. После чего цикл постоянно повторяется до появления личинок.

2. При работе мобильного инкубатория в режиме выклева личинок шаровой кран на сливной трубе в бассейн находится в закрытом положении. Шаровой кран в бассейн для мальков - в открытом положении. На трубе соединяющей два бассейна устанавливается металлическая сетка для предотвращения перемещения личинок из емкости для мальков. При данном режиме напор воды в системе увеличивается. Выклюнувшиеся личинки током воды выносятся из инкубационных сосудов в сливную трубу и по ней через открытый кран попадают в бассейн для мальков. Цикл водообмена продолжается до полного выклева личинок и поступления их в бассейн.

По степени зрелости гонад у большинства производителей 80%, соответствует IV завершенной СЗГ и подфазе Е2. Эти показатели были достигнуты благодаря тому, что производители были отловлены во время нерестового хода, а так же к этому способствовало преднерестовое выдерживание производителей в садках при оптимальных условиях.

Для стимулирования производителей сазана самкам в зависимости от массы тела два раза с интервалом 12 часов делали инъекцию гипофизарным препаратом, а самцам один раз во время проведения самкам второй инъекции. Половые продукты от текучих производителей, находящихся на пятой стадии зрелости получали в затененном месте, так как прямой солнечный свет губительно действует на икру и сперму. Икру собирали в пластиковые тазы. Посуда была досуха, протерта и обсушена в сушильном шкафе,так как во влажной среде происходит активация икры, что легко обнаружить по ее набуханию. Это препятствует оплодотворению и значительно снижает количество развивающейся икры.

Основная часть самок 70% дали икру с задержкой 2-4 часа от намеченного времени, у 10% самок время созревания растянулось на 4-6 часов, 20 % самок вообще не дали икры. В целом 80% самок отдали икру. Самцы дали свой половые продукты в намеченное время, объем эякулята варьировалось в зависимости от возраста и массы в пределах 1,5-4 мл (рис. 3). При визуальной оценке окраска спермы колебалось от желто-кремового до бледно-молочного цвета. По пятибалльной шкале Персова сперму самцов можно было оценить на 3-4 баллов, время движения сперматозоидов 20-25 с.

Рис. 3 - Взятие спермы у самцов сазана

Отцеживание икры происходило быстро. В ходе визуальной оценки овулировавшей неоплодотворенной икры были обнаружены следующие характерные признаки: окраска - светло-желтая, консистенция - густая, овариальной жидкости - мало (рис. 4).

Индивидуальная рабочая плодовитость производителей в среднем составило 395,62 тыс. штук, относительная рабочая плодовитость 66,0 тыс. штук.

Рис. 4 - Отцеживание икры у самки сазана

Икра каждой самки осеменялась спермой 3-6 самцов, имеющей оценку по шкале Перцова в 3 и 4 баллов. Икру тщательно и осторожно перемащивали с разведенной спермой птичьем пером (гусиным) в течение 2 минут. После этого воду с остатками спермы слили, промыли икру водой и преступили к следующему этапу. Обесклеивающую суспензию готовили в 3 вариантах: I - на 10л воды добавили тальк - 150-200г: II - на 10 л воды молоко сухое - 200-250г; III - на 10 л воды молоко обезжиренное 1,5% - 2л. В результате эксперимента установили, что обесклеивание происходит лучше при использовании обезжиренного молока в вертикальных аппаратах Вейса при энергичном барботаже в течение 55-60 минут.

Биологический анализ производителей приведен в табл. 1.

Таблица 1 - Биологическая характеристика производителей сазана в нерестовой кампании 2018 года

Анализ табл. 1 показывает, что возраст производителей колеблется от 4 до 8, средняя масса самок - 3,86±0,28кг, самцов -3,57±0,29 кг, рабочая плодовитость самок составила 395,62±76,55 тысяч штук, относительная рабочая плодовитость 66,0±8,6 тысяч штук.

Анализ эмбрионального развития показал что, оплодотворение составило 70%, в среднем процент нормально развивающихся эмбрионов составил 85%. В отдельных случаях, регистрировались такие аномалии развития как нарушения дробления и появления уродливых бластомеров, неравномерная сегментация тела и искривления позвоночника.

Вылупление личинок произошло при длине 2,2-2,5 мм и массе 0,2-0,3 мг с большим желточным мешком. Голова плотно прижата к желточному мешку, ротовой аппарат не развит. При осмотре с помощью микроскопа у эмбриона можно увидеть сердце, передний мозг, эпифиз, средней мозг, зачаточный мозжечок, продолговатый мозг, обонятельная капсула, слуховой пузырек.

Данный мобильный инкубаторий является разборным и прост в изготовлении. В нерестовый период его можно легко собрать, провести необходимые работы по воспроизводству нескольких видов аборигенных рыб и по завершению сезона - разобрать.

Разработанный мобильный инкубаторий позволит без больших затрат эффективно восполнять запасы промысловых рыб естественных водоемов и сохранить экологический баланс водоема.

Таким образом, для целей искуственного воспроизводства использовали половые продукты полученные от 22 самок и 25 самцов сазана отловленных при помощи ставных сетей. При проведении искусственного оплодотворения икры аборигненных промысловых рыб процент оплодотворения составил 70%, выход предличинок составил 75%. После получения половых продуктов от аборигенных промысловых рыб произвели выпуск в естественную среду обитания (водоем), тем самым минимизируя ущерб экологии. А также использование мобильного инкубатория в целях воспроизводства аборигенных промысловых рыб сокращает затраты связанные с транспортировкой производителей и риска отхода производителей при транспортировке до рыбоводного завода.

Список литературы

инкубационный аборигенный рыба

1. Реймерс Н.Ф. Экология. Теории, законы, правила, принципы и гипотезы / Н.Ф. Реймерс. - М.: Россия молодая, 1994. - 367 с.

2. Дгебаудзе Ю.Ю. Экологические закономерности изменчивости роста рыб / Ю.Ю. Дгебаудзе. -М.: Наука, 2001. - 276 с.

3. Богерук А.К. Биотехнологии в аквакультуре: теория и практика / А.К. Богерук. - М.: ФГНУ «Росинформагротех», 2006. - 232 с.

4. Матишов Г.Г. Комплексные технологии интенсивного выращивания осетровых рыб / Г.Г. Матишов, Е.Н. Пономарева // Тепловодная аквакультура и биологическая продуктивность водоемов аридного климата: междунар. симпоз. - Астрахань: Изд-во АГТУ, 2007. - С. 71-73.

5. Залепухин В.В. Актуальность оценки качества производителей рыб в современных условиях / В.В. Залепухин // Вестник ВолГУ. Серия 11. 2011. № 1 (1). - С. 60-66.

6. Правдин И.Ф. Руководство по изучению рыб (преимущественно пресноводных) Четвертое издание переработанное и дополненное / И.Ф. Правдин. - Издательство «Пищевая промышленность» Москва 1966 г. - 372 с.

7. Гербильский Н.Л. Метод гипофизарных инъекций и его роль в рыбоводстве. Гормональная стимуляция полового цикла рыб в связи с задачами воспроизводства рыбных запасов / Н.Л. Гербильский // Труды ВНИРО. - Т. 111. - Л.: Наука, 1975. С. 7 - 22.

8. Залепухин В.В. Физиолого-биохимическая картина крови карповых рыб в процессе получения икры после экзогенного стимулирования созревания / В. В. Залепухин // Вестник АГТУ. 2005. № 3 (26), - С. 104- 111.

9. Курапова Т.М. Примерные схемы проведения нерестовой кампании на ОАО «Рыбхоз Волма» в Республике Беларусь / Т.М. Курапова, Е.И. Хрусталев, К.А. Молчанова и др. // Научные ведомости, Серия Естественные науки. 2015. № 9 (206). Выпуск 31, - С. 66- 72.

10. Булавин Е.Ф. Сравнительная рыбоводно-биологическая характеристика развития икры и личинок сазана и карпа при заводском воспроизводстве.

Размещено на Allbest.ru