Актуальні напрями сучасних біотехнологій пшениці
Подолання негативного впливу біотичних та абіотичних чинників, які здатні значно знижувати врожай пшениці. Розгляд сучасних біотехнологічних підходів поліпшення господарсько-цінних ознак пшениці. Висвітлення можливостей маркер-асоційованої селекції.
| Рубрика | Сельское, лесное хозяйство и землепользование |
| Вид | статья |
| Язык | украинский |
| Дата добавления | 09.07.2023 |
| Размер файла | 114,7 K |
Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже
Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.
26. Дубровна О.В., Моргун Б.В. Сучасний стан досліджень Agrobacterium-опоседкованої трансформації пшениці. Физиология растений и генетика. 2018. 50, № 3. C. 187-- 217. https://doi.org/10.11144/javeriana.sc23-1.amto.
27. Сергеева Л.Е., Михальская С.И., Комисаренко А.Г. Современные биотехнологии повышения устойчивости растений к осмотическим стрессам. Киев: Кондор, 2019. 161 с.
28. Wang K., Riaz B., Ye X. Wheat genome editing expedited by efficient transformation techniques: progress and perspectives. The Crop Journal. 2018. 6, N 1. Р. 22--31.
29. Hensel G., Marthe C., Kumlehn J. Agrobacterium-mediated transformation of wheat using immature embryos. Wheat Biotechnology. Bhalla P., Singh M. (Eds.). Methods in Molecular Biology. 2017. 1679. Р. 129--139.
30. Supartana P., Shimizu T., Nogawa M., Shioiri H., Nakaqima T., Haramoto N., Nozue M., Koqima M. Development of simple end efficient in Planta transformation method for wheat (Triticum aestivum L.) using Agrobacterium tumefaciens. J. Biosci. Bioeng. 2006. 102, N 3. P. 162--170.
31. Chumakov M.I., Moiseeva E.M. Technology of agrobacterial transformation of plants in planta. Biotechnology. 2012. 1. P. 8--20.
32. Михальська С.І., Комісаренко А.Г., Курчій В.М., Тищенко О.М. Генетична трансформація in planta пшениці озимої (Triticum aestivum L.). Фактори експериментальної еволюції організмів. 2018. 22. С. 293--299.
33. Curaba J., Singh M.B., Bhalla P.L. miRNAs in the crosstalk between phytohormone signalling pathways. J. Exp. Bot. 2014. 65. Р. 1425--1438. https://doi.org/10.1093/jxb/eru002.
34. Budak H., Khan Z., Kantar M. History and current status of wheat miRNAs using next- generation sequencing and their roles in development and stress. Brief. Funct. Genomics. 2015. 14. Р. 189--198. https://doi.org/10.1093/bfgp/elu021.
35. Zhao X.Y., Hong P., Wu J.Y., Chen X.B., Ye X.G., Pan Y.Y., Wang J., Zhang X.S. The tae-miR408-mediated control of TaTOC1 genes transcription is required for the regulation of heading time in wheat. Plant Physiology. 2016. 170. Р. 1578--1594.
36. Моргун В.В., Дубровна О.В., Моргун Б.В. Отримання стійких до стресів рослин пшениці біотехнологічними методами. Фізіологія рослин: досягнення та нові напрями розвитку. Київ: Логос, 2017. С. 393--412.
37. Demirci Y., Zhang B., Unver T. CRISPR/Cas9: an RNA-guided highly precise synthetic tool for plant genome editing. J. Cellular Physiol. 2018. 233, N 3. Р. 1844--1859.
38. Zhang Z., Hua L., Gupta A., Tricoli D., Edwards K.J., Yang B., Li W. Development of an Agrobacterium-delivered CRISPR/Cas9 system for wheat genomee diting. Plant Biotechnol. J. 2019. 17, N 8. Р. 1623--1635. https://doi.org/10.1111/pbi.13088.
39. Kim D., Alptekin B., Budak H. CRISPR/Cas9 genome editing in wheat. Funct Integr Genomics. 2018. 18. Р. 31--41. https://doi.org/10.1007/s10142-017-0572-x.
40. Barlow K.M., Christy B.P., O'Leary G.J., Riffkin P.A., Nuttall J.G. Simulating the impact of extreme heat and frost events on wheat crop production: A review. Field Crops Research. 2015. 171. Р. 109--119.
41. Hussain B. Modernization in plant breeding approaches for improvingbiotic stress resistance in crop plants. Turk. J. Agric. For. 2015. 39. Р. 515--530. https://doi.org/10.3906/ tar-1406-176.
42. Ahmad M., Zaffar G., Razvi S.M., Dar Z.A., Mir S.D., Bukhari S.A., Habib M. Resilience of cereal crops to abiotic stress: a review. African. J. Biotechnol. 2014. 13, N 29. Р. 2908-2921. https://doi.org/10.5897/AJBX2013.13532).
43. Ren J., Chen L., Sun D., You F. M., Wang J., Peng Y., Nevo E., Beiles A., Sun D., Luo M.C., Pend J. SNP-revealed genetic diversity in wild emmer wheat correlates with ecological factors. BMC Evol. Biol. 2013. 13. Р. 169. https://doi.org/10.1186/1471-2148-13-169.
44. Sukumaran S., Reynolds M.P., Sansaloni C. Genome-wide association genome-wide asso-ciation analyses identify QTL hotspots for yield and component traits in durum wheat grown under yield potential, drought and heat stress environments. Front. Plant Sci. 2018. 9. Р. 1-16. https://doi.org/10.3389/fpls.2018.00081.
45. Ayalew H., Liu H., Borner A., Kobiliski B., liu C., Yan G. Genome-wide association mapping of major root length QTLs under PEG induced water stress in wheat. Front. Plant Sci. 2018. 9. Р. 1-9. https://doi.org/10.3389/fpls.2018.01759.
46. Liu Y., Liu Y., Zhang Q., Xie C., Li H., Xia X., He W., Qin Y. Genome wide association analysis of quantitative trait loci for salinity tolerance related morphological indices in bread wheat. Euphytica. 2018. 214. Р. 176. https://doi.org/10.1007/s10681-018-2265-5.
47. Garg D., Sareen S., Dalal S., Tiwari R. Heat shock protein based SNP marker for terminal heat stress in wheat (Triticum aestivum L.). Aust. J. Crop. Sci. 2012. 6, N 11. P. 1516-1521.
48. Хохлова Л.П. Экспрессия генов стрессовых белков и идентификация молекулярных маркеров устойчивости растений к повышенным температурам и засухе. 2016. 158, кн. 2. С. 225-238. https://doi.org/10.26907/2542-064X.
49. Kochevenko A., Jiang Y., Seiler C., Surdonja K., Kollers S., Reif J.C., Korzun V., Graner A. Identification of QTL hot spots for malting quality in two elite breeding lines with distinct tolerance to abiotic stress. BMC Plant Biol. 2018. 18. Р. 106.
50. Tahmasebi S., Heidari B., Pakniyat H., McIntyre C.L. Mapping QTLs associated with agronomic and physiological traits under terminal drought and heat stress conditions in wheat (Triticum aestivum L.). Genome. 2016. 60. P. 26--47.
51. Merchuk-Ovnat L., Barak V., Fahima T., Ordon F., Lidzbarsky G.A., Krugman T., Saranga Y. Ancestral QTL alleles from wild emmer wheat improve drought resistance and productivity in modern wheat cultivars. Front. Plant Sci. 2016. 7. P. 452. https://doi.org/ 10.3389/fpls.2016.00452.
52. Liu J., Xu Z., Fan X., Zhou Q., Cao J., Wang F., Ji G., Yang Li., Feng Bo., Wang Tao. A genome wide association study of wheat spike related traits in China. Front. Plant Sci. 2018. 9. Р. 1-14. https://doi.org/10.3389/fpls.2018.01584.
53. Wang S., Zhu Y., Zhang D., Shao H., Liu P., Hu J.B., Zhang H., Zhang H.P., Chang C., Lu J., Xia X.-C., Sun G.L., Ma C.X. Genome-wide association study for grain yield and related traits in elite wheat varieties and advanced lines using SNP markers. PLoS One. 2017. 12. Р. 1-14. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0188662.
54. Garcia M., Eckermann P., Haefele S., Satija S. Genome-wide association mapping of grain yield in a diverse collection of spring wheat (Triticum aestivum L.) evaluated in southern Australia. PLoS One. 2019. 14. Р. 1-19. https://doi.org/10.25909/ 5becfa45c176f.
55. Daba S.D., Tyagi P., Brown-Guedira G., Mohammadi M. Genome-wide association studies to identify loci and candidate genes controlling kernel weight and length in a historical United States wheat population. Front. Plant Sci. 2018. 9. Р. 1-14. https:// doi.org/10.3389/fpls.2018.01045.
56. Mourad A.M.I., Sallam A., Belamkar V., Wegulo S., Bowden R., Jin Y., Mandy E., Bakheit B., El-Wafaa A., Poland J., Baenziger P. Genome-wide association study for identication and validation of novel SNP markers for Sr6 stem rust resistance gene in bread wheat. Front. Plant Sci. 2018. 9. Р. 1-12. https://doi.org/10.3389/ fpls.2018.00380.
57. Eltaher S., Sallam A., Belamkar V., Emara H., Nower A., Salem K., Poland J., Baenziger P. Genetic diversity and population structure of F3:6 Nebraska winter wheat genotypes using genotyping-by-sequencing. Front. Genet. 2018. 9. Р. 76. https://doi.org/ 10.3389/fgene.2018.00076.
58. Ando K., Rynearson S., Muleta K.T., Gedamu J., Girma B., Bosque-Perez N.A., Chen M.S, Mike O. Pumphrey Genome-wide associations for multiple pest resis-tances in a Northwestern United States elite spring wheat panel. PLoS One. 2018. 13, N 2:e0191305. https://doi.org/10.1371/joumal.pone.0191305.
59. Wang X.T., Zeng J., Li Y., Rong X.L., Sun J.T., Sun T. Expression of TaWRKY44, a wheat WRKY gene, in transgenic tobacco confers multiple abiotic stress tolerances. Front. Plant Sci. 2015. 6. Р. 61. https://doi.org/10.3389/fpls.2015.00615.
60. Тищенко О.М., Михальська С.І. Транскрипційні фактори NAC-субродини у підвищенні рівня стійкості культурних рослин до осмотичних стресів. Физиология растений и генетика. 2017. 49, № 3. С. 211--217.
61. Niu C.F., We W., Zhou Q.Y., Tian A.G., Hao Y.J., Zhang W. Wheat WRKY genes TaWRKY2 and TaWRKY19 regulate abiotic stress tolerance in trans genic Arabidopsis plants. Plant Cell Environ. 2012. 35, N 6. Р. 1156--1170. https://doi.org/10.1111/j.1365- 3040.2012.02480.x.
62. Qin Y.X., Wang M.C., Tian Y.C., He W.X., Han L., Xia G.M. Over-expression of TaMYB33 encoding a novel wheat MYB transcription factor increases salt and drought tolerance in Arabidopsis. Mol. Biol. Rep. 2012. 39, N 6. Р. 7183--7192. https://doi.org/ 10.1007/s11033-012-1550-y.
63. Deng X.M., Zhou S.Y., Hu W., Feng J.L., Zhang F., Chen L.H., Huang C., Luo Q., He Y., Yang G., He G. Ectopic expressionof wheat TaCIPK14, encoding a calcineurin B-like protein-interacting protein kinase, confers salinity and cold tolerance in tobacco. Physiol. Plant. 2013. 149, N 3. Р. 367--377. https://doi.org/10.1111/ppl.12046.
64. Hu W., Huang C., Deng X.M., Zhou S.Y., Chen L.H., Li Y., Wang C., Ma Z., Yuan Q., Wang Y., Cai R., Liang X., Yang G., He G. TaASR1, a transcriptionfactor gene in wheat, confers drought stresstolerance in transgenic tobacco. Plant Cell Environ. 2013. 36, N 8. Р. 1449--1464. https://doi.org/10.1111/pce.12074.
65. Licausi F., Giorgi F.M., Zenoni S., Osti F., Pezzotti M., Perata P. Genomic and transcriptomic analysis of the AP2/ERF superfamily in Vitis vinifera. BMC Genom. 2010. 11. Р. 719. https://doi.org/10.1186/1471-2164-11-719.
66. Sharoni A.M., Nuruzzaman M., Satoh K., Shimizu T., Kondoh H., Sasaya T., Choi I.-R., Omura T., Kikuchi S. Gene structures, classification and expression models of the AP2/EREBP transcription factorfamily in rice. Plant Cell Physiol. 2010. 52. Р. 344--360.
67. Rong W., Qi L., Wang A.Y., Ye X.G., Du L., Liang H.X., Xin Z., Zhang Z. The ERF transcription factor TaERF3 promotes tolerance to salt anddrought stresses in wheat. Plant Biotechnol J. 2014. 12, N 4. Р. 468--479. https://doi.org/10.1111/pbi.12153.
68. Jun-Wei W., Feng-Ping Y., Xu-Qing C., Liang R.Q., Zhang L.Q., Geng D.
69. M., Zhang X.D., Song Y.Z., Zhang G.S. Induced expression of DREB transcriptional factor and study on its physiological effects of drought tolerance in transgenic wheat. Acta Genetica Sinica. 2006. 33, N 5. Р. 468--476. https://doi.org/10.1016/S0379- 4172(06)60074-7.
70. Morran S., Eini O., Pyvovarenko T., Parent B., Singh R., Ismagul A., Eliby S., Shirley N., Langridge P., Lopato S. Improvement of stress tolerance of wheat and barley by modulation of expression of DREB/CBF factors. Plant Biotechnol. J. 2011. 9, N 2. P. 230--249.
71. Pellegrineschi A., Reynolds M., Pacheco M., Brito R.M., Almeraya R., Yamaguchi- Shinozaki K., Hoisington D. Stress-induced expression in wheat of the Arabidopsis thaliana DREB1A gene delays water stress symptoms under greenhouse conditions. Genome. 2004. 47. P. 493--500. https://doi.org/10.1139/g03-140.
72. Xue G.-P., Way H.M., Richardsonb T., Drenth J., Joyce P.A., McIntyre C.L. Overexpression of TaNAC69 Leads to Enhanced Transcript Levels of Stress Up-Regulated Genes and Dehydration Tolerance in Bread Wheat. Molecular. Plant. 2011. 5. P. 1--16. https://doi.org/10.1093/mp/ssr013.
73. Zhang L., Zhao G., Jia J., Liu Xu., Kong X. Molecular characterization of 60 isolated wheat MYB genes and analysis of heir expression during abiotic stress. J. Exp. Bot. 2012. 63, N 1. P. 203--214. https://doi.org/10.1093/jxb/err264.
74. Rushton D.L., Tripathi P., Rabara R.C., Lin J., Ringler P., Boken A.K., Langum T.J., Smidt L., Boomsma D.D., Emme N.J., Chen X., Finer J.J., Shen Q.J. WRKY transcription factors: key components in abscisic acid signaling. Plant Biotechnol. J. 2012. 10, N 1. P. 2--11. https://doi.org/10.1111/j.1467-7652.2011.00634.x.
75. Harris J.C., Sornaraj P., Taylor M., Bazanova N., Baumann U., Lovell B., Langridge P., Lopato S., Hrmova M. Molecular interactions of the y-clade homeodomain-leucine zipper class I transcription factors during the wheat response to water deficit. Plant Mol. Biol. 2016. 90. P. 435-452. https://doi.org/10.1007/sU103-015-0427-6.
76. Gao S.Q., Chen M., Xu Z.S., Zhao C.P., Li L., Xu H.J., Tang Y., Zhao X., Ma Y.Z. The soybean GmbZIP1 transcription factor enhances multiple abiotic stress tolerances in transgenic plants. Plant Mol. Biol. 2011. 75, N 6. P. 537.
77. Alvarez S., Roy Choudhury S., Pandey S. Comparative quantitative proteomics analysi of the ABA response of roots of drought-sensitive and drought-tolerant wheat varietie sidentifies proteomic signatures of drought adaptability. J. Proteome Res. 2014. 13. Р. 1688-1701. https://doi.org/10.1021/pr401165b.
78. Ding Y., Tao Y. and Zhu C. Emerging roles of microRNAs in the mediation of drought stress response in plants. J. Exp. Bot. 2013. 64. Р. 3077-3086. https://doi.org/10.1093/ jxb/ert164.
79. Gupta O.P., Meena N.L., Sharma I., Sharma P. Differential regulation of microRNAs in response to osmotic, salt and cold stresses in wheat. Mol. Biol. Rep. 2014. 41. Р. 4623-4629. https://doi.org/10.1007/s11033-014-3333-0.
80. Ma X., Xin Z., Wang Z., Yang Q., Guo S., Guo X. Identification and comparative analysis of differentially expressed miRNAs in leaves of two wheat (Triticum aestivum L.) genotypes during dehydration stress. BMC Plant Biol. 2015. 15. Р. 21. https://doi.org/ 10.1186/s12870-015-0413-9.
81. Proels R.K., Huckelhoven R. Cell-wall invertases, key enzymes in the modulation of plant metabolism during defence responses. Mol. Plant Pathol. 2014. 15. Р. 858-864.
82. Hu M.Y., Li H., Pang J.Z., Liu Q., Zhang Y.J., SunL J. Over expression of sucrose transporter (TaSUT1A) improves drough ttolerance in trans genic wheat. Sci. Agric. Sin. 2015. 48, N 8. Р. 1473-1483. https://doi.org/10.3864/jissn.0578-1752.2015.08.02.
83. Rong W., Qi L., Wang A.Y., Ye X.G., Du L., Liang H. X. The ERF transcription factor TaERF3 promotes tolerance to salt and drought stresses in wheat. Plant Biotechnol. J. 2014. 12, N 4. Р. 468-479.
84. Kang G.Z., Ma H.Z., Liu G.Q., Han Q.X., Li C.W., Guo T.C. Silencing of TaBTF3 gene impairs tolerance to freezing and drought stresses in wheat. Mol. Gen. Genomics. 2013. 288, N 11. Р. 591-599.
85. Takahashi F., Kuromori T., Sato H., Shinozaki K. Regulatory Gene Net works in Drought Stress Responses and Resistance in Plants. In Survival Strategies in Extreme Cold and Desiccation. Springer: Berlin/Heidelberg, 2018. Р. 189-214.
86. Park S.-Y., Fung P., Nishimura N., Jensen D.R., Fujii H., Zhao Y., Lumba S., Santiago J., Rodrigues A., Tsz-Fung F.C. Abscisic acid inhibits type 2C protein phosphatases via the PYR/PYL family of START proteins. Science. 2009. 324. Р. 1068-1071.
87. Qin N., Xu W.G., Hu L., Li Y., Wang H.W., Qi X.L. Drought tolerance and proteomic studies of transgenic wheat containing the maize C phosphorenolpyruvatecarboxylase (PEPC) gene. Protoplasma. 2016. 253, N 6. Р. 1503-1512. https://doi.org/10.1007/ s00709-015-0906-2.
88. Bahieldin A., Mahfouz H.T., Eissa H.F., Saleh O.M., Ramadan A.M., Ahmed I.A., Dyer W.E., El-Itriby H.A., Madkour M.A. Field evaluation of transgenic wheat plants stably expressing the HVA1 gene for drought tolerance. Physiol. Plant. 2005. 123, N 4. P. 421-427.
89. Колупаев Ю.Е., Вайнер А.А., Ястреб Т.О. Пролин: физиологические функции и регуляция содержания в растениях в стрессовых условиях. Вісн. Харків. нац. аграр. ун-ту. Серія Біол. 2014. Вип. 2. С. 6-22.
90. Vendruscolo E., Schuster I., Pileggi M. Stress-induced synthesis of proline confers tolerance to water deficit in transgenic wheat. Plant Physiol. 2007. 164, N 10. P. 1367-1376.
91. Михальська С.І., Комісаренко А.Г., Курчій В.М. Гени метаболізму проліну в біотехнології підвищення осмостійкості пшениці. Фактори експериментальної еволюції організмів. 2021. 28. С. 94-99. https://doi.org/10.7124/FEEO.v28.1382.
92. Dubrovna O.V., Stasik O.O., Priadkina G.O., Zborivska O.V., Sokolovska-Sergiienko O.G. Resistance of genetically modified wheat plants, containing a double-stranded RNA suppressor of the proline dehydrogenase gene, to soil moisture deficiency. Agricultural. Science and Practice. 2020. 7, N 2. Р. 24-34. https://doi.org/10.15407/agrisp7.02.024.
93. Сергєєва Л.Є., Михальська С.І., Курчій В.М., Тищенко О.М. Вміст вільного проліну в проростках кукурудзи як показник швидких реакцій на дію летальних осмотичних стресів in vitro. Физиология растений и генетика. 2015. 47, № 6. C. 491-496.
94. Yan L., Loukoianov A., Blechl A. The wheat VRN2 gene is a flowering repressor downregulated by vernalization. Science. 2004. 303, N 5664. Р. 1640--1644.
95. Bednarek J., Bowloughs A., Girousse C., Ravel C., Tassy C., Barret P., Bouzidi M., Mouzeyar S. Suppression of the TaGW2 gene by RNA interference leads to a decrease in grain size and weight in wheat. J. Exp. Bot. 2012. 63, N 16. Р. 5945--5955. https:// doi.org/10.1093/jxb/ers249.
96. Altenbach S.B., Tanaka C.K., Seabourn B.W. Silencing of omega-5 gliadins in transgenic wheat eliminates a major source of environmental variability and improves dough mixing properties of flour. BMC Plant Biol. 2014. 14, N 393. P. 580. https://doi.org/10.3389/ fpls.2019.00580.
97. Barro F., Iehisa J.C., Gimenez M.J. Targeting of prolamins by RNAi in bread wheat: effectiveness of seven silencing-fragment combinations for obtaining lines devoid of coeliac disease epitopes from highly immunogenic gliadins. Plant Biotechnol. J. 2016. 14, N 3. Р. 986--996. https://doi.org/10.1m/pbi.12455.
98. Song X., Gu K., Duan X. A myosin5 dsRNA that reduces the fungicide resistance and pathogenicity of fusarium asiaticum. Pesticide Biochemistry and Physiology. 2018. 150. Р. 1--9. https://doi.org/10.1016/j.pestbp.2018.07.004.
99. Koeppel I., Hertig C., Hoffie R., Kumlehn J. Cas Endonuclease Technology -- A Quantum Leap in the Advancement of Barley and Wheat Genetic Engineering. Int. J. Mol. Sci. 2019. 20, N 11. Р. 26--47. https://doi.org/10.3390/ijms20112647.
100. Upadhyay S.K., Kumar J., Alok A., Tuli R. RNA-Guided genome editingfor target gene mutations in wheat. G3: Genes, Genomes, Genetics, Genet. 2013. 3, N 12. Р. 2233--2238. https://doi.org/10.1534/g3.113.008847.
101. Wang Y., Cheng X., Shan Q., Zhang Yi, Liu J., Gao C., Qiu J. Simultaneous editing of three homoeoalleles in hexaploid bread wheat confers heritable resistance to powdery mildew. Nature Biotechnology. 2014. 32, N 9. Р. 947--951. https://doi.org/10.1038/ nbt.2969.
102. Zhang Y., Bai Y., Wu G., Zou S., Chen Y., Gao C., Tang D. Simultaneous modification of three homoeologs of TaEDR1 by genome editing enhances powdery mildew resistance in wheat. Plant Journal. 2017. 91, N 4. Р. 714--724. https://doi.org/10.1111/ tpj.13599.
103. Nalam V.J., Alam S., Keereetaweep J., Venables B., Burdan D., Lee H., Trick H., Sarowar S., Makandar R., Shah J. Facilitation of fusarium graminearum infection by 9-Lipoxygenases in arabidopsis and wheat. Molecular Plant-Microbe Interactions. 2015. 28, N 10. Р. 1142--1152. https://doi.org/10.1094/mpmi-04-15-0096-r.
104. Sanchez-Leon S., Gil-Humanes J., Ozuna C.V., Gimenez M.J., Sousa C., Voytas D.F., Barro F. Low-gluten, non transgenic wheat engineered with CRISPR/Cas9. Plant Biotechnol. J. 2018. 16, N 4. Р. 902--910. https://doi.org/10.1111/pbi.12837.
105. Jouanin A., Schaart J.G., Boyd L.A., Cockram J., Leigh F.J., Bates R., Wallington Е.J., Visser R.G.F., Smulders M.J.M. Outlook for coeliac disease patients: towards bread wheat with hypoimmunogenic gluten by gene editing of a- and y-gliadin gene families. BMC Plant Biology. 2019. 19, N 1. Р. 333. https://doi.org/10.1186/s12870-019-1889-5.
106. Borisjuk N., Kishchenko O., Eliby S., Schramm C., Anderson P., Jatayev S., Kurishbayev A., Shavrukov Yu. Genetic modification for wheat improvement: from transgenesis to genome editing. Biomed. Res. Int. 2019. 6216304. 18 p. Published online 2019 Mar 10. https://doi.org/10.1155/2019/6216304.
107. Abe F., Haque E., Hisano H., Tanaka T., Kamiya Y., Mikami M., Kawaura K., Endo M., Onishi K., Hayashi T., Sato K. Genome-edited triple-recessive mutation alters seed dormancy in wheat. Cell Rep. 2019. 28, N 5. Р. 1362--1369. e4. https://doi.org/ 10.1016/j.celrep.2019.06.090.
108. Wang W., Simmonds J., Pan Q., Davidson D., He F., Battal A., Akhunova A., Trick H.N., Uauy C., Akhunov E. Gene editing andmutagenesis reveal inter-cultivar differences and additivity in thecontribution of TaGW2 homoeologues to grain size and weightin wheat. Theoretical and Applied Genetics. 2018. 131, N 11. Р. 2463--2475. https://doi.org/10.1007/s00122-018-3166-7.
109. Liang Z., Chen K., Yan Y., Zhang Y., Gao C. Genotyping genome-edited mutations in plants using CRISPR ribonucleo protein complexes. Plant Biotechnol. J. 2018. 16, N 12. Р. 2053--2062. https://doi.org/10.1111/pbi.12938.
References
1. Shewry, P.R. (2009). Wheat. J. Exp. Bot., 60, рр. 1537-1553.
2. Morgun, V.V., Dubrovna, O.V. & Morgun, B.V. (2016). Modern biotechnologies for stress-resistant wheat plants. Fiziologiya rasteniy i genetika, 48, No. 3, pp. 196-213 [in Ukrainian].
3. http://www.ukrstat.gov.ua/operativ/operativ2019/sg/ovuzpsg/Arh_ovuzpsg2019_u.html.
4. Aggarwal, P.K. (2008). Global climate change and Indian agriculture: Impacts, adaptation and mitigation. Indian. J. Agr. Sci., 78, рр. 911-919.
5. Rezaei, E.E., Siebert, S., Manderscheid, R., Muller, J., Mahrookashani, A., Ehrenpfordt, B., Haensch, J., Weigeld, H.-J. & Ewert, F. (2018). Quantifying the response of wheat yields to heat stress: The role of the experimental setup. Field Crops Res., 217, рр. 93-103. https://doi.org/10.1016/j.fcr.2017.12.015.
6. Balla, K., Karsai, I., Bуnis, P., Kiss, T., Berki, Z., Horvath, Б., Mayer, M., Bencze, S. & Veisz, O. (2019). Heat stress responses in a large set of winter wheat cultivars (Triticum aestivum L.) depend on the timing and duration of stress. PLoS One, 14, p. e0222639.
7. Raza, A., Razzaq, A., Mehmood, S.S., Zou, X., Zhang, X., Lv, Y. & Xu, J. (2019). Impact of climate change on crops adaptation and strategies to tackle its outcome: A review. Plants, 8, р. 34. https://doi.org/10.3390/plants8020034.
8. Soba, D., Ben Mariem, S., Fuertes-Mendizabal, T., Mendez-Espinoza, A.M., Gilard, F., Gonzalez-Murua, C., Irigoyen, J.J., Tcherkez, G. & Aranjuelo, I. (2019). Metabolic effects of elevated CO2 on wheat grain development and composition. J. Agric. Food. Chem., 67, рр. 8441-8451.
9. Brown, L. (2011).The great food crisis of 2011. Foreign Policy, 10, рр. 1-5. Available at: http://www.earthpolicy.org/plan_b_updates/2011/update90.
10. Bowne, J.B., Erwin, T.A., Juttner, J., Schnurbusch, T., Langridge, P., Bacic, A. & Roessner, U. (2012). Drought responses of leaf tissues from wheat cultivars of differing drought tolerance at the metabolite level. Mol. Plant, 5, рр. 418-429. https://doi.org/ 10.1093/mp/ssr114.
11. Sallam, A., Mourad, A.M.I., Hussain, W. & Baenziger, S.P. (2018). Genetic variation in drought tolerance at seedling stage and grain yield in low rainfall environments in wheat (Triticum aestivum L.). Euphytica, 214, 169 p. https://doi.org/10.1007/s10681- 018-2245-9.
12. Ahmed, H.G.M.D., Li, M., Khan, S.H. & Kashif, M. (2019). Early selection of bread wheat genotypes using morphological and photosynthetic attributes conferring drought tolerance. J. Integrat. Agric., 18, рр. 2483-2491.
13. Rybalka, O.I. (2011). Wheat quality and its improvement. Kyiv: Logos [in Ukrainian].
14. Sivolap, Yu.M. (2013). Molecular markers and selection. Cytology and genetics, 47, No. 3. рр. 71-80 [in Russian].
15. Khan, H. (2019). Genetic improvement for end-use quality in wheat. Springer Nature. Switzerland.
16. Miedaner, T. & Korzun, V. (2012). Marker-assisted selection for disease resistance in wheat and barley breeding. Phytopathology, 102, рр. 560-566.
17. Kozub, N.O., Sozinov, I.O., Karelov, A.V., Blum, Ya.B. & Sozinov, O.O. (2017). Variety of Ukrainian varieties of soft winter wheat by loci of reserve proteins and molecular markers of disease resistance genes. Cytology and genetics, 51, No. 2, рр. 59-73 [in Ukrainian].
18. Morgun, V.V. & Rybalka, O.I. (2017). Strategy for genetic improvement of cereals in order to ensure food security, therapeutic and preventive nutrition and the needs of the processing industry. Bulletin of the NAS of Ukraine, 128, No. 3, рр. 54-64 [in Ukrainian]. https://doi.org/10.15407/visn2017.03.054.
19. Matthies, I.E., Malosetti, M. & Roder, M.S. (2014). Genome-wide association mapping for kernel and malting quality traits using historical european barley records. PLoS One, 9, No. 11, рр. 112-119. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0110046.
20. Khan, M.K., Pandey, A., Choudhary, S., Saumya, Choudhary, Hakki, E.E., Akkaya, M.S. & Thomas, G. (2014). From RFLP to DArT: molecular tools for wheat (Triticum spp.) diversity analysis. Genet. Resour. Crop. Evol., 61, рр. 1001-1032. https:// doi.org/10.1007/s10722-014-0114-5.
21. He, J., Zhao, X., Laroche, A. Lu, Z.-H., Liu, H. & Li, Z. (2014). Genotyping-by- sequencing (GBS), an ultimate marker-assisted selection (MAS) tool to accelerate plant breeding. Front Plant Sci., 5, рр. 1-8. https://doi.org/10.3389/fpls.2014.00484.
22. Gulaeva, N.V., Chesnokov, Yu.V., Shevchenko, S.N., Zueva, A.A. & Menibaev, A.I. (2018). Practical application of molecular markers in wheat breeding. Proceedings of the Samara Scientific Center of the Russian Academy of Sciences, 20, No. 2 (4), рp. 726731 [in Russian].
23. Morgun, B.V. & Tishchenko, E.N. (2014). Molecular biotechnology to improve the resistance of cultivated cereals to osmotic stress. Kyiv: Logos [in Russian].
24. Shrawat, A.K. & Armstrong, C.L. (2018). Development and application of genetic engineering for wheat improvement. Critical Reviews in Plant Sciences, 37, No. 5, рр. 335-421.
25. Cheng, M., Fry, J.E., Pang, S., Zhou, H., Hironaka, C.M., Duncan, D.R., Conner, T.W. & Wan, Y. (1997). Genetic transformation of wheat mediated by Agrobacterium tume- faciens. Plant Physiol., 115, рр. 971-980.
26. Dubrovna, O.V. & Morgun, B.V. (2018). Modern Agrobacterium-mediated transformation of wheat. Fiziologiya rasteniy i genetika, 50, No. 3, pp. 187-217 [in Ukrainian]. https://doi.org/10.11144/javeriana.sc23-1.amto.
27. Sergeeva, L.E., Mykhalska, S.I. & Komisarenko, A.G. (2019). Modern biotechnologies for increasing plant resistance to osmotic stresses. Kyiv: Kondor [in Russian].
28. Wang, K., Riaz, B. & Ye, X. (2018). Wheat genome editing expedited by efficient transformation techniques: progress and perspectives. The Crop Journal, 6, No.1, рр. 22-31.
29. Hensel, G., Marthe, C. & Kumlehn, J. (2017). Agrobacterium-mediated transformation of wheat using immature embryos. In Bhalla, P. & Singh, M. (Eds.). Wheat Biotechnology: Methods in Molecular Biology, (рр. 129-139), 1679.
30. Supartana, P., Shimizu, T., Nogawa, M., Shioiri, H., Nakaqima, T., Haramoto, N., Nozue, M. & Koqima, M. (2006). Development of simple end efficient in Planta transformation method for wheat (Triticum aestivum L.) using Agrobacterium tumefaciens. J. Bio. Bioeng., 102, No. 3, рр. 162-170.
31. Chumakov, M.I. & Moiseeva, E.M. (2012). Technology of agrobacterial transformation of plants in planta. Biotechnology, 1, рр. 8-20 [in Russian].
32. Mykhalska, S.I., Komisarenko, A.G., Kurchii, V.M. & Tishchenko, O.M. (2018). Genetic transformation in planta of winter wheat (Triticum aestivum L.). Faktory eksperym. evolyutsiyi orhanizmiv, 22, рр. 293-298 [in Ukrainian].
33. Curaba, J., Singh, M.B. & Bhalla, P.L. (2014). miRNAs in the crosstalk between phytohormone signalling pathways. J. Exp. Bot., 65, рр. 1425-1438. https://doi.org/ 10.1093/jxb/eru002.
34. Budak, H., Khan, Z. & Kantar, M. (2015). History and current status of wheat miRNAs using next-generation sequencing and their roles in development and stress. Brief. Funct. Genomics, 14, рр. 189-198. https://doi.org/10.1093/bfgp/elu021.
35. Zhao, X.Y., Hong, P., Wu, J.Y. Chen, X.B., Ye, X.G., Pan, Y.Y., Wang, J. & Zhang, X.S. (2016). The tae-miR408-mediated control of TaTOC1 genes transcription is required for the regulation of heading time in wheat. Plant Physiology, 170, рр. 1578-1594.
36. Morgun, V.V., Dubrovna, O.V. & Morgun, B.V. (2017). Obtaining stress-resistant wheat plants by biotechnological methods. Plant physiology: achievements and new directions of development. Kyiv: Logos, рр. 393-412 [in Ukrainian].
37. Demirci, Y., Zhang, B. & Unver, T. (2018). CRISPR/Cas9: an RNA-guided highly precise synthetic tool for plant genome editing. Journal of Cellular Physiology, 233, No. 3, рр. 1844-1859.
38. Zhang, Z., Hua, L., Gupta, A., Tricoli, D., Edwards, K.J., Yang, B. & Li, W. (2019). Development of an Agrobacterium-delivered CRISPR/Cas9 system for wheat genomee diting. Plant Biotechnology Journal, 17, No. 8, рр. 1623-1635. https://doi.org/10.1111/ pbi.13088.
39. Kim, D., Alptekin, B. & Budak, H. (2018). CRISPR/Cas9 genome editing in wheat. Funct. Integr. Genomics, 18, рр. 31-41. https://doi.org/10.1007/s10142-017-0572-x.
40. Barlow, K.M., Christy, B.P., O'Leary, G.J., Riffkin, P.A. & Nuttall, J.G. (2015). Simulating the impact of extreme heat and frost events on wheat crop production: A review. Field Crops Research, 171, рр. 109-119.
41. Hussain, B. (2015). Modernization in plant breeding approaches for improvingbiotic stress resistance in crop plants. Turk. J. Agric. For., 39, рр. 515-530. https://doi.org/ 10.3906/tar-1406-176.
42. Ahmad, M., Zaffar, G., Razvi, S.M., Dar, Z.A., Mir, S.D., Bukhari, S.A. & Habib, M. (2014). Resilience of cereal crops to abiotic stress: a review. African. J. Biotechnology, 13, No. 29, рр. 2908-2921. https://doi.org/10.5897/AJBX2013.13532.
43. Ren, J., Chen, L., Sun, D., You, F. M., Wang, J., Peng, Y., Nevo, E., Beiles, A., Sun, D., Luo, M.C. & Pend, J. (2013). SNP-revealed genetic diversity in wild emmer wheat correlates with ecological factors. BMC Evol. Biol., 13, р. 169. https://doi.org/10.1186/ 1471-2148-13-169.
44. Sukumaran, S., Reynolds, M.P. & Sansaloni, C. (2018). Genome-wide association genome-wide asso-ciation analyses identify QTL hotspots for yield and component traits in durum wheat grown under yield potential, drought and heat stress environments. Front. Plant Sci., 9, рр. 1-16. https://doi.org/10.3389/fpls.2018.00081.
45. Ayalew, H., Liu, H., Bцrner, A. Kobiliski, B., Liu, C. & Yan, G. (2018). Genome-wide association mapping of major root length QTLs under PEG induced water stress in wheat. Front. Plant. Sci., 9, рр. 1-9. https://doi.org/10.3389/fpls.2018.01759.
46. Liu, Y., Liu, Y., Zhang, Q. Xie C., Li, H., Xia, X., He, W. & Qin, Y. (2018). Genome wide association analysis of quantitative trait loci for salinity tolerance related morphological indices in bread wheat. Euphytica, 214, р. 176. https://doi.org/10.1007/s10681- 018-2265-5.
47. Garg, D., Sareen, S., Dalal, S. & Tiwari, R. (2012). Heat shock protein based SNP marker for terminal heat stress in wheat (Triticum aestivum L.). Aust. J. Crop. Sci., 6, No. 11, рр. 1516-1521.
48. Khokhlova, L.P. (2016). Expression of stress protein genes and identification of molecular markers of plant resistance to high temperatures and drought, 158, No. 2, pp. 225238 [in Russian]. https://doi.org/10.26907/2542-064X.
49. Kochevenko, A., Jiang, Y., Seiler, C., Surdonja, K., Kollers, S., Reif, J.C., Korzun, V. & Graner, A. (2018). Identification of QTL hot spots for malting quality in two elite breeding lines with distinct tolerance to abiotic stress. BMC Plant Biol., 18, р. 106.
50. Tahmasebi, S., Heidari, B., Pakniyat, H. & McIntyre, C.L. (2016). Mapping QTLs associated with agronomic and physiological traits under terminal drought and heat stress conditions in wheat (Triticum aestivum L.). Genome, 60.
51. Merchuk-Ovnat, L., Barak, V., Fahima, T., Ordon, F., Lidzbarsky, G.A., Krugman, T. & Saranga, Y. (2016). Ancestral QTL alleles from wild emmer wheat improve drought resistance and productivity in modern wheat cultivars. Front. Plant Sci. https://doi.org/ 10.3389/fpls.2016.00452.
52. Liu, J., Xu, Z., Fan, X., Zhou, Q., Cao, J., Wang, F., Ji, G., Yang, Li, Feng, Bo. & Wang, Tao. (2018). A genome wide association study of wheat spike related traits in China. Front. Plant Sci., 9, рр. 1-14. https://doi.org/10.3389/fpls.2018.01584.
53. Wang, S., Zhu, Y., Zhang, D. Shao. H., Liu, P., Hu, J.B., Zhang, H., Zhang, H.P., Chang, C., Lu, J., Xia, X.-C., Sun, G.L. & Ma, C.X. (2017). Genome-wide association study for grain yield and related traits in elite wheat varieties and advanced lines using SNP markers. PLoS One, 12, рр. 1-14. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0188662.
54. Garcia, M., Eckermann, P., Haefele, S. & Satija, S. (2019). Genome-wide association mapping of grain yield in a diverse collection of spring wheat (Triticum aestivum L.) evaluated in southern Australia. PLoS One, 14, рр. 1-19. https://doi.org/10.25909/ 5becfa45c176f.
55. Daba, S.D., Tyagi, P., Brown-Guedira, G. & Mohammadi, M. (2018). Genome-wide association studies to identify loci and candidate genes controlling kernel weight and length in a historical United States wheat population. Front. Plant Sci., 9, рр. 1-14. https://doi.org/10.3389/fpls.2018.01045.
56. Mourad, A.M.I., Sallam, A., Belamkar, V., Wegulo, S., Bowden, R., Jin, Y., Mandy, E., Bakheit, B., El-Wafaa, A., Poland, J. & Baenziger, P. (2018). Genome-wide association study for identification and validation of novel SNP markers for Sr6 stem rust resistance gene in bread wheat. Front. Plant Sci., 9, рр. 1-12. https://doi.org/ 10.3389/fpls.2018.00380.
57. Eltaher, S., Sallam, A., Belamkar, V., Emara, H., Nower, A., Salem, K., Poland, J. & Baenziger, P. (2018). Genetic diversity and population structure of F3:6 Nebraska winter wheat genotypes using genotyping-by-sequencing. Front. Genet., 9, р. 76. https:// doi.org/10.3389/fgene.2018.00076.
58. Ando, K., Rynearson, S., Muleta, K.T., Gedamu, J., Girma B., Bosque-Perez, N.A., Chen, M.S. & Mike, O. (2018). Genome-wide associations for multiple pest resistances in a Northwestern United States elite spring wheat panel. PLoS One, 13, No. 2: e0191305. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0191305.
59. Wang, X.T., Zeng, J., Li Y., Rong, X.L., Sun, J.T. & Sun, T. (2015). Expression of TaWRKY44, a wheat WRKY gene, in transgenic tobacco confers multiple abiotic stress tolerances. Front. Plant Sci., 6, р. 61. https://doi.org/10.3389/fpls.2015.00615.
60. Tishchenko, O.M. & Mykhalska, S.I. (2017). Transcription factors NAC-subfamily in improving crop resistance to osmotic streses. Plant Physiology and Genetics, 3, pp. 211217 [in Ukrainian].
61. Niu, C.F., We, W., Zhou, Q.Y., Tian, A.G., Hao, Y.J. & Zhang, W. (2012). Wheat WRKY genes TaWRKY2 and TaWRKY19 regulate abiotic stress tolerance in trans genic Arabidopsis plants. Plant Cell Environ, 35, No. 6, рр. 1156-1170. https://doi.org/10.1111/j.1365-3040.2012.02480.x.
62. Qin, Y.X., Wang, M.C., Tian, Y.C., He, W.X., Han, L. & Xia, G.M. (2012). Overexpression of TaMYB33 encoding a novel wheat MYB transcription factor increases salt and drought tolerance in Arabidopsis. Mol. Biol. Rep., 39, No. 6, рр. 7183-7192. https:// doi.org/10.1007/s11033-012-1550-y.
63. Deng, X.M., Zhou, S.Y., Hu, W., Feng, J.L., Zhang, F., Chen, L.H., Huang, C., Luo, Q., He, Y., Yang, G. & He, G. (2013). Ectopic expressionof wheat TaCIPK14, encoding a calcineurin B-like protein-interacting protein kinase, confers salinity and cold tolerance in tobacco. Physiol. Plant, 149, No. 3, рр. 367-377. https://doi.org/10.1111/ ppl.12046.
64. Hu, W., Huang, C., Deng, X.M., Zhou, S.Y., Chen, L.H. & Li, Y. (2013). TaASR1, a transcriptionfactor gene in wheat, confers drought stresstolerance in transgenic tobacco. Plant Cell Environ., 36, No. 8, рр. 1449-1464. https://doi.org/10.1111/pce.12074.
65. Licausi, F., Giorgi, F.M., Zenoni, S., Osti, F., Pezzotti, M. & Perata, P. (2010). Genomic and transcriptomic analysis of the AP2/ERF superfamily in Vitis vinifera. BMC Genom., 11, p. 719.
66. Sharoni, A.M., Nuruzzaman, M., Satoh, K., Shimizu, T., Kondoh, H., Sasaya, T., Choi, I.-R., Omura, T. & Kikuchi, S. (2010). Gene structures, classification and expression models of the AP2/EREBP transcription factorfamily in rice. Plant Cell Physiol., 52, рр. 344-360.
67. Rong, W., Qi L., Wang, A.Y., Ye, X.G., Du, L., Liang, H.X. & Zhang, Z. (2014). The ERF transcription factorTaERF3 promotes tolerance to salt anddrought stresses in wheat. Plant Biotechnol J., 12, No. 4, рр. 468-479. https://doi.org/10.1111/pbi.12153.
68. Jun-Wei, W., Feng-Ping, Y., Xu-Qing, C., Liang, R.Q., Zhang, L.Q., Geng, D.M., Zhang, X.D., Song, Y.Z. & Zhang, G.S. (2006). Induced expression of DREB transcriptional factor and study on its physiological effects of drought tolerance in transgenic wheat. Acta Genetica Sinica, 33, No. 5, рр. 468-476. https://doi.org/10.1016/S0379- 4172(06)60074-7.
69. Morran, S., Eini, O., Pyvovarenko, T., Parent, B., Singh R., Ismagul, A., Eliby, S., Shirley, N., Langridge, P. & Lopato, S. (2011). Improvement of stress tolerance of wheat and barley by modulation of expression of DREB/CBF factors. Plant Biotechnol. J., 9, No. 2, рр. 230-249.
70. Pellegrineschi, A., Reynolds, M., Pacheco, M., Brito R.M., Almeraya, R., Yamaguchi- Shinozaki, K. & Hoisington, D. (2004). Stress-induced expression in wheat of the Arabidopsis thaliana DREB1A gene delays water stress symptoms under greenhouse conditions. Genome, 47, рр. 493-500.
71. Xu, G.-P., Waya, H.M., Richardsonb, T., Drenth, J., Joyce, P.A. & McIntyre, C.L. (2011). Overexpression of TaNAC69 Leads to Enhanced Transcript Levels of Stress Up- Regulated Genes and Dehydration Tolerance in Bread Wheat. Molecular. Plant, рр. 116. https://doi. org/10.1093/mp/ssr013.
72. Zhang, L., Zhao, G., Jia, J., Liu, Xu & Kong, X. (2012). Molecular characterization of 60 isolated wheat MYB genes and analysis of heir expression during abiotic stress. Journal of Experimental Botany, 63, No. 1, рр. 203-214. https://doi.org/10.1093/jxb/err264.
73. Rushton, D.L., Tripathi, P., Rabara, R.C., Lin, J., Ringler, P., Boken, A.K., Langum, T.J., Smidt, L., Boomsma, D.D., Emme, N.J., Chen, X., Finer, J.J. & Shen, Q.J. (2012). WRKY transcription factors: key components in abscisic acid signaling. Plant Biotechnol. J., 10, No. 1, рр. 2-11. https://doi.org/10.1111/j.1467-7652.2011.00634.x.
74. Harris, J.C., Sornaraj, P., Taylor, M., Bazanova, N., Baumann, U., Lovell, B., Langridge, P., Lopato, S. & Hrmova, M. (2016). Molecular interactions of the y-clade homeodomain-leucine zipper class I transcription factors during the wheat response to water deficit. Plant Mol. Biol., 90, рр. 435-452. https://doi.org/10.1007/s11103-015- 0427-6.
75. Gao, S.Q., Chen, M., Xu, Z.S., Zhao, C.P., Li, L., Xu, H.J., Tang, Y., Zhao, X. & Ma, Y.Z. (2011). The soybean GmbZIP1 transcription factor enhances multiple abiotic stress tolerances in transgenic plants. Plant Mol. Biol., 75, No. 6, р. 537.
76. Alvarez, S., Roy Choudhury, S. & Pandey, S. (2014). Comparative quantitative pro- teomics analysi of the ABA response of roots of drought-sensitive and drought-tolerant wheat varietie sidentifies proteomic signatures of drought adaptability. J. Proteome Res., 13, рр. 1688-1701. https://doi.org/10.1021/pr401165b.
77. Ding, Y., Tao, Y. & Zhu, C. (2013). Emerging roles of microRNAs in the mediation of drought stress response in plants. J. Exp. Bot., 64, pp. 3077-3086. https:// doi.org/10.1093/jxb/ert164.
78. Gupta, O.P., Meena, N. L., Sharma, I. & Sharma, P. (2014). Differential regulation of microRNAs in response to osmotic, salt and cold stresses in wheat. Mol. Biol. Rep., 41, рр. 4623-4629. https://doi.org/10.1007/s11033-014-3333-0.
79. Ma, X., Xin, Z., Wang, Z., Yang, Q., Guo, S. & Guo, X. (2015). Identification and comparative analysis of differentially expressed miRNAs in leaves of two wheat (Triticum aestivum L.) genotypes during dehydration stress. BMC Plant Biol., 15, р. 21. https:// doi.org/10.1186/s12870-015-0413-9.
80. Proels, R.K. & Huckelhoven, R. (2014). Cell-wall invertases, key enzymes in the modulation of plant metabolism during defence responses. Mol. Plant Pathol., 15, рр. 858864.
81. Hu, M.Y., Li, H., Pang, J.Z., Liu, Q., Zhang, Y.J. & Sun, L.J. (2015). Over expression of sucrose transporter (TaSUT1A) improves drough ttolerance in trans genic wheat. Sci. Agric. Sin., 48, No. 8, рр. 1473-1483. https://doi.org/10.3864Xj.issn.0578-1752.2015.08.02.
82. Rong, W., Qi, L., Wang, A.Y., Ye, X.G., Du, L. & Liang, H. X. (2014). The ERF transcription factor TaERF3 promotes tolerance to salt and drought stresses in wheat. Plant Biotechnol. J., 12, No. 4, рр. 468-479.
83. Kang, G.Z., Ma, H.Z., Liu, G.Q., Han, Q.X., Li, C.W. & Guo, T.C. (2013). Silencing of TaBTF3 gene impairs tolerance to freezing and drought stresses in wheat. Mol. Gen. Genomics, 288, No. 11, рр. 591-599.
84. Takahashi, F., Kuromori, T., Sato, H. & Shinozaki, K. (2018). Regulatory Gene Net works in Drought Stress Responses and Resistance in Plants. In Survival Strategies in Extreme Cold and Desiccation; Springer: Berlin/Heidelberg, Germany, рр. 189-214.
85. Park, S.-Y., Fung, P., Nishimura, N., Jensen, D.R., Fujii, H., Zhao, Y., Lumba, S., Santiago, J., Rodrigues, A. & Tsz-Fung, F.C. (2009). Abscisic acid inhibits type 2C protein phosphatases via the PYR/PYL family of START proteins. Science, 324, рр. 1068-1071.
86. Qin, N., Xu, W.G., Hu, L., Li, Y., Wang, H.W. & Qi, X.L. (2016). Drought tolerance and proteomic studies of transgenic wheat containing the maize C phosphorenolpyru-vatecarboxylase (PEPC) gene. Protoplasma, 253, No. 6, рр. 1503-1512. https://doi.org/10.1007/s00709-015-0906-2.
87. Bahieldin, A., Mahfouz, H.T., Eissa, H.F., Saleh, O.M., Ramadan, A.M., Ahmed, I.A., Dyer, W.E., El-Itriby, H.A. & Madkour, M.A. (2005). Field evaluation of transgenic wheat plants stably expressing the HVA1 gene for drought tolerance. Physiol. Plant., 123, No. 4, рр. 421-427.
88. Kolupaev, Yu.E., Vainer, A.A. & Yastreb, T.O. (2014). Proline: physiological functions and regulation of the content in plants under stress conditions Newsletter. Kharkiv. nat. agrarian. un-tu. Ser. Biol., No. 2, pp. 6-22 [in Russian].
89. Vendruscolo, E., Schuster, I. & Pileggi, M. (2007). Stress-induced synthesis of proline confers tolerance to water deficit in transgenic wheat. Plant Physiol., 164, No. 10, рр. 1367-1376.
90. Mykhalska, S.I., Komisarenko, A.G. & Kurchii, V.M. (2021). Genes of proline metabolism in biotechnology of increasing wheat osmostability. Factors of experimental evolution of organisms, 28, рр. 94-99 [in Ukrainian]. https://doi.org/10.7124/FEEO.v22.964.
91. Dubrovna, O.V., Stasik, O.O., Priadkina, G.O., Zborivska, O.V. & Sokolovska-Sergiienko, O.G. (2020). Resistance of genetically modified wheat plants, containing a double-stranded RNA suppressor of the proline dehydrogenase gene, to soil moisture deficiency. Agricultural. Science and Practice, 7, No. 2, рр. 24-34. https://doi.org/ 10.15407/agrisp7.02.024.
92. Sergeeva, L.E., Mykhalska, S.I., Kurchiy, V.M. & Tishchenko, E.N. (2015). Free proline content in maize seedlings as an indicator of rapid responses to lethal osmotic stress in vitro. Fiziologiya rasteniy i genetika, 47, No. 6, pp. 491-496 [in Ukrainian].
93. Yan, L., Loukoianov, A. & Blechl, A. (2004). The wheat VRN2 gene is a flowering repressor down-regulated by vernalization. Science, 303, No. 5664, pp. 1640-1644.
94. Bednarek, J., Bowloughs, A., Girousse, C., Ravel, C., Tassy, C., Barret, P., Bouzidi, M. & Mouzeyar, S. (2012). Suppression of the TaGW2 gene by RNA interference leads to a decrease in grain size and weight in wheat. J. Exp. Bot., 63, No. 16, рр. 5945-5955. https://doi.org/10.1093/jxb/ers249.
95. Altenbach, S.B., Tanaka, C.K. & Seabourn, B.W. (2014). Silencing of omega-5 gliadins in transgenic wheat eliminates a major source of environmental variability and improves dough mixing properties of flour. BMC Plant Biology, 14, No. 393, p. 580. https:// doi.org/10.3389/fpls.2019.00580.
96. Barro, F., Iehisa, J.C. & Gimenez, M.J. (2016). Targeting of prolamins by RNAi in bread wheat: effectiveness of seven silencing-fragment combinations for obtaining lines devoid of coeliac disease epitopes from highly immunogenic gliadins. Plant Biotechnol. J., 14, No. 3, pp. 986-996. https://doi.org/10.1111/pbi.12455.
97. Song, X., Gu, K. & Duan, X. (2018). A myosin5 dsRNA that reduces the fungicide resistance and pathogenicity of fusarium asiaticum. Pesticide Biochem. Physiol., 150, pp. 1-9. https://doi.org/10.1016/j.pestbp.2018.07.004.
98. Koeppel, I., Hertig, C., Hoffie, R. & Kumlehn, J. (2019). Cas endonuclease technology -- a quantum leap in the advancement of barley and wheat genetic engineering. Int. J. Mol. Sci., 20, No. 11, рр. 26-47. https://doi.org/10.3390/ijms20112647.
99. Upadhyay, S.K., Kumar, J., Alok, A. & Tuli, R. (2013). RNA-guided genome editing for target gene mutations in wheat. G3: Genes, Genomes, Genetics, Genet., 3, No. 12, рр. 2233-2238. https://doi.org/10.1534/g3.113.008847.
100. Wang, Y., Cheng, X., Shan, Q., Zhang, Yi., Liu, J., Gao, C. & Qiu, J. (2014). Simultaneous editing of three homoeoalleles in hexaploid bread wheat confers heritable resistance to powdery mildew. Nature Biotechnol., 32, No. 9, рр. 947-951. https:// doi.org/10.1038/nbt.2969.
101. Zhang, Y., Bai, Y., Wu, G., Zou, S., Chen, Y., Gao, C. & Tang, D. (2017). Simultaneous modification of three homoeologs of TaEDR1 by genome editing enhances powdery mildew resistance in wheat. Plant J., 91, No. 4, рр. 714-724. https://doi.org/ 10.1111/tpj.13599.
102. Nalam, V.J., Alam, S., Keereetaweep, J., Venables, B., Burdan, D., Lee, H., Trick, H., Sarowar, S., Makandar, R. & Shah, J. (2015). Facilitation of fusarium graminearum infection by 9-Lipoxygenases in Arabidopsis and wheat. Molecular Plant-Microbe Int., 28, No. 10, рр. 1142-1152. https://doi.org/10.1094/mpmi-04-15-0096-r.
103. Sanchez-Leon, S., Gil-Humanes, J., Ozuna, C.V., Gimйnez, M.J., Sousa, C., Voytas, D.F. & Barro, F. (2018). Low-gluten, non transgenic wheat engineere dwith CRISPR/Cas9. Plant Biotechnol. J., 16, No. 4, рр. 902-910. https://doi.org/10.1111/pbi.12837.
104. Jouanin, A., Schaart, J.G., Boyd, L.A., Cockram, J., Leigh, F.J., Bates, R., Wallington, E.J., Visser, R.G.F. & Smulders, M.J.M. (2019). Outlook for coeliac disease patients: towards bread wheat with hypoimmunogenic gluten by gene editing of a- and y-gliadin gene families. BMC plant biology, 19, No. 1, р. 333. https://doi.org/10.1186/s12870-019-1889-5.
105. Borisjuk, N., Kishchenko, O., Eliby, S., Schramm, C., Anderson, P., Jatayev, S., Kurishbayev, A. & Shavrukov, Yu. (2019). Genetic modification for wheat improvement: from transgenesis to genome editing. Biomed Res. Int., 6216304, 18 p. https://doi.org/10.1155/2019/6216304.
106. Abe, F., Haque, E., Hisano, H., Tanaka, T., Kamiya, Y., Mikami, M., Kawaura, K., Endo, M., Onishi, K., Hayashi, T. & Sato, K. (2019). Genome-edited triple-recessive mutation alters seed dormancy in wheat. Cell Reports, 28, No. 5, рр. 1362-1369. e4. https://doi.org/10.1016Xj.celrep.2019.06.090.
107. Wang, W., Simmonds, J., Pan, Q., Davidson, D., He, F., Battal, A., Akhunova, A., Trick, H.N., Uauy, C. & Akhunov, E. (2018). Geneediting and mutagenesis revealinter-cultivar differences and additivity in the contribution of TaGW2 homoeologues togra in size and weightin wheat. Theoretical and Applied Genetics, 131, No. 11, рр. 2463-2475. https://doi.org/10.1007/s00122-018-3166-7.
108. Liang, Z., Chen, K., Yan, Y., Zhang, Y. & Gao, C. (2018). Genotyping genome-edited mutations in plants using CRISPR ribonucleo protein complexes. Plant Biotechnol. J., 16, No. 12, рр. 2053-2062. https://doi.org/10.1111/pbi.12938.
Размещено на Allbest.ru
...Подобные документы
Оцінка умов Ужгородського району. Ботанічна характеристика озимої пшениці. Оцінка впливу різних факторів на формування врожаю озимої пшениці. Догляд за посівами і засоби захисту від бур’янів, хвороб і шкідників. Збирання врожаю та його зберігання.
курсовая работа [615,3 K], добавлен 27.05.2015Особливості адаптації сортів пшениці озимої до зміни агрокліматичних умов України. Фенологічні спостереження за розвитком сортів. Дослідження сортової мінливості елементів структури врожаю. Мінливість польової схожості і зимостійкості пшениці озимої.
дипломная работа [905,5 K], добавлен 28.10.2015Технологія вирощування і селекції озимої пшениці. Стан і перспектива виробництва продукції сільськогосподарської культури, використання її сортових ресурсів. Характеристика зовнішніх умов вирощування, основні напрямки селекції нових сортів культури.
курсовая работа [751,7 K], добавлен 29.11.2010Організаційно-економічна характеристика сільськогосподарського підприємства. Динаміка посівних площ, урожайності і валових зборів пшениці. Підвищення ефективності виробництва пшениці за рахунок сортозаміни, агротехнічних заходів та на перспективу.
курсовая работа [203,7 K], добавлен 12.05.2015Вплив регуляторів росту на продуктивність, структуру врожаю озимої пшениці, врожайність і якість зерна. Вплив регуляторів росту на польову схожість насіння і коефіцієнт кущення озимої пшениці. Економічна ефективність застосування регуляторів росту рослин.
научная работа [2,8 M], добавлен 29.12.2007Екологічні та географічні характеристики умов проростання пшениці. Селективна характеристика районованих сортів. Методика аналізу схожості насіння пшениці. Дослідження якості посівного матеріалу сортів Triticum Бродівського району та аналіз результатів.
дипломная работа [834,5 K], добавлен 21.12.2010Аналіз показників вирощування та зберігання озимої пшениці в ТОВ агрофірма "Україна". Проектований технологічний проект виробництва озимої пшениці. Конструктивне вдосконалення копновоза-волокуші для збирання і транспортування незернової частини врожаю.
дипломная работа [836,2 K], добавлен 26.01.2010Ботаніко-морфологічна характеристика біологічних особливостей культури. Аналіз методів створення вихідного матеріалу для селекції: гібридизації, мутагенезу, генної інженерії. Вивчення народногосподарського значення озимої пшениці та виробництва насіння.
курсовая работа [54,2 K], добавлен 02.05.2011Народногосподарське значення і біологічні особливості м'якої озимої пшениці. Умови і технологія вирощування культури. Характеристика рекомендованих до посіву сортів пшениці; підготовка насіння, догляд за посівами, система добрив. Збирання і облік урожаю.
дипломная работа [1,5 M], добавлен 08.10.2011Проблеми вирощування продовольчого зерна, особливості адаптації сортів пшениці озимої до зміни агрокліматичних умов півдня України. Фенологічні спостереження за розвитком сортів. Економічна та біоенергетична ефективність вирощування насіннєвого матеріалу.
дипломная работа [725,6 K], добавлен 02.06.2015Агробіологічні особливості вирощування озимої пшениці на богарних землях. Система основного і передпосівного обробітку ґрунту, розміщення культури в сівозміні. Наукові методи програмування врожайності озимої пшениці сорту "Херсонська-86" в умовах богари.
курсовая работа [100,5 K], добавлен 04.08.2014Загальна характеристика епіфітотичних хвороб: іржа злаків, фітофтороз картоплі, мілдью винограду. Інфекційне захворювання рослин як результат взаємодії між патогеном та рослиною. Розгляд основ захисту озимої пшениці від бурої листкової іржи пшениці.
курсовая работа [2,0 M], добавлен 18.04.2013Біологічні основи вирощування високих урожаїв якісного зерна та насіння озимої м’якої пшениці, її адаптивні властивості (зимостійкість, стійкість проти вилягання і хвороб). Економічна оцінку ефективності застосування різних строків сівби озимої пшениці.
дипломная работа [153,1 K], добавлен 03.02.2014Організаційно-економічна характеристика СТОВ "Більшовик". Динаміка і структура його посівних площ. Аналіз стійкості урожайності сільскогосподарських культур та впливу різних факторів на неї. Економічна ефективність вирощування і реалізації озимої пшениці.
курсовая работа [1,2 M], добавлен 31.03.2011Вплив глибин основного зяблевого обробітку ґрунту на умови вирощування і формування врожаю льону олійного після пшениці озимої в південній частині правобережного Лісостепу України. Розрахунок економічної і енергетичної оцінки цих елементів технології.
автореферат [48,7 K], добавлен 11.04.2009Дослідження біологічних особливостей культури, можливостей рекомендованих сортів, системи сівби та обробітку ґрунту. Огляд сучасних систем удобрення сільськогосподарських культур у сівозмінах з різною за основними ґрунтово-кліматичними зонами України.
курсовая работа [51,8 K], добавлен 22.11.2011Аналіз стану машинно-тракторного парку у ДП "Ера-1", виробничо-технічна характеристика господарства. Використання МТП при виробництві озимої пшениці; експлуатаційні та економічні показники; застосування пристрою жниварки ЖВР-10, безпека життєдіяльності.
дипломная работа [262,1 K], добавлен 18.05.2011Загальні відомості про господарство та вирощувані культури. Коротка ботанічна характеристика та вимоги озимої пшениці до умов росту і розвитку. Ведення галузі рослинництва в умовах реформування земельних відносин. Розробка системи агротехнічних заходів.
курсовая работа [290,0 K], добавлен 26.03.2014Аналіз стану виробництва озимої пшениці в СТОВ "Братський" Нижньосірогозького району Херсонської області. Вибір та обґрунтування технологічних операцій. Порівняльна оцінка варіантів МТА. Операційно-технологічна карта. Аналіз стану організації робіт.
дипломная работа [77,9 K], добавлен 08.12.2008Розрахунок технологічних умов при вирощуванні озимої пшениці. Коефіцієнт комплексного системи машин з вирощування всіх сільськогосподарських культур. Розрахунок ефективності виробництва продукції тваринництва залежно від рівня концентрації поголів'я.
реферат [30,6 K], добавлен 10.12.2008
