Размещено на http://www.allbest.ru/

МИНИСТЕРСТВО ПРОСВЕЩЕНИЯ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ

Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования

«Благовещенский государственный педагогический университет»

Естественно-географический факультет

Кафедра биологии и методики обучения биологии

КУРСОВАЯ РАБОТА

на тему: Биологическая активность луговой черноземовидной почвы в посевах сои и кукурузы

по дисциплине: Микробиология с основами вирусологии

Благовещенск 2024

Содержание

• Введение
• 1. Биологическая активность почвы
• 2. Материал и методы исследования
• 3. Сравнительный анализ биологической активности луговой черноземовидной почвы при выращивании сои и кукурузы
• Заключение
• Список использованных источников

Введение

Биологическая активность почвы определяется наличием и активностью микроорганизмов, преимущественно бактерий, грибов и актиномицетов, и является фундаментальной составляющей биологических процессов, протекающих в почвенной среде. Она играет ведущую роль в обеспечении нормального роста и развития растений, а также в функционировании агроэкосистемы в целом. Микроорганизмы, обитающие в почве, выполняют ряд ключевых функций, включая разложение органического вещества, минерализацию питательных веществ и азотфиксацию. Кроме того, они вносят существенный вклад в повышение плодородия почвы и ее способность противостоять стрессовым условиям.

Исследования, направленные на изучение биологической активности почвы, могут быть актуальными для разработки эффективных агротехнических подходов, направленных на улучшение плодородия почвы и обеспечение устойчивого функционирования агроэкосистемы.

Цель исследования: изучить биологическую активность луговой черноземовидной почвы в посевах сои и кукурузы.

Для достижения цели необходимо решение следующих задач:

1. По литературным источникам изучить биологическую активность почвы.

2. Провести анализ ферментативной и микробиологической активности почв.

Объект исследования: луговая черноземовидная почва.

Предмет исследования: биологическая активность почв при выращивании сои и кукурузы

1. Биологическая активность почвы

Биологическая активность почвы определяется как способность почвенной среды поддерживать жизненную активность различных организмов, населяющих ее. Эта активность включает в себя разнообразные биологические процессы, которые происходят в почве, такие как циклы элементов, разложение органического вещества, биологическая фиксация азота и взаимодействие с минеральными веществами [7].

Биологическая активность является важным показателем качества почвы и оказывает прямое влияние на ее плодородие и устойчивость. Микроорганизмы играют ключевую роль в этой активности. Они выполняют разнообразные функции, включая разложение органических веществ, обеспечение доступа к питательным веществам, усвоение минералов и фиксацию азота [13].

Одним из важных аспектов биологической активности почвы является взаимодействие с гумусовыми веществами. Гумусовые вещества, составляющие значительную долю почвы, играют ключевую роль в обеспечении питательной среды для микроорганизмов и поддержании баланса питательных веществ [9].

Следует отметить, что биологическая активность почвы является сложным и динамичным процессом, который зависит от множества факторов, включая погодные условия, тип почвы, доступность питательных веществ и наличие различных организмов [15].

Биологическая активность почвы может быть характеризована посредством различных показателей, включая ферментативные и микробиологические показатели. Эти показатели предоставляют информацию о функциональном состоянии почвенной биоты и могут служить важным инструментом для оценки плодородия и здоровья почвы [4].

Ферментативные показатели биологической активности почвы отражают активность различных ферментов, которые играют важную роль в биологических процессах. Например, активность ферментов, таких как уреазы, каталазы, инвертазы и других, может быть использована для определения процессов нитрификации, денитрификации, разложения органического вещества и др. Эти ферменты выполняют ключевые функции в цикле питательных элементов и могут служить индикаторами здоровья почвы [5].

Микробиологические показатели биологической активности почвы связаны с наличием и активностью различных микроорганизмов, таких как бактерии, грибы, актиномицеты и другие. Показатели включают в себя общее количество микроорганизмов по группам, таким как колонизаторы органического вещества, нитрификанты, денитрификанты и другие. Кроме того, исследования активности микроорганизмов, таких как азотофиксация, деструкция органического вещества и прочие, могут быть полезными для оценки биологической активности почвы [11].

Зависимость биологической активности почвы от способов ее обработки, приводит в своей статье В.А. Гулидова: «…длительное применение поверхностной, плоскорезной и чизельной обработок в зернотравянопропашном севообороте приводит к резкой дифференциации пахотного слоя по плодородию. Самым плодородным слоем становится верхний (0-10 см), в котором концентрируется основная масса растительно-пожнивных остатков и питательных веществ. Также наиболее благоприятные условия для целлюлозоразлагающих микроорганизмов складывались по ежегодной разноглубинной вспашке. В вариантах с комбинированной безотвально-отвальной обработкой биологическая активность почвы имела близкие значения к вспашке. Деструкция льняной ткани в слоях 0-10 и 10-20 см была практически одинаковой. Только с глубины 20-30 см наблюдалась дифференциация пахотного слоя по целлюлозоразлагающей активности. Как ежегодная отвальная, так и ежегодная безотвальная системы обработки почвы в севообороте не могут в полной мере оптимизировать факторы роста растений. Более благоприятные условия как для биологических процессов в почве, так и для растений создает комбинация разноглубинных безотвальных, отвальных и поверхностных приемов в системе обработки почвы» [4, с. 52].

В результате обработки почвы создаются благоприятные условия для накопления и сбережения влаги, образуется рыхлый слой, облегчающий рост и развитие корневой системы, перераспределяется органическое вещество, как основной источник пищи и энергетического материала для почвенной микрофлоры.

При всех способах обработки почвы к концу вегетации сельскохозяйственной культуры наблюдается разнокачественность почвенных слоев по плодородию. Возросший интерес к дифференциации пахотного слоя по плодородию обусловлен применением в широких масштабах обработки почвы по типу «No-Till» и безотвальной [22].

При минимализации обработки почвы очень сильно проявляется дифференциация по профилю почвы основных показателей плодородия, особенно отмечается резкое снижение плодородия в нижней части пахотного слоя по количеству микроорганизмов, содержанию органического вещества и подвижных форм Р₂О₅ и К₂О. Процесс разнокачественности пахотного слоя почвы наступает в том случае, если отказаться от вспашки.

Биологическая активность почвы зависит от выращиваемых на ней культур. В своей статье «Биологическая активность почвы при совместном посеве культур» С.И. Коржова, Т.А. Трофимова и Г.В Котова выявили что: «…бинарные посевы подсолнечника с донником и люцерной способствовали оптимизации основных показателей плодородия почвы. Разложение льняного полотна в почве под такими посевами возрастало, по сравнению с одновидовым размещением подсолнечника, в 2,1…3,2 раза. Последействие приемов биологизации проявлялось и в посевах озимой пшеницы. При размещении этой культуры по донниковому и люцерновому пару темпы разложения льняного полотна были соответственно в 2,8 и 3,2 раза выше, чем в посевах по чистому пару. Самый высокий коэффициент иммобилизации азота отмечали в зернопаропропашном севообороте в период всходов ячменя. Он был в 3…4 раза больше, что указывает на достаточно большое количество трудно разлагаемых растительных остатков (соломы) в почве. Бинарные посевы подсолнечника с донником и люцерной повышали относительный показатель биогенности в период цветения и уборки, по сравнению с одновидовым посевом подсолнечника, на 38 и 27 % соответственно. Самую высокую урожайность озимой пшеницы отмечали по чистому пару (4,37 т/га), подсолнечника - в севооборотах с бинарными посевами культур (2,84...2,95 т/га)» [11, с. 9].

Биологическая активность почвы зависит от использования удобрений при выращивании сельскохозяйственных культур. Вследствие резкого уменьшения объемов применения органических удобрений происходит ухудшение экологического состояния пахотных земель, загрязнение сельскохозяйственных угодий токсичными веществами снижение почвенного плодородия. Ведь естественное плодородие пахотных земель тесно связано с жизнедеятельностью почвенных микроорганизмов, и агротехнические приемы оказывают сильное влияние на микрофлору почвы. Основными характеристиками состояния почв являются содержание гумуса, азота, фосфора и др., которые служат показателями плодородия и мониторинга сельскохозяйственного использования почв [21].

В настоящее время есть мнение, что при использовании почв необходимо учитывать не только агрохимические характеристики, но и микробиологические. Агрохимические и агротехнические воздействия влияют на свойства почвы, а также ее микрофлору, изменяют состав и интенсивность жизнедеятельности микроорганизмов, определяют направленность минерализации и синтеза органических соединений. Экспериментальные данные некоторых авторов показали, что связь между содержанием гумуса в почве и ее биологическими свойствами очень тесна, что может говорить о функциональной зависимости между ними [20].

Существенным фактором, определяющим микробиологическую активность почвы, является - внесение органических удобрений. Органические удобрения всегда оказывают положительное влияние на развитие микроорганизмов в почве и их биологическую активность. Внесение оптимальных доз органических удобрений повышает биохимическую и микробиологическую активность почв [12].

Е.М. Глушень, Г.М. Петров, А.В. Сорока, С.И. Гусак, М.В. Дубойский, пришли к выводу, что внесение органических удобрений положительно влияет на микробиологическую активность исследованных почв, что подтверждается, увеличением микробной биомассы почв и общей численностью микроорганизмов. Максимальная биологическая активность почв достигалась при внесении органо-бактериальных удобрений на основе твердой фракции навоза КРС после сепарации. Общая численность микроорганизмов под влиянием ферментированных сепарированных отходов КРС составляла не менее 32 млрд КОЕ/г почвы. Наличие в составе органо-бактериальных удобрений микроорганизмов с высоким деструктивным потенциалом увеличивало целлюлолитическую активность почв в 1,4-1,7 раза по сравнению с контролем [2].

2. Материал и методы исследования

Отбор проб проводили в октябре 2023 г. на полях сельскохозяйственного назначения, расположенных на территории Муравьёвского заказника (Тамбовский район, Амурская область). Для изучения биологической активности почв прикопку закладывали непосредственно перед отбором образцов глубиной 0-20 см. Перед взятием пробы, лопату несколько раз втыкали в исследуемый почвенный горизонт, что разрешается при необходимости количественного учета почвенных микроорганизмов и грубого качественного анализа. На каждой исследуемой площадке было отобрано три образца, которые в последующем были смешаны для получения среднего образца. Образцы почвы отбирались в стерильные матерчатые мешочки. Каждый образец почвы сопровождался этикеткой, где указывали точку отбора. Точки отбора почвенных проб показаны на рисунке 1 и 2.

Рисунок 1 - Точки отбора почвы с соевого поля (GoogleMaps)

Рисунок 2 - Точки отбора почвы с кукурузного поля (GoogleMaps)

Луговые черноземовидные почвы характеризуются средним или высоким содержанием гумуса в пахотном горизонте от 4 до 8 % с преобладанием гуминовых кислот, связанных с кальцием, слабокислая или кислая реакция (рНсол. 5-6), высокой емкостью катионного обмена (от 20 до 46 мг-экв на 100 г почвы) и высокой степенью насыщенности основаниями (85-95 %). Почвы средне обеспечены доступными растениям формами азота и фосфора и высоко обеспечены обменным калием.

Методика исследования:

- каталазную активность определяли фотоэлектроколориметром методом (3 % раствор йодистого калия в 50 % ацетоне готовят следующим образом. 50 мл 3 % раствора йодистого калия растворяют в 50 мл ацетона, т.е. в отношении 1:1. Берут навеску 0,1 г исследуемой пробы и растирают в ступке со стеклянным порошком. Для уменьшения кислотности к растертой пробе добавляют на кончике шпателя СаCО₃, после чего приливают 10 мл 3 % перекиси водорода и 10 мл 3 % раствора йодистого калия в 50 % ацетоне. Смесь фильтруют, центрифугируют и фотоколориметрируют на ФЭК-56М, на синем светофильтре с длиной волны 435-445 нм в кювете 10 мм. [8].

Активность каталазы определяют по формуле (1) [10]:

, (1)

где A - активность каталазы в пробе, условные единицы каталазы, Е;

D - оптическая плотность исследуемой пробы;

0,02 - коэффициент перевода в условные единицы каталазы, Е.

Таблица 1 - Степень обогащённости почв каталазой (Звягинцев, 1987)

- определение интенсивности дыхания по количеству выделившегося CO₂. Взвесили 10 г почвы. В нижнюю часть прибора налили 10 мл 1 Н щелочи NaOH. В верхнюю часть прибора поместить навеску почвы. Зафиксировать время начала опыта. Оставили на 24 часа. Через сутки провели титрование 0,01 Н щавелевой кислотой по фенолфталеину 10 мл контрольной и 10 мл опытной щелочи (10 мл кислоты = 1 мг CO₂). По полученным данным вычислить интенсивность дыхания по формуле (2) [17]:

К=(а-в)Н*44, (2)

где К - количество СО₂, мг в сутки; а - количество кислоты, потраченной на титрование до опыта (контроль); в - количество кислоты, потраченной на титрование после опыта; Н - нормальность кислоты, 0,01Н; 44 - коэффициент характеризующей количество мг СО₂ эквивалентного 1 мл 1 н. раствора кислоты.

Биологическую оценку почв по уровню интенсивности дыхания определяли по шкале, представленной в таблице 2.

Таблица 2 - Шкала для оценки биологической активности почвы по ИД

- определение целлюлозоразрушающей активности почвы проводили аппликационным методом. При этом методе учитывают изменение веса заложенных в почву целлюлозных материалов (льняного полотна). Для проведения эксперимента использовали тонкую льняную ткань размером 5х5 см, предварительно продезинфицированную в течении 20 мин УФ-лучами. Начальный вес ткани определяли путем взвешивания на аналитических весах. Навеску почвы массой 50 г (можно больше), освобожденную от растительных остатков поместили в пластмассовые чашки. В середину почвенного слоя заложили льняную ткань размером 2х2 см, почву увлажнить прокипячённой водой. В течении всего времени эксперимента почву поддерживали во влажном состоянии.

Через один месяц льняную тряпочку осторожно извлекли, очистили от почвы и продуктов разложения, подсушили и взвесили. По убыли в весе судили об интенсивности процесса разрушения клетчатки. Д.Г. Звягинцевым предложена следующая шкала оценки биологической активности почв по интенсивности разрушения клетчатки (% разложившегося полотна): очень слабая < 10 %, слабая - 10-30 %, средняя - 30-50 %, сильная - 50-80 %, очень сильная > 80 %.

- выявление свободноживущих азотфиксирующих микроорганизмов рода Azotobacter в исследуемых пробах почвы осуществляли Состав питательной среды Эшби (г/л дистиллированной воды) сахароза - 20; K2HPO4 - 0,2; MgSO4; NaCl - 0,2; K2SO4 - 0,1; CaCO3 - 5,0. Питательную среду, не стерилизуя, разливают в колбы объёмом 100-150 мл слоем 1,0-1,5 см и вносят исследуемую почву (0,5 чайной ложки). Колбы закрывают ватными пробками, и помещают в термостат при t=28-30 °С на 7-10 дней. Регистрация результатов: о наличии азотобактера в анализируемых образцах свидетельствовало появление взвеси в колбах, т.к. Azotobacter chroococcum имеет капсулу.

Методика приготовления микропрепарата для выявления капсулы по методу Гинса: на конец предметного стекла микробиологической петлей нанести каплю черной туши и в нее внесли небольшое количество питательной среды, тщательно перемешали. Ребром второго предметного стекла сделали мазок по всей поверхности стекла. Мазок высушили на воздухе и зафиксировали термически. Мазок окрасили разбавленным карболовым фуксином Циля (1:3) в течение 2-3 мин. Препарат промыли водой, высушили на воздухе и микроскопировали, отмечая клетки азотобактера, заключенные в капсулы.

3 Сравнительный анализ биологической активности луговой черноземовидной почвы при выращивании сои и кукурузы

При изучении природных и антропогенно нарушенных экосистем особое значение придается оценке параметров биологической активности почв. Для этой цели предложены интегральные показатели, позволяющие на основе комплекса биотических и физико-химических параметров адекватно оценивать экологическое состояние почв как компонентов экосистем. Из параметров биологической активности почв наиболее широко используются биохимические показатели, в первую очередь показатели ферментативной активности, поскольку почвы являются «каталитической матрицей биосферы». Наиболее информативны показатели активности ферментов, относящихся к классу оксидоредуктаз (каталаза, дегидрогеназа, пероксидаза, полифенолоксидаза) и классу гидролаз (инвертаза, уреаза, фосфатаза, протеаза), уровень которых четко отражает степень воздействия антропогенеза, в частности лесозаготовительной деятельности.

Анализ оценки применимости показателей ферментативной активности в биодиагностике и мониторинге почв свидетельствует о высокой чувствительности метода определения каталазной активности почв, его хорошей воспроизводимости, стабильности получаемых результатов и простоте выполнения.

Каталаза - фермент, относящийся к классу оксидоредуктаз, широко распространен в природе, встречается почти во всех живых клетках, присутствует в почве. Наиболее ярко каталазную активность проявляют органогенные горизонты почв, а в лесных сообществах - горизонты лесной подстилки, где активно протекают процессы трансформации органического вещества и гумусобразования. Биосферная значимость каталазы, простота и воспроизводимость методов ее определения обусловили широкое применение показателя каталазной активности почв в фундаментальных и прикладных исследованиях [16].

Каталазная активность почвы - потенциальная способность почвы разлагать перекись водорода. Обусловлена активностью ферментов-каталаз, относящихся к группе дыхательных ферментов, и наличием в почве неорганических катализаторов этого процесса [1].

Из таблицы 3 видно, что каталазная активность почвы в посевах сои составила 606 условных единиц каталазы (Е), а в посевах кукурузы -- 1051 Е. Оба образца классифицируются как очень бедные по степени обогащённости почв каталазой. Однако каталазная активность почвы в посевах кукурузы на 73.6% выше, чем в посевах сои, что может указывать на более высокую активность процессов, связанных с дыхательными ферментами, в почве под кукурузой. Это может быть связано с различиями в составе органических остатков и микробной активности, обусловленных типом культуры.

Таблица 3 - Степень обогащённости почв каталазой

Дыхание почвы представляет собой сложное, многофункциональное природное явление, проявляющееся в процессах газообмена между основными компонентами биогеосферы, почвообразования, трансформации геологических пород, диссипации энергии, накопленной в почвенном органическом веществе и биомассе почвообитающих организмов [14].

Согласно данным таблицы 4, интенсивность дыхания почвы с соевого поля составляет 30.6 г/сутки, а с кукурузного поля - 28.4 г/сутки. Таким образом, интенсивность дыхания почвы с соевого поля на 7.8% выше по сравнению с кукурузным полем. Несмотря на то, что оба значения указывают на очень слабую активность дыхания, разница может отражать небольшое преимущество соевых посевов в способности поддерживать микробную активность и газообменные процессы в почве.

Одним из показателей биологической активности почвы является ее целлюлозолитическая активность (ЦА), которая зависит от численности разрушающих целлюлозу микроорганизмов [3].

Таблица 4 - Интенсивности дыхания исследуемой почвы по методу Бойсена-Иенсена

В таблице 5 представлены результаты исследования целлюлозоразрушающей активности почвы на соевом и кукурузном полях. Разложение льняного полотна за месяц составило 28% для соевого поля и 21% для кукурузного поля. Эти данные указывают на более высокую активность целлюлозоразлагающих микроорганизмов в почве под соей по сравнению с кукурузой. Разница в процентном разложении полотна между двумя типами посевов составляет 7%, что свидетельствует о более интенсивных процессах разложения органического вещества в почве под соей.

Рисунок 3 демонстрирует визуальные результаты целлюлозоразрушающей активности исследуемой почвы, подтверждая выводы, сделанные на основе данных таблицы 5. На фотографии видно, что льняное полотно, заложенное в почву под соей, подверглось более значительному разложению, чем полотно на кукурузном поле. Это визуальное подтверждение количественных данных, полученных в результате эксперимента.

Таблица 5 - Целлюлозоразрушающая активность исследуемой почвы

Рисунок 3 - Результаты целлюлозоразрушающей активности исследуемой почвы (фото автора)

Азотобактер (Azotobacter), род аэробных грамотрицательных органотрофных бактерий. Способны к фиксации молекулярного азота (N₂) атмосферы. Клетки овальные (размер 2Ч5 мкм), при неблагоприятных условиях образуют цисты. При росте связывают до 20 мг N₂ на 1 г усвояемого углерода. Азотобактер выделяют во внешнюю среду пигменты (жёлтый, зелёный, фиолетовый, коричневый и бурый). Наиболее распространены Azotobacter chroococcum и Azotobacter vinelandii. Обитают в воде, почвах всех типов (особенно в хорошо окультуренных). Вырабатывают ряд витаминов, антибиотики, ростовые вещества типа ауксинов, чем (наряду с азотофиксацией) объясняется их благотворное влияние на растения, в т. ч. на сельскохозяйственные культуры [19].

Бактерии рода азотобактер приспособились жить в разных природных условиях: в нейтральных и в щелочных почвах, в арктическом и в антарктическом регионах, в пресноводных водоёмах и в солоновато-водных болотах, но более распространенно они образуют симбиотическую связь с растениями и живут в ризосфере, так как там находится самое больше количество питательных веществ [18].

Кислород для азотобактера опасен и ядовит, но в процессе эволюции они выработали особый белок, который защищает важную нитрогеназу от воздействия кислорода, и способность удалять из себя излишки кислорода - активное дыхание. В данном процессе накапливающийся у них кислород просто сжигает часть топлива вместо того, чтобы отравлять их организм.

В результате исследования почвы кукурузного и соевого поля в соответствии с рисунком 4 на наличие бактерий рода Azotobacter, были найдены крупные, неспорообразующие палочковидные бактерии, окруженные капсулой. На микропрепаратах могут располагаться одиночно, парами, неправильными скоплениями или, изредка, цепочками различной длины.

Соевое поле Кукурузное поле

Рисунок 4 - Azotobacter chroococcum, тушь, фуксин, ОИх100

Анализ таблиц 3, 4 и 5, а также рассмотрение рисунка 3 позволяют сделать заключение о том, что биологическая активность луговой черноземовидной почвы варьируется в зависимости от типа культивируемой культуры. Почва в посевах сои демонстрирует более высокие показатели каталазной и целлюлозоразрушающей активности по сравнению с почвой кукурузных посевов. Это может свидетельствовать о более высокой степени разложения органического вещества и, как следствие, о лучшем плодородии почвы под соей.

почва каталазный целлюлозоразрушающий соя

Заключение

Литературный обзор показал, что биологическая активность почвы является ключевым фактором её плодородия и способности поддерживать устойчивые агроэкосистемы. Биологическая активность влияет на процессы разложения органических веществ, минерализации питательных элементов и азотфиксации, что в свою очередь способствует обогащению почвы гумусом и повышению её плодородия.

Результаты исследования подтвердили наличие различий в биологической активности почвы в зависимости от культуры, выращиваемой на ней. Было выявлено, что каталазная активность и интенсивность дыхания почвы, а также целлюлозоразрушающая активность варьируются между посевами сои и кукурузы, что указывает на разную степень влияния этих культур на биологические процессы в почве. Эти данные свидетельствуют о важности выбора сельскохозяйственных культур и систем обработки почвы для поддержания и улучшения её биологической активности и общего состояния.

В итоге, цель исследования - изучить биологическую активность луговой черноземовидной почвы в посевах сои и кукурузы - была достигнута. Исследование позволило выявить различия в биологической активности почвы в зависимости от типа культурных посевов. Выяснилось, что почва в посевах сои обладает более высокой целлюлозоразрушающей активностью по сравнению с почвой в посевах кукурузы, что свидетельствует о высокой биологической активности и потенциале для поддержания плодородия.

Список использованных источников

1. Бакинский, А.А. Ферментативная активность почвы как индикатор состояния почвенного покрова / А.А. Бакинский, Б.А. Зауралов, А.Г. Михайлов // Вестник МГУ. - 2011. - № 1. - С. 36-42.

2. Влияние органо-бактериальных удобрений на микробиологические характеристики почв / Е.М. Глушень, Г.М. Петрова, А.В. Сорока [и др.]. / Микробные биотехнологии: фундаментальные и прикладные аспекты. - 2018. 448 с.

3. Гаврилова В.И. Целлюлозолитическая активность почв: методы измерения, факторы и эколого-географическая изменчивость / В.И. Гаврилова, М.И. Герасимова // Вестник Московского университета. - 2019. - № 1. - C. 23-27.

4. Гулидова В.А. Микробиологическая активность целлюлозоразлагающих бактерий и дифференциация корнеобитаемого слоя в зависимости от основной обработки почвы / В.А. Гулидова // Агропромышленные технологии Центральной России. - 2021. - № 19. - C. 52-59.

5. Дедов А.А. Влияние темпов разложения растительных остатков на лабильное органическое вещество и урожайность культур севооборота / А.А. Дедов, А.В. Дедов, М.А. Несмеянова // Земледелие. - 2017. - № 4. - С. 6-9.

6. Ермаков, А.И. Методы биохимического исследования растений / А.И. Ермаков, В.В. Арасимович, М.И. Смирнова-Иконникова. - 2-е изд. - Ленинград: Колос, 1972. - 456 c.

7. Звягинцев Д.Г. Биологическая активность почв и шкалы для оценки некоторых ее показателей / Д.Г. Звягинцев // Почвоведение. - 1978. - № 6. - С. 48-54.

8. Звягинцев Д.Г. Методы почвенной микробиологии и биохимии / Д.Г. Звягинцев. - М.: Изд-во МГУ, 1991. - 304 c.

9. Зинченко М.К. Влияние систем удобрений отдельных физиологических групп микроорганизмов в серой лесной почве Владимирского поля / М.К. Зинченко, Т.С. Бибик, Л.Г. Стоянова // Фундаментальные исследования. - 2014. - № 12. - С. 552-557.

10. Казеев К.Ш. Биологическая диагностика почв: методология и методы исследования / К.Ш. Казеев, С.И. Колесников, В.Ф. Вальков. -- Ростов-на-Дону: Издательство Ростовского университета, 2003. - 204 c.

11. Коржов С.И. Биологическая активность почвы при совместном посеве культур / С.И. Коржов, Т.А. Трофимова, Г.В. Котов // Земледелие. - 2018. - № 8. - С. 8-10.

12. Кукишева А.А. Влияние длительного применения удобрений на разложение целлюлозы микроорганизмами дерново-подзолистой почвы в условиях Томской области / А.А. Кукишева // Научное и инновационное обеспечение АПК Сибири: материалы VI Межрегион. конф. молодых ученых и специалистов аграрных вузов Сиб. федерал. округа, 18-21 июня, 2008 г. - Барнаул, 2008. - С. 33-35.

13. Мёрзлая Г.Е. Гумус и органические удобрения как основа плодородия / Г.Е. Мёрзлая, Л.К. Шевцова // Плодородие. - 2006. - № 5. - С. 27-29.

14. Минеев В.Г. Агрохимия, биология и экология почвы / В.Г. Минеев, Е.Х. Ремпе. - М.: Росагропромиздат, 1990. - 206 c.

15. Мосина Л.В. Экологическая оценка влияния органических и минеральных удобрений на микрофлору дерново-подзолистой почвы и продуктивность агроценозов в экстремальных погодных условиях / Л.В. Мосина, Г.Е. Мёрзлая // Известия ТСХА. - 2013. - № 5. - C. 5-18.

16. Нетрусов А.И. Микробиология / А.И. Нетрусов. - М.: Academia, 2012. - 382 c.

17. Перминова Е.М. Каталазная активность подозолистых почв коренного ельника черночного и разновозрастных лиственно-хвойных сообществ / Е.М. Перминова, Е.М. Лаптева // Аграрный вестник Урала. - 2018. - № 5. - C. 44-52.

18. Федорец Н.Г. Методика исследования почв урбанизированных территорий / Н.Г. Федорец, М.В. Медведева. - Петрозаводск: Карельский научный центр РАН, 2009. - 84 с.

19. Филипович Ю.Б. Практикум по общей биохимии / Ю.Б. Филипович, Т.А. Егорова, Г.А. Севастьянова. - 2-е изд. - М.: Просвещение, 1982. - 311 c.

20. Шикула Н.К. Минимальная обработка черноземов и воспроизводство их плодородия / Н.К. Шикула, Г.В. Назаренко. - М.: Агропромиздат, 1990. - 320 с.

21. Щапова Л.Н. Микробиологические аспекты формирования плодородия почв / Л.Н. Щапова // Плодородие. - 2009. - № 4. - С. 30-32.

22. Эффективность длительного применения органических и минеральных удобрений / Г.Е. Мёрзлая [и др.] // Плодородие. - 2010. - № 4. - С. 31-32.

Размещено на Allbest.ru