Метод, снижающий экологическую опасность F.necrophorum

Размещено на http://www.allbest.ru/

Министерство сельского хозяйства Российской Федерации

Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования

Белгородская государственная сельскохозяйственная академия им. В.Я. Горина (Бел ГСХА им. В.Я. Горина)

Отчет

Метод, снижающий экологическую опасность F.necrophorum

Проректор академии по научной работе, д. эк. н.

А.В. Колесников

Руководитель и исполнитель темы: д.в.н., профессор

К.В. Мельникова

Белгород 2013

Реферат

Некробактериоз, крупный рогатый скот, этиология, клиника, антибиотикотерапия

Впервые разработан способ, снижающий экологическую опасность некробактериоза путем применения высокоэффективного препарата для лечения и профилактики болезни.

Объектом исследования были коровы, больные некробактериозом.

Цель работы - изучить этиологию болезней копытец и разработать эффективные методы лечения и схемы профилактики болезней конечностей у крупного рогатого скота.

В процессе работы выполнены бактериологические исследования 18 проб пат. материала. В результате исследований в хозяйстве впервые был установлен некробактериоз.

В результате исследований был получен высокий лечебный эффект (87 %) при применении ривициклина в комбинации с санирующей повязкой (технологичных и относительно не дорогих препаратов) при некробактериозе.

Степень внедрения - завершен экспериментальный цикл работы. Установлена оптимальная концентрация ривициклина при его наружном применении, эффективность применения препарата в сочетании с санирующей повязкой.

Данная работа явилась производственным опытом разработанного метода, которая завершилась положительным результатом.

Эффективность метода определяется получением прибыли за счет восстановления молочной продуктивности животного, а также за счет предотвращенного вынужденного убоя и заражения внешней среды.

Согласно исследованиям Федерального центра охраны здоровья животных (2012 г.), высокопродуктивные коровы наиболее часто выбывают из стада в связи с поражением конечностей (21,2-24,3%). Нарушение обмена веществ отмечается у 22-22,9%, заболевание органов пищеварения у14-14,5%, органов воспроизводства у 8,8-13,9% и маститы у 6,5%. Все эти органы связаны морфологически, через кровеносную и лимфатическую системы. Поэтому эти болезни обычно сопровождают друг друга (11).

Значительные потери, наносимые некробактериозом экономике животноводства, а также его широкое распространение требует серьезного внимания и приложения больших усилий в направлении скорейшей разработки и внедрения эффективных методов лечения и профилактики некробактериоза в конкретных условиях хозяйства (5).

Распространение Fusobacterium necrophorum происходит с завозом больных и переболевших животных. По литературным данным поддержание инфекции в хозяйстве происходит также за счет больных и переболевших животных, так как возбудитель болезни сохраняется во внешней среде не более двух недель (3,18).

Изучение причин гнойно-некротических поражений пальцев у крупного рогатого скота на отдельно взятой ферме, изыскание эффективных и безвредных для окружающей среды методов лечения и профилактики являются важными вопросами современной ветеринарии (6,9).

Одним из древних и наиболее распространенных методов снижения количества восприимчивых животных к некробактериозу является обработка копытец в ваннах (6,14).

Для ванн были предложены довольно сильные химические препараты: формалин (19), меди сульфат (15), цинка сульфат (5).

Однако, установлено, что эти препараты являются небезопасными для здоровья животных. И от того, как их будут применять, зависит их позитивное и негативное действие.

Известен способ лечения и профилактики некробактериоза жвачных животных путем прогона их через ванну с 10%-ным раствором формалина, 10%-ный раствор меди сульфата (1). В то же время и тот и другой растворы, при массовых обработках животных, интенсивно загрязняют окружающую среду. В связи с этим был разработан более экологичный метод применения формалина в виде санирующей повязки (8).

Предложенная рядом исследователей (14) схема оздоровления хозяйств, включающая ежедекадную очистку и дезинфекцию помещений, выделение из стада и лечение больных животных, профилактическую обработку всего поголовья, оказалась громоздкой, трудоемкой и недостаточно эффективной в крупных специализированных хозяйствах из-за отсутствия эффективных и технологичных препаратов.

Арсенал индивидуальных методов и средств лечения коров, больных некробактериозом разнообразен, но, к сожалению, они редко отвечают современным требованиям, как с позиции терапевтической эффективности, так и экономических расчетов.

В ветеринарной практике с 2006 года для лечения животных при желудочно-кишечных и респираторных заболеваниях применяют ривициклин А фирмы ООО НПП БИО . В своем составе он содержит 12,5% тетрациклина и 3% рифампицина. Механизм антимикробного действия ривициклина А связан с подавлением белкового синтеза микробной клетки (блокада функции рибосом и блокада синтеза РНК).

К сожалению, мы не нашли в доступной литературе сообщений о возможности применения ривициклина при некробактериозе.

В эпизоотологии некробактериоза, кроме наличия клинически больных животных в стаде, активно выделяющих Fusobacterium necrophorum во внешнюю среду, немаловажную роль играет наличие сырости в стойле или в выгульном дворе. При этом установлено, что длительное содержание животных в сырых холодных занавоженных помещениях вызывает мацерацию кожи и размягчение твердого наконечника пальцев. Рог становится мягким, малодифференцированным, легко поддается деформации и воздействию микроорганизмов (6, 7).

В то же время, такой вопрос как можно снизить риск заболевания животных некробактериозом при содержании их в неблагоприятных условиях, остается неизученным.

При естественном переболевании коров некробактериозом иммунитет практически не создается, и титры специфических антител повышаются незначительно (10).

Работы ученых нашей страны, Австралии, Новой Зеландии, Англии показали возможность иммунизации коров против некробактериоза (8,17). Однако, вакцинопрофилактика некробактериоза - это только дополнение к лечебно-профилактическим мероприятиям в общем плане ликвидации инфекции. Основными методами борьбы с заболеванием остаются различные лечебные препараты.

Проведение лечебных мероприятий в общем комплексе мер борьбы с некробактериозом способствует устранению источника инфекции, заражающего окружающую среду, и восстановлению продуктивности коров. Выполнение противоэпизоотических мероприятий при некробактериозе усложняется возможностью постоянного заражения животных через кожу копыт.

Применение сложных композиций в области копыта позволило бы снизить расход препаратов и повысить их эффективность (13, 16).

Таким образом, из литературных данных видно, что борьба с некробактериозом включает, главным образом, лечебную и профилактическую обработку животных, очистку и дезинфекцию помещений.

В задачу наших исследований входило:

1. Установить этиологию заболевания копытец у коров;

Разработать курс лечения и оптимальные сроки применения препарата, содержащего ривициклин, одного и в комбинации с санирующей повязкой при некробактериозе коров (копытная форма).

При установлении диагноза, совместно со специалистами хозяйства разработать систему лечебно-профилактических мероприятий по ликвидации заболевания.

Методика исследований

В неблагополучном по болезням копытец хозяйстве проводили клинические и бактериологические исследования. Изучали эффективность проводимых лечебных и профилактических мероприятий. При этом учитывали состояние кормовой базы, структуру и качество рациона, условия содержания животных, санитарное состояние помещений.

Организационно-хозяйственные мероприятия.

Стимуляция естественной резистентности организма и в том числе кожного покрова проводилась путем скармливания полноценного и доброкачественного корма и улучшения условий содержания (исправление дефектов деревянных настилов и других строительных и хозяйственных недоделок). Во время выездов в хозяйства изучали причины появления массовой хромоты у животных, при этом исключали хромота неинфекцной этиологии (перекорм концентратами, наминки, остит, ламинит и др.).

Методика определения влияния болезней копытец на здоровье коров включает определение сроков проявления массового поражения копытец.

Для более детального изучения влияния лекарственных препаратов на возникновение и течение болезней у коров проведены наблюдения и общие гематологические исследования при естественном течении инфекции. Посредством визуального наблюдения установлены следующие признаки и соответствующие им заболевания:

- плотное припухание венчика - остит;

- болезненное припухание и покраснение кожи венчика - ламинит;

- болезненное припухание и ограниченное покраснение кожи венчика - челночный бурсит, артрит копытцевого сустава и др. (П. Гринаф, Ф. Маккалум, А. Уивер, 1976).

Эпизоотологические и морфологические исследования причин возникновения и распространения пододерматитов проведены с целью уточнения наличия в хозяйстве условий для осуществления непрерывности эпизоотологической цепи.

При этом учитывалась вся работа, проводимая как среди поголовья коров, так и по обеспечению санитарного уровня помещений и выгульных дворов. Вначале устанавливали источник болезни, первые действия зооветспециалистов при появлении заболевания, проводились наблюдения за неблагополучным стадом, условиями кормления и содержания. Устанавливали период времени, необходимый для перезаражения всего поголовья.

Такой подход обеспечил выяснение сложного комплекса явлений с биологической основой, развивающихся под влиянием природных и хозяйственных факторов.

Результаты наблюдений учтены по времени появления первых клинических признаков, количеству заболевших животных, бактериоскопии мазков-отпечатков. Для этого проведены клинический осмотр всего подопытного поголовья и бактериоскопия мазков-отпечатков, приготовленных из пораженных конечностей коров.

На основании анализа влияния и связей этих факторов в различные сезоны года (весна, лето, осень), сравнивая эти факторы с предшествующим годом, выявлены некоторые закономерности в возникновении и распространении заболевания.

Патоморфологические изменения у крупного рогатого скота при копытной форме некробактериоза разнообразны как по характеру поражения тканей дистального отдела конечностей, так и по гистологическим формам (Н.Н. Александровская с соавт., 1990; Шокуров М.Ш. с соавт., 1995; Taussant R.E.,1969; Greenough P.R., 1987). Однако в ветеринарной практике бывает необходимо определить влияние на состояние пораженных тканей пальцев различных препаратов, применяемых при лечении некробактериоза. Полезным тут могут быть патологоанатомические исследование.

Диагноз на некробактериоз ставили на основании клинико-эпизоотологических данных и результатов микробиологических исследований. Отбор проб пат. материала проводили до, и после лечения путем отбора экссудата с помощью скальпеля. Полученный биоматериал наносили на предметное стекло, высушивали на воздухе, фиксировали над пламенем горелки, окрашивали по Граму.

В качестве санирующего средства применяли формалинсодержащий препарат, патогенетическая терапия включала обработку пораженных участков кожи мазью ривициклина трехкратно с интервалом два дня. Фотосъемку микропрепаратов проводили с применением микроскопа МБИ 15 и цифровой фотокамеры.

Наши исследования показали возможность применения метода бактериоскопии для изучения изменения микрофлоры в пораженном копытце животного. В качестве исследуемого материала использовали гнойно-некротические ткани с поверхности раны очищенного и обрезанного копыта. От каждого животного готовили по три мазка - отпечатка до и после лечения.

Мазки сушили на воздухе, фиксировали нагреванием и окрашивали по Граму, а затем исследовали под световым микроскопом. Учет микрофлоры проводили в 7-10 полях зрения по всей длине мазка, подсчитывали и выводили М +m. Всего подвергнуто бактериоскопическому исследованию 18 мазков-отпечатков.

Общие гематологические и биохимические исследования крови

Для изучения влияния Fusobacterium necrophorum и применяемых препаратов на общее состояние организма животного проведены гематологические и биохимические исследования крови.

У трех коров, больных некробактериозом и подвергнутых лечению, и у трех коров подозрительных в заболевании некробактериозом (не леченный контроль) брали пробы крови до лечения и через 10 дней после окончания курса лечения. Подсчет эритроцитов, лейкоцитов в 1мм³ крови проводили в камере Горяева, содержание гемоглобина - гемометром Сали. При изготовлении мазков крови и выведении лейкограммы пользовались указаниями по гематологическим исследованиям. (Клиническая лабораторная диагностика в ветеринарии. - М., 1985). СОЭ определяли с использованием аппарата Панченко. Сумму иммуноглобулинов и цинка в сыворотке крови определяли с использованием наборов фирмы «Лахема». Определение гистамина в моче. Для этого в пробирку набирали 5 мл мочи и кипятили над спиртовкой. Если в процессе кипячения моча приобретала черный цвет - результат на гистамин был положительным

Снижение раздражающих свойств формалина при гнойнонекротических поражениях пальцев

Основная задача специалистов хозяйств, где встречаются гнойно-некротические поражения пальцев состоит в профилактике инфекций (копытной гнили, некробактериоза), передающихся через почву. В последние годы применяются для этих целей антибактериальные препараты: синтомициновая эмульсия, цинковая мазь. Однако высокая эффективность этих препаратов возможна только в комбинации с санирующими средствами (формалин или меди сульфат). Большую опасность при этом представляют повышенные раздражающие свойства применяемых дезинфицирующих средств.

Поэтому особую роль приобретает защита животных от вредного воздействия химиопротектантов. Для опыта по принципу аналогов было отобрано 14 коров, которых разделили на 2 группы, по 7 коров в каждой группе. Животных содержали в условиях общепринятых для данной зоны.

Результаты исследований

Визуально исследовано 172 коровы чернопестрой породы дойного стада и 103 коровы в запуске на предмет поражения конечностей. В результате обследования с патологией конечностей (хромота различной степени) установлена у 27 (20,5%) животных первой группы и у 38 животных второй группы.

При общем обследовании хозяйства (состояние кормовой базы, структуры и качество рациона, условий содержания животных, санитарного состояние помещений, а также отсутствие в моче у коров гистамина и массового опухания венчика) установили, что в весенне-летне-осенний период по всем параметрам хозяйство отвечает общим требованиям для данной отрасли.

Хозяйство считается благополучным по некробактериозу, но в весенний и осенний периоды появляется много (40-60%) животных с поражением дистального отдела конечностей. Для уменьшения количества больных животных и недопущения снижения удоя молока и вынужденного убоя всех животных один раз в неделю в хозяйстве пропускают через 10%-ный раствор меди сульфата. Невылечинных таким способом животных специально обученные люди проводит расчистку и обрезку копытец. При обнаружении патологического процесса лечат выделенных животных порошком меди сульфата и спреем террамицина, содержащим окситетрациклин, с наложением ватно-марлевой повязки. Обычно обработку коров проводят в разгар энзоотии (Л.Т. Майгулакова, 1992; М.С. Саввинова, 1992; M. Chiczewski, T. Ratkiewiecz, 1996), когда появляется много больных коров с тяжелыми поражениями, в результате получают минимальный эффект.

Этот метод не позволяет профилактировать заболевание у всех животных, а лишь у 68-73%, что связано с устойчивостью возбудителя к окситетрациклину и меди сульфату, а также отсутствие эффективного графика обработок. В результате в стаде постоянно находятся больные некробактериозом животные (5-7%), которые в период повышенной влажности и пониженной температуры являются источником инфекции и обеспечивают развитие энзоотии.

Одним из важных моментов в борьбе с болезнями копытец является установление точного диагноза и прогнозирование массового заболевания.

Диагноз на некробактериоз ставится бактериоскопически. При окраске по Граму 18 мазков - отпечатков, приготовленных с поверхности ран, F.necrophorum, в виде длинных цепочек из грамотрицательных палочек, обнаружен в 16 (89%).

Нами экспериментально установлено, что безопасным для животных является режим, когда применяют 10%-ный раствор меди сульфата не чаще одного раза в неделю в течение одного месяца весной и осенью. При применении раствора меди сульфата, даже 5%-ной концентрации, но 2 раза в неделю, через 5-6 недель у животных появляется гиперплазия кожи (веррукозный дерматит, рис.5) межкопытной щели (Мельникова К.В., 1980).

При уменьшении интервала между обработками до двух дней, через 4-5 недель у 70% животных обнаруживали в разной степени раздражение и даже абсцессы и трещины в межкопытной щели, а через некоторое время регистрировали рецидивы некробактериоза. У 12% животных был установлен очаговый дерматит на туловище и конечностях (рис.6), причиной которого может быть недостаток цинка или миксоматоз, или нарушение обмена веществ.

Нами установлено, что концентрация цинка в сыворотки крови, как у больных, так и у здоровых животных составляет 130-154 мкг/%.

Из 23 обследованных животных, обработанных 10%-ным раствором меди сульфата хромота на одну или две конечности, болезненность в области венчика и межкопытной щели установлена у 8 (№№ 1447, 1290, 1619, 1917, 2000, б/н, 1459, 1153). У коров №№ 1459 (ЛЗ), 1290 (ПЗ), 1153 (ЛП) поражения кожи плантарной части мякиша были в виде изъязвлений, покрытых ихорозным экссудатом.

Формалин и меди сульфат в 5-10%-ной концентрации и экспозиция 2-3 мин., однократно за две недели до начала массовых поражений копытец оказывает наилучший лечебно-профилактический эффект 77-81% (Мельникова К.В., 1980).

При изучении антибактериального действия различных препаратов, нами установлено, что по антимикробному действию практически идентичными оказались все антибиотики - специфические ингибиторы синтеза клеточной стенки микроорганизма из группы бензилпенициллина и его полусинтетических производных (МПК в ЕД / мл: 1,8 + 0,4 - 2,5 + 0,9). Но наиболее чувствительным (1,6 + 0,6 мкг/мл) F.necrophorum был к тетрациклину хлориду (Мельникова К.В., 2008); по литературным данным (Маслухин Б.В., 1974; Тришкина В.Т., 1975 - 0,4 мкг/мл, Саркисов К.А., 1968 -0,13-0,02 мкг/мл).

Лечение коров, больных некробактериозом ривициклином в комбинации с санирующей повязкой проводили после обрезки и расчистки больных копытец. Расчистку проводили как с помощью фрезы, так и с помощью копытных щипцов (рис.7). Препараты наносили как с помощью шпателя, так и непосредственно рукой. Животное фиксировали в специальном станке. Осмотр животных проводили через 4 дня после проведенного курса лечения.

Таблица 1. Результаты лечения коров, больных некробактериозом, ривициклином (n=7) через 10дней после лечения, гол./%

Из данных таблицы 1 видно, что степень выздоровления животных, леченных ривициклином значительно выше, чем цинковой мазью.

Таблица 2. Результаты лечения коров, больных некробактериозом, ривициклином в комбинации с санирующей повязкой (n=3) через 10дней после лечения (гол./%)

Данные опыта, приведенные в таблице 2, свидетельствуют о высокой лечебной эффективности комбинированного способа лечения ривициклином и санирующим препаратом).

Таблица 3. Гематологические показатели при применении ривициклина в комбинации с санирующей повязкой (n=3)

Примечание:1 - нелеченный контроль; 1¹ нелеченный контроль через 10 дней после начала опыта,2 - подопытная группа коров до лечения; 2^{1 -} подопытная группа коров через 10 дней после лечения;

Результаты исследований, приведенные в таблице 3, свидетельствуют о значительном лейкоцитозе и эритропении у животных больных некробактериозом и восстановлении этих показателей после лечения.

Таблица 4. Количество цинка и иммуноглобулинов в сыворотке крови у коров подопытных и контрольных групп до и после лечения (n = 3)

Из приведенных в таблице 4 данных видно, что у полопытных животных количество иммунноглобулинов значительно превышает норму, что можно объяснить иммунным ответом организма на развитие в нем вирулентных штаммов возбудителя.

Таблица 5. Результаты лечения коров, больных некробактериозом, ривициклином в комбинации с санирующей повязкой (n=22) через 10дней после лечения гол./% в сравнении с 10%-ным раствором формалина. Контрольную группу обрабатывали 10-%-ным раствором формалина при экспозиции 5-6.мин.

Из данных таблицы 5 видно, что применение ривициклина в комбинации с санирующей повязкой эффективнее, чем применение 10%-ного раствора формалина на 26%.

На основании проведенных исследований можно сделать следующие выводы:

1. Основным возбудителем, вызывающим поражения копытец является F.necrophorum. При несвоевременном лечении возбудитель вместе с ихорозным экссудатом выделяется во внешнюю среду, заражая ее и здоровых животных.

2. F.necrophorum экологически опасен, так как через зараженную им почву могут инфицироваться не только коровы, но и другие животные, и даже люди.

3. Оздоровление стационарно неблагополучного хозяйства необходимо начинать в теплый период года с разделения поголовья на условно благополучное и подозрительное в заражении.

4. В стационарно неблагополучных по некробактериозу хозяйствах обнаружено от 4 до 7 % коров с признаками некробактериоза. При этом нередко болезнь проявляется в сухостойный период у коров в виде эрозий, язв, открытых раневых повреждений дистального отдела конечностей.

5. Основными морфологическими показаниями для применения санирующей пасты, можно считать появление (2-5%) животных с альтернативными процессами в коже (эрозии, изъязвления, трещины) и воспалительных процессов в дистального отделе конечностей

6. Для клинически здоровых животных необходимо строить летние лагеря на новом месте. Всю территорию под остальным поголовьем тщательно чистят и дезинфицируют. Больных животных лечат до полного выздоровления. Для стимуляции иммунной системы применяют тимоген. Подозрительных в заражении животных пропускают трехкратно через дезинфицирующие растворы.

7. Проводить профилактическую работу в индивидуальном секторе.

8. После проведения оздоровительных мероприятий в хозяйстве, телят, полученных от клинически здоровых коров необходимо содержать изолировано.

9. При появлении некробактериоза в хозяйстве, больных животных необходимо изолировать и лечить до полного выздоровления. Полы и почва не должны быть источником заражения.

Практическое предложение

Для лечения коров, больных некробактериозом, предлагается применять ривициклин А в 10%-ной концентрации на синтомициновой эмульсии местно в комбинации с санирующей повязкой. Для профилактики болезни копытца у клинически здоровых животных предлагается обрабатывать дистальный отдел конечностей формалинсодержащим препаратом.

некробактериоз лечение рогатый скот

Размещено на Allbest.ru