Инженерная энзимология

3. Создают углеродные полимерные материалы (полиацетилены).

4. Создают полимеры, поверхность в которых по своей природе моделирует антикоагулянты крови), что достигается введением в поверхностные слои полимеров сульфо- и карбоксильных групп, созданием отрицательного заряда на поверхности полимеров). Чаще всего стараются получить гепариноподобную поверхность, так как широко распространенный метод получения гемосовместимых материалов путем введения гепарина имеет ряд недостатков, обусловленных частичной утратой активности гепарина при ковалентной иммобилизации, его слабой антикомплементной активностью и биодеструкцией.

5. Вводят в поверхностные гидрогелевые слои физиологически активные вещества (антикоагулянты крови, ферменты и т.д.), взаимо-действующие с компонентами крови и приостанавливающие процесс тромбообразования.

При выборе метода модифицирования поверхности полимеров необходимо учитывать, что основные физико-механические показатели исходного полимера при модифицировании не должны существенно измениться. Одним из наиболее эффективных методов модифицирования полимеров является радиационная прививочная полимеризация.

Достоинствами ее как метода модифицирования полимерных материалов с целью повышения их гемосовместимости являются, во-первых, высокая универсальность, позволяющая в широком диапазоне температур модифицировать практически любые полимерные материалы (шовный материал, катетеры, трубки, таблетки, порошки, трансплантаты и т.д.); во-вторых, возможность создания на поверхности полимеров модифицированных слоев различной толщины. Толщина слоя зависит от условий проведения прививочной полимеризации -- мощности дозы, выбора растворителя для мономера и т.д. При этом модифицированный слой прочно связан с подложкой и не отмывается при контакте со средой живого организма.

Все это способствует достаточно широкому использованию радиационной прививочной полимеризации для решения проблем, связанных с повышением гемосовместимости различных полимерных материалов и изделий из них. Основной задачей таких исследований является создание полимеров с функционализированной поверхностью, определенными гидрофильно-гидрофобными свойствами и отрицательным зарядом на поверхности. Значительное количество работ выполнено по модифицированию различных полимеров с использованием высокогидрофильных мономеров, таких как N-винилпирролидон, 2-гидроксиэтил-метакрилат, акриламид и его производные. В ряде исследований для модификации брали достаточно сложные сополимеры. Так, для производства протезов сосудов использовали, в основном, полиуретаны, полиэфиры и натуральный каучук.

Радиационную прививочную полимеризацию в большинстве случаев осуществляли прямым методом из водно-спиртовых растворов при небольших дозах облучения. В некоторых случаях, особенно при прививке акриламида, применяли метод с предоблучением.

В результате проведенных работ получены разнообразные модифицированные полимерные материалы с гидрогелевыми поверхностями. Эти материалы достаточно прочны, мягки и обладают высокой набухаемостью в воде. Биомакромолекулы в таких материалах характеризуются повышенной диффузией. Полимерные гидрогели, полученные радиационно-химическими методами, испытаны на гемосовместимость в экспериментах in vitro и in vivo на обезьянах, овцах и собаках. В обобщенном виде испытания на гемосовместимость радиационно-привитых полимерных гидрогелей показали следующее: с повышением содержания воды от 15 до 85% происходит уменьшение сорбции белков и повышается скорость десорбции, на гидрогелях имеет место тромбообразование, но связь тромбов с гидрогелевой поверхностью заметно ослаблена по сравнению с их связью с немодифицированными полимерами. Существенно важным является значительное понижение поверхностного натяжения между гидрогелем и водным раствором. Гидрогелевое покрытие на полимерах должно быть приготовлено из очень чистых мономеров. Так, незначительная примесь метакриловой кислоты б 2-гидроксиэтилметакрилате значительно ухудшает качество гидрогелевого покрытия и его гемосовместимые свойства.

Интересные результаты были получены при изучении радиационно привитых на полиэтилен (ПЭ) сополимеров 2-гидроксиэтилметакрилата (гидрофильный мономер) с этилметакрилатом (гидрофобный мономер). При низком содержании воды (~ 10%) указанные привитые сополимеры характеризовались неожиданно низкими показателями адсорбции тромбоцитов, что было обусловлено не содержанием воды, а составом сополимера. При более высоком содержании воды адсорбция тромбоцитов обратно пропорциональна содержанию воды. Очевидно, что состав сополимера и состояние воды в нем имеют важное значение. Поверхность радиационно-привитых сополимеров очень неоднородна (имеются бугры, выступы и т.д.), толщина модифицированного слоя, как правило, 15-45 мкм. Предполагается, что для повышения гемосовместимости необходимо определенное сочетание на поверхности гидрофильных и гидрофобных участков.

Использование радиационного сшивания для получения полимерных биоматериалов

В настоящее время существенно возрос интерес к получению полимерных биоматериалов путем радиационного сшивания. Этот метод наиболее часто применяется для получения гидрогелей, главным образом на основе полиакриламида, поливинилового спирта, полиэтиленоксида и поли(N-винилпирролидона). Преимуществом радиационного сшивания является сравнительная простота выполнения, возможность широкого регулирования густоты сетки путем подбора условий облучения (мощность дозы, доза), возможность использования пониженных температур, чистота получаемого продукта (отсутствие инициаторов) и одновременная стерилизация. Радиационно-сшитые гидрогели используются как носители БАВ (ферменты, лекарства и т.д.) в качестве имплантантов, протезов, глазных линз, медицинских мембран, перевязочных материалов и биологических сред для изучения и культивирования микроорганизмов.

На основе радиационно-сшитого поливинилового спирта получены биомембраны для селективного транспорта макромолекул, а также материалы, использующиеся в качестве суставных хрящей. Показана перспективность использование гидрогелей поливинилового спирта в качестве перевязочного материала и отмечено его преимущество перед марлей: гомогенная адгезия по всей ране и легкое удаление без повреждения кожи.

Гидрогели на основе поли(N-винилпирролидона) обладают высокой гидрофильностью и хорошей биосовместимостью и могут использоваться в качестве материала для лечения ожоговых ран и трофических язв. Данные материалы продаются в Польше под торговыми марками “HDR” и “AQUA-Gel”. Разработана терапевтическая система на основе геля поли(N-винилпирролидона) для использования в акушерской практике для ускорения родов и производства абортов. В этом случае гель представляет собой тонкий стержень, содержащий простагландин.

Технология получения гидрогелей для перевязочных материалов в настоящее время достаточно подробно разработана, и они прошли широкие клинические испытания. Важно, что есть возможность получать гели для перевязок, содержащие лекарственные препараты (например, хлорамфени-кол). При больших ранениях такой гидрогель существенно эффективней обычных перевязочных материалов.

В медицине применяются покрытия силиконового каучука коллагеном с последующим радиационным сшиванием и стерилизацией. Другим природным продуктом, который используется для получения биоматериалов, является желатин. Изучен радиолиз желатины, выявлены условия образования пространственных структур при облучении ее растворов. Предложено использовать радиационно-сшитую композицию поливинилового спирта с желатином в качестве перевязочного материала.

Радиационное сшивание использовано для изготовления медицинских изделий из полисилоксанов: биологически инертных пористых шнуров, шприцованных трубок, капилляров и разных имплантантов. При радиационном сшивании полидиметилсилоксана в особочистых условиях существенно повышается его гемосовместимость. Радиационносшитый поливинилметилсилоксан использован для изготовления тонких мембран для получения лекарственных препаратов (например, левоноргистрел).

Радиационное сшивание транс-1,4-полиизопрена использовано для создания термоусадочных материалов для связывания крупных кровеносных сосудов. Материалы прошли широкие испытания in vitro и in vivo (на собаках). Радиационное модифицирование позволяет улучшить свойства медицинских протезов на основе полиолефинов. С использованием радиационного сшивания получены также полимерные биоматериалы, обладающие повышенной адгезией к коже человека.

В Израиле налажен выпуск синтетического перевязочного материала, получаемого путем радиационной прививки гидрофильных мономеров на полиуретан. Материал водонепроницаем, прозрачен, хорошо прикрепляется к коже и пропускает лекарства. Материал выпускается под названием «Омидерм».

Разработаны методы получения искусственной роговой оболочки и контактных линз с высокой набухаемостью в воде на основе радиационно-сшитого поливинилового спирта с добавкой хондроитинсульфата натрия. Для существенного повышения проницаемости контактных линз по кислороду предложено облучать их ускоренными тяжелыми ионами массой 2-100. С использованием радиационной полимеризации созданы гидро-гелевые материалы для мягких контактных линз. Эти материалы производятся в КНР.

Для создания офтальмологических материалов нашел применение радиационно-сшитый коллаген, выделенный из склеры глаза животных. Этот материал использован для создания временных аллодренажей при антиглаукоматозных операциях.

Несомненно, что в ближайшие годы можно ожидать появления на рынке новых полимерных биоматериалов, полученных с использованием методов радиационной полимеризации.

Получение полимерных имплантантов

Технические приемы и методы, которые используются в радиационной полимеризации могут быть применены для получения различного рода имплантантов, главным образом для лечения пораженных участков кожи, а также для создания протезов. Разработаны методы получения имплантантов коллагена путем облучения смеси мономеров или полимеров с коллагеном. Имплантанты хорошо совместимы с кровью и не вызывают воспалений. Имплантанты применяются в хирургии и могут использоваться как субстраты в биотехнологии. Изучены протезы на основе полиэфируретана с радиационно модифицированной внутренней поверхностью. Модифицирование осуществлялось путем радиационной прививки 2-гидрокси-метилакрилата или акриламида на внутреннюю поверхность трубок. Протезы изучались in vivo. Исследованы гистологические и механические свойства протезов. Установлена их повышенная тромборезистентность. Разработан метод модифицирования наполнителей для полимеров, используемых в зубоврачебной технике. Наполнители на основе стеклянных или кварцевых волокон модифицированы радиационной прививкой акриловой кислоты из паровой фазы. Подробно изучены физико-механические свойства смол, содержащих различное количество модифицированного наполнителя. Отмечены преимущества используемого модифицированного наполнителя по сравнению с наполнителем, модифицированным силанами. С использованием облучения смесей глинозема с акриловой кислотой созданы полимерно-керамические материалы для стоматологии. С помощью радиационной прививочной полимеризации созданы имплантанты для лечения кожи на пораженных ожогом участках человеческого тела. Для этой цели обычно используют силиконовый каучук, модифицированный прививкой гидрофильных мономеров или модифицированный вулканизованный натуральный каучук. С использованием радиационной технологии создан метод гидрофилизации силиконовых контактных глазных линз. В результате гидрофилизации краевой угол снижается с 150° до 20°, а эффект гидрофильности сохраняется длительное время. Радиационно-модифицированные полимеры использованы для инициирования роста различных клеток

Иммобилизация лекарственных препаратов

В области использования радиационной полимеризации для иммобилизации лекарственных веществ наибольшие успехи достигнуты при иммобилизации противоопухолевых составов в полимерные матрицы. В качестве противоопухолевых веществ используются адриамицин, митомицин-С и 5-фторурацил. В ряде случаев лечение иммобилизованными противоопухолевыми препаратами сочетается с гормонотерапией. Иммобилизованные противоопухолевые вещества, как правило, используются в виде полимерных таблеток или игл, которые вводятся в опухоль. Применение иммобилизованных противоопухолевых препаратов имеет следующие преимущества по сравнению с их введением в виде инъекций или орально: небольшая концентрация лекарственных препаратов в крови, лекарство распределяется непосредственно в небольшой области от введенного препарата. При этом имеет место некроз раковых клеток в пределах 0.5-1 см² около образца, а диффузия противоопухолевых препаратов прекращается в некрозном слое. Это сводит к минимуму побочные эффекты от применения лекарств. Длительность использования иммобилизованных противоопухолевых препаратов -- несколько месяцев. При этом скорость выделения лекарств не изменяется. Такие препараты прошли широкие испытания во многих клиниках Японии.

Для иммобилизации противоопухолевых препаратов обычно используют различные сополимеры и композиции полиэтиленгликоль-метакрилатов с различными полимерами (полистирол, поливинилформаль, полиэтиленгликоль, полиметилметакрилат, полиэтиленоксид). Подчеркивается, что облучение необходимо проводить в бескислородной среде, а доза не должна превышать 10 кГр, в противном случае активность противоопухолевых препаратов существенно снижается

Скорость выделения лекарств регулируют введением в полимерную матрицу порообразующего агента или адсорбента (например, активированного угля).

Технология использования иммобилизованных противоопухолевых препаратов может быть улучшена за счет варьирования гидрофильно-гидрофобных свойств полимерной матрицы, а также использования биодеградируемых полимеров (полипептиды или полилактиды).

В Пастеровском институте (Париж) в рамках программы Международ-ного агенства по атомной энергии (МАГАТЭ) проведены исследования с иммобилизованными моноклональными антителами. Иммобилизация последних осуществлена путем низкотемпературной полимеризации 2-гидроксиэтил-метакрилата. Чувствительность реакций иммобилизованного антитела с антигеном зависит от выбора мономера и его концентрации для создания пористой среды. Важной проблемой является минимизация неспецифических реакций полимерного носителя с антигеном. Для этого необходимо увеличивать гидрофобность полимерной матрицы. Иммобилизованные препараты обычно изготавливаются в виде микросфер или микрокапсул. Для иммобилизации антител используются также микросферы, получаемые полимеризацией акролеина или его сополимеры с 2-гидроксиэтилметакрилатом или метакриловой кислотой.

Преимуществом радиационной полимеризации для иммобилизации антител является достаточно высокая чистота получаемого продукта. Эти препараты можно использовать для иммунологического анализа.

Проведены исследования по иммобилизации антагониста кальция в предварительно полимеризованный гель поли (2-гидроксиэтилметакрилата). Путем радиационного сшивания геля и добавок метилметакрилата и N-винилпирролидона можно широко варьировать скорость выделения лекарства.

Исследована иммобилизация гидрокортизона в гели, полученные радиационной полимеризацией акриловой кислоты. Скорость выделения регулируется дозой облучения и обработкой гелей ацетатом цинка.

Иммобилизация компонентов крови

Одной из актуальнейших проблем в настоящее время является создание искусственных кровезаменителей, которые могли бы длительное время храниться при обычных условиях не требуя сложной и дорогой аппаратуры. Одним из наиболее перспективных направлений является иммобилизация различных компонентов крови в полимерные композиции с использованием прежде всего радиационных методов полимеризации.

Так гемоглобин был иммобилизован в полимерную матрицу из поли(2-гидроксиэтилметакрилата) с использованием радиационной низкотемпера-турной полимеризации. Особое внимание было уделено выбору оптимальных условий иммобилизации для защиты гемоглобина. Гемоглобин удобен для изучения состояния иммобилизованной молекулы в полимерной матрице, так как он имеет характерное оптическое поглощение. Гемоглобин в мембране подвергался обратимой оксигенации, которая имеет почти то же самое значение, что и в нативном гемоглобине. Описан способ получения полу-синтетической крови на основе иммобилизованного карбоксигемоглобина.

В работах для иммобилизации гемоглобина использована радиационная полимеризация фосфолипидов. Фосфолипиды содержали две длинные полимеризуемые октадекадиенильные группы. Искусственные красные кровяные клетки были получены путем капсулирования гемоглобина с использованием радиационной полимеризации бислойных фосфолипидов -- липосом. Искусственные кровяные клетки оказались механически стабильными, легко выдерживали замораживание. Кислородный транспорт подобных систем оказался подобен транспорту нативного гемоглобина. Проводились испытания in vivo (мыши), которые указали на биосовместимость таких клеток.

Получение «умных» полимеров и их использование для иммобилизации биологически активных веществ

За последние годы все возрастающее значение для медицины и биотехнологии приобретают «умные» полимеры. Так называют полимеры, способные реагировать (сжиматься или набухать) на небольшие изменения во внешней среде (температура, рН, электрическое поле и т.д.). «Умные» полимеры с иммобилизованными БАВ используются для выделения лекарств при определенных условиях, как правило, при заданной температуре или рН. Обычно «умные» полимеры получают традиционными методами, однако в последнее время, для этой цели стала использоваться также радиационная полимеризация. Среди «умных» полимеров наибольшее число публикаций посвящено поли(N-изопропилакриламиду) (поли-N-ИПАА). Данный полимер имеет в воде нижнюю критическую температуру растворения (НКТР) ~32°С, т.е. близкую к температуре человеческого тела. Выше 32°С происходит фазовое разделение, обусловленное конформационным переходом макромолекулы поли-N-ИПАА из рыхлой глобулы в компактный клубок, что сопровождается резким уменьшением размеров макромолекулы.

Было изучено поведение гидрогелей, полученных на основе поли(N-изопропилакриламида) и скорость диффузии иммобилизованных в них лекарственных препаратов в условиях имитирующих человеческий организм. Было установлено, что при 37⁰С и рН=1,4 (нормальные условия в желудке человека) происходит медленное выделение иммобилизованных в гидрогель индометацина и амилазы, но при изменении величины рН до 7,4 (условия в кишечнике) выделение лекарств значительно ускоряется. Таким образом, можно создавать лекарственные формы, позволяющие доставлять препарат к пораженному органу без значительных потерь.

Другим направлением использования таких “умных” полимеров является создание сигнал-чувствительных систем, состоящих из биосенсора, активатора и резервуара для коррекции нарушений в работе различных органов в организме человека. Так для больных диабетом разрабатываются специальные системы с биосенсором на глюкозу, которые запускаются по принципу включение - выключение для выделения определенных порций инсулина, иммобилизованного в гелях, т.е. работающие по принципу поджелудочной железы.



ЛАБОРАТОРНАЯ РАБОТА №1

ФЕРМЕНТАТИВНЫЙ ГИДРОЛИЗ N-АЦЕТИЛАЛАНИНА: ПРИМЕР ЭКОЛОГИЧЕСКИ БЕЗОПАСНОГО ПРОЦЕССА

Цель работы: ознакомление с методами ферментативного разделения оптических изомеров аминокислот, овладение лабораторными навыками проведения таких процессов, определение выхода целевого продукта.

Теоретическая часть: Биологические процессы катализируются ферментами. Многие ферменты обладают высокой каталитической селективностью и могут селективно катализировать реакции только с одним из энантиомеров в рацемате. В современной химии ферменты используются во многих процессах in vitro, особенно в синтезе оптически чистых продуктов. В данном эксперименте изучается гидролиз N-ацетилаланина в присутствии фермента ацилазы I.

За ходом реакции можно следить, если в реакционную смесь добавить нингидрин, который взаимодействует с образующимся аланином, давая яркое пурпурное окрашивание раствора:



Ход работы:

Растворите рацемат N-ацетилаланина (262 мг; 2,0 ммоль) в 10 мл воды. Медленно, при осторожном перемешивании прибавляйте раствор моногидрата гидроксида лития (84 мг; 2,0 ммоль) в воде (4 мл) до тех пор, пока рН раствора не станет равным 7. Контролируйте рН лакмусовой бумагой. В течение 2 минут, при интенсивном перемешивании прибавьте раствор ацилазы I (10 мг) в воде (водный раствор ацилазы I готовится следующим образом: навеска фермента добавляется к 5 мл воды, затем раствор отфильтровывается на стеклянном фильтре, покрытом диатомитом). После этого доведите объем раствора водой до 20,0 мл (точно). Поместите реакционную смесь в водяную баню (37°С) на 60 минут. Затем перенесите ровно 0,25 мл (для этого используйте шприц или мерную пипетку) реакционной смеси в пробирку и добавьте туда нингидрин (Sigma N 1632) (1,25 мл). Эту смесь нагревайте в кипящей воде в течение 20 минут, при этом появится интенсивная пурпурная окраска. После охлаждения аккуратно добавьте содержимое пробирки к буферному раствору, состоящему из 4 М литий-ацетатного водного буфера (рН = 5,2) и диметилсульфоксида в соотношении 1:3, находящемуся в мерной колбе на 250 мл. Доведите объем раствора до 250 мл. Измерьте оптическую плотность на спектрофотометре при л = 592 нм. В качестве стандарта используйте раствор нингидрина в том же литий-ацетатном бу-

фере в диметилсульфоксиде. (е пурпурного комплекса = 13350 л ^. Моль^{-1 .} см^-1)

Запишите следующие данные:

1. Начальную концентрацию рацемического N-ацетилаланина.

2. Значение оптической плотности при л = 592 нм.

3. Используя закон Бугера-Ламберта-Бера, рассчитайте количество аланина (в ммоль), образовавшегося в результате ферментативной реакции.

4. Рассчитайте степень превращения.

5. Если позволяет время, остановите реакцию и определите концентрацию аланина через 10, 25, 40 и 60 минут после начала реакции. Постройте график зависимости концентрации аланина от времени и оцените оптимальное время проведения реакции.

Контрольные вопросы

1. Будет ли образующийся аланин оптически активен: да или нет?

2. Будет ли непрореагировавший N-ацетилаланин: (1) оптически неактивен, (2) обогащен одним из энантиомеров, (3) оптически чист, если степень превращения меньше 50%?

3. Будет ли непрореагировавший N-ацетил аланин: (1) оптически неактивен, (2) обогащен одним из энантиомеров, (3) оптически чист, если степень превращения составит ровно 50%?

4. Достижима ли степень превращения больше 50%, да_или нет?



ЛАБОРАТОРНАЯ РАБОТА №2

В ПОЛУЧЕНИЕ 6-АМИНОПЕНИЦИЛЛАНОВОЙ КИСЛОТЫ ГИДРОЛИЗОМ БЕНЗИЛПЕНИЦИЛЛИНА С ПОМОЩЬЮ ПЕНИЦИЛЛИНАЦИЛАЗЫ, ИММОБИЛИЗОВАННОЙ ПОЛИАКРИЛАМИДНЫЙ ГЕЛЬ

Цель работы: ознакомление с технологией получения 6-амино-пенициллановой кислоты гидролизом бензилпенициллина с помощью иммобилизованного фермента, овладение лабораторными навыками проведения процессов с иммобилизованными ферментами, определение выхода продукта.

Теоретическая часть:

6-Аминопенициллановая кислота (6-АПК) является полупродуктом в химическом синтезе ряда полусинтетических антибиотиков. Современная технология получения 6-АПК складывается из следующих основных стадий:

1. Получение биомассы клеток микроорганизма E.coli, содержащих фермент пенициллинацилазу.^:

2. Выделение и очистка фермента пенициллинацилазы.

3. Иммобилизация фермента в полиакриламидный гель.

4. Получение 6-АПК.

Последняя стадия включает в себя проведение следующих операций:

а) гидролиз бензилпенициллина с помощью иммобилизованного фермента; б) осветление гидролизной жидкости углем и отделение угля;

в) осаждение 6-АПК в изоэлектрической точке;

г) фильтрация и промывка полученного осадка 6-АПК водой и органическим растворителем;

д) вакуум-сушка готового продукта.

Клетки микроорганизма E.coliI выращивают методом глубинной ферментации в течение 24 ч. в слабощелочном растворе при температуре 25°С, при постоянном перемешивании и аэрации, на среде, содержащей очищенный кукурузный экстракт и фенилуксусную кислоту. По окончании ферментации клетки E.coli отделяют от культуральной жидкости сепарацией. Полученную пасту направляют на переработку с целью извлечения из неё фермента. Для этого проводят следующие технологические операции:

а) извлечение пенициллинацилазы из клеток Е.coli экстракцией нагретым до 40⁰С O,9%-м раствором бутилацетата в воде при рН=8 и отделение отработанных клеток фильтрацией;

б) осаждение неактивных примесей (балластных белков) из бесклеточного экстракта;

Процесс проводят при температуре 5-8°С путем добавления к экстракту до концентрации 20% сухого сульфата аммония, полученный раствор перемешивают в течение 0,5 ч и отделяют выпавшие балластные белки сепарацией;

в) осаждение активного белка (фермента) и его отделение;

Для этого к осветленному на предыдущей операции экстракту при температуре 5-8°С вновь добавляют до уровня 12% сульфат аммония и полученную смесь выдерживают до 20 ч, из экстракта выпадает осадок, содержащий преимущественно целевой фермент пенициллинацилазу, который впоследствии отделяют от маточника сепарацией и направляют на вакуум-сушку;

г) вакуум-сушка полученного фермента.

Приготовленный таким образом ферментный препарат подвергают иммобилизации в полиакриламидный гель.

Получение иммобилизованной пенициллинацилазы состоит в радикальной сополимеризации акриламида и N, N'-метилен-бис-акриламида в водной среде в присутствии инициаторов - персульфата аммония (NH₄)₂S₂O₈ и N, N,N',N' -тетраметилендиамина. В реакционную смесь вводится бифункциональный реагент- глутаровый альдегид (ГА) под действием которого молекулы фермента-коваленню связываются с мономерами и сшиваются друг с другом.

Приготовление иммобилизованного фермента завершают промывкой полученного геля водой.

Процесс получение 6-АПК включает в себя последовательное проведение ряда вышеуказанных операций, выполнение которых и составляет экспериментальную часть данной лабораторной работы.

Ход работы:

Гидролиз бензилпенициллина под действием иммобилизованного фермента можно представить следующим стехиометрическим уравнением;

Гидролиз проводят в стеклянном пятигорловом реакторе, снабженном водяной "рубашкой”. В реактор введена мешалка, электроды и термокомпенсатор рН-метра.

В реактор заливают 100 см³ дистиллированной воды. В рубашку реактора из термостата подают нагретую до температуры 41°С воду. В реактор вносят точную навеску (5 г) соли бензилпенициллина и включают мешалку. После полного растворения соли в раствор вносят I мл концентрированной ортофосфорной кислоты, 15 г гель-фермента и производят начальный отсчёт времени. Момент внесения фермента считает началом времени гидролиза.

В течение гидролиза реакционную смесь подвергают достаточно интенсивному перемешиванию.

Гидролиз проводят при значениях рН в пределах 7,5-7,6, величина которого поддерживается добавлением из бюретки 12,5%-го раствора гидроксида аммония. По ходу процесса каждые 15 мин записывают объем, пошедшей на подтитровку щелочи.

С течением времени скорость гидролиза уменьшается и в зависимости от активности фермента процесс заканчивается через 1,5-2 ч. Окончание гидролиза определяется по установившемуся постоянному значении рН раствора.

По завершению гидролиза реакционную смесь выгружают из реактора на воронку Бюхнера, где осадок отфильтровывают через плотный бумажный фильтр.

Освобожденный от гель-фермента гидролизат переливают в мерный цилиндр, измеряют его объем и переносят в коническую колбу вместимостью 500 мл. Содержимое колбы охлаждают до температуры 4⁰С в токе холодной воды или на водяной бане со льдом.

Далее проводят осветление гидролизата активированным углем. Для этого в колбу с охлажденным гидролизатом вносят активированный уголь марки "Е", взятого из расчета на каждые 100 мл гидролизата по 1г угля. После внесения угля содержимое колбы в течение 15 мин перемешивают. Затем уголь отделяют от гидролизата фильтрованием на, воронке Бюхнера. Осветленную жидкость переливают в химический стакан вместимостью 250 мл в токе холодной воды или в бане с тающим льдом и охлаждают до температуры 6-8°С. После этого стакан устанавливают на столик магнитной мешалки, вводят электроды и_термокомпенсатор рН-метра. При включенной мешалке из бюретки по каплям добавляют 18-20%- ую соляную кислоту до тех пор, пока значение рН не достигнет 3,9-4,1.В. Этом интервале значений начинают выпадать кристаллы 6-АПК.

Стакан с реакционной массой снимают с мешалки, переносят в баню со льдом или холодильник, где выдерживают не менее 2 часов.

Полученный осадок отфильтровывают на воронке Бюхнера и дважды промывают охлажденной до 4-З^сС дистиллированной водой порциями по объёму примерно вдвое больше объема полученного осадка.

Промытый водой осадок подсушивают на той же воронке Бюхнера и дважды промывают ацетоном порциями по объёму вдвое большими, чем объем осадка.

Ацетон тщательно отсасывают и 6-АПК переносят в предварительно взвешенную чашку Петри, изготовленную из тонкого, стекла или пластмассы.

Окончательное высушивание продукта производят в вакуум-сушильном шкафу при температуре 45-50°С и остаточном давлении 2,5-4,0; кПа до постоянной массы.

По окончании работы оценивают выход 6-АПК в расчете на прогидролизованнный бензилпенициллин. Для этого по химическому уравнению гидролиза бензилпенициллина и количеству израсходованной щелочи сначала находят число разложившихся молей бензилпенициллина. Далее определяют процентное соотношение массы полученного выше осадка 6-АПК, пересчитанное на число молей, к количеству молей прогидролизованного бензилпенициллина.

Контрольные вопросы

1. Каковы основные технологические стадии получений 6-АПК с помощью иммобилизованных ферментов? Дайте их краткую характеристику. Каково назначение 6-АПК?

2. Какие продукты (основные и побочные) могут получаться в результате гидролиза бензилпенициллина?

3. Каковы Ваши предложения по утилизации фенилуксусной кислоты, остающейся в гидролизате после осаждения из него кристаллов 6-АПК?

4. Каковы основные стадии процесса получения иммобилизованного фермента пенициллинапилазы? Какова роль персульфата аммония и глутарового альдегида при получении иммобилизованного фермента?

5. Какие, на Ваш взгляд, возможны пути повышение интенсификации процесса получения 6-АПК из солей бензилпенициллина и снижения себестоимости готового продукта?

6. Каково назначение ортофосфорной кислоты, добавляемой к водному раствору бензилпенициллина перед началом гидролиза?

7. Какое влияние могут оказать изменения температуры и рН раствора на процесс получения 6-АПК путем гидролиза бензилпенициллина?

8. Какие технологические преимущества имеет вышеописанный способ получения 6-АПК по сравнению с технологией получения 6-АПК в результате направленного химического синтеза?

РЕКОМЕНДУЕМАЯ ЛИТЕРАТУРА

1. Учебно-методические разработки для практических занятий по биотехнологии лекарственных средств./ Под ред. В.А. Быкова. - М.: ММА им. И.М. Сеченова, 1993. - 176 с.

2. Биотехнология: Учебное пособие для ВУЗов. В 8 кн./Под ред. Н.С. Егорова, В.Д. Самуилова. - М.: Высшая школа, 1987.

3. Б. Глик, Дж. Пастернак. Молекулярная биотехнология. Принципы и применение. М. “Мир”. 2002.- 590 с.

4. Т.А Егорова, С.М. Клунова, Е,А, Живухина. Основы биотехнологии. Издательский центр “Академия”, М. 2003.-208 с.

5. Елинов Н.П. Основы биотехнологии. Издательская фирма "Наука", СПБ, 1995.-600 с.

6. Егоров Н.С. Основы учения об антибиотиках: Учебник.- М.: Изд-во МГУ, 1994.-512 с.

7. Сниииин А.П., Райнииа Е.И., Лозинский В.И., Спасов С.Д. Иммобилизованные клетки микроорганизмов. - М.: Изд-во МГУ, 1994. - 288 с.

8. Биотехнология. Принципы и применение. - Пер. с англ./ Под ред. И. Хиггинса, Д.Беста, Дж. Джойса. - М.: Мир, 1988.

9. Иммобилизованные клетки и ферменты. - Пер. с англ./ Под ред. Дж. Вудворта.-М.: Мир, 1988.

10. Биотехнология лекарственных средств. Учебное пособие./Под ред. В.А. Быкова и М.В. Далина. - М.: Медбиоэкономика, 1991. - 303 с.

11. Краткий терминологический словарь микробиолога-биотехнолога. - М.: Наука, 1989. - 136 с.

12. Государственная фармакопея СССР. Вып.2. Общие методы анализа. - М.: Медицина, 11 изд., 1990. - 398 с.

13. Промышленная микробиология / Под ред. Н.С. Егорова. - М.: Высшая школа, 1989.-687 с.

14. Современная генетика/ Под ред. Ф. Айала, Д. Кайчур. - М.: Мир, 1987. 5. Молекулярные и клеточные аспекты биотехнологии / Под ред. С.Г. Инге-Вечтомова. - Л.: Наука, 1986. - 256 с.

15. Сазыкин Ю.О. Антибиотики как биохимические реагенты. - М.: ВИНИТИ, 1984.-203 с.

16. Самуилов В.Д., Олескин А.В. Технологическая биоэнергетика. М.: Изд-во МГУ,1994.- 192 с.

17. Шилова С.В.,Пузакова С.М. и др. Организация производства лекарственных средств с учетом правил GMP. Химико-фармацевтическое производство, обзорная информация. - М.: ВНИИСЭНТИ, 1990.- 36 с.

18. Саруханов А.В., Быков В.А. Оборудование микробиологических производств: Справочник. - М.: Колос, 1993. - 384 с.

19. Сниииин А.П., Райнииа Е.И., Лозинский В.И., Спасов С.Д. Иммобилизованные клетки микроорганизмов. - М.: Изд-во МГУ, 1994. - 288 с.

20. Фармацевтическая микробиология/ под ред. проф. В.А. Галынкина, проф. В.И. Кочеровца.- ЗАО “Арнебия”, 2003г. - с.

Размещено на Allbest.ru

...