Значення мікроорганізмів для здоров’я ґрунтів та оптимізації формування біоценозів

Обґрунтовано значення мікробної ґрунтової біомаси в процесах розкладання рослинних залишків, відмерлих мікроорганізмів і ґрунтової органічної речовини. Проаналізовано значення мікроорганізмів, що стимулюють ріст і розвиток рослин та біопрепаратів.

Рубрика Сельское, лесное хозяйство и землепользование
Вид статья
Язык украинский
Дата добавления 28.09.2024
Размер файла 60,7 K

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

32. Volkogon, V., Pyrig, O., Dimova, S. & Volkogon, K. (2020). Focus of mineralization- synthesis processes of the organic matter in the leached chernozem while cultivating potatoes on different fertilization backgrounds. Agricult. Sci. Pract., 7 (1), pp. 40-47. https://doi.org/10.15407/agrisp7.01.040

33. Kloepper, J.W. & Schroth, M.N. (1979). Plant growth promoting rhizobacteria on radishes. Proceedings of the 4th international conference on plant pathogenic bacteria (pp. 879-882), Angers, France.

34. Kloepper, J., Leong, J., Teintze, M. & Schroth, M.N. (1980). Enhanced plant growth by siderophores produced by plant growth-promoting rhizobacteria. Nature, 286, pp. 885886. https://doi.org/10.1038/286885a0

35. Beneduzi, A., Ambrosini, A. & Passaglia, L.M.P. (2012). Plant growth-promoting rhi- zobacteria (PGPR): Their potential as antagonists and biocontrol agents. Genet. Mol. Biol., 35, pp. 1044-1051. https://doi.org/10.1590/s1415-47572012000600020

36. Ma, Y. (2019). Biotechnological potential of plant-microbe interactions in environmental decontamination. Front. Plant Sci., 10, 1519, https://doi.org/10.3389/fpls.2019.01519

37. Volpiano, C.G., Lisboa, B.B., Sao Jose, J.F.B., Beneduzi, A. & Granada, C.E. (2022). Soil-plant-microbiota interactions to enhance plant growth. Rev. Bras. Cienc. Solo., 46, e0210098. https://doi.org/10.36783/18069657rbcs20210098

38. Volkogon, V.V., Nadkernychna, O.V., Kovalevska, T.M., Tokmakova, L.M., Kopylov, E.P., Kozar, S.F., Tolkachov, M.Z., Melnychuk, T.M., Chaykovska, L.O., Sherstoboev, M.K., Moskalenko, A.M. & Khalep, Yu.M. (2006). Microbial preparations in agriculture: theory and practice. Kyiv: Ahrarna nauka [in Ukrainian].

39. Calvo, P., Nelson, L. & Kloeper, J.W. (2014). Agricultural uses of plant biostiumulants. Plant Soil., 383, 3. https://doi.org/10.1007/s11104-014-2131-8

40. Singh, B.K. & Trivedi, P. (2017). Microbiome and the future for food and nutrient security. Microb. Biotechnol., 10, pp. 50-53. https://doi.org/10.1111/1751-7915.12592

41. Lopes, M.J.D.S., Dias-Filho, M.B. & Gurgel, E.S.C. (2021). Successful plant growth- promoting microbes: inoculation methods and abiotic factors. Front Sustain. Food Syst., 5, 606454. https://doi.org/10.3389/fsufs.2021.606454

42. Vessey, J.K. (2003). Plant growth promoting rhizobacteria as biofertilizers. Plant Soil., 255, pp. 571-586. https://doi.org/10.1023/A:1026037216893

43. Zahir, A.A., Arshad, M. & Frankenberger, W.T. (2004). Plant growth promoting rhizobacteria: applications and perspectives in agriculture. Adv. Agron., 81, pp. 97-168. https://doi.org/10.1016/S0065-2113(03)81003-9

44. Pii, Y., Mimmo, T., Tomasi, N., Terzano, R., Cesco, S. & Crecchio, C. (2015). Microbial interactions in the rhizosphere: beneficial influences of plant growth promoting rhizobacteria on nutrient acquisition process. A review. Biol. Fertil. Soils., 51, pp. 403415. https://doi.org/10.1007/s00374-015-0996-1

45. Trivedi, P., Leach, J.E., Tringe, S.G., Sa, T. & Singh, B.K. (2020). Plant-microbiome interactions: from community assembly to plant health. Nat. Rev. Microbiol., 18, pp. 607621. https://doi.org/10.1038/s41579-020-0412-1

46. Glick, B.R. (2012). Plant growth-promoting bacteria: mechanisms and applications. Scientifica (Cairo), 963401. https://doi.org/10.6064/2012/963401

47. Lin, W., Okon, Y. & Hardy, R.W.R.F. (1983). Enhauced mineral uptake by Zea mays and Sorgum bicolor roots inoculated with Azospirillum brasilense. Appl. Environ. Microbiol., 45 (6), pp. 1775-1779. https://doi.org/10.1128/aem.45.6.1775-1779.1983

48. Okon, Y., Bloemberg, G.V. & Lugtenberg, B.J.J. (1998). Biotechnology of biofertilization and phytostimulation. In Altman, A. (Ed.). Agricult. Biotechnol. (pp. 327-349). New York: Marcel Dekker.

49. Santos, M.S., Nogueira, M.A. & Hungria, M. (2019). Microbial inoculants: reviewing the past, discussing the present, and previewing an outstanding future for the use of beneficial bacteria in agriculture. AMB Expr., 9, 205. https://doi.org/10.1186/s13568-019- 0932-0

50. Zilli, J.E., Pacheco, R.S., Gianluppi, V., Smiderle, O.J., Urquiaga, S. & Hungria, M. (2021). Biological N2 fixation and yield performance of soybean inoculated with Bradyrhizobium. Nutr. Cycl. Agroecosyst. 119, pp. 323-336. https://doi.org/10.1007/ s10705-021-10128-7

51. Patyka, V.P., Kots, S.Ya., Volkohon, V.V., Sherstoboeva, O.V., Melnychuk, T.M., Kalinichenko, A.V. & Hrynyk, I.V. (2003). Biological Nitrogen. V.P. Patyka (Ed.). Kyiv: Svit [in Ukrainian].

52. Volkogon, V.V., Berdnikov, O.M. & Lopushnyak, V.I. (2019). Ecological aspects of the fertilizer system of crops. V.V. Volkogon (Ed.). Kyiv: Agrarna Nauka [in Ukrainian].

53. Dobereiner, J., Day, J.M. & Dart, P.J. (1972). Nitrogenase activity and oxygen sensitivity of the Paspalum notatum--Azotobacter paspali association. J. Gen. Microbiol., 71 (1), pp. 103-116. https://doi.org/10.1099/00221287-71-1-103

54. Dommergues, Y., balandreau, J., Rinaudo, G. & Weinchard, P. (1973). Non-symbiot- ic nitrogen fixation in the rhizosphere of rice, maize and different tropical grasses. Soil. Biol. Biochem., 5 (1), pp. 83-89. https://doi.org/10.1016/0038-0717(73)90094-1

55. Okon, Y., Heytler, P.G. & ^rdy, R.W.F. (1983). N2-fixation by Azospirillum brasilense and incorporation into host Setarica italica. Appl. Environ. Microbiol., 46 (3), pp. 694697. https://doi.org/10.1128/aem.46.3.694-697.1983

56. Maltseva, N.N. & Volkogon, V.V. (1984) Azospirillum lipoferum (Beijerinck), a nitrogen-fixing bacterium in soil rhizosphere and rhizoplane of farm plants. Mikrobiol. Zh., 46 (1), pp. 6-8 [in Russian].

57. Bashan, Y. & de-Bashan, L.E. (2010). How the plant growth-promoting bacterium Azospirillum promotes plant growth -- a critical assessment. Adv. Agron., 108, pp. 77136. https://doi.org/10.1016/S0065-2113(10)08002-8

58. Hungria, M., Campo, R.J., Souza, E.M. & Pedrosa, F.O. (2010). Inoculation with selected strains of Azospirillum brasilense and A. lipoferum improves yields of maize and wheat in Brazil. Plant Soil., 331, pp. 413-425. https://doi.org/10.1007/s11104-009- 0262-0

59. Fukami, J., Nogueira, M.A., Araujo, R.S. & Hungria, M. (2016). Accessing inoculation methods of maize and wheat with Azospirillum brasilense. AMB Express., 6, 3. https://doi.org/10.1186/s13568-015-0171-y

60. Pereg, L., Luz, E. & Bashan, Y. (2016). Assessment of affinity and specificity of Azospirillum for plants. Plant Soil., 399, pp. 389-414. https://doi.org/10.1007/s11104- 015-2778-9

61. Murty, M.G. & Ladha, J.K. (1998). Influence of Azospirillum inoculation on the mineral uptake and growth of rice under hydroponic conditions. Plant Soil., 108 (2), pp. 281285. https://doi.org/10.1007/BF02375660

62. Volkohon, V.V. (2006). Microbial preparations as the factor of increase of mineral fertilizers assimilability by plants. Silskohosp. mikrobiol., 4, pp. 21-30 [in Ukrainian].

63. Ardakani, M. & Mafakheri, S. (2011). Designing a sustainable agroecosystem for wheat (Triticum aestivum L.) production. J. Appl. Environ. Biol. Sci., 1, pp. 401-413.

64. Cassan, F., Coniglio, A., Lopez, G., Cassan, F., Molina, R., Nievas, S., de Carlan, C. L.N., Donadio, F., Torres, D., Rosas, S., Pedrosa, F.O., de Souza, E., Zorita, M.D., de-Bashan, L. & Mora, V. (2020). Everything you must know about Azospirillum and its impact on agriculture and beyond. Biol. Fertil. Soils, 56, pp. 461-479. https://doi.org/ 10.1007/s00374-020-01463-y

65. Santos, M.S., Nogueira, M.A. & Hungria, M. (2021). Outstanding impact of Azospirillum brasilense strains Ab-V5 and Ab-V6 on the Brazilian agriculture: lessons that farmers are receptive to adopt new microbial inoculants. Rev. Bras. Cienc. Solo., 45, e0200128. https://doi.org/10.36783/18069657rbcs20200128

66. Gyaneshwar, P., Naresh Kumar, G., Parekh, L.J. & Poole, P.S. (2002). Role of soil microorganisms in improving P nutrition of plants. Plant Soil., 245, pp. 83-93. https://doi.org/10.1023/A:1020663916259

67. Mehnaz, S. & Lazarovits, G. (2006). Inoculation effects of Pseudomonas putida, Gluconacetobacter azotocaptans, and Azospirillum lipoferum on corn plant growth under greenhouse conditions. Microb. Ecol., 51, pp. 326-335. https://doi.org/10.1007/s00248-006-9039-7

68. Babalola, O.O. (2010). Beneficial bacteria of agricultural importance. Biotechnol. Lett., 32, pp. 1559-1570. https://doi.org/10.1007/s10529-010-0347-0

69. Iutinskaya, G.A., Ponomarenko, S.P., Andreyuk, E.I., Antipchuk, A.F., Babayats, O.V., Belyavskaya, L.A., Brovko, I.S., Valagurova, E.V., Galkin, A. P., Galkina, L.A., Gladun, A.A., Gritsaenko, Z.M., Dragovoz, I.V., Ikin, D., Kozyritskaya, V.E. & Kryuchkova,

L. A. (2010). Bioregulation of microbial-plant systems. K.: Nichlava [in Russian].

70. Kurdish, I.K. (2010). Introduction of microorganisms in agroecosystems. K.: Naukova Dumka [in Ukrainian].

71. Bhattacharyya, P.N. & Jha, D.K. (2012). Plant growth-promoting rhizobacteria (PGPR): emergence in agriculture. World J. Microbiol. Biotechnol., 28, pp. 1327-50. https://doi.org/10.1007/s11274-011-0979-9

72. Belyavskaya, L.A., Kozyritskaya, V.E., Valagurova, E.V. & Iutinskaya, G.A. (2012). Biologically active substances of the preparation Averkom. Mikrobiol. Zh., 74 (3), pp. 1015 [in Russian].

73. Biliavska, L.O., Kozyritska, V.E., Kolomiets, Yu.V. & Babich, A.G. (2015). Phytoprotective and growth-regulatory properties of metabolic bioformulations on the base of soil streptomycetes. Dopov. Nac. akad. nauk Ukr., 1, pp. 131-137 [in Ukrainian].

74. Nosko, B. (2017). Modern problems of phosphorus in farming agriculture and ways of their solution. Visnyk agrarnoi nauky, 6, pp. 5-12 [in Ukrainian].

75. Igual, J.M., Valverde, A., Cervantes, E. & Velazquez, E. (2001). Phosphate solubilizing bacteria as inoculants for agriculture: use of updated molecular techniques in their study. Agronomie, 21, pp. 561-568 https://doi.org/10.1051/agro:2001145

76. Schachtman, D.P., Reid, R.J. & Ayling, S.M. (1998). Phosphorus uptake by plants: from soil to cell. Plant Physiol., 116, pp. 447-453. https://doi.org/10.1104/pp.116.2.447

77. Rodriguez, H. & Fraga, R. (1999). Phosphate solubilizing bacteria and their role in plant growth promotion. Biotechnol. Adv., 17, pp. 319-339. https://doi.org/10.1016/S0734- 9750(99)00014-2

78. Khan, M.S., Zaidi, A., Ahemad, M., Oves, M. & Wani, P.A. (2010). Plant growth promotion by phosphate solubilizing fungi -- current perspective. Arch. Agron. Soil Sci., 26, pp. 73-98. https://doi.org/10.1080/03650340902806469

79. Sawers, R.J.H., Svane, S.F., Quan, C., Gronlund, M., Wozniak, B., Gebreselassie,

M. N., Gonzalez-Munoz, E., Chavez Montes, R.A., Baxter, I., Goudet, J., Jakobsen, I., & Paszkowski, U. (2017). Phosphorus acquisition efficiency in arbuscular mycorrhizal maize is correlated with the abundance of root-external hyphae and the accumulation of transcripts encoding PHT1 phosphate transporters. New Phytol., 214, pp. 632-643. https://doi.org/10.1111/nph.14403

80. Rodriguez, H., Fraga, R., Gonzalez, T. & Bashan, Y. (2006). Genetics of phosphate solubilization and its potential applications for improving plant growth-promoting bacteria. Plant Soil., 287, pp. 15-21. https://doi.org/10.1007/s11104-006-9056-9

81. Bulgarelli, D., Schlaeppi, K., Spaepen, S., Ver Loren van Themaat, E. & Schulze-Lefert, P. (2013). Structure and functions of the bacterial microbiota of plants. Annu. Rev. Plant Biol., 64, pp. 807-838. https://doi.org/10.1146/annurev-arplant-050312-120106

82. Tomasi, N., Weisskopf, L., Renella, G., Landi, L., Pinton, R., Varanini, Z., Nannipieri, P., Torrent, J., Martinoia, E. & Cesco, S. (2008). Flavonoids of white lupin roots participate in phosphorus mobilization from soil. Soil Biol. Biochem., 40, pp. 1971-1974. https://doi.org/10.1016/j.soilbio.2008.02.017

83. Marschner, P., Crowley, D. & Rengel, Z. (2011). Rhizosphere interactions between microorganisms and plants govern iron and phosphorus acquisition along the root axis-- model and research methods. Soil Biol Biochem., 43, pp. 883-894. https://doi.org/ 10.1016/j.soilbio.2011.01.005

84. Mimmo, T., Del Buono, D., Terzano, R., Tomasi, N., Vigani, G., Crecchio, C., Pinton, R., Zocchi, G. & Cesco, S. (2014). Rhizospheric organic compounds in the soil- microorganism-plant system: their role in iron availability. Eur. J. Soil Sci., 65, pp. 629642. https://doi.org/10.1111/ejss. 12158

85. Meena, V.S., Maurya, B.R. & Verma, J.P. (2014). Does a rhizospheric microorganism enhance K+ availability in agricultural soils? Microbiol. Res., 169 (5-6), pp. 337-347. https://doi.org/10.1016/j.micres.2013.09.003

86. Bashan, Y., Levanony, H. & Mitiku, G. (1989). Changes in proton efflux of intact wheat roots induced by Azospirillum brasilense Cd. Can. J. Microbiol., 35, pp. 691-697. https://doi.org/10.1139/m89-113

87. Bertrand H., Plassard C., Pinochet X., Touraine, B., Normand, P. & Cleyet-Marel, J.C. (2000). Stimulation of the ionic transport system in Brassica napus by a plant growth- promoting rhizobacterium (Achromobacter sp.). Can. J. Microbiol., 46, pp. 229-236. https://doi. org/10.113 9/w9 9-137

88. White, P.J. (2003). Ion transport. In Thomas, B., Murphy, D.J. & Murray, B.G. (Eds.). Encyclopedia of applied plant sciences (pp. 625-634), London: Acad. Press.

89. Oger, P.M., Mansouri, H., Nesme, X. & Dessaux, Y. (2004). Engineering root exudation of Lotus toward the production of two novel carbon compounds leads to the selection of distinct microbial populations in the rhizosphere. Microb. Ecol., 47, pp. 96-103. https://doi.org/10.1007/s00248-003-2012-9

90. Blagodatskaya, E., Littschwager, J., Laurer, M. & Kuzyakov, Y. (2010). Growth rates of rhizosphere microorganisms depend on competitive abilities of plants and N supply. Plant Biosyst., 144, pp. 408-413. https://doi.org/10.1080/11263501003718596

91. Hu J., Yang T., Friman V.P., Kowalchuk, G.A., Hautier, Y., Li, M., Wei, Z., Xu, Y., Shen, Q. & Jousset, A. (2021). Introduction of probiotic bacterial consortia promotes plant growth via impacts on the resident rhizosphere microbiome. Proc. R. Soc. B., 288, 20211396. https://doi.org/10.1098/rspb.2021.1396

92. Jacoud, C., Faure, D., Wadoux, P. & Bally, R. (1998). Development of a strain-specific probe to follow inoculated Azospirillum lipoferum CRT1 under field conditions and enhancement of maize root development by inoculation. FEMS Microb. Ecol., 27 (1), pp. 43-51. https://doi.org/10.1111/j.1574-6941.1998.tb00524.x

93. Dobbelaere, S., Croonenborghs, A., Thys, A., Ptacek, D., Vanderleyden, J., Dutto, P., Labandera-Gonzalez, C., Caballero-Mellado, J., Aguirre, J. F., Kapulnik, Y., Brener, S., Burdman, S., Kadouri, D., Sarig, S., & Okon, Y. (2001). Responses of agronomically important crops to inoculation with Azospirillum. Aust. J. Plant Physiol., 28 (9), pp. 871879. https://doi.org/10.1071/PP01074

94. El Zemrany, H., Cortet, J., Lutz, M.P., Chabert, A., Baudoin, E., Haurat, J., Maughan,

N., Felix, D., Defago, G., Bally, R. & Moenne-Loccoz, Y. (2006). Field survival of the phytostimulator Azospirillum lipoferum CRT1 and functional impact on maize crop, biodegradation of crop residues, and soil faunal indicators in a context of decreasing nitrogen fertilisation. Soil Biol. Biochem., 38, pp. 1712-1726. https://doi.org/10.1016/ j.soilbio.2005.11.025

95. Berdnikov, O.M., Volkogon, V.V., Miroshnychenko, M.M., Hrynyk, O.I. & Potapenko, L.V. (2020). The importance of lysimetric studies in the ecological and agrochemical assessment of agricultural technologies. Agroecol. J., 1, pp. 58-70 [in Ukrainian]. https://doi.org/10.33730/2077-4893.L2020.201271

96. Volkogon, V.V. (2007). Microbiological aspects of nitrogen fertilization optimization of agricultural crops. Kyiv: Agrarna Nauka [in Ukrainian].

97. Volkogon, V. (2013). Biological nitrogen transformation. Palmarium Academic publishing [in Russian].

98. Volkogon, V.V. (2006). Methodological aspects of determining environmentally appropriate doses of mineral nitrogen in agriculture. AgroChemistry Soil Sci., 3, pp. 17-19 [in Ukrainian].

99. Ozturk, А., Caglar, О. & Sahin, F. (2003). Yield response of wheat and barley to inoculation of plant growth promoting rhizobacteria at various levels of nitrogen fertilization. J. Plant Nutr. Soil Sci., 166 (2), pp. 262-266. https://doi.org/10.1002/ jpln.200390038

100. Shaharooma, B., Naveed, M., Arshad, M., & Zahir, Z.A. (2008). Fertilizer-dependent efficiency of Pseudomonads for improving growth, yield, and nutrient use efficiency of wheat (Triticum aestivum L.). Appl. Microbiol. Biotechnol., 79, pp. 147-155. https://doi.org/10.1007/s00253-008-1419-0

101. Volkohon, V., Dimova, S., Volkohon, K. & Sydorenko V. (2020). The efficiency of microbial preparations in different systems of fertilizing crops. Visnyk agrarnoi nauky, 6, pp. 5-13. https://doi.org/10.31073/agrovisnyk202006-01

102. Sydorenko, V.P., Volkohon, V.V., Dimova, S.B., Volkohon, K.I., Lutsenko, N.L., Shtanko, N.P. & Zemska I.A. (2020). Efficiency of pre-sowing inoculation in cultivation of agricultural crops under different organic agrarian backgrounds. Silskohosp. mikro- biol., 32, pp. 18-34. https://doi.org/10.35868/1997-3004.32.18-34

103. Volkogon, V.V., Dimova, S.B., Volkogon, K.I., Sidorenko, V.P. & Volkogon, M.V. (2021). Biological Nitrogen fixation and denitrification in rhizosphere of potato plants in response to the fertilization and inoculation. Front. Sustain. Food Syst., 5, 606379. https://doi.org/10.3389/fsufs.2021.606379

104. Santa, O.R.D., Santa, H.S.D., Fernandes, R., Michela, G., Ronzelli, P. & Soccol, C.R. (2008). Influence of Azospirillum sp. inoculation in wheat, barley and oats. Ambiencia, 4 (2), pp. 197-207.

105. Adesemoye, A.O., Torbert, H.A. & Kloepper, J.W. (2009). Plant growth-promoting rhizobacteria allow reduced application rates of chemical fertilizers. Microb. Ecol., 58 (4), pp. 921-929. https://doi.org/10.1007/s00248-009-9531-y

106. Yasari, E., Azadgoleh, M.A., Mozafari, S. & Alashti, M.R. (2009). Enhancement of growth and nutrient uptake of Rapeseed (Brassica napus L.) by applying mineral nutrients and biofertilizers. Pak. J. Biol. Sci., 12, pp. 127-133. https://doi.org/10.3923/ pjbs.2009.127.133

107. Hungria, M., Campo, R.J., Souza, E.M. & Pedrosa, F.O. (2010). Inoculation with selected strains of Azospirillum brasilense and A. lipoferum improves yields of maize and wheat in Brazil. Plant Soil, 331, pp. 413-425. https://doi.org/10.1007/s11104-009-0262- 0

108. Alabouvette, C. & Couteadier, Y. (1992). Biological control of plant diseases: progress and challenges for the future. In Tjamos, E.C., Papavizas G.C., Cook R.J. (Eds.). Biological Control of Plant Diseases (pp. 415-426). New York: Plenum Press.

109. Mohiddin, F.A., Khan, M.R., Khan, S.M. & Bhat, B.H. (2010). Why Trichoderma is considered super hero (super Fungus) Against the evil parasites? Plant Pathol. J., 9, pp. 92-102. https://doi.org/10.3923/ppj.2010.92.102

110. Anees, M., Tronsmo, A., Edel-Hermann, V., Gautheron, N., Faloya, V. & Steinberg, C. (2010). Biotic changes in relation to local decrease in soil conduciveness to disease caused by Rhizoctonia solani. Eur. J. Plant Pathol., 126, pp. 29-41. https://doi.org/ 10.1007/s10658-009-9517-0

111. Klein, E., Katan, J. & Gamliel, A. (2011). Soil suppressiveness to Fusarium disease following organic amendments and solarization. Plant Dis., 95, pp. 1116-1123. https://doi.org/10.1094/PDIS-01-11-0065

112. Garbeva, P., van Veen, J.A. & van Elsas, J.D. (2004). Microbial diversity in soil: selection of microbial populations by plant and soil type and implications for disease sup- pressiveness. Annu. Rev. Phytopathol., 42, pp. 243-270. https://doi.org/10.1146/ annurev.phyto.42.012604.135455

113. Lisboa, B.B., Bayer, C., Passaglia, L.M.P., Camargo, F.A.O., Beneduzi, A., Ambrosini., A. & Vargas, L.K. (2015). Soil fungistasis against Fusarium graminearum under different crop management systems. Rev. Bras. Cienc. Solo, 39, pp. 69-77. https://doi.org/10.1590/01000683rbcs20150683

114. Campos, S.B., Lisboa, B.B., Camargo, F.A.O., Sczyrba, A., Dirksen, P., Albersmeier, A., Kalinowski, J., Beneduzi, A., Costa, P.B., Passaglia, L.M.P., Vargas, L.K. & Wendisch, V.F. (2016). Soil suppressiveness and its relations with the microbial community in a Brazilian subtropical agroecosystem under different management systems. Soil Biol. Biochem., 96, pp. 191-197. https://doi.org/10.1016/j.soilbio.2016.02.010

115. Weller, D.M., Raaijmakers, J.M., Gardener, B.B.M. & Thomashow, L.S. (2002).

Microbial populations responsible for specific soil suppressiveness to plant pathogens. Annu. Rev. Phytopathol., 40, pp. 309-348. https://doi.org/10.1146/

annurev. phyto .40.030402.110010

116. Simon, A. & Sivasithamparam, K. (1989). Pathogen-suppression: a case study in biological suppression of Gaeumannomyces graminis var. Tritici in soil. Soil Biol. Biochem., 21, pp. 331-337. https://doi.org/10.1016/0038-0717(89)90139-9

117. Pane, C., Piccolo, A., Spaccini, R., Celano, G., Vilecco, D. & Zaccardelli, M. (2013). Agricultural waste-based composts exhibiting suppressivity to diseases caused by the phy- topathogenic soil-bome fungi Rhizoctonia solani and Sclerotinia minor. Appl. Soil Ecol., 65, pp. 43-51. https://doi.org/10.1016/j.apsoil.2013.01.002

118. Fu, L., Penton, C.R., Ruan, Y., Shen, Z., Xue, C., Li, R. & Shen, Q. (2017). Inducing the rhizosphere microbiome by biofertilizer application to suppress banana Fusarium wilt disease. Soil Biol. Biochem., 104, pp. 39-48. https://doi.org/10.1016/j.soil- bio.2016.10.008

119. Crozier, C.R., Creamer, N.G. & Cubeta, M.A. (2000). Fertilizer management impacts on stand establishment, disease, and yield of Irish potato. Potato Res., 43, pp. 49-59. https://doi.org/10.1007/BF02358513

120. Chen, D., Wang, X., Zhang, W., Zhou, Z., Ding, C., Liao, Y. & Li, X. (2020). Persistent organic fertilization reinforces soil-borne disease suppressiveness of rhizosphere bacterial community. Plant Soil., 452, pp. 313-28. https://doi.org/10.1007/s11104-020- 04576-3

121. Datta, B. & Chakrabartty, P.K. (2014). Siderophore biosynthesis genes of Rhizobium sp. isolated from Cicer arietinum L. 3 Biotech., 4, pp. 391-401. https://doi.org/10.1007/ s13205-013-0164-y

122. Vargas, L.K., Volpiano, C.G., Lisboa, B.B., Giongo, A., Beneduzi, A. & Passaglia,

L. M.P. (2017). Potential of rhizobia as plant growth-promoting rhizobacteria. In Khan,

M. S., Zaide, A., Musarrat, J. (Eds.). Microbes for Legume Improvement. 2nd ed. (pp. 153174). Berlin: Springer. https://doi.org/10.1007/978-3-319-59174-2_7

123. Volpiano, C.G., Lisboa, B.B., Sao, Jose J.F.B., de Oliveira, A.M.R., Beneduzi, A., Passaglia, L.M.P. & Vargas, L.K. (2018). Rhizobium strains in the biological control of the phytopathogenic fungi Sclerotium (Athelia) rolfsii on the common bean. Plant Soil, 432, pp. 229-43. https://doi.org/10.1007/s11104-018-3799-y

124. Lugtenberg, B. & Kamilova, F. (2009). Plant-growth-promoting rhizobacteria. Annu. Rev. Microbiol., 63, pp. 541-56. https://doi.org/10.1146/annurev.micro.62.081307.162918

125. Kohl, J., Kolnaar, R. & Ravensberg, W.J. (2019). Mode of action of microbial biological control agents against plant diseases: relevance beyond efficacy. Front. Plant Sci., 10, 845. https://doi.org/10.3389/fpls.2019.00845

126. Batista, B.D. & Singh, B.K. (2021). Realities and hopes in the application of microbial tools in agriculture. Microbial biotechnol., 14 (4), pp. 1258-1268. https://doi.org/ 10.1111/1751-7915.13866

127. Samada, L.H. & Tambunan, U.S.F. (2020). Biopesticides as promising alternatives to chemical pesticides: a review of their current and future status. Online J. Biol. Sci., 20, pp. 66-76. https://doi.org/10.3844/ojbsci.2020.66.76

128. Abbas, M.S.T. (2018). Genetically engineered (modified) crops (Bacillus thuringiensis crops) and the world controversy on their safety. Egypt. J. Biol. Pest. Control., 28, 52. https://doi.org/10.1186/s41938-018-0051-2

129. Patel, S. & Rahul, S.N. (2020). Role of microbial insecticides in insect pest management. Pop. Kheti, 8, pp. 88-92.

130. Kumar, K., Gambhir, G., Dass, A., Tripathi, A.K., Singh, A., Jha, A.K., Yadava, P., Choudhary, M. & Rakshit, S. (2020). Genetically modified crops: current status and future prospects. Planta, 251, pp. 1-27. https://doi.org/10.1007/s00425-020-03372-8131. Phillips, M.W.A. (2020). Agrochemical industry development, trends in R&D and the impact of regulation. Pest. Manag. Sci., 76, pp. 3348-3356. https://doi.org/10.1002/ ps.5728

132. Ruano-Rosa, D., Arjona-Girona, I. & Lopez-Herrera, C.J. (2018). Integrated control of avocado white root rot combining low concentrations of fluazinam and Trichoderma spp. Crop Prot., 112, pp. 363-370. https://doi.org/10.1016/j.cropro.2017.06.024

133. Topolovec-Pintaric, S. (2019). Trichoderma: invisible partner for visible impact on agriculture. In Shah, M.M., Sharif, U., Buhari, T.R. (Eds). Trichoderma -- The Most Widely Used Fungicide. IntechOpen. https://doi.org/10.5772/intechopen.83363

134. Woo, S.L., Ruocco, M., Vinale, F., Nigro, M., Marra, R., Lombardi, N., Pascale, A., Lanzuise, S., Manganiello, G. & Lorito, M. (2014). Trichoderma-based products and their widespread use in agriculture. Open Mycol. J., 8, pp. 71-126. https://doi.org/ 10.2174/1874437001408010071

135. Gordon-Lennox, G., Walther, D. & Gindrat, D. (1987). Utilisation d'antagonists pour l'entrobage des semences: efficacite et mode d'action contre les agents de la fonte des semies. Bul. OEPP, 17 (4), pp. 631-637.

136. Kopylov, Y.P., Nadkemychnyi, S.P., Bilyavska, L.O. & Holubets, O.V. (2010). Inducing resistance of winter wheat plants to root rot pathogens with the assistance of a soil saprophytic fungus Chaetomium cochiodes Palliser. 135. Microbiol. Biotechnol., 1, pp. 80-87 [in Ukrainian].

137. Huang, H. (1978). Gliocladium catenulatum: hyperparasite of Sclerotinia sclerotiorum and Fusarium species. Can. J. Bot., 56 (18), pp. 2243-2246. https://doi.org/10.1139/b78- 270

138. Pieta, D. (1991). Micoparasitic two Penicillium vermiculatum Dang and Verticillium tenerum (Nees ex Pers.) Link against some bean phytopathogens. Biul. LTN. Biol., 30 (1-2), pp. 23-30 [in Polish].

139. Li, B., Li, Q., Xu, Z., Zhang, N., Shen, Q. & Zhang, R. (2014). Responses of bene- fificial Bacillus amyloliquefaciens SQR9 to different soilborne fungal pathogens through the alteration of antifungal compounds production. Front. Microbiol., 5, 636. https://doi.org/10.3389/fmicb.2014.00636

140. Raza, W., Wei, Z., Ling, N., Huang, Q. & Shen, Q. (2016). Effect of organic fertilizers prepared from organic waste materials on the production of antibacterial volatile organic compounds by two biocontrol Bacillus amyloliquefaciens strains. J. Biotechnol., 227, pp. 43-53. https://doi.org/10.1016/jjbiotec.2016.04.014

141. Radhakrishnan, R., Hashem, A. & Abd_Allah, E.F. (2017). Bacillus: a biological tool for crop improvement through bio-molecular changes in adverse environments. Front. Physiol., 8, 667. https://doi.org/10.3389/fphys.2017.00667

142. Sessitsch, A., Brader, G., Pfaffenbichler, N., Gusenbauer, D. & Mitter, B. (2018). The contribution of plant microbiota to economy growth. Microb. Biotechnol., 11 (5), 801. https://doi.org/10.1111/1751-7915.13290

143. Fortune Business Insights (2021). Market Research Report. Retrieved from https://www.fortunebusinessinsights.com/industry-reports/agricultural-microbial-mar- ket-100412

144. Sammauria, R., Kumawat, S., Kumawat, P., Singh, J. & Jatwa, T.K. (2020). Microbial inoculants: potential tool for sustainability of agricultural production systems. Arch. Microbiol., 202, pp. 677-693. https://doi.org/10.1007/s00203-019-01795-w

145. European Commission. Reinforcing Europe's Resilience: Halting Biodiversity Loss and Building a Healthy and Sustainable Food System. Press Release. 2020. Retrieved from https://ec.europa.eu/commission/presscorner/detail/en/ip_20_884

146. Kumar, V. & Singh, K.P. (2001). Enriching vermicompost by nitrogen fixing and phosphate solubilizing bacteria. Bioresource Technol., 76 (2), pp. 173-175.

https://doi.org/10.1016/S0960-8524(00)00061-4

147. Skrylnik, Ie., Tovstiy, Iu. & Hetmanenko, V. (2016). Change of quantitative and qua

litative characteristics of the organic component in the chicken manure composting. Biol. Res. and Nature Management, 8 (5-6), pp. 53-57. https://doi.org/

10.31548/bio2016.05.008 [in Ukrainian].

148. Li, J., Wang, X., Cong, C., Wan, L., Xu, Y., Li, X., Xou, F., Wu, Y. & Wang, L. (2020). Inoculation of cattle manure with microbial agents increases efciency and promotes maturity in composting. 3. Biotech., 10 (3), pp. 1-9. https://doi.org/10.1007/ s13205-020-2127-4

149. Van Fan, Y., Klemes, J.J., Lee, C.T. & Ho, C.S. (2018). Efficiency of microbial inoculation for a cleaner composting technology. Clean Techn. Environ. Policy, 20(3), pp. 517-527. https://doi.org/10.1007/s10098-017-1439-5

150. Lee, Y. (2016). Various microorganisms' roles in composting: a review. APEC Youth Sci. J., 8 (1), pp. 11-15.

151. Rastogi, M., Nandal, M. & Khosla, B. (2020). Microbes as vital additives for solid waste composting. Heliyon, 6 (2), e03343. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2020.e03343

152. Gatsenko, M.V. & Volkogon, V.V. (2010). Optimization of vermicomposting of organics enriched with phosphorites with participation of phosphate-mobilizing microorganisms. Mikrobiol. Zh., 3, pp. 14-19 [in Ukrainian].

153. Gatsenko, M.V., Volkogon, N.V., Lutsenko, N.V. & Volkogon, V.V. (2011). Effect of Pseudomonas putida 17 on the accumulation of phytohormones in vermicompost. Silskohosp. mikrobiol., 12, pp. 82-91 [in Ukrainian].

154. Gatsenko, M.V., Volkohon, V.V. & Lutsenko, N.V. (2010). Efficiency of vermicom- posts enriched with phosphorites and phosphate-mobilising bacteria in cucumber cultivation. Bull. Inst. of Grain Farm., 39, pp. 69-73 [in Ukrainian].

155. Molla, А.Н., Haque, М., Haque, А. & Ilias, G.N.M. (2012). Trichoderma-enriched biofertilizer enhances production and nutritional quality of tomato (Lycopersicon escu- lentum Mill.) and minimizes NPK fertilizer use. Agric. Res., 1 (3), pp. 265-272. https://doi.org/10.1007/s40003-012-0025-7

156. Merzlaya, G.E. & Lysenko, V.P. (2005). Resources of poultry farms for the reproduction of organic fertilizers. Agrohim. vestnik, 3, pp. 12-13 [in Russian].

157. Volkohon, V.V., Dimova, S.B., Myagka, M.V., Derkach, S.M., Lutsenko, N.V., Shtanko, N.P. & Tsentilo L.V. (2016). Biocomposting of poultry manure by the fungal association Trichoderma harsianum 128. Visnyk agrarnoi nauky, 11, pp. 13-18 [in Ukrainian].

158. Hutchinson, С.М. (1999). Trichoderma virens-inoculated composted chicken manure for biological weed control. Biol. Control, 16, pp. 217-222. https://doi.org/10.1006/bcon.1999.0759

159. Wan, L., Wang, X., Cong, C., Li, J., Xu, Y., Li, X., Hou, F., Wu., Y. & Wang, L.

(2020). Effect of inoculating microorganisms in chicken manure composting with maize straw. Bioresource Technol., 301, 122730. https://doi.org/10.1016/

j.biortech.2019.122730

160. Malusa, E., Sas-Paszt, L. & Ciesielska, J. (2012). Technologies for beneficial microorganisms inocula used as biofertilizers. Sci. World J., 491206, https://doi.org/10.1100/ 2012/491206

161. Reddy, C.A. & Saravanan, R.S. (2013). Polymicrobial multi-functional approach for enhancement of crop productivity. Adv. Appl. Microbiol., 82, pp. 53-113. https://doi.org/10.1016/b978-0-12-407679-2.00003-x

162. Sheth, R.U., Cabral, V., Chen, S.P. & Wang, H.H. (2016). Manipulating bacterial communities by in situ microbiome engineering. Trends Genet., 32, pp. 189-200. https://doi.org/10.1016/j.tig.2016.01.005

163. Arif, I., Batool, M. & Schenk, P.M. (2020). Plant microbiome engineering: expected benefits for improved crop growth and resilience. Trends Biotechnol., 38, pp. 1385-1396. https://doi.org/10.1016/j.tibtech.2020.04.015

164. Volkogon, V.V., Mamchur, A.E., Lemeshko, S.V. & Minyaylo, V.G. (1995). Azospirillum endophytes of cereal seeds. Mikrobiol. Zh., 57 (1), pp. 14-19 [in Russian].

165. Volkogon, V.V., Dul'nev, P.G., Kovtun, E.P., Nosovets, E.I. & Onishchenko, E.I. (1996). Effect of phytohormones and their synthetic analogs on the activity of associative nitrogen fixation. Mikrobiologiya, 65 (6), pp. 850-854 [in Russian].

166. Carvalhais, L.C., Dennis, P.G. & Schenk, P.M. (2014). Plant defence inducers rapidly influence the diversity of bacterial communities in a potting mix. Appl. Soil Ecol., 84, pp. 1-5. https://doi.org/10.1016/j.apsoil.2014.06.011

167. Liu, H., Khan, M.Y., Carvalhais, L.C., Delgado-Baquerizo, M., Yan, L., Crawford, M., Dennis, P.G., Singh, B. & Schenk, P.M. (2019). Soil amendments with ethylene precursor alleviate negative impacts of salinity on soil microbial properties and productivity. Sci. Rep., 9, 6892. https://doi.org/10.1038/s41598-019-43305-4

168. Singh, B.K. (2010). Exploring microbial diversity for biotechnology: the way forward. Trends Biotechnol., 28, pp. 111-116. https://doi.org/10.1016/j.tibtech.2009.11.006

169. Ahmad, S., Imran, M., Hussain, S., Mahmood, S., Hussain, A. & Hasnain, M. (2017). Bacterial impregnation of mineral fertilizers improves yield and nutrient use efficiency of wheat. J. Sci. Food Agric., 97 (11), pp. 3686-3690. https://doi.org/10.1002/ jsfa.8228

Размещено на Allbest.ru

...

Подобные документы

  • Значення та перспектива вирощування тритикале озимого в агроекосистемах України. Дослідження особливостей синергетичної взаємодії автотрофного блоку - сільськогосподарських культур та гетеротрофного - асоціативних мікроорганізмів у агроекосистемі.

    дипломная работа [8,8 M], добавлен 26.12.2012

  • Екологічні проблеми використання пестицидів. Історія розвитку біологічного захисту рослин. Методи біоконтролю патогенних мікроорганізмів та комах-шкідників. Використання біотехнологічних препаратів у комплексному захисті сільськогосподарських рослин.

    контрольная работа [38,1 K], добавлен 25.10.2013

  • Значення рослинних організмів, їх основні властивості. Екологічне значення декоративних насаджень. Культурно-побутове й естетичне призначення озеленення територій населених пунктів та їх інтер’єрів. Призначення, будова теплиці. Охорона зелених насаджень.

    реферат [28,4 K], добавлен 21.10.2010

  • Хімічний склад ґрунту і його практичне значення. Генетико-морфологічна будова і властивості дерново-підзолитистих ґрунтів Українського Полісся. Кислотна деградація (декальцинація) ґрунтів: причини та масштаби. Агрофізична деградація ґрунтів, її види.

    контрольная работа [26,4 K], добавлен 16.01.2008

  • Серед природних середовищ ґрунт краще забезпечує розвиток і життєдіяльність мікроорганізмів, і найбільше змінюється під їхнім впливом. Ґрунти містять досить води, повітря та поживних речовин. У їх складі виділяють три фази: тверду, рідку і газоподібну.

    реферат [440,5 K], добавлен 09.07.2008

  • Досліди з вивченням впливу ширини міжрядь та густоти посіву на продуктивність кукурудзи на зерно у віддалених грунтово-кліматичних умовах, ріст, розвиток і формування продуктивності рослин кукурудзи. Фенологічні спостереження за ходом росту кукурудзи.

    дипломная работа [1,4 M], добавлен 17.01.2008

  • Агробіологічні особливості росту, розвитку, формування врожайності рослин олійних культур. Вплив способів основного обробітку ґрунту на агрофізичні властивості орного шару, способів сівби на забур’яненість посівів, ріст, розвиток й врожайність соняшнику.

    автореферат [82,3 K], добавлен 10.04.2009

  • Номенклатура і класифікація фітопатогенних вірусів. Народно-господарче і харчове значення культури огірка. Захворювання, поширювані попелицями. Індикація вірусу та вплив інокуляції збудника на ріст, розвиток та врожай. Боротьба із вірусними хворобами.

    дипломная работа [3,7 M], добавлен 03.08.2015

  • Дикорослі плоди та ягоди, поширені в Уураїні. Значення дикорослих плодів та ягід у житті людини. Харчова і господарська характеристика плодів та ягід дикорослих рослин лісів України. Планування збору та організація заготівлі дикорослих плодів та ягід.

    контрольная работа [27,9 K], добавлен 16.01.2008

  • Значення тривалості світлового дня та якості світла на темпи та обсяги виробництва продукції рослинництва. Температурний режим та його вплив на ріст та розвиток основних сільськогосподарських культур. Вологозабезпеченість, її роль для одержання врожаю.

    реферат [17,8 K], добавлен 26.03.2007

  • Основні чинники, що впливають на стан ґрунтової родючості. Добрива, їх вплив на родючість ґрунту. Зміни показників родючості ґрунтів за останні роки в Миколаївській області. Система обробітку ґрунту. Методи аналізу вмісту гумусу за методом Тюріна.

    курсовая работа [595,5 K], добавлен 12.02.2016

  • Розгляд основ попередження розвитку мікроорганізмів і зберігання якості молока на фермах. Характеристика фільтра Ф-01М, закритого циліндричного фільтра А1-ОШФ, сепаратора-молокоочисника ОМА-3М, очисника-охолоджувача ОМ-1А та сепаратора Ж5-ОМ2-Е-С.

    реферат [818,4 K], добавлен 28.05.2015

  • Господарське значення та ботаніко–біологічна характеристика ярого ячменю. Відношення до потреб рослини в поживних речовинах, особливості живлення. Технологія вирощування ярого ячменю, місце в сівозміні, обробка ґрунту, основний і передпосівний обробіток.

    курсовая работа [31,5 K], добавлен 11.10.2011

  • Географічне, адміністративне розташування, природні умови ґрунтоутворення господарства. Визначення потреби ґрунту у вапнуванні. Гуміфікація післяжнивних залишків. Статті витрат гумусу. Розробка системи заходів по збереженню, підвищенню родючості ґрунтів.

    курсовая работа [39,5 K], добавлен 06.08.2013

  • Поняття про отруйні рослини, їх класифікація. Токсикологічне значення їх діючих речовин. Причини їх попадання в організм тварини. Перелік рослин, які є небезпечними для кішок та собак. Клінічний прояв та симптоми отруєнь. Їх діагностика та лікування.

    курсовая работа [40,4 K], добавлен 04.11.2014

  • Поняття екскрементів тварин, їх використання в сільському господарстві та хімічний склад. Підстилковий гній як повне добриво, що містить речовини, необхідні рослинам в достатньо збалансованому співвідношенні. Значення пташиного посліду та компостів.

    реферат [36,1 K], добавлен 18.12.2010

  • Хімічний склад кормів для риб та фізіологічне значення поживних речовин. Раціональне використання кормів при годівлі риб. Досліди з однорічними коропами в садках, гідрохімічні показники вирощування. Нормування кормів в умовах садків на теплих водах.

    курсовая работа [82,6 K], добавлен 05.07.2011

  • Сівозміна як науково обґрунтоване чергування сільськогосподарських культур і пару у часі й на території. Групи, які зумовлюють необхідність чергування культур. Причини зниження врожайності й погіршення якості врожаю. Значення сівозміни у захисті рослин.

    презентация [479,9 K], добавлен 18.11.2014

  • Вермикультура - біотехнічна дисципліна про компостних черв'яків в органічному субстраті. Біологічна характеристика дощових черв'яків, які мають велике значення у формуванні і підтримці родючості ґрунтів. Основні агроекологічні властивості біогумусу.

    реферат [20,9 K], добавлен 16.01.2013

  • Дослідження господарського значення, хімічного складу та фармакологічних властивостей Hibiscus rosa. Опис морфології, біології, циклу розвитку та шкідливості оранжерейного трипса. Характеристика економічної ефективності методів захисту квіткових культур.

    магистерская работа [1,5 M], добавлен 20.03.2012

Работы в архивах красиво оформлены согласно требованиям ВУЗов и содержат рисунки, диаграммы, формулы и т.д.
PPT, PPTX и PDF-файлы представлены только в архивах.
Рекомендуем скачать работу.