Выявление наиболее эффективных и малотоксичных средств терапии аскариоза свиней

Размещено на http://www.allbest.ru/

Введение

В настоящее время перед животноводством поставлены большие задачи для решения, которых требуется использовать весь потенциал этой отрасли. Для чего требуется исключить неблагоприятные факторы, мешающие использованию продуктивных качеств животных. К таким факторам относят различные заболевания заразной и незаразной этиологии, в том числе гельминтозы (И.Архипов, 2009).

Сложность биологического цикла развития гельминтов даёт возможность при использовании различных методов и приёмов, обеспечить разрыв в цепи воспроизводства. К их числу относятся гигиена кормления и содержания животных, рациональная смена пастбищ, правильное поение. Положительный эффект оказывает пропаганда научных знаний в области гельминтологии и о мерах профилактики (Сафиуллин Р.Т., 2010).

Комплексное применение этих мероприятий позволяет эффективно бороться с заболеваниями при нынешней технологии интенсивного животноводства.

Успех борьбы с гельминтозами зависит и от разработки современных лечебно-профилактических мероприятий.

Сейчас, в наше время, перед ветеринарной наукой стоит задача создание устойчивых к болезням пород и линий животных, путём изменения в генотипе.

Эти качества необходимы, так как в настоящее время всё больше и больше применяют химические препараты в земледелии и животноводстве оказывающие вредное влияние на животных и человека и загрязняющие окружающую среду. Одновременно возрастают и запросы потребителей высококачественной мясной продукции (Фендриков П.С., 2010).

Поставщику мясной продукции остаётся приспособить своё производство ко всё усложняющейся ситуации. Такие понятия, как марочное мясо, мясо эксклюзивного качества, гарантия качества продукции, контрольные штампы, сертификаты качества и пр., всё глубже проникая в первичную среду производства продукции - сельское хозяйство, уже стали расхожими в животноводстве.

Широко обсуждаемое «альтернативное» обследование мясной продукции также предполагает первоочерёдность ветнадзора на предприятии. Согласно этой концепции меняются местами роли хозяина - свиновода и ветврача, которого рассматривают не в качестве подсобной силы, вызываемой, по усмотрению заводчика, в критических случаях, но - как силу ведущую, обеспечивающую изначальное здоровье животных и препятствующую возникновению таких случаев (Украинец В.Л., 2007).

Однако регулярный ветеринарный надзор эффективен только в условиях тесного сотрудничества животновода и ветврача и является частью союза, как отдельных специалистов, так и племенных ферм, животноводческих объединений, консультаций по содержанию, производителей кормов, исследовательских лабораторий и боен. Бойни поставляют ценные сведения об имевшихся у забитых животных патологических изменениях и поставщику гурта, и ветеринарным органам.

Такая система требует от владельца подробных знаний о болезнях, могущих возникнуть среди поголовья, о поведении больных животных, об уходе за ними, а, главное, о мерах предупреждения заболеваний. Тогда и взаимодействие с курирующим хозяйство ветеринарным врачом будет значительно более плодотворным (Гельвиг Э.-Г., 2003).

В настоящее время в целях рационального научно обоснованного планирования профилактических мероприятий и материально-технического обеспечения, прогнозируются эпизоотологические ситуации по гельминтозам. Особое значение в прогнозировании эпизоотологической ситуации играет ретроспективный анализ заболеваемости животных.

Актуальность работы

Свиноводство является наиболее скороспелой отраслью животноводства и ей принадлежит главная роль в увеличении и производства мяса, и высококачественных продуктов питания. Однако гельминтозные заболевания наносят немалый ущерб этой высокопродуктивной отрасли. Наиболее распространёнными и опасными является аскариоз свиней (Беспалова Н.С., 2008).

Аскариозная инвазия негативно влияет на организм свиней, особенно это касается молодняка, среди которого, очень часто, наблюдают гибель. Аскариоз существенно влияет на гомеостаз организма свиней, вызывает у животных вторичные иммунодефициты, дизбактериозы и тем самым приводит к изменениям иммунного статуса организма (Бузмакова Р.А., 2010).

Анализируя состояние современного свиноводства можно говорить о том, что увеличению поголовья и повышению продуктивности животных часто препятствуют различные гельминтозные заболевания (В.А.Габдулин, 2000; Р.Т. Саффиулин, С.Е. Басынин, 2008).

Ветеринарными специалистами проводится большая лечебно-профилактическая работа в хозяйствах для борьбы с гельминтозами. Но дегельминтизации нередко проводится без учёта гельминтозной ситуации, поэтому эффективность противопаразитарных обработок снижается (Р.Т. Сафиулин, 1999). По данным А.А.Черепанова (1998), если постоянно применять одни и те же антгельминтики у паразитов развивается устойчивость к их действию, что говорит о необходимости внедрения высокоэффективных препаратов.

Учитывая всё это, свиней каждый год подвергают лечебно-профилактическим дегельминтизациям с целью ограничения заражённости и постепенного оздоровления поголовья. Для лечения аскариоза свиней предложен огромный ряд препаратов, но многие из них являются импортными и из-за своей высокой цены не всегда доступны для промышленного свиноводства. Поэтому изучение антгельминтных свойств новых отечественных препаратов является весьма актуальным.

Целью данной работы является выявление наиболее эффективных и малотоксичных средств терапии аскариоза свиней и профилактики.

Для достижения указанной цели были поставлены следующие задачи:

Выяснить распространение заболеваемости поросят на доращивании аскариозом в свинокомплексе Мираторг-Белгород.

Определить интенсивность и экстенсивность инвазии.

Установить антгельминтную эффективность при аскариозе свиней альбендазола и фенбенграна.

Научная новизна. Изучено распространение аскариоза поросят на свинокомплексе Мироторг-Белгород. Установлено что, на промышленных комплексах с отложенной технологией производства свинины заражённость свиней аскаридами значительно ниже. Изучена антгельминтная эффективность альбендазола и фенбенграна при аскариозе поросят на доращивании. Выявлена высокая эффективность препарата фенбенграна.

Практическая ценность. На основании проведённых исследований для дегельминтизации поросят на доращивании предложен препарат фенбенгран, т.к он является малотоксичным и обладает наиболее эффективным действием не только на половозрелых аскарид, а также на личинок и яйца возбудителя.



1.Обзор литературы

Аскариоз свиней - заболевание, вызываемое нематодами Ascaris suum, семейства Ascaridae, класс Nematoda.

Инвазия, широко распространённая среди свиней, наиболее восприимчивы к аскариозу поросята в возрасте 3 - 6 месяцев. Взрослые животные болеют аскариозом редко, они, как правило, являются паразитоносителями.

Заболевание характеризуется пневмонией (когда происходит миграция личинок через лёгкие), резким отставанием в росте и развитии поросят. Также аскариоз сопровождается поражением желудочно-кишечного тракта и понижением сопротивляемости организма различным другим заболеваниям (Н.А.Слесаренко, Ф.И.Василевич, А.В.Жаров и др., 2005).

Ущерб от аскариоза складывается из:

1. Значительных потерь вследствие переболевания и гибели поросят;

2. Снижения на 30% продуктивности свиноводства;

3. Поросята, поражённые аскаридами, плохо откармливаются;

4. При интенсивной инвазии наблюдается гибель.

1.1 Этиология возбудителя

Молодые и половозрелые формы Ascaris suum паразитируют в тонком отделе кишечника. А личинки поражают внутренние органы (печень, лёгкие, лимфатические узлы), вызывая патологические изменения аллергического характера (М.Ш.Акбаев, Ф.И.Василевич, Р.М.Акбаев и др., 2008).

Нематода крупная, белого цвета. На головном конце имеются три губы. Две из низ, брюшно-боковые одинаковые, края обрамлены мелкими зубцами. Губа, расположенная со спинной стороны имеет два крупных сосочка, край её покрыт мелкими зубцами.

Самка крупнее самца, её длина 23 - 30 см и 0,5 см толщины. Отверстие вульвы располагается в передней трети тела. Яичники представляют собой тонкие белые нити, яйцеводы трубчатые.

Самец длиной 10,5 - 22 см, имеет две равные спикулы длиной 1,2 - 2 мм. Хвостовой конец загнут в сторону брюшной стенки. На брюшной стенке чувствительные половые сосочки.

Яйца тёмно-коричневого цвета, их размер 0,050 - 0, 075 мм длина и 0,045 - 0,055 мм ширина, покрыты очень толстой, крупнобугристой оболочкой.

Наружная оболочка скорлупы белковая, окрашенная в жёлтый цвет пигментом фекалий; она содержит лейцин, валин, аланин, серин, глютаминовую и аспарагиновую кислоты, лизин, аргенин, пролин и гистидин. Первая средняя оболочка имеет в своём составе метионин и альфа-аминомасляную кислоту; в ней нет серина и глютаминовой кислоты. Наружная и первая средняя оболочки построены из простых белков, устойчивы к действию органических растворителей и ферментов и напоминают в этом отношении «склеропротеины». Вторая средняя оболочка хитиноподобная. Она окрашивается в бледно-фиолетовый цвет хлор-цинк-йодом. Состоит из специфических восков, содержит эфир первичного или вторичного спирта и частично ненасыщенную жирную кислоту, небольшое количество холестерина и свободных жирных кислот.

1.2 Биология возбудителя

Цикл развития прямой, без участия промежуточного хозяина. Половозрелые самки выделяют яйца в тонком отделе кишечника. Оплодотворённая самка выделяет огромное количество яиц - от 100 до 200 тыс. в сутки. Они примешиваются к пищевым массам и вместе с фекалиями попадают во внешнюю среду. Во внешней среде при доступе кислорода, наличии влажности и надлежащей температуры (от 18 до 38%) яйца дозревают в течение 15 - 30 дней. За это время внутри яйца развиваются подвижные инвазионные личинки. При низкой температуре срок созревания яиц значительно удлиняется. При температуре 38 - 40% яйца в фекалиях погибают. В зимний период, когда температура 25% яйца не теряют жизнеспособности (В.Г.Гавриш, В.А.Сидоркин, А.В.Егунова, 2006).

Заражение происходит главным образом в свинарнике, когда животное вместе с кормом или водой заглатывает яйца аскарид. Возможно также заражение на пастбище и возле свинарников, вокруг которых почва насыщена яйцами паразита.

Грязное и скученное содержание свиней, скудное их кормление и особенно недостаток витаминов способствует массовому перезаражению аскариозом, которое возможно в течение круглого года и распространяется на поросят самого раннего возраста.

В кишечнике свиней из яиц вылупляются личинки, которые через систему воротной вены попадают в печень. Из печени личинки через полую вену попадают в правое сердце и легочную артерию. Затем заносятся в капилляры лёгких, где подрастают, а затем проникают в легочные альвеолы, мигрируют в бронхиолы, бронхи и трахею. Затем при раздражении слизистой трахеи откашливаются в ротовую полость и заглатываются. Через 1,5 - 2,5 мес в тонком кишечнике они развиваются во взрослые аскариды. Аскариды фиксируются, дугообразно изгибаясь и упираясь головным и хвостовым концами тела в стенку кишечника; таким образом, они противостоят перистальтике кишечника. Питаются паразиты кровью, содержимым кишечника. Живут они 7 - 10 мес., после чего самопроизвольно отходят.

Аскариды могут жить только в тонком отделе кишечника. При неблагоприятных условиях существования (инфекционные заболевания, высокая температура тела) аскариды после короткого пребывания в организме свиньи покидают его. В кишечнике поросят количество паразитов колеблется от единичных экземпляров до тысячи и более.

Инвазионные яйца свиной аскариды опасны и для человека. При попадании в организм людей в тонком кишечнике выходят личинки и с кровью мигрируют по организму, оседая в различных органах. Личинки могут попадать в печень, лёгкие, глаза, головной мозг и вызывать хронические гранулематозные изменения. Эта миграция личинок аскарид в организме, не свойственная данному виду паразита, носит название феномена «visceral larva migrans» или мигрирующая личинка.

Аскариозом может болеть и человек, но у него существует свой специфический возбудитель. Во время миграции аскариды по организму пять суток личинка питается собственными накопленными питательными веществами, далее кровью человека. В зависимости от количества личинок в организме они могут отъедать до 0,5 л крови в сутки.

1.3 Эпизоотология заболевания

Аскариоз свиней распространён повсеместно. Источником данного гельминтоза служат заражённые аскаридами свиньи.

Факторами передачи возбудителя являются загрязнённые корма и вода, антисанитарные условия содержания, загрязнённое вымя свиноматок, дождевые черви, личинки жуков и других насекомых (резервуарные хозяева), содержащие в своём теле личинок аскарид (Форейт У.Дж., 2012).

По определению К.И.Скрябина аскариды являются геогельминтами, то есть их развитие до инвазионной стадии будет происходить в «неорганической среде», и распространение их, главным образом, будет зависеть от климатических условий местности и времени года.

При аскариозе наблюдается обратимый эпизоотологический процесс. Поэтому проводить профилактические мероприятия наиболее сложно, так как происходит постоянное нарастание инвазионных элементов - яиц и личинок в «неорганической среде» и перезаражение животных.

Эпизоотологический процесс будет тем интенсивнее, чем меньше времени пройдёт от начала продуцирования половозрелыми особями яиц, их выделение их организма животного, дальнейшего развития до инвазионной и половой стадии, до момента продуцирования яиц в организме восприимчивого животного (это время биологического цикла) (И.Ф.Клёнова, В.В.Горохов, 2006).

Существенная роль в эпизоотологическом процессе отводится восприимчивости животных. При аскариозе может иметь место возрастная невосприимчивость: наиболее часто поражается молодняк, а у взрослых интенсивность инвазии снижается. Возможно это связано с тем, что переболевшие животные становятся относительно устойчивыми к последующему заражению (М.Ш.Акбаев., 2006).

М.В.Насонова, Б.С.Москалёв, А.М.Рубцова приводят данные в таблице по динамике возрастной и сезонной заболеваемости аскариозом в Воронежской области.

Данные получены на основании гельминтологических исследований.

Таблица 1. Распространение аскариоза свиней разных возрастных групп

Квартал	Возраст свиней и распространение аскариоза в %
	2,5-3 мес	4-6 мес	6-8 мес	8-12 мес	взрослые
1	82,0	59,3	18,0	4,0	42,0
2	70,3	48,0	63,0	32,4	17,7
3	41,5	30,0	21,5	0	4,6
4	48,0	60,7	39,0	18,7	7,0

Наибольшая заражённость молодняка к началу первого и во втором квартале достигало в отдельных хозяйствах 90%, а взрослых свиноматок 80%. В летний период инвазированность молодняка аскариозом не превышало 47%, а взрослых свиней 10%.Проведённые исследования показали, что при повторном заражении свиней аскариозом в организме мобилизируются защитные силы, происходит выработка антител, в крови они появляются уже через неделю после заражения (Н.М.Городович, П.Я.Диких, 2010).

Яйца аскарид ввиду наличия у них четырёх оболочек очень устойчивы. Развитие этих яиц во внешней среде возможно только при температуре свыше 10°. При низких температурах зародыш не погибает, но и не развивается (только температура -30° убивает яйца аскарид через сутки).

Яйца аскарид не выносят длительного высыхания и высоких температур (свыше 40°). Они хорошо противостоят действию химических веществ; их убивают только 2-5% горячие растворы щелочей (60°), негашёная известь в момент гашения и 5-10% растворы карболовой кислоты. Горячая вода (60°) при кратковременной экспозиции убивает лишь до 40 - 50% яиц аскарид.

1.4 Патогенез

Патогенное действие на организм свиней оказывают не только половозрелые аскариды, но и их личинки. Патогенное влияние зрелых аскарид, находящихся в организме слагается из: механического - они прикрепляются к стенке кишечника, изгибаются и упираются головным и хвостовым концами тела в стенку кишечника, при высокой интенсивности инвазии возможна закупорка просвета кишечника;

трофического - поглощают часть питательных веществ хозяина, находящихся в кишечнике, в результате организм животного недополучает питательные вещества и происходит истощение (В.Г.Гавриш, И.И.Калюжный, 2001).

Токсическое действие аскарид оказывает неблагоприятное воздействие на организм свиньи. Токсины вызывают гиперемию слизистой оболочки кишечника, её воспаление. Всасываясь в кровь токсины, действуют отравляюще на центральную нервную систему и сосудистую, вызывают интоксикацию организма. Из-за действия этих токсинов появляются различные нервные расстройства: клонические и тетанические судороги, параличи, возбуждение.

Доказана большая токсичность аскаридной жидкости. Если ввести хотя бы одну каплю в слабом разведении 1:1000 в конъюнктиву глаза, то уже через 5-10 минут у лошади это вызывает бурную реакцию в виде тяжёлой одышки, поноса, обильного потоотделения (Бузмакова Р.А., 2009).

У заражённых животных нередко наблюдаются синдромы аллергического происхождения (кожные сыпи, эозинофильные инфильтраты в лёгких, одышка, рвота, слюнотечение).

Личинки оказывают также механическое действие, нарушая целостность слизистой оболочки кишечника, открывая ворота бактериям и вирусам. При миграции они повреждают капилляры, внедряясь в кишечную стенку, что приводит к кровоизлияниям и разрушениям нервных окончаний в кишечнике. После чего личинки мигрируют в печень, где нарушая целостность печёночных клеток, вызывают некроз. Продвигаясь из легочной капиллярной сети в альвеолы, личинки разрывают сосуды, вследствие этого лёгкие в первые дни после заражения имеют пятнистый вид с множеством кровоизлияний. Находят в лёгких и инфильтраты в форме очагов. Когда личинки мигрируют в лёгкие это сопровождается явлениями так называемой аскариозной пневмонии (особенно у тех поросят которые не получают в кормах витамина А), длящейся от 5 до 14 суток, в зависимости от интенсивности инвазии, нередко заканчивающейся смертью.

При большой инвазии в лёгких обнаруживают много личинок аскарид (методом Бермана).

Мигрируют личинки в течение 3-3 недель. Затем происходит период роста аскарид до имагинальной стадии и их патогенное действие значительно ослабевает. Питаются личинки аскарид кровью. Первые сутки они поглощают плазму, а потом начинают разрушать эритроциты.

С первых дней заболевания у поросят наблюдается лейкоцитоз, резкое повышение эозинофилов. Данный гельминтоз сопровождается изменением содержания в крови иммуноглобулинов (Ig G, Ig M, Ig A). Происходят изменения в содержании общего белка крови и его фракций - альбуминов и глобулинов, в том числе церулоплазмина, трансферина, гаптоглобулина. В результате наступает диспротеинемия, снижается альбумин-глобулиновый коэффициент. Уменьшается количество натрия, цинка, меди и железа в организме (Якубовский, 1987).

М.В. Якубовский (1987) высказал мнение о возможных последствиях аллергических процессов при гельминтозах:

- вторичные гиповитаминозы, ведущие к нарушению обмена веществ;

- подавление окислительных процессов и ослабление тканевого дыхания;

- снижение общего количества белка крови, в печени, в почках, скелетной мускулатуры;

- обеднение печени гликогеном и холестерином;

- нарушение жирового обмена;

- нарушение обмена микроэлементов;

- снижение количества фосфора в печени и мышцах.

Патогенную роль играют и ядовитые продукты обмена веществ аскарид (летучие альдегиды жирных кислот), а также вещества которые образуются в результате разложения погибших и убитых лекарственными веществами паразитов.

Все перечисленные явления при хроническом аскариозе приводят животных к исхуданию, отставанию в росте и развитии.

Исходя из того, что патогенное влияние аскарид на организм многообразно, их следует учитывать при разработке профилактических и лечебных мероприятий.

1.5 Иммунитет

Иммунитет к аскариозу у свиней приобретенный, потому с возрастом животных восприимчивость их к этому гельминтозу снижается, развивается иммунитет за счет выработки антител в период миграции личинок, сопровождаемой усилением реактивности организма и мобилизацией его защитных приспособлений.

При заражении поросят аскариозом антитела в их крови появляются уже через 5-10 дней и исчезают через 90-100 дней после заражения. Обнаруживают их в сыворотке крови реакцией преципитации на живых личинках аскарид. Наиболее высокая концентрация антител отмечена в начальный период заболевания - на 20-30-й день после заражения. Кроме того, сенсибилизация организма свиней мигрирующими личинками сопровождается возникновением аллергических реакций.

При интенсивном первичном заражении большая часть личинок, встречая на пути миграции барьеры кишечной стенки и печени, погибает; продукты их распада действуют как аллергены. У некоторых поросят личинки аскарид после завершения миграции не претерпевают дальнейшего развития в кишечнике и выбрасываются наружу. Однако антитела в крови таких животных могут сохраняться до трех месяцев.

Опыты по активной иммунизации антигеном из аскарид, проведенные впервые В.С. Ершовым и Д.Н. Дубовым, показали, что этим путем можно достичь невосприимчивости к аскаридозу у 78-80 % животных. При отсутствии в рационе витамина А иммунизация не даёт эффекта. Данный метод пока ещё не нашел практического применения.

1.6 Клинические признаки заболевания

клинический аскариоз малотоксичный

Клинические признаки наблюдаются у молодняка. На ранней стадии развития гельминтов клинические признаки более выражены, а патологические процессы протекают тяжелее. По мере дальнейшего развития аскарид происходят изменения, функциональная деятельность организма нормализуется.

Вначале заболевание несёт легочную форму, а затем кишечную. Легочная форма характеризуется повышением температуры до 41,5°, ухудшается аппетит, появляется кашель, животные беспокоятся. Это продолжается от 6 до 15 суток. У животных наблюдается одышка, общее угнетение, слюнотечение, больные лежат зарывшись в подстилку. На коже может появиться вследствие аллергии сыпь. На месте которой через некоторое время образуются струпья.

При кишечной форме развивается гастроэнтеритный симптомокомплекс. Наблюдается рвота, скрежет зубами, поносы сменяются запорами, фекалии с примесью крови. У поросят-сосунов отмечают нарушение пищеварения, рвоту, извращение вкуса (К.Н.Груздева, 2007).

У большей части поросят даже если отсутствуют ярко выраженные клинические признаки, будет наблюдаться недоразвитость, плохой рост, снижение веса, нарушение функции желудочно-кишечного тракта, у некоторых отмечают рахит. При высокой интенсивности инвазии у животных возможна закупорка и разрыв кишечника, что приводит к перитониту и летальному исходу.

При легочной форме аскариоза яйца в фекалиях у инвазированных животных не обнаруживаются, этот фактор затрудняет диагностику. В период миграции личинок в лёгкие у поросят развивается аскариозная пневмония (Бузмакова Р.А., 2010).

Взрослые свиньи аскариозом не болеют, но являются паразитоносителями.

От стадии развития паразита в организме инвазированного животного различают острый (миграционный) и хронический (кишечный) аскариоз.

Острый аскариоз. При остром течении аскаридоза у больных поросят отмечают симптомы бронхопневмонии и аллергии, нервные расстройства (парезы, судороги), у больных поросят отмечаем скрежет зубами, дрожь мышц конечностей, живота, нарушена координация движений. У больных поросят сначала появляется сухой, затем влажный кашель, учащенное дыхание. Температура тела выше нормы. Больные аскариозом поросята зарываются в подстилку. У отдельных поросят на коже могут появляться сыпь, папулы величиной с чечевичное зерно и более, в дальнейшем через 5-6 суток на их месте образуются струпья, окруженные пояском буроватого или черного цвета.

Хронический аскариоз. У больных поросят отмечают пониженный аппетит. Появляются симптомы поражения желудочно-кишечного тракта (понос, запор). В итоге поросята худеют и становятся заморышами.

У свиноматок и хряков симптомы болезни присущие аскариозу не проявляются, хотя обслуживающий персонал может отмечать у них частые случаи нарушения функции органов пищеварения, что может служить для специалистов поводом для подозрения на аскаридоз свиней.

1.7 Патологоанатомические изменения

В период миграции личинок их находят в лимфатических узлах, в печени, в лёгких. На поверхности печени видны белые пятна величиной 2-5 см, так называемая белопятнистость печени или молочные капли на печени. Лёгкие увеличены, плотной консистенции, гиперемированы, пятнистые, с точечными кровоизлияниями на поверхности, иногда тёмно красного цвета. В просвете бронхов ковенистая жидкость.

Слизистая оболочка тонкого кишечника гиперемирована, катарально воспалена. В просвете кишечника видны взрослые аскариды.

Брыжеечные лимфоузлы, средостенные увеличены в объёме, поверхность разреза сочная с точечными кровоизлияниями.

Если происходит разрыв кишок, то это сопровождается перитонитом и обильным кровотечением в брюшную полость.

Трупы павших от аскариоза поросят истощены, у отдельных павших животных могут быть отеки подкожной клетчатки, а у свиней сыпь на коже.

С поверхности печени на гистосрезах можно обнаружить мелкие очаги с некрозом и точечными кровоизлияниями. Расширены и инфильтрированы эозинофилами междольковая соединительная ткань. Когда миграция личинок прекращается инфильтраты постепенно рассасываются и остаётся лишь утолщение междольковой соединительной ткани, которое приводит к интерстицинальному циррозу.

1.8 Методы диагностики заболевания

Различают прижизненную и посмертную диагностику.

Прижизненная диагностика основана на обнаружении гельминтов или их фрагментов, личинок или яиц.

Посмертная диагностика основана на обнаружении в лёгких личинок и в кишечнике гельминтов, патологических изменениях в органах.

Диагноз ставится комплексно с учётом эпизоотологических, клинических, патологоанатомических данных и лабораторных исследований.

По одним клиническим признакам нельзя точно поставить диагноз, так как они не обладают строгой специфичностью. Поэтому, для прижизненной диагностики необходимо проводить копрологические исследования.

Поросят моложе двухмесячного возраста обследовать не рекомендуется, так как в это время, даже если поросята и заразились, аскариды, как правило, не достигают ещё половой зрелости и не выделяют яйца (Н.М.Городович, П.Я.Диких, 2010).

Исследование фекалий методами Фюллеборна, Щербовича, Дарлинга, методом усовершенствованного двойного или тройного центрифугирования. Цель исследований - обнаружить яйца возбудителей.

Эти методы основаны на принципе флотации овоскопических элементов (яиц большинства нематод) на поверхности флотационной среды (насыщенный раствор поваренной соли), вследствие разности удельных масс яиц и среды.

Для проведения исследований необходимо: 10 г фекалий, насыщенный раствор поваренной соли (400 г на 1 л воды). Фекалии помещают в стаканчик объёмом 200 мл и приливают насыщенный раствор соли, тщательно перемешивают стеклянной палочкой. Раствор приливают постепенно всё время помешивая, общее количество добавленного раствора должно быть в двадцать раз больше количества фекалий. Полученный раствор фильтруют через металлическое ситечко и оставляют на пол часа. За это время яйца всплывают на поверхность. Затем с поверхности отслоившейся жидкости петлёй берём плёнку и переносим её на обезжиренное предметное стекло. Микроскопируем при малом увеличении микроскопа и подсчитываем в поле зрения микроскопа яйца аскарид.

Улучшенный метод двойного центрифугирования (у.Форейт, 2012).

1. Смешать 1 г фекалий и 10-12 мл воды в мензурке до принятия фекалиями формы суспензии.

2. Перелить смесь через ситечко в другую мензурку. Надавить на вещество в ситечке шпателем и оставить на некоторое время.

3. Вылить содержимое в центрифужную пробирку объёмом 15 мл и залить доверху водой.

4. Центрифугировать пробирки при 1500 оборотах/мин в течение 5-10 минут.

5. Сцедить из пробирки и затем заполнить половину флотационным раствором. Перемешать осадок деревянным аппликатором и наполнить пробирку флотационным раствором почти доверху.

6. Поместить пробирку в центрифугу и с помощью пипетки добавлять флотационный раствор в пробирку так, чтобы уровень раствора почти достиг верхних краёв пробирки. Поместить покровное стекло поверх пробирки, соприкасаясь с сахарным раствором.

7. Центрифугировать при 1500 оборотах/мин в течение 5-10 мин. Покровное стекло не повредиться, если у центрифуги будет свободно вращающаяся ось, которая может принять горизонтальное положение.

8. Убрать покровное стекло, подняв его вверх, и поместить его на предметное стекло. Все плавающие паразитарные стадии развития должны собираться в каплю под покровным стеклом.

9. Изучить предметное стекло при 100 или большем увеличении и проследить все присутствующие паразитарные стадии развития.

Посмертно диагноз можно поставить при обнаружении аскарид в кишечнике и если происследовать кусочки лёгких или печени на наличие личинок аскарид методом Бермана.

Обыкновенные флотационные растворы для техники фекальной флотации.

Сахар: сахарный песок (сахароза) 454 г

вода 355 мл

(плотность 1,27)

Растворить сахар непосредственно в горячей воде и нагревая

на слабом огне помешивать его. Можно добавить формалин или кристаллы фенола, чтобы ограничить рост плесени.

Хлорид натрия: насыщенный хлорид натрия 400 г

вода 1 л

(плотность 1,18-1,2)

Сульфат магния: магния сульфат 400 г

вода 1 л

(плотность 1,2)

Сульфат цинка сульфат цинка 371 г

вода 1 л

(плотность 1,18)

Нитрат натрия нитрат натрия 400 г

вода 1 л

(плотность 1,18) (У.Форейт,2012).



1.9 Меры борьбы и профилактики

Основным методом профилактики и борьбы с гельминтами является дегельминтизация животных. К.И.Скрябин был основоположником отечественной гельминтологии, он много сделал для развития и совершенствования терапии гельминтозов.

Последователи К.И.Скрябина разработали теоретические основы лечения и профилактики гельминтозов. Проведённые исследования позволяют оздоровлять хозяйства и предупреждать заболевание.

Эти исследования были направлены на разработку высокоэффективных и безвредных антгельминтиков широкого спектра действия, рациональное сочетание химических и нехимических средств, методов и приёмов предупреждения гельминтозов. При этом учитывали особенности технологии животноводства, физиологические, иммунологические свойства и экономическую эффективность проводимых мероприятий.

Разработка мероприятий по искоренению гельминтозов требует тесной работы ветеринарных и медицинских организаций (Гельвиг Э.-Г., 2003).

Для профилактики и лечения аскариоза свиней применяются различные препараты.

К.А.Якунин (2007) в лечебных целях использовал альвет-суспензию при микстинвазиях свиней, получив при этом хороший результат.

Р.Т.Сафиуллин (1980) применял с терапевтической целью препарат ринтал гранулят 10% в дозе 5 мг/кг в течение трёх дней, эффективность составила 98,9%.

Р.Т.Сафиуллин (2010) провёл испытание препарата ганамектин в дозе 2,5 кг препарата на тонну корма поросятам с живой массой до 60 кг, и 1,5 кг/тонну корма свиньям с живой массой свыше 60 кг. Препарат снижал интенсивность инвазии, но полностью не освобождал организм.

Стовпивский А.Н. (2008) выявил высокую эффективность от применения рикобендазола. Препарат применялся в дозе в дозе 15 мг/кг путём вольного группового скармливания с увлажнённым концентрированным кормом двукратно.

При гельминтозах уменьшение инвазии может быть достигнуто не только применением антгельминтных средств, но и путём повышения резистентности организма за счёт добавления в корм ферментных препаратов, витаминов и микроэлементов.

Украинец В.Л. (2008) предложил к применению поросятам аверсект-2ВК и альбамелин. Это способствует повышению резистентности организма.

Р.Т.Сафиуллин (2007) отметил, что применение препаратов в схемах дегельминтизации должно быть дифференцированным в зависимости от интенсивности и экстенсивности инвазии. При таком лечении достигается максимальный эффект, полное освобождение организма от аскарид, независимо от степени инвазии.

Давудов Д.М. (2008) выявил закономерность, что в хозяйствах, где использовали сухие корма, заражённость аскаридами ниже, чем в хозяйствах, где применяли жидкие корма.

Наибольший эффект дегельминтизация приносит в том случае, если после назначения препаратов не остаются животные выделяющие во внешнюю среду яйца гельминтов. Для выявления таких животных проводят копрологические исследования на аскариоз (10% от всего поголовья) (Н.М.Городович, П.Я.Диких, 2010).

При нарушении технологии содержания, кормления животных и проведения дегельминтизации, инвазированность животных достигает 955. При этом М.В.Якубовский отмечает, что необходима реконструкция помещений и ферм. Таким образом, можно обеспечить необходимые условия для содержания животных, хранения кормов, механической уборки навоза.

Ряд учёных предполагают различные способы борьбы с распространением аскариоза. В частности Сохроков предложил для уничтожения возбудителя во внешней среде использовать ионизирующее излучение, ультразвук, электрические и электромагнитные поля, ультразвук мощностью 50 Вт/кВ.см при частоте 24 кГц в сочетании с ферромагнетиками, растворами щелочей, хлорной известью оказывают губительное действие на яйца аскарид. Такой способ применяют для очистки сточных вод.

Для дегельминтизации навоза А.А.Черепанов предложил электрогидравлический способ, основанный на воздействии давления, жёсткого излучения, мгновенной температуры и других факторов на яйца аскарид, находящихся в жидкости.

Для обеззараживания жидкой фракции навоза А.П.Смирнов предложил облучать яйца аскарид ускоренными электронами с опытно-производственной установки УПУ-6. При облучении происходят изменения всех органелл, оболочек скорлупы, что приводит к гибели зародыша яйца.

Кроме того необходимо проводить регулярно механическую очистку помещений, территории фермы и проводить дезинфекцию.

Программа действий вырабатывается в зависимости от интенсивности заражения. Основные меры заключаются в регулярных копрологических исследованиях 5 свежевзятых проб для определения интенсивности инвазии.

Пробы берут от представителей всех возрастных групп. Поскольку одноразовая дегельминтизация не захватывает всех стадий развития паразита, устойчивого успеха она не приносит, так как примерно через месяц можно ожидать нового массового выделения яиц.

Существенно понижает заражённость поголовья одновременная дача лекарств с кормами в течении не менее 5-15 дней с регулярностью до 2-3 раз за год.

Антгельминтики назначают в зависимости от специфичности препарата, обычно задаваемого с кормом или водой. Отличные результаты дают внутримышечные инъекции ивермектика (за 10 дней до опороса) отдельным животным. Эффективно его скармливание в виде премиксов группе животных в течение 7 дней.

Если сочетать медикаментозное лечение со стратегией обновления поголовья и оптимальной зоогигиеной гельминтозы поросят можно ликвидировать полностью. Поступившие животные обязательно проходят карантин и дегельминтизацию.

Исходя из выше изложенного материала мы пришли к выводу о необходимости проведения комплексных мероприятий: диагностика, прогнозирование, химиопрофилактика, контроль эффективности мероприятий, пропаганда ветеринарных знаний среди обслуживающего персонала и населения.



2. Собственные исследования

2.1 Материалы и методы исследования

Объектом исследования были поросята 2-4 мес возраста находящиеся на доращивании, которые обследовались за время прохождения мной производственной преддипломной практики.

Материалом для исследования были фекалии животных.

Работа выполнялась на свинокомплексе Мираторг-Белгород г.Строитель, Яковлевского района на площадках п.Сажное и Озерово; в лаборатории «Мираторг-Белгород» и на кафедре инфекционной и инвазионной патологии Белгородского ГАУ.

Эффективность различных лекарственных средств определяли с помощью копрологических исследований фекалий до и после последней дегельминтизации или по типу «контрольный тест» согласно «Руководству, одобренному Всемирной ассоциацией за прогресс ветеринарной паразитологии» (1995).

Для опыта по изучению эффективности препаратов подбирали поросят спонтанно инвазированных, при этом учитывали вес, половозрастные группы, условия кормления и содержания, интенсивность инвазии. Поросят, находившихся в станках по 40 голов, условно разбивали на группы по 10 голов.

Распространение аскариоза поросят изучали на свинокомплексе Мираторг - Белгород.

С целью изыскания эффективных средств терапии для санации поросят нами были применены такие антгельминтики как альбендазол и фенбенгран.

Испытания антгельминтной активности проводили на поросятах в группе доращивания. Животные в возрасте от 2-х до 4-х месяцев являются материалом для исследования.

По внешнему виду альбендазол 10% представляет собой беловато-кремового цвета аморфный порошок. Препарат содержит 1,1 г действующего вещества альбендазола и наполнитель.

Альбендазол 10% БТ антигельминтик из группы бензимидазолов, широкого спектра действия, обладает выраженным антигельминтным действием против нематод (как половозрелых, так и незрелых форм), цестод и трематод (только половозрелых).

Механизм его действия заключается в нарушении углеводного обмена и микротубулярной функции гельминтов, что приводит к их гибели и выделению из организма животного.

Препарат малотоксичен, в терапевтических дозах не оказывает видимого побочного действия. Обладает эмбриотоксическим и тератогенным действием.

Применяют альбендазол 10% для дегельминтизации животных, в том числе и птиц. Задают внутрь индивидуально или групповым методом, однократно, вместе с кормом, без предварительного голодания.

Свиньям препарат применяют в дозе 0,1 г/кг массы животного, лошадям 0,075 г/кг массы животного.

При применения альбендазола 10% групповом способе, рассчитанную дозу препарата смешивают с концентрированным кормом (из расчета корма на одно животное): для лошадей и крупного рогатого скота-0,5-1,0 кг; для овец, коз и свиней- 150-200 г; для птиц-50 г. Полученную лекарственную смесь засыпают в кормушки на группу 10-100 животных и обеспечивают к ним свободный подход.

Перед массовой дегельминтизацией каждую партию препарата предварительно испытывают на небольшой группе (5-10 животных, 50-100 птиц). При отсутствии осложнений в течение трех суток приступают к обработке всего поголовья.

Как правило, при применении препарата в рекомендованных дозах, побочных действий не наблюдается. В случае проявления побочных действий (угнетение, рвота, диарея) назначают антигистаминные, препараты кальция и симптоматические средства.

Препарат не разрешается применять при остром фасциолезе, во время случного периода, самкам в первую треть беременности и истощенным животным.

Особые указания: убой крупного рогатого скота, овец и коз на мясо разрешается через 14 дней, лошадей, свиней и птицы - через 7 дней после дегельминтизации. Молоко от дойных животных и яйца от кур несушек в течение четырех дней после дегельминтизации запрещается использовать для пищевых целей, и могут быть использованы только после термической обработки на корм животным. В случае вынужденного убоя ранее этого срока, мясо может быть использовано на корм плотоядным животным или для производства мясокостной муки (Н.С.Беспалова, 2006).

Препарат выделяется с калом и мочой.

Фенбенгран представляет собой микрогранулированный порошок от белого до светло-желтого цвета.

В 1 г содержится в качестве действующего вещества 222 мг фенбендазола, вспомогательные вещества: кукурузная мука, поливидон (дезинтоксикационное, гидратирующее, связывает циркулирующие в крови токсины и быстро выводит их из организма) и лактозу.

Выпускают препарат расфасованным по 100, 500 и 1000 г в пакетах из бумаги с полиэтиленовым покрытием, или в двойных пакетах из полиэтиленовой пленки, или в пакетах из ламинированной фольги или из металлизированной полиэтиленовой пленки по 50, 100, 400, 500, 1000 г в пластиковых банках, по 5000 и 10000 г в ведрах полимерных.

Фенбенгран антгельминтик широкого спектра действия, активен в отношении взрослых форм, личинок и яиц гельминтов желудочно-кишечного тракта. Применяют в дозе 22 мг/5 кг МТ.

Механизм действия заключается в том, что нарушаются энергетические процессы, разрушаются микроканальцы в клетках кишечника гельминтов, что приводит к их гибели.

Фенбендазол после перорального введения выделяется в неизмененном виде и в виде метаболитов в основном с фекалиями и в меньшей степени с мочой и молоком.

Фенбенгран по степени воздействия на организм относится к малоопасным веществам (4 класс опасности по ГОСТ 12.1.007-76). В терапевтических дозах не обладает кумулятивным, эмбриотоксическим, тератогенным и аллергенными свойствами.

После применения препаратов уже через сутки начинается отхождение гельминтов ив течение первых суток выходит основная масса гельминтов.

При изучении распространения аскариоза учитываем экстенсивность и интенсивность инвазии копрологическими исследованиями.

Интенсивность инвазии (ИИ) и экстенсивность инвазии (ЭИ) подсчитывали путём копрологических исследований опытных и контрольной групп. По результатам исследований сделали вывод о степени распространения инвазии.

Относительную инвазию учитывали путём подсчёта яиц аскарид в трёх каплях каждой из исследуемых проб фекалий. Полученные результаты принимались во внимание при оценке эффективности препаратов.

Кроме исследования проб фекалий проводили исследования проб корма, соскобы с инвентаря, чтобы выявить пути распространения инвазии.

Прижизненную диагностику проводят с учётом эпизоотологических данных, клинической картины, результатов специальных исследований. Наиболее распространённый метод прижизненной диагностики аскариоза это исследование фекалий по Фюллеборну. Мы применили данный метод при проведении исследований в хозяйстве.

Этот метод основан на принципе флотации овоскопических элементов (яиц большинства нематод) на поверхности флотационной среды (насыщенный раствор сахарозы), вследствие разности удельных масс яиц и среды. Для проведения исследований необходимо 10 грамм фекалий, насыщенный раствор сахарозы (454 г на 355 мл воды).

Фекалии помещают в стаканчик объёмом 200 мл и приливают насыщенный раствор сахарозы, тщательно перемешивают стеклянной палочкой. Раствор приливают постепенно всё время помешивая, общее количество добавленного раствора должно быть в двадцать раз больше количества фекалий. Полученный раствор фильтруют через металлическое ситечко и оставляют на 30 мину. За это время яйца всплывают на поверхность. Затем с поверхности отслоившейся жидкости петлёй берём плёнку и переносим её на обезжиренное предметное стекло. Микроскопируем при малом увеличении микроскопа и подсчитываем в поле зрения микроскопа яйца аскарид.

2.2 Результаты собственных исследований

Холдинг «Мираторг» работает с 1995 года. Преимуществом компании является полный цикл производства: «Мираторг» самостоятельно выращивает корма для животных, развивает высокотехнологичные производства мяса.

Особой гордостью компании «Мираторг» является соответствие экологическим стандартам: животные выращиваются в экоэтичных условиях фермерских хозяйств, без применения антибиотиков и гормонов роста, а продукция «Мираторга» не содержит искусственных консервантов и ГМО.

Располагается свинокомплекс в Белгородской области, Яковлевском районе, г Строитель, в 20 км от города в п.Сажное.

Имеется несколько площадок. На площадке Сажное выращивают маточное поголовье и ремонтный молодняк, на площадке Озерово производится доращивание поросят и откорм.

Профилактические ветеринарные обработки поголовья проводятся по утверждённой общей схеме свинокомплексов ГК «Мираторг-Белгород».

Диагностические копрологические исследования проводятся лишь на маточном поголовье (10% от поголовья).

Дегельминтизируют всех перемещаемых ремонтных свинок на 21-ой недели жизни (5 мес), затем маточное поголовье на 14-ой недели супоросности. Для дегельминтизации используют следующие препараты: препараты альбендазола, перорально для ремонтных свинок; Ивермектин 1%, п/к по 1 мл/33 кг МТ ( Баймек).

Дезинфекция производится в помещениях перед каждым заполнением зала, после мытья, животными. По показаниям проводится текущая дезинфекция. Используются различные средства такие как каустическая сода, хлорная известь, «Глютекс», «Виркон С», «Асептол». Санитарный разрыв между выгоном животных из зала и заселением новой партии с мойкой и дезинфекцией зала должен составлять не менее 3-х суток. Необходимым условием является соблюдение принципа «пусто - занято».

Дератизация и дезинсекция проводятся по показаниям.

На свинокомплексе проводятся и другие диагностические исследования. Маточное поголовье серологически исследуют на лептоспироз, бруцеллёз (10%), хламидиоз (5%). Ремонтных свинок - на лептоспироз, бруцеллёз (20%) и хламидиоз (10%). Если эпизоотическая ситуация изменяется, то процент исследований тоже может меняться.

1 раз в квартал проводят исследования на напряжённость иммунитета - классическая чума свиней, болезнь Ауески, Парвовирусная инфекция свиней.

Помещение, где содержаться животные кирпичное. Животные находятся в залах с решетчатым полом.

Кормление осуществляется механическим способом. Свиноматкам корм задаётся индивидуально. На доращивании животные получают корм групповым способом.

Накопившейся навоз из ванн стекает в лагуны.

Вентилируется помещение принудительно.

Поросята до отъёма содержатся со свиноматкой в индивидуальном станке. Подкормку им дают из кормушек, которые по мере необходимости ставятся на пол в станок. Поение у поросят отдельное от свиноматки, ниппельным способом.

После отъёма поросят переводят на доращивание, где их содержат группами в станках.

После доращивания в 4-х месячном возрасте поросят переформировывают в группы по физиологическому развитию.

После выбраковки выбракованных свинок отправляют на откорм, а ремонтных на пополнение основного стада. Всех кабанчиков отправляют на откорм.

Взрослые животные на откорме содержаться в станках по 40 голов.

2.3 Результаты копрологических исследований при аскариозе свиней

Для проведения опыта мы отобрали 30 голов поросят на доращивании, разделив их в группы по 10 голов.

Для лечения первой группы мы применили препарат альбендазол 10% в дозе 0,1 г/кг МТ животного. Препарат задавали индивидуально per os.

Для лечения второй группы животных применяли фенбенгран в дозе 22 мг/5кг МТ индивидуально перорально.

Для контроля использовалась третья группа.

В каждой группе были отобраны пробы фекалий на определение яиц нематод. Это процедура была проведена за сутки до применения антгельминтиков.

От каждой группы было отобрано по 5 проб фекалий на обнаружение яиц гельминтов. Результаты этого исследования приведены в таблице 2.



Таблица 2. Результаты копрологических исследований до обработки.

Группы	Количество проб фекалий	Среднее количество яиц в поле зрения микроскопа
1-я опытная	5	19,3
2-я опытная	5	16,8
контрольная	5	21,0

Из обследованных 30 голов животных в пробах фекалий от 15 поросят были обнаружены яйца аскарид. Экстенсивность инвазии в данном случае составила 50% (рис. 2).

Рис.2 Среднее количество яиц в пробах

Экстенсивность инвазии (ЭИ) - процент пораженных гельминтами животных от числа обследованных копрологически.

При проведении дегельминтизации за поросятами вели клинические наблюдения. Учитывали количество вышедших гельминтов и длительность периода их отхождения.

На основании полученных данных сделали вывод, какой препарат наиболее эффективен для борьбы с аскариозом. После первой дегельминтизации через сутки провели копрологические исследования, с целью выявить какой препарат эффективнее.

Результаты исследований представлены в таблице 3.

Таблица 3. Результаты копрологических исследований после первой обработки.

Группы	Количество проб фекалий	Среднее количество яиц в поле зрения микроскопа
1-я опытная	5	8,6
2-я опытная	5	4,0
контроль	5	19,3

Рис.3 Среднее количество яиц в пробах после 1-й обработки

На основании полученных результатов после первой дегельминтизации можно сделать вывод о том, что произошло снижение инвазии животных на 55% в первой опытной группе и на 76% во второй (рис 4).



Рис.4 Процент снижения инвазии после 1-й обработки

При исследовании поросят из 1 и 2 групп были обнаружены половозрелые аскариды уже через сутки после дачи препарата. Через 14 суток мы провели повторную дегельминтизацию в опытных группах, а ещё через сутки взяли пробы фекалий и провели гельминтоовоскопию.

Полученные результаты представлены в таблице 4.

Таблица 4. Результаты копрологических исследований после последней обработки.

Группы	Количество проб фекалий	Среднее количество яиц в поле зрения микроскопа
1-я опытная	5	1
2-я опытная	5	0
контроль	5	21



Рис.5 Среднее количество яиц в пробах после последней обработки

Полученные результаты анализируют и делают вывод об эффективности использованных препаратов. Опираясь на данные таблицы 4, делаем вывод, что у группы поросят, подвергшихся обработке альбендазолом 10% в терапевтической дозе, в пробах фекалий в поле зрения микроскопа было обнаружено 1 яйцо.

Из 10 обследованных голов 1-ой опытной группы в начале опыта в 5-ти пробах найдены яйца аскарид. Экстенсивность инвазии равна 50%.

После проведения последней дегельминтизации альбендазолом яйца были обнаружены в двух пробах, ЭИ равнялась 20%. Процент снижения ЭИ был равен 30%.

Экстенсэффективность дегельминтизации в результате применения препарата Альбендазола 10% гранулята составила 60%.

Во второй опытной группе перед применением препарата также из 10-ти обследованных поросят у 5-ти были обнаружены яйца возбудителя, что составило 50% ЭИ.

По результатам этой же таблицы делаем вывод, что при применении фенбенграна яиц гельминтов в конце опыта в фекалиях не обнаружено. Экстенсэффективность дегельминтизации при применении исследуемого лекарственного средства при аскариозе свиней составила 100%.

Сравнивая данные таблиц до дегельминтизации и после последней обработки произошло снижение интенсивности инвазии в первой и второй опытных группах соответственно на 94,8% и 100% (таблица 5, рис. 6).

Таблица 5. Эстенсэффективность Альбендазола 10% и Фенбенграна при аскариозе свиней.

Препарат	Кол-во заражённых животных	Кол-во животных освободившихся от гельминтов	ЭЭ, %
Альбендазол 10%	5	3	60
Фенбенгран	5	5	100

Рис.6 Экстенсэффективность лечебных препаратов

Таким образом, препарат Фенбенгран является более высокоэффективным лекарственным средством для дегельминтизации поросят и обладает широким спектром действия. После применения препарата побочных действий и осложнений не выявляли.

...