Размножение клоновых подвоев косточковых культур зелеными черенками

Размещено на http://www.allbest.ru

Размножение клоновых подвоев косточковых культур зелеными черенками

Юлия Сергеевна Минулина

Раиса Григорьевна Ноздрачева

Елена Юрьевна Кальченко

Аннотация

На основании результатов научных наблюдений установлено влияние физиологически активных веществ (ПМК, ПУН, янтарная кислота, без обработки - контроль) и сроков проведения зеленого черенкования на укореня- емостъ тоновых подвоев косточковых культур. Объектами исследований служили тоновые подвои ОП 23-23, ОД 2-3, АКУГ 2-31 и ОПА 15-2 селекции Воронежского государственного университета им. К.Д. Глинки, рекомендованные для выращивания привитого посадочного материала сливы, абрикоса, алычи, персика. По результатам исследований выделены физиологически активные вещества, позволяющие увеличить выход подвойного материала. Отмечены оптимальные сроки проведения зеленого черенкования отдельных подвоев для получения наибольшей приживаемости. Установлено влияние как сроков черенкования, так и обработки черенков стимуляторами роста на развитие, как надземной части подвоев, так и корневой системы растений.

Ключевые слова: косточковые культуры, слива, тоновые подвои, черенки, вегетативное размножение, теплица, стимуляторы корне образования

черенкование подвой косточковый

IMPROVEMENT OF GREEN CUTTINGS PROPAGATION TECHNOLOGY OF STONE FRUIT CROPS CLONAL BUDS

Julia S. Mikulina' , Raisa G. NozdrachevaElena Y. Kalchenko3

Abstract

On the basis of the results of the scientific observations, the direct influence of both the application ofphysiologically active preparations (PCI, PCI, succinic acid, without treatment - control) and the timing of greening on the rooting ability> of cuttings of stone fruit crops clonal buds has been established. The objects of the research were clonal rootstocks OP 23-23, OD 2-3, ACU 2-31 and OPA 15-2 of Voronezh State University named after K.D. Glinka recommended for cultivation of grafted planting material ofplum, apricot, cherry plum and peach. According to the results of the research, physiologically active substances allowing to increase the yield of grafting material were singled out. The optimum terms of green cuttings of some plants for highest survival rate have been determined. The effect of both the timing of pruning and the treatment of cuttings with growth stimulants on the development of both the above-ground part of the rootstock and the root system ofplants has been established.

Keywords: stone fruit crops, plum, clonal buds, cuttings, vegetative propagation, greenhouse, stimulators of rooting

Введение

Закладка плодовых насаждений, отвечающих новым интенсивным технологиям возделывания садовых культур, требует высококачественного посадочного материала [1,4, 12, 13, 14].

Размножение как клоновых подвоев, так и привитого посадочного материала основано на регенерационной способности отдельных органов растений [1, 10].

При размножении подвоев вегетативными способами привитые растения отличаются выравненностью надземной части, сроками вступления в плодоношение. Клоновые подвои косточковых культур должны отличаться высоким укоренением черенков зимостойкостью, совместимостью с основными сортами, сдерживать рост привитым сортам в питомнике и саду [1,4, 10].

В Воронежском государственном аграрном университете (бывший СХИ) А,Г. Туровцева и Л. А. Долматова под руководством профессора А.Н. Веньяминова создали зимостойкие клоновые подвои: ОПА 15-2, ОД 2-3, ОП 23-23, АКУ 2-31, Евразия 13-27 и семенной подвой: Евразия 43 на основе межвидовых и межродовых скрещиваний [11].

В то же время под руководством Г.В. Еремина коллективом Крымской опытно-селекционной станции садоводства велась работа по созданию клоновых подвоев косточковых культур, обладающих сдержанной силой роста, высокой зимостойкостью и морозоустойчивостью, а также хорошей совместимостью с сортами сливы, алычи, абрикоса и хорошо размножаемых зелеными черенками. Это позволило увеличить площади закладываемых косточковых садов на юге Российской Федерации [2].

Наиболее распространенными способами размножения подвоев являются: вертикальные и горизонтальные отводки, а также одревесневшими и зелеными черенками. Однако в настоящее время для размножения косточковых подвоев питомниководы стали применять способ зеленого черенкования, несмотря на сложность данной технологии, которая заключается в подборе оптимального водного и температурного режима в начальный период укоренения зеленых черенков, а также применения ростовых веществ, стимулирующих процессы корнеобразования [8, 9, 11].

Для успешного ведения косточковых культур в Центральном Черноземье подбор адаптивных клоновых подвоев остается актуальным, так как при их помощи можно направленно влиять на привой: изменять силу роста, плодоношения и адаптации сортов к стрессовым ситуациям в течение всего года [9].

Целью наших исследований является изучение влияния различных физиологически активных веществ на укоренение и качество развития прижившихся зеленых черенков клоновых подвоев сливы селекции Воронежского ГАУ при разных сроках черенкования.

Задачи исследований:

выявить оптимальные физиологически активных веществ (ФАВ) для получения максимального укоренения подвоев;

дать оценку качества подбойного материала по изучаемым элементам технологии зеленого черенкования.

Материалы и методы исследований. В период с 2019 по 2021 гг. на территории ботанического сада

им. Б.А. Келлера проводилось зеленое черенкование клоновых подвоев косточковых культур селекции кафедры плодоводства и овощеводства Воронежского ГАУ.

Объектами исследований служат клоновые подвои косточковых культур ОП 23-23, ОД 2-3, АКУ 2-31, ОПА 15-2 селекции Воронежского ГАУ.

Научно-исследовательская работа по изучению элементов технологии зеленого черенкования проводилась в условиях пленочной теплицы с применением микрораспыла воды при орошении. Схема посадки черенков клоновых подвоев 5x10 см. Размер зеленых черенков: длина 15-18 см, и 25-30 см - в третьем сроке черенкования; количество листовых пластинок - от 3 до 5 шт. [5].

При постановке опытов, проведении учетов и наблюдений опирались на общепринятую методику по работе с плодовыми культурами [6].

Результаты исследований и их обсуждение. Изучение вопросов размножения клоновых подвоев косточковых культур проводится кафедрой на базе ботанического сада им. Б.А. Келлера (рисунок 1) [3, 7].

Рисунок 1. Маточные насаждения клоновых подвоев и зеленые черенки, высаженные на гряды в теплице

Проведены биометрические учеты, определены показатели высоты растений, толщины штамбика, количество корней первого порядка ветвления, длина корневой системы подвоев [6].

Сравнительный анализ полученных данных показал, что максимальный уровень приживаемости зеленых черенков отмечался на варианте с применением водного раствора Корневина на клоновом подвое ОП 23-23 - 70,8%, при применении Гетероауксина - немного ниже (66,1%), что составило порядка 10% разницы с контрольным вариантом на этом подвое (таблица 1).

Минимальным значением приживаемости отмечается вариант с применением янтарной кислоты на клоновом подвое АКУ 2-31 - 44,2%, что ниже показателя контрольного варианта по этому подвою на 6,4%.

Таблица 1

Влияние стимуляторов роста на укореняемость клоновых подвоев сливы, % (2019-2021 гг.)

На конечную приживаемость зеленых черенков исследуемых клоновых подвоев также оказал влияние и срок проведения черенкования (таблица 2). В среднем за три года исследований было отмечено, что в период вегетации максимальная температура воздуха наблюдалась в июне-июле, что негативно повлияло на укореняемость черенков. Контрольный срок черенкования проводили во второй декаде июня - в период активного роста весенних побегов; второй срок черенкования характеризовался небольшим одревеснением побегов в базальной части; третий срок черенкования проводили, когда большая часть побегов была одревесневшей, но рост еще не прекратился. В конце вегетационного периода после процесса закаливания растений проводили выкопку и учет биометрических показателей развития растений клоновых подвоев (рисунок 2).

Таблица 2

Влияние срока черенкования на приживаемость зеленых черенков клоновых подвоев сливы, % (2019-2021 гг.)

Рисунок 2. Укоренившиеся клоновые подвои сливы: слева - клоновый подвой ОП 23-23; справа - клоновый подвой ОД 2-3

Минимальная приживаемость материала отмечается у подвоя ОД 2-3 в контрольном варианте - 39,1%. Наилучшими результатами обладал подвой ОП 23-23, расчеренкованный во второй декаде августа - 82,3%, что превышает контрольный вариант на 36,6%.

В среднем за 2019-2021 гг. максимальный выход подбойного материала наблюдается при третьем сроке черенковании (71%) - в этот период отмечалось снижение критических среднесуточных температур, негативно влияющих на показатель приживаемости зеленых черенков. Низкий уровень укореняемости подвоев отмечен в контрольный период черенкования - 44,2%.

Проведенные исследования показали, что на выход подбойного материала оказывает влияние как применение физиологически активных веществ, так и сроки проведения зеленого черенкования. Высокая приживаемость черенков кленового подвоя ОП 23-23 получена в варианте с третьим сроком черенкования и применением Корневина - 86,7%; низкая - на подвое АКУ 2-31 в контрольном варианте черенкования с применением янтарной кислоты - 32,7%.

Проведен учет влияния срока черенкования на развитие надземной части клоновых подвоев сливы (рисунок 3). Максимальной ростовой активностью по сравнению с другими подвоями отличался подвой ОП 23-23. Отдельные растения, полученные при втором сроке черенкования, достигали высоты 62 см.

Рисунок 3. Высота укоренившихся зеленых черенков клоновых подвоев

Минимальными значениями надземной части характеризуются растения подвоя ОД 2-3 - средняя высота за три срока черенкования - 23 см. Наименьшая высота растений отмечена в варианте третьего срока созревания на подвое ОД 2-3 - 17 см.

При изучении влияния стимуляторов роста отмечено положительное влияние на развитие корневой системы (рисунок 4). На всех подвоях в варианте с Корневином наблюдалось более активное образование корней, особенно на ОП 23-23 -22,5 см.

Рисунок 4. Длина корневой системы клоновых подвоев сливы

Слабое развитие подземной части отмечено в контрольном варианте. Средняя длина корней при обработке Янтарной кислотой составила 13,6 см.

После выкопки подвойный материал разделили по качеству на три группы: первая - наиболее развитые - около 37% - направлены на производство зимней прививки; вторая, составляющая большую часть (51%), - на закладку очередного поля питомника; третья, слабо развитые растения - 12% - направлены в школку доращивания.

Заключение

Лучшей регенерационной способностью по итогам исследований обладает клоновый подвой ОП 23-23 - средняя приживаемость по всем вариантам опытов составила 47,7%, ростовая активность зафиксирована на уровне 45 см.

Низкой регенерационной способностью и ростовой активностью характеризуется клоновый подвой ОД 2-3 подвои ОПА 15-2 и ОД 2-3 (39,5%, 40,7% и 20,6 см, 16,8 см соответственно).

При выборе срока проведения зеленого черенкования необходимо учитывать складывающиеся погодные условия.

Применение физиологически активных веществ играет положительную роль как в приживаемости, так и в развитии корневой системы укореняемых клоновых подвоев. Максимальное влияние на укореняемость и выход подбойного материала оказали Корневин и Гетероауксин.

Список источников

Григорьева Л.В. Интенсивные технологии в садоводстве - основа его развития при вступлении в ВТО // Вестник Мичуринского государственного аграрного университета. 2012. № 3. С. 49-53.

Еремин Г.В. Среднерослые клоновые подвои сливы для интенсивных садов // Плодоводство и ягодоводство России. 2013. Т. 37. № 2. С. 145-150.

Кальченко Е.Ю., Ноздрачева Р.Г. Особенности размножения клоновых подвоев сливы одревесневшими черенками // Научное обеспечение инновационного развития плодоовощеводческой отрасли в Центральном Черноземье России: сборник научных трудов. Воронеж, 2012. С. 81-86.

Кашин В.И. Научные основы российского плодового питомниководетва // Вестник Российской академии наук. 2002. №6. С. 10-15.

Обоснование проектов закладки питомников и реализации посадочного материала / З.П. Меделяева, Р.Г: Ноздрачева, И.Г. Жарковская, Ю.С. Микулина // Актуальные вопросы устойчивого развития АПК и сельских территорий: Материалы Всероссийской научно-практической конференции, посвященной 50-летию со дня образования кафедры экономического анализа, статистики и прикладной математики. Воронеж, 2018. С. 282-286.

Моисейченко В.Ф., Заверюха А.Х., Трифонова М.Ф. Основы научных исследований в плодоводстве, овощеводстве и виноградарстве. М.: Колос, 1994. 383 с.

Ноздрачева Р.Г., Микулина Ю.С., Кальченко Е.Ю. Влияние агротехнических приемов на выход и качество клоновых подвоев сливы // Вестник Мичуринского государственного аграрного университета. 2016. № 3. С. 21-28.

Поликарпова Ф.Я., Пилюгина В.В. Выращивание посадочного материала зеленым черенкованием. М.: Росаг- ропромиздат, 1991. 96 с.

Попов М.А. Подбор клоновых подвоев для получения высококачественного посадочного материала косточковых культур // Физиологические основы формирования продуктивности, устойчивости и качества продукции в современном садоводстве. Материалы международной научно-методической конференции, посвященной 80-летию со дня рождения А.С. Овсянникова. 2013. С. 90-93.

Самощенков Е.Г. Клоновые подвои сливы, алычи, абрикоса для Нечерноземной зоны РФ // Доклады ТСХА. Российский государственный аграрный университет - МСХА им. К.А. Тимирязева. Москва, 2003. С. 384-394.

Туровцева А.Г., Долматова Л.А. Евразия -43 перспективный подвой для сливы и абрикоса // Биология, селекция и агротехника плодовых культур. Воронеж: ВСХИ. 1981. Т. 112. С. 166-176.

Упадышева Г.Ю., Ястребкова Н.В. Повышение эффективности размножения клоновых подвоев косточковых культур с применением технологии зеленого черенкования // Садоводство и виноградарство. 2011. № 1. С. 32-35.

Phenotypic variability and genetic structure in plum (Primus do-mestica L.), cherry plum (P. cerasifera Ehrh.) and sloe (P. spinosa L.) / A. Eforvath, E. Baisemin, J.-C. Barbot [et al.]. Scientia Horticulturae, 2011, vol.129, pp. 283-293.

Seemtiller E., Mol E., Schneider В. Apple proliferation resistance of Malus sieboldii-based rootstocks in comparison to rootstocks derived from other Malus species. European Journal of Plant Pathology, 2008, no. 121 (2), pp. 109-119.

References

Grigorieva, L. V. Intensive technologies in horticulture - the basis for its development during WTO accession. Bulletin of Michurinsk State Agrarian University, 2012, no. 3, pp. 49-53.

Eremin, G.V. Mid-growing plum clonal rootstock for intensive orchards. Fruiting and berry-growing in Russia, 2013, vol. 37, no. 2, pp. 145-150.

Kalchenko,, E.Yu. and R.G. Nozdracheva. Features of propagation of plum clonal rootstocks by single-tree cuttings. Scientific support of innovation development of fruit and vegetable growing sector in Central Black Earth Region of Russia: collection of scientific papers. Voronezh, 2012, pp. 81-86.

Kashin, V.I. Scientific basis of Russian fruit nursery-growing industry. Bulletin of Russian Academy of Sciences, 2002, no. 6, pp. 10-15.

Medelyaeva, Z.P., R.G. Nozdracheva, I.G. Zharkovskaya and Y.S. Mikulina. Justification of nursery planting projects and realization of planting material. Actual issues of sustainable development of agriculture and rural areas: Proceedings of All- Russian Scientific-Practical Conference devoted to the 50th anniversary of the department of economic analysis, statistics and applied mathematics. Voronezh, 2018, pp. 282-286.

Moiseichenko, V.F., A.Kli. Zaveryukha and M.F. Trifonova. Fundamentals of scientific research in fruit growing, vegetable growing and viticulture. M.: Kolos, 1994. 383 p.

Nozdracheva, R.G., Yu.S. Mikulina and E.Yu. Kalchenko. Influence of agroteclmical methods on yield and quality of plum clonal rootstocks. Bulletin of Michurinsk State Agrarian University, 2016, no. 3, pp. 21-28.

Polikarpova, P.Ya. and V.V. Pilyugina. Growing planting material by green-cutting. Moscow: Rosagropromizdat, 1991.96 р.

Popov, M.A. Selection of clonal tree stocks for obtaining high-quality planting material of stone fruit crops. Physiological bases of productivity formation, sustainability and product quality in modem horticulture. Materials of the international scientific and methodical conference dedicated to the 80th anniversary of A.S. Ovsyannikov, 2013, pp. 90-93.

Samochenkov, E.G. Clonal tree-beings of plum, alycha, apricot for Non-Black Earth zone of Russian an Federation. Reports of Russian State Agrarian University. MSKHA named after K.A. Timiryasev. Moskow, 2003, pp. 384-394.

Turovtseva, A.G. and L.A. Dolmatova. Eurasia -43 promising scion for plum and apricot. Biology, breeding and agrotechnique of fruit crops. Voronezh: All-Russian Agricultural Institute, 1981, vol. 112, pp. 166-176.

Upadysheva G.Y., Yastrebkova N.V. Increase of efficiency of multiplication of stone truit crops with application of technology of green chipping. Horticulture and viticulture, 2011, no. 1, pp. 32-35.

Horvath, A., E. Baisemin, J.-C. Barbot et al. Phenotypic variability and genetic structure in plum (Prunus do-mestica L.), cherry plum (P. cerasifera Ehrh.) and sloe (P. spinosa L.). Scientia Horticulturae, 2011, vol. 129, pp. 283-293.

Seemtiller, E., E. Moll and B. Schneider. Apple proliferation resistance of Malus sieboldii-based root-stocks in comparison with rootstocks derived from other Malus species. European Journal of Plant Pathology, 2008, no. 121 (2), pp. 109-119.

Размещено на Allbest.ru