Оценка рыбных ресурсов

Размещено на http://www.allbest.ru/

Размещено на http://www.allbest.ru/

Пермская государственная сельскохозяйственная академия имени академика Д.Н. Прянишникова

Контрольная работа

По дисциплине «Рыбоводство»

Наседкин Виктор Иванович

Пермь 2017

План

1. Видовые особенности хариуса

2. Стадии эмбрионального периода у карпа

3. Профилактические мероприятия на рыбоводных предприятиях при бактериальных заболеваниях

1. Видовые особенности у хариуса

Род хариусов зоологи выделяют в отдельное семейство хариусовых (Thymallidae), которое входит в состав отряда лососеобразных. Раньше этих рыб относили к семейству лососевых (Salmonidae) в качестве отдельного подсемейства, теперь же их выделили в самостоятельное семейство.

В настоящее время считают, что в семейство хариусовых входят несколько видов и подвидов.

хариус карп бактериальный

Монгольский хариус.

Обитающий в Монголии (Монгольский хариус). Этот вид хариуса считается по праву самым крупным из видов. При длительности жизни в 17 лет, монгольский хариус может достигать веса в 16 килограмм. Спинной плавник серый с красными пятнами. У этой уникальной рыбы сохранились примитивные признаки, указывающие на происхождение хариусов от предков, близких к рыбам семейства лососевых. У монгольского хариуса длинная голова, очень большой рот, конец нижней челюсти которого заходит за задний край глаза. В отличие от других хариусов, у монгольского хорошо развиты зубы на челюстях, головке сошника, небных костях и языке. Спина и бока темно-серые, брюшко светлое. Спинной плавник серый с овальными бледно-красными пятнами и темно-красной каймой. Брюшные, анальный, хвостовой и жировой плавники розовато-сиреневого цвета. Во время нереста появляются эпителиальные бугорки над и под боковой линией.

Эта типичная пресноводная рыба -- летом держится в реках, осенью уходит в озера. Питается круглый год, но летом особенно интенсивно. Основная пища -- личинки насекомых, воздушные насекомые, бокоплавы, моллюски и рыба. Половая зрелость наступает на 5-6 году жизни. Нерестует в апреле-мае в реках и их притоках на галечных отмелях и перекатах. Икру зарывает в бугры, эмбриональное развитие длится около месяца в зависимости от температуры воды.

Среда обитания - внутренние водоемы Северо-западной Монголии.

Американский хариус.

У аляскинского хариуса на относительно небольшом спинном плавнике видны ряды пятнышек-точек. У самцов спинной плавник обычно выше и более округлый, чем у самок, у которых он выше только в передней части. Американский хариус очень привлекателен, ввиду его окраса. Все плавники рыбы в серых полосках, нижний плавник более контрастен в цвете. Все туловище варьируется в оттенках от серебристо-серого до лавандового в золоте. Спина более яркая в тонах. Брюхо светло-серое. По бокам рассыпаны мелкие черные точки в X или V - образных формах. Спинной плавник тоже покрыт мелкими светло-серыми или темно-серыми пятнами. В зависимости от места обитания, американский хариус может быть золотого, серебристого или темно-синего оттенка. Американский хариус также называют и аляскинским хариусом. Обитает в водах Сибири, а также от западной части залива Хадсон через всю северную и центральную части Канады до Аляски. Маленькие популяции могут встречаться в Монтане, Айдахо, также в Вермонте, Вайоминге, Колорадо, Юта, Аризоне, Неваде и Калифорнии.

Очень близок, если не тождествен, с восточносибирским хариусом.

Европейский (обыкновенный) хариус.

Распространение европейского хариуса определяется территориями европейских стран. В частности, его можно встретить от Великобритании до Уральских гор. Отличие от других видов усматривается в том, что данный вид хариуса имеет небольшой размер рта, который не достигает границы переднего края глаз.

Обитание обыкновенного хариуса (европейского) связано с реками, где присутствует быстрое течение, но кормовая база отличается скудностью. Поэтому его рост происходит достаточно долго. Например, лишь к пятому году жизни хариус набирает вес около двухсот граммов. Хотя надо отметить, что если рацион водоема отличается относительно большим разнообразием, то к пятому году жизни хариус может достигнуть полукилограммового веса. Что касается длины тела, то она в среднем определяется пятьюдесятью сантиметрами. Окраска тела отличается яркостью, которая обуславливается пятнышками черного цвета, которые расположены по бокам и на спине. Также на боках можно видеть полоски буроватого оттенка, которые имеют продольное расположение. Плавники, которые являются парными, имеют две стандартных окраски - это желтая или красная. В свою очередь, непарные плавники преимущественно окрашены в фиолетовые тона. Кроме этого, можно отметить присутствие четырехугольных пятен, расположенных на спинном плавнике. Когда наступает брачный период, то окрас получает усиление яркости. Половая зрелость наступает достаточно рано, если сравнивать данный вид хариуса с его сибирскими родственниками. Так, самки достигают половой зрелости ко второму году своей жизни, а самцы на один-два года позже. Самцы доминируют по размерам тела над самками. При этом у них присутствует более яркий окрас, и их спинной плавник выделяется большими размерами. По мнению специалистов, именно данный плавник позволяет создавать самцам завихрения воды, что позволяет удерживать молоки на течении, чтобы оплодотворить икру. Нерест хариуса обычно приходится на апрель или май. Если дело касается северных широт, то здесь нерест может наступать в июне, так как только к этому времени вода достаточно прогревается. В соответствии с возрастом самки ее плодовитость при икрометании может определяться от 3 тыс. до 30 тыс. икринок. Относительно питания хариуса можно сказать, что оно определяется исходя из того, что рассматриваемая нами рыба - это яркий представитель хищников. Например, в рацион этой рыбы могут быть включены не только насекомые, мальки рыб, но и мелкие млекопитающие, которые попадают в воду (мыши). По своему образу жизни европейский хариус является одиночкой. Только иногда можно наблюдать то, как он сбивается в стайки. Хотя можно отметить исключение из правил, например, во время наступления жора в районе перекатов эта рыба образует стаи, которые могут исчисляться сотнями экземпляров. Кроме этого, хариуса относят к тем рыбам, которые предпочитают охотиться в сумеречное время.

Что касается подвидов хариуса, то они представлены в большом количестве:

-хариуса восточносибирского;

-хариуса камчатского;

-хариуса амурского;

-хариуса байкальского белого;

-хариуса байкальского черного;

-хариуса западносибирского.

2. Стадии эмбрионального периода у карпа

Эмбриональный период развития рыб не заканчивается выходом зародыша из оболочки. Он продолжается в течение некоторого времени после выклева, пока предличинка, или свободный эмбрион, обладая ещё рядом эмбриональных особенностей строения органов дыхания, кровообращения, пищеварения и других систем, проходит заключительные этапы эмбрионального развития. После того как начинают функционировать жаберная, пищеварительная и другие системы, деятельность эмбриональных органов прекращается и соответственно кончается период эмбрионального развития.

Следующий период - личиночный - начинается с момента перехода молоди на активное питание внешней пищей. Сначала питание смешанное - остатками желточного мешка и частично внешней пищей, затем полностью экзогенное. Имеются временные личиночные органы (непарная плавниковая кайма, наружные жабры и т. д.), отсутствуют многие- мальковый молодь приобретает форму взрослой рыбы; появляется чешуя, характерные для взрослого органы и функции (например, брюшные плавники и жаберное дыхание через рот), но некоторые органы могут ещё органы взрослой рыбы.

При переходе в следующий период развития - мальковый, молодь приобретает форму взрослой рыбы; появляется чешуя, характерные для взрослого органы и функции (например, брюшные плавники и жаберное дыхание через рот), но некоторые органы могут ещё отсутствовать, например каналы боковой линии. Личиночные органы исчезают.

Карп откладывает икру на растительность в стоячей или слабопроточной воде при температуре обычно 17° С и выше. Его развитие в раннем периоде онтогенеза проходит в этих условиях и приспособлено к ним.

Икра обычно желтого цвета, но встречаются икринки с зеленоватым оттенком, бесцветные и др. Средний диаметр икры 1,5-1,8 мм с небольшим перивителлиновым пространством (относительные размеры 1,25-1,4 мм), она полиплазматическая. По количеству цитоплазмы занимает одно из первых мест среди икры рыб семейства карповых. Диаметр желточного мешка в среднем 1,2 мм. Оболочка икры клейкая. Продолжительность развития икры карпа до выхода из оболочек эмбрионов зависит, прежде всего, от температурных условий. Однако для развития икры и выклева необходимо, как установлено, определенное количество тепла. Для карпа это 60-80 градусо-часов.

Развитие икры карпа (нерестовый пруд, температура воды 20-22 °С) А - только что выметанная икринка; Б - начало дробления бластодиска (морула крупных клеток); В - морула мелких клеток; Г - бластула; Д - обрастание желтка; Е - органогенез

В течение первых суток проходят этапы, предшествующие оформлению тела зародыша.

Образование бластодиска (1-й этап). Начинается сразу после оплодотворения. Примерно через 30 мин в икринках между желтком и наружной оболочкой возникает перивителлиновое пространство, занимающее 3,4-15,4 % диаметра икринки. На анимальном полюсе икринки формируется бластодиск в виде возвышающегося над желтком светлого бугорка.

Дробление бластодиска (2-й этап). Бластодиск разделяется бороздами дробления на бластомеры.

Сначала наблюдается морула крупных клеток, но по мере того, как возрастает число бластомеров, размеры их уменьшаются. Примерно через 5 ч после оплодотворения наблюдается морула мелких клеток.

В целом процесс дробления сопровождается значительными внутренними энергетическими затратами. За этот период показатель АТФ снижается почти в два раза.

В рыбоводной практике на стадиях 4-8 бластомеров второго этапа дают оценку качества икры по нормальному дроблению. Образование неравномерных, асимметрично расположенных бластомеров свидетельствует об аномальном развитии икры. Именно на стадиях дробления от 4-8 бластомеров до ранней морулы определяют и процент оплодотворения икры.

Бластула (3-й этап). Бластомеры уплотняются и отодвигаются к периферии. Образуется бластула, внутри которой имеется полость - бластоцель; желток образует впячивание навстречу накрывающей его бластодерме.

Гаструла (4-й этап). При дальнейшем размножении клеток анимального полюса происходит обрастание желтка: бластомеры как бы сползают в сторону вегетативного полюса, постепенно накрывая его; образуется зародышевый узелок; формируются зародышевые пласты, а из них зачатки органов.

Во время гаструляции происходит существенная структурная перестройка, в результате которой образуются три зародышевых листка: эктодерма, мезодерма и энтодерма.

Обмен веществ во время гаструляции имеет особенности. В этот сфора АТФ и небелкового азота снижается, а количество общего белка увеличивается. Процесс гаструляции является наиболее уязвимым период создаются основы органогенеза. После гаструляции количество фосфора АТФ и небелкового азота снижается, а количество общего белка увеличивается. Процесс гаструляции является наиболее уязвимым к воздействию факторов внешней среды. Гаструляция всегда сопровождается повышенной гибелью икры. Поэтому учет отхода целесообразно проводить после прохождения этой стадии, а не раньше.

К концу первого дня после оплодотворения в икринке имеется зародыш в виде прозрачной зародышевой полоски, лежащей на желтке. Произошла закладка головного и туловищного зачатков, причём головной конец заметен резче, хвостовой конец утончается постепенно, ограничиваясь едва заметно; выявляются участки эмбрионального материала, которые дадут начало хорде, миотомам, кишечной энтодерме, нервной и другим системам.

В течение вторых суток проходят следующие три этапа.

Органогенез (5-й этап). Зародыш увеличивается в размерах: тело утолщается, хвостовой отдел оканчивается перед головным, немного не доходя до него. Формируются головной, туловищный, хвостовой отделы тела и основные органы и системы органов: нервная, мышечная, кишечник и т. д. Примерно через 28 ч после оплодотворения в головном отделе хорошо виден мозг, причем заметно разделение его на передний и задний отделы, четко различимы слуховые пузырьки, глаза продолговатой формы, ещё не имеющие пигмента. В туловищном отделе происходит сегментация хорды. Примерно через 32 ч. после оплодотворения хорошо заметна плавниковая кайма, начинающаяся на спинной стороне тела в задней его трети. Кайма огибает хвостовой отдел и подходит к желтку. Видны также плавниковые складочки на желтке.

Появляется нервно-мышечная моторика (6-й этап). Зародыш начинает временами подергиваться, а затем периодически поворачивается в оболочке. Так как зародыш в это время дышит поверхностью тела (специальных органов дыхания нет), то перемешивание перивителлиновой жидкости при таких поворотах способствует улучшению газового обмена.

Зародыш настолько увеличивается, что хвостовой отдел начинает заворачиваться по поверхности желтка, образуя спираль. В головном отделе просматриваются обонятельные ямки, глазные бокалы, хрусталики, отолиты. В глазах появляется точечный меланин. Сердечная трубка сокращается, но форменных элементов крови ещё нет. Хорошо видна кишечная трубка. Продолжается сегментация тела (в хвостовом отделе). Желточный мешок становится грушевидным.

Начинает функционировать эмбриональная дыхательная система (7-й этап). Так как дефинитивные органы дыхания ещё не сформированы, то дыхательную функцию выполняет сеть кровеносных сосудов: Кювьеровы протоки (лежащие на передней части желточного мешка), нижняя хвостовая вена (в хвостовом отделе тела), сеть сегментальных сосудов в плавниковой кайме (в анальной ее части). В токе плазмы крови появляются форменные элементы. Заканчивается сегментация тела. Появляются грудные плавнички. Усиливается пигментация глаз. Примерно через 52 ч после оплодотворения появляются пигментные клетки над кишечной трубкой, вскоре покрывающие головку зародыша, спинной и хвостовой отделы и желточный мешок. Пигментные клетки (меланофоры) крупные, лежат близко друг к другу (группами). На голове видны зачатки жаберных крышек. На голове и желтке появляются железки вылупления.

К концу вторых - началу третьих суток после оплодотворения начинается последний - 8-й этап развития зародыша в оболочке. Увеличиваются все части тела и просвечивающие сквозь прозрачные покровы органы. Головка зародыша частично обособляется от желтка. В слуховых пузырьках видны полукружные каналы. Отчетливо видна ротовая ямка (рот неподвижный, открытый). Оформляется жаберно-челюстной аппарат. В передней части головы видны клетки, образующие железки приклеивания. Основания грудных плавников расположены наклонно по отношению к оси тела. В плавниковой складке обособляются спинной, хвостовой и анальный участки. Усиливается пигментация тела.

Примерно через 78 ч после оплодотворения начинается массовый выклев молоди. Выклюнувшиеся зародыши, или предличинки (этап развития А, или последний зародышевый), имеют около 5,0-5,2 мм длины. Обращает на себя внимание большой желточный мешок грушевидной формы и прямая (не изогнутая) хорда. Голова немного пригнута вниз. В передней части ее, ближе к глазам, имеются углубления - обонятельные ямки. Хорошо видны сегменты (их насчитывается 38), не одинаковые по величине, они постепенно уменьшаются к заднему концу тела. По спине зародыша, начиная с 9-го сегмента, тянется вдоль тела плавниковая кайма, переходящая на хвост, далее на брюшную сторону и оканчивающаяся на желточном мешке. В хвостовой части плавниковая кайма разделяется задним концом хорды на две равные половины. Плавниковая кайма узкая, недифференцированная, без выемок, расширяется только в хвостовой части, прозрачная, чуть-чуть уплотненная с прилегающей к телу стороны; в спинной и анальной частях пронизана кровеносными сосудами. Грудные плавнички подвижны. Глаза сильно пигментированы. По телу разбросаны пигментные клетки; больше всего их на голове и вдоль спинного и брюшного краев тела, лежат они и на желточном мешке. На голове и спине имеется также желтоватый пигмент.

После выхода эмбриона из оболочки существенные изменения происходят и в обмене веществ. Если гликоген является основным источником энергии эмбриона, то главным в эндогенном питании предличинки является жир. Его запасы в два раза выше (2-2,5 %), чем гликогена (0,7-1,2 %). Меняются и другие показатели обмена. Содержание белка увеличивается до 11-13 %, сухих веществ - до 19-20 %, фосфора - до 300-360 мг%. Эмбрионы питаются только за счет желточного мешка и малоподвижны. Как правило, они висят, прикрепившись к растениям, на которые была отложена икра. Для этой цели у вылупившихся из оболочки эмбрионов карпа имеются специальные органы, которые представлены парными железами, расположенными ниже и впереди глаз. Эмбрионы изредка отрываются и снова прикрепляются. Подобное состояние эмбрионов не только спасает их от врагов, но и способствует лучшему дыханию. На свет они реагируют положительно.

Таким образом, клейкая оболочка икринок, наличие органов прикрепления эмбрионов, способность висеть, прикрепившись к растениям после вылупления, отсутствие светобоязни характеризуют карпа как фитофильную рыбу, приспособленную развиваться в стоячих или медленнотекущих водоемах с заросшим и заиленным дном.

Необходимо обратить внимание на очень важное обстоятельство, которое надо учитывать в рыбохозяйственной практике и особенно в современном рыбоводстве при широком использовании заводского способа получения личинок карпа.

Икра рыб в процессе эмбрионального развития проходит ряд критических периодов, когда наблюдается повышенная чувствительность эмбрионов к различным абиотическим факторам среды (температуре, газовому составу воды, солености, механическому воздействию и др.). Это связано с тем, что в критические периоды происходят значительные изменения в перестройке обмена веществ развивающегося эмбриона.

Критическими периодами в развитии икры карпа, как у большинства нерестящихся весной рыб, являются, следующие стадии: начало дробления до морулы мелких клеток, гаструляция, стадия перед выклевом и в период выхода эмбриона из оболочки. Именно на этих стадиях эмбриогенеза, особенно в начале дробления, вступления икры в стадию ранней гаструлы и замыкания желточной пробки, перед вылуплением и в момент выхода эмбриона из оболочки, наблюдается повышенная гибель эмбрионов. После прохождения критического периода гибель эмбрионов наблюдается не сразу, а спустя некоторое время, чаще перед наступлением следующей стадии развития.

В момент критических периодов необходимо особенно стремиться к созданию оптимальных условий для развития икры: поддерживать в инкубационных аппаратах постоянный и повышенный расход воды, не допускать резких (более 2 °С) температурных перепадов, оберегать икру от различных механических воздействий и т. д.

3. Профилактические мероприятия на рыбоводных предприятиях при бактериальных заболеваниях

Борьба с болезнями рыб ведется путем их предупреждения или профилактики (от греч. prophylaktikos -- предохранительный) и лечения, или терапии (от греч. terapeia -- лечение).

Профилактику, или предупреждение заболеваний, осуществляют до возникновения массового заражения и заболевания рыбы.

Профилактика -- это комплекс мероприятий, направленных на предупреждение возникновения заболеваний и сохранение здоровья рыб. Предупреждение заболеваний в аквакультуре является главной задачей современной ихтиопатологии, основным путем решения проблемы борьбы с болезнями рыб. Часть ее может быть решена на этапе проектирования и строительства рыбоводных предприятий.

Интенсивное развитие мировой морской и пресноводной аквакультуры привело к выявлению большого числа бактериальных заболеваний, возбудителями которых являются одноклеточные микроорганизмы -- бактерии, относящиеся к прокариотам. Бактерии чаще всего имеют длину до 1 мкм и ширину до 0,5 мкм, однако встречаются и более крупные или более мелкие формы. Для них характерны те же структуры, что и для клеток животных и растений: оболочка, цитоплазма, ядерный аппарат и цитоплазматические включения.

Оболочка бактерий имеет сложную структуру, состоящую из трех частей: цитоплазматической мембраны, клеточной стенки и слизистого слоя. При утолщении слизистого слоя его называют капсулой, которая предохраняет бактериальную клетку от внешних воздействий.

Цитоплазма-- вязкое коллоидное вещество, состоящее из белков, воды, нуклеиновых кислот и других химических соединений. Сформированного ядра бактерии не имеют, их ядерный аппарат представлен хроматиновыми образованиями, называемыми нуклеотидами. Они не ограничены мембраной, имеют неправильную, разветвленную форму, содержат обе нуклеиновые кислоты (ДНК и РНК) и белок. В цитоплазме бактерий имеются различные включения: крупинки гликогена, крахмала, капли жира, кристаллы некоторых кислот и др.

Размножаются бактерии путем поперечного деления. Некоторые бактерии в определенных условиях образуют споры, которые выделяются в окружающую среду при разрушении самой клетки. Такие споры очень стойки к неблагоприятным условиям, в том числе к высоким температурам, ядовитым веществам и т. д.; из споры образуется новая бактерия.

Многие бактерии имеют жгутики, благодаря которым они двигаются. Различают одно-, многожгутиковые формы и формы, снабженные пучком жгутиков на одном или обоих полюсах (монотрихи, перитрихи, лофотрихи). Некоторые бактерии могут образовывать пигмент. У одних бактерий он выделяется в окружающую среду, у других -- пигмент окрашивает саму бактериальную клетку.

Современные методы интенсификации рыбного хозяйства способствуют активизации представителей водной микрофлоры, что приводит к нарушению равновесия между микро- и макроорганизмами, возникновению и распространению бактериальных болезней рыб.

Бактериальные болезни чаще всего вызываются возбудителями, являющимися строгими (облигатными) патогенами для рыб. Они не могут длительное время выживать в воде в отсутствие восприимчивого хозяина -- рыбы. Другие бактерии, являющиеся факультативными патогенами, обычно обнаруживаются в почве и воде. Они становятся вирулентными при определенных условиях и поражают рыб, когда у последних снижается уровень резистентности. Такие условия, как переуплотненные посадки, некачественный корм, хендлинг, паразиты, низкое содержание кислорода, неблагоприятные температура воды или рН, накопление продуктов метаболизма, снижают устойчивость организма рыб к возбудителям.

Для выделения бактерий и их дальнейшего изучения у живой рыбы стерильно берут материал из внутренних органов и крови, не допуская контакта с кожей и содержимым кишечника.

Посев материала проводят на плотные пластинчатые среды в чашках Петри. Кусочки исследуемого материала помещают на поверхность среды и растирают или при помощи пинцета с изогнутыми браншами, или стеклянным шпателем. При таком способе посева получается истинная картина уровня микробной контаминации внутренних органов. У выделяемых культур обязательно определяют чувствительность к антибактериальным препаратам методом диффузии в агаре с помощью индикаторных дисков или методом серийных разведений.

Для уточнения этиологической роли выделенного возбудителя изучают его вирулентные свойства. Традиционным методом является постановка биопробы. Для этого необходима рыба из благополучного хозяйства, соответствующей возрастной группы и вида. Для определения степени вирулентности выделяемых штаммов широко используется метод определения ДНК-азной активности, который позволяет на одной чашке проверить одновременно 16--20 культур.

В качестве патогенных и условно-патогенных бактерий у рыб согласно Определителю бактерий Берджи встречаются представители группы 4, родов Acinetobacter, Alcaligenes, Flavobacterium, Moraxella, Pseudomonas; группы 5, подгруппы 1, сем.Enterobacteriaceae, Edwardsiella, Enterobacter, Klebsiella, Proteus, Yersinia; подгруппы 2, сем. Vibrionaceae родов Aeromonas, Plesiomonas, Vibrio; группы 15, подгруппы 1, родов Cytophaga, Flexibacter и некоторые другие.

Для лечения и профилактики бактериальных болезней широкое применение нашли нитрофураны, сульфамидные препараты и антибиотики. Бесконтрольное использование их приводит к развитию устойчивости к ним микроорганизмов и даже формирует у них антибиотикозависимость. Применение в таких случаях лекарственных препаратов только ухудшает ситуацию. В связи с этим перед применением антибактериальных препаратов необходимо определить чувствительность к ним выделенных штаммов и выбрать наиболее эффективные.

Прогрессивным методом профилактики бактериозов является использование вакцин и биопрепаратов. В мировой практике уже применяется ряд коммерческих вакцин против вибриоза, фурункулеза, йерсиниоза, бактериальной почечной болезни.

В нашей стране успешно прошло производственное испытание биохимической вакцины ВЮС-2 против бактериальной геморрагической септицемии и бактерина при вибриозе.

Все более широкое применение в пресноводной аквакультуре России находят пробиотики. Такие микробные биопрепараты, как азогилин, лактобактерин и субалин, нормализующие бактериальную флору, благотворно влияют на организм рыбы, повышая его общую резистентность.

Список литературы

1. Рыбоводство.-М.:Мир,2004.-456с., ил.-(Учебники и учеб. пособия для студентов высш. учебных заведений).

2. Козлов В.И. Справочник рыбовода.-М: Россельхозиздат, 2005.-224с. Изд 4-е

3. Ветеринарная санитария в рыбоводстве.- М.:Агропромиздат, 1986.- 280 с.

4. Интернет ресурсы: http://forelius.ru/, http://dic.academic.ru/, http://ribol-off.ru/, http://ribovodstvo.com/

Размещено на Allbest.ru