Мікробіологічна деструкція органічної речовини в агроценозах

Дослідження мікробіологічних процесів трансформації соломи за інтродукції в агроценози мікроорганізмів - продуцентів целюлазних ферментних комплексів, які відіграють важливу роль у біодеструкції свіжої органічної речовини. Целюлазна активність ґрунту.

Рубрика Сельское, лесное хозяйство и землепользование
Вид статья
Язык украинский
Дата добавления 18.04.2022
Размер файла 277,2 K

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

Размещено на http://www.allbest.ru/

Мікробіологічна деструкція органічної речовини в агроценозах

Л.М. Токмакова, А.О. Трепач, кандидати сільськогосподарських наук, Інститут сільськогосподарської мікробіології та агропромислового виробництва НААН

Мета. Дослідити мікробіологічні процеси трансформації соломи за інтродукції в агроценози мікроорганізмів -- продуцентів целюлазних ферментних комплексів, які відіграють важливу роль у біодеструкції свіжої органічної речовини. Методи. Польові -- проведення польового досліду, мікробіологічні -- встановлення чисельності целюлозолітичних бактерій, біохімічні -- визначення целюлазної, пероксидазної та поліфенолоксидазної активності ґрунту, статистичні -- обробка отриманих даних спрямована на виявлення відмінностей між відповідними показниками та оцінкою достовірності таких відмінностей. Результати. В умовах тривалого польового досліду на чорноземі вилугуваному (короткоротаційна сівозміна: пшениця озима -- гречка -- люпин) досліджено мікробіологічні процеси, які відбуваються за мінералізації 4 т/га соломи.

Установлено, що впродовж вегетаційного періоду гречки в ґрунті (1-й рік після внесення соломи пшениці озимої) та люпину (2-й рік після внесення органічних решток) збільшується чисельність целюлозолітичних мікроорганізмів. В агроценозах гречки у варіанті з використанням Microbacterium sp. 6634 їх кількість становила 25,6 млн/г ґрунту при значенні на контролі 10,9 млн/г ґрунту. Досліджувані зразки ґрунту з агроценозів люпину також характеризуються значною чисельністю целюлозоруйнівних мікроорганізмів (17,7 млн/г ґрунту за дії Bacillus sp. 6658) порівняно з контрольним варіантом (9 млн/г ґрунту). За дії бактерій-деструкторів органічної речовини зростала ферментативна активність ґрунту: целюлазна, пероксидазна та поліфенолоксидазна. Активність целюлази за використання Bacillus sp. 6658 та Pseudomonas sp. 6650 зросла в 1,5 раза.

За впливу інтродукованих в агроценози мікроорганізмів постерігалося зростання біохімічного коефіцієнта накопичення гумусу за Муромцевим. Висновки. Інтродукція в агроценози бактерій -- представників родів Bacillus, Microbacterium, Pseudomonas сприяє розвитку в чорноземі вилугуваному мікроорганізмів із целюлозолітичними властивостями та підвищенню целюлазної, пероксидазної і поліфенолоксидазної активності, що є передумовою для посилення процесів мінералізації соломи. Підсилення інтенсивності розкладання свіжої органічної речовини за внесення рослинних решток підтверджується показниками біохімічного коефіцієнта накопичення гумусу за Муромцевим. Досліджувані бактерії є перспективними як біоагенти мікробних препаратів для оптимізації процесів мінералізації - іммобілізації за використання побічної продукції рослинництва.

Ключові слова: целюлозоруйнівні бактерії, трансформація органічних решток, ферменти, чорнозем вилугуваний, пшениця озима, гречка, люпин.

Microbiological destruction of organic substance in agrocenoses

Tokmakova L. Trepach A., Institute of Agricultural Microbiology and Agroindustrial Production of NAAS

Goal. To study the microbiological processes of straw transformation during introduction into agrocenoses of microorganisms -- producers of cellulase enzyme complexes, which play an important role in the biodegradation of fresh organic matter. Methods. Field -- to carry out field experiment, microbiological -- to determine the quantity of cellulosolytic bacteria, biochemical -- to determine the cellulase, peroxidase, and polyphenol oxidase activity of the soil, statistical -- to identify differences between relevant indicators and assessment of the reliability of such differences.

Results. In the conditions of a long-term field experiment on leached chornozem (short-term crop rotation: winter wheat -- buckwheat -- lupine), microbiological processes that occur during the mineralization of 4 t/ha of straw were studied. It was found that during the growing season buckwheat in the soil (the 1-st year after the introduction of winter wheat straw) and lupine (the 2-nd year after the introduction of organic residues) increased the number of cellulosolytic microorganisms. In buckwheat agrocenoses in the variant with Microbacterium sp. 6634 their quantity amounted to 25.6 million/g of soil with a value of 10.9 million/g of soil under control.

The studied soil samples from lupine agrocenoses were also characterized by a significant number of cellulose-destructive microorganisms (17.7 million/g of soil under the action of Bacillus sp. 6658) compared to the control variant (9 million/g of soil). Under the action of bacterial destructors of organic matter, they observed increased enzymatic activity of soil (cellulase, peroxidase, and polyphenol oxidase). Cellulase activity at the use of Bacillus sp. 6658 and Pseudomonas sp. 6650 increased 1.5 times. Under the influence of microorganisms introduced into agrocenoses, an increase in the biochemical coefficient of humus accumulation according to Muromtsev's methodology was observed.

Conclusions. Introduction into the agrocenosis of bacteria -- members of the genera Bacillus, Microbacterium, Pseudomonas promoted the development of leached chornozem microorganisms with cellulosolytic properties and increased cellulase, peroxidase, and polyphenol oxidase activity, which was a prerequisite for strengthening the mineralization of straw. The increase in the intensity of decomposition of fresh organic matter with the introduction of plant residues was confirmed by indicators of the biochemical coefficient of humus accumulation according to Muromtsev's methodology. The studied bacteria are promising as bioagents of microbial preparations to optimize the processes of mineralization-immobilization using plant by-products.

Key words: cellulose-destructing bacteria, transformation of organic residues, enzymes, leached chornozem, winter wheat, buckwheat, lupine.

Рослинні залишки сільськогосподарських культур -- найважливіший ресурс відтворення органічної речовини і збереження функціональних властивостей ґрунтів в агроценозах, ключовий будівельний блок для стійкості сільськогосподарського виробництва. Вони є основним джерелом вуглецю та інших органічних речовин, які активно трансформуються ґрунтовими мікроорганізмами. Тому поширене внесення соломи як біологічного удобрення та енергетичного матеріалу, який бере участь у процесах ґрунтоутворення [1,2]. У сучасному аграрному виробництві у світі на першому плані стосовно розв'язання проблеми підвищення родючості ґрунтів технології, які забезпечують повернення поживних речовин у ґрунт за допомогою заорювання рослинних решток і використання біодеструкторів, створених на основі мікроорганізмів, здатних продукувати ферменти, що руйнують лігнін, целюлозу, клітковину, білки рослинних решток [3 - 6]. Тому нині в багатьох країнах проводять дослідження, спрямовані на створення умов для підсилення процесів мінералізації-гуміфікації рослинних решток.

Аналіз останніх досліджень і публікацій

Ґрунтові процеси перетворення органічних і неорганічних сполук пов'язані з життєздатністю мікроорганізмів. Активність мікробіологічних процесів у ґрунті залежить від чисельності різних трофічних груп мікроорганізмів і специфіки функціональних зв'язків між ними [7]. Визначення видової різноманітності, чисельності та активності мікроорганізмів ґрунту важливе під час дослідження особливостей деструкції органічної речовини, оскільки розкладання рослинних і тваринних решток, вивільнення та зв'язування елементів живлення відбувається за впливу мікроорганізмів [8, 9]. Зміни в чисельності мікроорганізмів окремих еколого-трофічних груп є індикатором перебігу процесів розкладання органічної речовини ґрунту. Основні показники мікробіологічної активності -- ґрунтове «дихання» і ферментативна активність, чисельність і біомаса мікроорганізмів [10, 11].

Дослідження мікробіологічних процесів трансформації органічних речовин у ґрунті, створення умов для підсилення процесів мінералізації свіжої органічної речовини, які сприятимуть підвищенню родючості ґрунтів, є актуальними.

Мета досліджень -- вивчити мікробіологічні процеси трансформації рослинних решток соломи за інтродукції в агроценози мікроорганізмів -- продуцентів целюлазних ферментних комплексів.

Матеріали та методи досліджень

Дослідження проводили в польових умовах 2016-2020 рр. у короткоротаційній сівозміні (соя, 2015 р.) -- пшениця озима -- гречка -- люпин) на базі дослідного поля Інституту сільськогосподарської мікробіології та агропромислового виробництва НААН відповідно до загальноприйнятих методик [12]. Після збирання врожаю солому пшениці озимої сорту Поліська 90 (попередньо подрібнену та рівномірно розподілену на поверхні поля) обприскували суспензіями мікроорганізмів і заробляли в ґрунт дискуванням. Дослідження особливостей процесів мінералізації - гуміфікації в ґрунті проводили в 1-й рік після застосування решток соломи (за вирощування гречки сорту Ювілейна) та у 2-й (люпину сорту Щедрий).

Варіанти досліду: 1. Без унесення рослинних решток, контроль. 2. Солома, 4 т/га -- фон. 3. Фон + Bacillus sp. 6605. 4. Фон + Microbacterium sp. 6634. 5. Фон + Pseudomonas sp. 6650. 6. Фон + Bacillus sp. 6658.

Штами бактерій нами було селекціоновано раніше за ознакою високої целюлозолітичної активності. Дизайн польового досліду передбачав його розміщення не лише в часі, а й у просторі, що дало змогу досліджувати інтенсивність деструкції органічної речовини в 1- і 2-й роки після її внесення не одноразово, а системно, тому отримані результати є 3-річними.

Площа дослідної ділянки -- 50,4 м2, повторність досліду -- 3-разова.

Ґрунтові зразки відбирали в основні фази органогенезу гречки та люпину: гілкування, цвітіння, достигання плодів. У динаміці проводили облік чисельності бактерій-амоніфікаторів при висіванні ґрунтових розведень на м'ясо-пептонний агар (МПА) та кількості мікроорганізмів, здатних використовувати мінеральні форми азоту на крохмально-аміачному агарі (КАА) [13], целюлозоруйнівні бактерії підраховували на середовищі Гетчинсона-Клейптона [14], целюлазну активність ґрунту визначали за методом Кислициної, пероксидазну та поліфенолоксидазну активність -- за Карягіною та Михайловською [15], коефіцієнт мінералізації та іммобілізації Мішустіна розраховували за співвідношенням кількості мікроорганізмів, які засвоюють мінеральний та органічний азот [16], біохімічний коефіцієнт накопичення гумусу за Муромцевим визначали за співвідношенням показників поліфенолоксидазної активності ґрунту і пероксидазної активності [17].

Статистичну обробку отриманих даних проводили за допомогою комп'ютерних програм Microsoft Excel та Origin 8. Різницю середніх показників вважали вірогідною за рівня значущості Р<0,05.

Результати досліджень

Функціонально й анатомічно невід'ємним компонентом ґрунту є біотична складова, яку розглядають у цілісності взаємодій і впливів, що дає змогу отримати інтегральну оцінку біологічного стану ґрунту. Важливим показником функціонування ґрунту є діяльність мікроорганізмів, які здійснюють безперервний процес трансформації органічної речовини [18].

Результати проведених мікробіологічних досліджень ґрунту під посівами гречки у фазі цвітіння показали, що чисельність мікроорганізмів, які засвоюють азот органічних сполук, варіювала з 10,1 млн/г ґрунту (у контрольному варіанті без соломи) до 25,6 млн/г ґрунту за дії Bacillus sp. 6605. Чисельність амілолітичної мікрофлори, яка бере участь у розкладанні безазотистих сполук у ґрунті і забезпечує іммобілізацію азоту, була дещо більшою -- 16,1 млн/г ґрунту на контролі та 31,6 млн/г ґрунту у варіанті солома + Bacillus sp. 6658. Коефіцієнт мінералізації - іммобілізації в ґрунті контрольного варіанта без унесення соломи пшениці озимої був у межах 1,2 - 1,5 - 1,2 упродовж вегетаційного періоду гречки.

Процеси мінералізації - іммобілізації інтенсивніше відбувалися за дії активних штамів целюлозоруйнівних мікроорганізмів (Км.=1,5 - 2,2 - 2,4). В умовах агроценозів значення коефіцієнта Мішустіна показує темпи біохімічної трансформації органічної речовини в ґрунті.

Чисельність целюлозоруйнівних бактерій у ґрунті була найвищою за інтродукції в агроценози Microbacterium sp. 6634 і становила 25,6 млн/г ґрунту при значенні на контролі 10,9 млн/г ґрунту, що свідчить про активні процеси деструкції органічної речовини (рис. 1).

Рис. 1. Чисельність целюлозолітичних бактерій у ризосферному ґрунті рослин гречки сорту Ювілейна: біла -- фаза гілкування; сіра -- цвітіння; синя -- достигання плодів (для рис. 1, 2)

У 2018 р. чисельність мікроорганізмів визначали за вирощування люпину (умови 2-го року після внесення соломи пшениці озимої). Спостерігалося збільшення чисельності амоніфікувальних мікроорганізмів за впливу бактерій-деструкторів органічної речовини з 8,1 млн/г ґрунту (на контролі) до 13,5 млн/г ґрунту за дії Microbacterium sp. 6634. Кількість амілолітичних мікроорганізмів також зростала і становила за дії Bacillus sp. 6605 -- 30,2 млн/г ґрунту за контрольних значень на рівні 12,7 млн/ г ґрунту. Коефіцієнт мінералізації - іммобілізації варіював з 2,1 до 2,4 за дії Bacillus sp. 6658, у контрольному варіанті значення цього показника були найнижчими -- 0,9-1,4 і свідчили про врівноваженість процесів мінералізації та іммобілізації.

Рис. 2. Чисельність целюлозолітичних бактерій у ризосферному ґрунті рослин люпину сорту Щедрий (2017 р.)

Досліджувані зразки ґрунту з агроценозів люпину характеризуються значною чисельністю целюлозоруйнівних мікроорганізмів (17,7 млн/г ґрунту за дії Bacillus sp. 6658) у дослідних варіантах з унесенням соломи пшениці озимої (рис. 2). Незначну чисельність целюлозоруйнівних мікроорганізмів спостерігали в контрольному варіанті (9 млн/г ґрунту), що зумовлено недостатністю вмісту органічних рослинних решток.

Целюлозні бактерії, розкладаючи рослинні рештки, виділяють у середовище окислювальні ферменти, які беруть участь у синтезі гумусних речовин із продуктів розкладання цих решток. Ферментативний гідроліз целюлози здійснюється під впливом целюлаз, що продукуються багатьма групами ґрунтового мікробоценозу. Щодо хімізму дії ферменту целюлази, то вона каталізує гідроліз 1,4-р-глюкоїнових зв'язків у целюлозі. Молекула целюлози складається із залишків целобіази, пов'язаних між собою глюкозидними зв'язками у вигляді довгого ланцюга. За ферментативного гідролізу целюлоза спочатку розпадається на молекули целобіази, яка під дією р-глюкозидази (целобіази) розпадається на 2 молекули глюкози [19].

В умовах польового досліду нами встановлено, що впродовж вегетаційного періоду в ґрунті агроценозів гречки за впливу мікроорганізмів-деструкторів органічної речовини активізується целюлазна активність у фазах гілкування рослин з 24 (фон -- солома, 4 т/га) до 56 мкг глюкози на 20 г ґрунту (фон + Bacillus sp. 6605), цвітіння -- з 60 (фон -- 4 т/га соломи) до 84 мкг глюкози на 20 г ґрунту (фон + Bacillus sp. 6658), достигання плодів -- з 33 до 82 мкг глюкози на 20 г ґрунту (табл. 1).

Таблиця 1. Целюлазна активність ґрунту при вирощуванні гречки сорту Ювілейна за впливу целюлозоруйнівних мікроорганізмів (2017 р.)

Варіант досліду

Целюлазна активність ґрунту, мкг глюкози на 20 г ґрунту

Фаза розвитку рослин

гілкування

цвітіння

достигання плодів

Без унесення рослинних решток, контроль

24 ± 1,17

60 ± 2,47

33 ± 1,68

Солома, 4 т/га -- фон

36 ± 0,72

55 ± 1,65

53 ± 2,20

Фон + Bacillus sp. 6605

56 ± 2,49

79 ± 2,92

72 ± 2,38

Фон + Microbacterium sp. 6634

44 ± 2,52

59 ± 1,94

77 ± 2,44

Фон + Pseudomonas sp. 6650

33 ± 1,57

80 ± 2,23

66 ± 1,73

Фон + Bacillus sp. 6658

40 ± 1,82

84 ± 1,70

82 ± 3,23

Обмін речовин і потоків енергії під час розкладання та синтезу органічних решток і перехід важкозасвоюваних сполук поживних речовин у форми, доступні для рослин і мікроорганізмів, відбуваються за безпосередньої участі ферментів -- пероксидази та поліфенолоксидази [20], які відіграють важливу роль у процесах гуміфікації, виконують захисну функцію, розкладаючи різні ксенобіотики, беруть участь у багатостадійних процесах розкладання та синтезу органічних сполук ароматичного ряду [21].

На чорноземі вилугуваному у варіантах досліду пероксидазна активність ґрунту з агроценозів гречки вища за використання мікроорганізмів-деструкторів органічної речовини у фазах: гілкування -- з 0,305 (фон) до 0,359 мг 1,4-бензохінону на 1 г ґрунту 30 хв/30Х (фон + Microbacterium sp. 6634) та цвітіння -- з 0,519 (фон) до 0,580 мг 1,4-бензохінону на 1 г ґрунту 30 хв/ЭйХ (фон + Bacillus sp. 6658) (табл. 2).

Таблиця 2. Пероксидазна активність ґрунту при вирощуванні гречки сорту Ювілейна за впливу целюлозоруйнівних мікроорганізмів (2017 р.)

Варіант досліду

Пероксидазна активність ґрунту за вирощування гречки (мг 1,4-бензохінону на 1 г ґрунту 30 хв/30°0)

Фаза розвитку рослин

гілкування

цвітіння

достигання плодів

Без унесення рослинних решток, контроль

0,305 ± 0,005

0,519 ± 0,008

0,399 ± 0,005

Солома, 4 т/га -- фон

0,254 ± 0,006

0,475 ± 0,007

0,373 ± 0,006

Фон + Bacillus sp. 6605

0,340 ± 0,014

0,457 ± 0,006

0,356 ± 0,008

Фон + Microbacterium sp. 6634

0,359 ± 0,011

0,523 ± 0,006

0,373 ± 0,007

Фон + Pseudomonas sp. 6650

0,356 ± 0,011

0,480 ± 0,006

0,360 ± 0,006

Фон + Bacillus sp. 6658

0,281 ± 0,007

0,580 ± 0,012

0,382 ± 0,005

Поліфенолоксидазна активність ґрунту в агроценозах гречки підвищується у фазах гілкування з 0,51 (фон) до 0,82 мг 1,4-бензохінону на 1 г ґрунту 30 хв/30Х (фон + + Bacillus sp. 6658) та достигання плодів -- з 0,23 (фон) до 0,38 мг 1,4-бензохінону на 1 г ґрунту 30 хв/30Х (фон + Bacillus sp. 6658) (табл. 3).

Таблиця 3. Поліфенолоксидазна активність ґрунту при вирощуванні гречки сорту Ювілейна за впливу целюлозоруйнівних мікроорганізмів (2017 р.)

Варіант досліду

Поліфенолоксидазна активність ґрунту за вирощування гречки (мг 1,4-бензохінону на 1 г ґрунту 30 хв/30°С)

Фаза розвитку рослин

гілкування

цвітіння

достигання плодів

Без унесення рослинних решток, контроль

0,51 ± 0,03

0,23 ± 0,01

0,29 ± 0,01

Солома, 4 т/га -- фон

0,66 ± 0,02

0,36 ± 0,02

0,28 ± 0,01

Фон + Bacillus sp. 6605

0,73 ± 0,02

0,33 ± 0,01

0,34 ± 0,01

Фон + Microbacterium sp. 6634

0,64 ± 0,01

0,34 ± 0,01

0,29 ± 0,01

Фон + Pseudomonas sp. 6650

0,61 ± 0,02

0,34 ± 0,02

0,33 ± 0,02

Фон + Bacillus sp. 6658

0,82 ± 0,04

0,38 ± 0,01

0,34 ± 0,02

Для оцінки процесу трансформації органічної речовини в ґрунті використовують біохімічний коефіцієнт накопичення гумусу за Муромцевим, який свідчить про темпи біохімічного утворення та накопичення гумусу.

Дослідженнями виявлено, що показники біохімічного коефіцієнта свідчать про підсилення інтенсивності розкладання органічної речовини за внесення соломи, обробленої суспензіями мікроорганізмів порівняно з контрольними варіантами (табл. 4).

Таблиця 4. Біохімічний коефіцієнт накопичення гумусу за Муромцевим у чорноземі вилугуваному при вирощуванні гречки сорту Ювілейна (2017р.)

Варіант досліду

Коефіцієнт накопичення гумусу, %

Фаза розвитку рослин

гілкування

цвітіння

достигання плодів

Без унесення рослинних решток, контроль

2,02

1,03

0,91

Солома, 4 т/га -- фон

2,04

1,38

0,81

Фон + Bacillus sp. 6605

2,48

1,18

1,04

Фон + Microbacterium sp. 6634

1,79

1,10

0,98

Фон + Pseudomonas sp. 6650

1,61

1,30

0,99

Фон + Bacillus sp. 6658

2,34

1,04

1,00

Подібні результати отримано в дослідженнях в агроценозі люпину. Пероксидазна активність ґрунту підвищувалася у варіантах за післядії целюлозоруйнівних бактерій, особливо у фазі гілкування -- з 0,437 (фон) до 0,531мг 1,4-бензохінону на 1 г ґрунту 30 хв (фон + Pseudomonas sp. 6650). Поліфенолоксидазна активність ґрунту також є вищою за використання мікроорганізмів-деструкторів органічної речовини (післядії). Показники біохімічного коефіцієнта накопичення гумусу свідчать про підсилення інтенсивності розкладання соломи за впливу целюлозоруйнівних бактерій родів Bacillus, Microbacterium, Pseudomonas.

Висновки

За впливу представників родів Bacillus, Microbacterium, Pseudomonas -- деструкторів рослинних решток, мікробіологічні процеси мінералізації соломи в чорноземі вилугуваному за вирощування гречки (1-й рік після внесення рослинних решток) та люпину (2-й рік після внесення рослинних решток) свідчать про збільшення чисельності целюлозолітичних мікроорганізмів щодо контролю, при цьому зростає целюлазна, пероксидазна та поліфенолоксидазна активності. Показники біохімічного коефіцієнта накопичення гумусу за Муромцевим свідчать про підсилення інтенсивності розкладання органічної речовини за внесення соломи порівняно з контролем. Зазначені мікроорганізми є перспективними для розроблення мікробного препарату, призначеного для оптимізації процесів мінералізації- іммобілізації за використання побічної продукції рослинництва.

целюлазний грунт солома агроценоз

Література

1. Jacinthe P.A., Lal R., Kimble J.M. Effects of Wheat Residue Fertilization on Accumulation and Biochemical Attributes of Organic Carbon in A Central Ohio Luvisol. Soil Sciens. 2002. V. 167. I. 11. Р. 750 - 758.

2. Пат. 144123 Україна, МПК A01C 21/00. Спосіб підвищення урожайності кукурудзи на зерно за використання деструкції соломи. Лукащук Л.Я., Фурманець М.Г., Маркарян В.В., Коломієць О.В. № u 2019 12115; заявл. 21.12.2019; опубл. 10.09.2020. Бюл. № 17. 2 с.

3. Lal R. The Role of Residues Managementin Sustainable Agricultural Systems. J. of Sustainable Agriculture. 1995. V. 5. I. 4. P. 51- 78.

4. Zhang Q., Yang Z., Wu W. Role of Crop Residue Management in Sustainable Agricultural Development in the North China Plain. J. of Sustainable Agriculture. 2008. V. 32. I. 1. Р. 137 - 148.

5. Пат. 143302 Україна, МПК C12N 1/00 C12N 9/14 C12N 9/42 C12N 9/58. Fennellia flavipes imb f-100112 -- продуцент ферментного комплексу з целюлазною і ксиланазною активностями. Курченко І.М., Сирчін С.О., Павличенко А.К., Юр'єва О.М., Наконечна Л.Т. № u 2019 11904; заявл. 13.12.2019; опубл. 27.07.2020. Бюл. № 14. 5 с.

6. Пат. 121555 Україна, МПК C12N 1/14 C12N 9/42. Штам гриба Trichoderma viride з високою целюлозолітичною активністю. Копилов Є.П., Надкерничний С.П.; заявник і патентовласник Інститут сільськогосподарської мікробіології та агропромислового виробництва Національної академії аграрних наук України. № u 2017 05934; заявл. 14.06.2017; опубл. 11.12.2017. Бюл. № 23. 6 с.

7. Звягинцев Д.Г. Почва и микроорганизмы. М.: Изд-во Моск. ун-та, 1987. 256 с.

8. Bardgett R.D. The biology soil. Acommunity and ecosystem approach. Oxford University Press, 2005. 242 p.

9. Сидякіна О.В. Ефективність біодеструкторів у сучасних агротехнологіях (огляд літератури).

Таврійський науковий вісник. 2021. № 119. С. 123 - 129.

10. Тарасов С.А., Шершнева О.М. Использование микробиологических препаратов для ускорения деструкции соломы. Вестник Курской ГСХА. 2014. № 6. С. 41- 45.

11. Домарацький Є., Базалій В., Козлова О., Домарацький О. Ефективність використання деструкторів целюлози для оптимізації факторів життя рослин соняшнику. Техніка і технології АПК. 2020. № 1. С. 18 - 21.

12. Доспехов Б.А. Методика полевого опыта. М.: Колос, 1979. 416 с.

13. Волкогон В.В., Надкернична О.В., Токмакова Л.М. та ін. Експериментальна ґрунтова мікробіологія: монографія; за ред. В.В. Волкогона. Київ: Аграрна наука, 2010. 464 с.

14. Лабутова Н.М. Методы изучения почвообитающих микроорганизмов: учебное пособие. Изд. СПбГУ, 2008. 48 с.

15. Хазиев Ф.Х. Методы почвенной энзимологии. М.: Наука, 2005. 252 с.

16. Терещенко Н.Н., Акимова Е.Е., Минаева О.М. Практикум по микробиологии для оценки плодородия почвы и качества почвы: учеб.-метод. пособие для студентов биологических специальностей. Томск: ТГУ, 2011. 96 с.

17. Титова В.И., Козлов А.В. Методы оценки функционирования микробоценоза почвы, участвующего в трансформации органического вещества: науч.-метод. пособие. Нижегородская с.-х. академия. Нижний Новгород, 2012. 64 с.

18. Bardgett R.D. The biology of soil. A community and ecosystem approach. Oxford University Press, 2005. 242 p.

19. Хазиев Ф.Х. Почвенные ферменты. Москва: Знание, 1990. 189 с.

20. Гулько А.Е., Хазиев Ф.Х. Фенолоксидазы почв: продуцирование, иммобилизация, активность. Почвоведение. 1992. № 11. С. 55 -67.

21. Раськова Н.В. Активность и свойства пероксидазы и полифенолоксидазы в дерново-подзолистых почвах под лесными биоценозами. Почвоведение. 1995. № 11. С. 1363 - 1368.

Размещено на Allbest.ru

...

Подобные документы

  • Повноцінність годівлі молодняку великої рогатої худоби, ураженого генітальною формою герпесвірусу інфекційного ринотрахеїту. Споживання сухої речовини кормів здоровими та ураженими вірусом тваринами. Перетравність органічної речовини та її складових.

    курсовая работа [52,5 K], добавлен 20.03.2011

  • Етапи виникнення та розвитку ґрунту, поняття про його родючість та її передумови. Склад ґрунту, його мінеральні речовини, методика створення оптимальних умов для проростання та нормального розвитку сільськогосподарських рослин, водні властивості ґрунту.

    реферат [18,0 K], добавлен 13.08.2009

  • Значення та перспектива вирощування тритикале озимого в агроекосистемах України. Дослідження особливостей синергетичної взаємодії автотрофного блоку - сільськогосподарських культур та гетеротрофного - асоціативних мікроорганізмів у агроекосистемі.

    дипломная работа [8,8 M], добавлен 26.12.2012

  • Характеристики ґрунту, випробування його на зрушення. Обчислення поодиноких значень міцності ґрунту, очистка значень від екстремальних елементів. Розрахункові значення питомої ваги ґрунту. Логічні перевірки значень характеристик та кваліфікація ґрунту.

    курсовая работа [4,2 M], добавлен 11.10.2010

  • Значення лісівничо-екологічної типології для теорії і практики лісівництва. Природні умови району досліджень. Лісівничо-таксаційна характеристика деревостанів свіжої грабової діброви. Встановлення фактичної і потенціальної продуктивності насаджень.

    курсовая работа [2,2 M], добавлен 03.01.2014

  • Свіжа сосново-грабова судіброва, її діагностична характеристика. Фактична та потенційна продуктивність насаджень. Лісничо-економічна ефективність типологічного аналізу свіжої сосново-грабової судіброви. Розподіл насаджень на корінні і похідні деревостани.

    курсовая работа [177,2 K], добавлен 09.01.2014

  • Агротехнічні вимоги та організація трудових процесів на механізованих польових роботах. Досвід застосування інноваційних технологій і групової роботи агрегатів. Удосконалення робіт по обробці ґрунту, внесенні добрив, догляду за посівами, збиранні врожаю.

    курсовая работа [952,7 K], добавлен 19.03.2014

  • Серед природних середовищ ґрунт краще забезпечує розвиток і життєдіяльність мікроорганізмів, і найбільше змінюється під їхнім впливом. Ґрунти містять досить води, повітря та поживних речовин. У їх складі виділяють три фази: тверду, рідку і газоподібну.

    реферат [440,5 K], добавлен 09.07.2008

  • Розробка структурної та функціональної схем технологічного процесу хімічної обробки соломи. Вибір та розрахунок технологічного обладнання. Розробка схеми електричної принципової, силової розподільчої мережі, плану розташування силового обладнання.

    курсовая работа [56,4 K], добавлен 19.11.2008

  • Використання мікробіологічних препаратів на основі корисних бактерій при клональному розмноженні оздоровленого біотехнологічним способом матеріалу картоплі. Оцінка позитивної дії біопрепаратів Клепс, Штам №7, Штам №9, Байкал при культивуванні живців.

    статья [20,1 K], добавлен 28.04.2014

  • Суть та процеси мінерального живлення рослин та характеристика їх основних класів. Залежність врожайності сільськогосподарських культур та агротехнічних показників родючості ґрунту від використаних добрив. Методика дослідження екологічного стану ґрунту.

    курсовая работа [390,9 K], добавлен 21.09.2010

  • Роль води важлива у формуванні структури і біологічних систем. Дослідження в Уманському районі динаміки вологості ґрунту під посівами люцерни залежно від вологозабезпеченості вегетаційного періоду і порівняння його з середніми багаторічними даними.

    статья [16,2 K], добавлен 16.01.2008

  • Система обробітку ґрунту під овочеві культури. Вирівнювання і очищення верхнього шару ґрунту від бур’янів. Боронування і коткування. Монтаж та використання холодного розсадника. Прийоми догляду за рослинами в період їх вегетації. Сутність мульчування.

    реферат [199,8 K], добавлен 19.01.2013

  • Основні чинники, що впливають на стан ґрунтової родючості. Добрива, їх вплив на родючість ґрунту. Зміни показників родючості ґрунтів за останні роки в Миколаївській області. Система обробітку ґрунту. Методи аналізу вмісту гумусу за методом Тюріна.

    курсовая работа [595,5 K], добавлен 12.02.2016

  • Сутність обробки ґрунту як вплив на неї спеціальними машинами і знаряддями праці. Лущення - прийом обробки, при якій відбувається розпушування, часткове обертання, перемішування ґрунту та підрізання бур'янів. Культивація і боронування, шлейфування грунту.

    презентация [10,4 M], добавлен 27.10.2014

  • Поняття екскрементів тварин, їх використання в сільському господарстві та хімічний склад. Підстилковий гній як повне добриво, що містить речовини, необхідні рослинам в достатньо збалансованому співвідношенні. Значення пташиного посліду та компостів.

    реферат [36,1 K], добавлен 18.12.2010

  • Цілі та етапи трансформації рослин. Основні методи та напрями створення генетично модифікованих сільськогосподарських культур. Основні етапи агробактеріальної трансформації рослин. Гени-маркери для відбору трансформантів та регенерація трансформантів.

    контрольная работа [3,3 M], добавлен 25.10.2013

  • Багаті на поживні речовини та вітаміни ягоди та горіхи не лише висококалорійні, вони передусім цінуються за свої лікувальні властивості: барбарис звичайний, шипшина собача, терен звичайний, дрік красильний, крушина ламка, ліщина звичайна, малина.

    реферат [23,6 K], добавлен 22.02.2008

  • Дослідження хімічного, мінерального складу, мікробіологічних показників та терміну придатності лляних кормових екстрактів на основі води та сироватки. Використання лляних кормових екстрактів у виробництві кормів для сільськогосподарських тварин та птиці.

    статья [224,2 K], добавлен 22.02.2018

  • Визначення поняття "родючість ґрунту" та її класифікація. Причини погіршення та моделі родючості ґрунту. Підвищення родючості та окультурювання ґрунтів. Закон "спадаючої родючості ґрунтів", його критика. Антропогенна зміна різних ґрунтових режимів.

    курсовая работа [1,0 M], добавлен 20.12.2013

Работы в архивах красиво оформлены согласно требованиям ВУЗов и содержат рисунки, диаграммы, формулы и т.д.
PPT, PPTX и PDF-файлы представлены только в архивах.
Рекомендуем скачать работу.