Утворення множинних пагонів винограду в культурі in vitro на різних живильних середовищах
Влив концентрації агару в різних живильних середовищах, їх консистенції на показники приживлюваності, росту та розвитку ініціальних експлантів, індукцію множинних пагонів винограду. Удосконалення клонального мікророзмноження винограду в культурі in vitro.
Рубрика | Биология и естествознание |
Вид | статья |
Язык | украинский |
Дата добавления | 27.06.2020 |
Размер файла | 240,9 K |
Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже
Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.
Размещено на http://www.allbest.ru/
Утворення множинних пагонів винограду в культурі in vitro на різних живильних середовищах
Н.І. Теслюк
Одеський національний університет імені І.І. Мечникова, вул. Дворянська, 2, 65082, Україна
Зазвичай розвиток множинних пагонів винограду in vitro індукують тільки на твердих або рідких живильних середовищах.
Мета. Дослідити вплив концентрації агару в різних живильних середовищах, їх консистенції на показники приживлюваності, росту та розвитку ініціальних експлантів, індукцію множинних пагонів винограду.
Методи. Використовували методи введення ініціальних експлантів в культуру in vitro і культивування мікроклонів, а також метод регенерації рослин із меристемних тканин. Дослідні живильні середовища готували рідкими (без вмісту агару), напіврідкими (4 г/л агару) та твердими (8 г/л агару) і додавали до усіх експериментальних середовищ один мг/л 6-БАП. В ході досліджень проводили облік приживлюваності експлантів, початку проліферації бруньок та кількості утворених пагонів.
Результати. Виявлена перевага використання напіврідких середовищ порівняно із твердими та рідкими живильними середовищами. Успішно проведено пошук оптимального живильного середовища для індукції множинних пагонів винограду в культурі in vitro. Встановлено, що напіврідке модифіковане середовище МС сприяє кращій приживлюваності, диференціації та регенерації меристем винограду. В середньому по сортах на ньому утворювалося 9,59 пагонів від одного експланту, що в подальшому підвищувало коефіцієнт розмноження винограду в культурі in vitro до 1:9.
Висновки. Застосування удосконаленого методу індукції множинних пагонів сприяло кращій приживлюваності ініціальних експлантів технічних сортів винограду в культурі in vitro, прискорювало процеси проліферації пазушних мікро-бруньок, та процеси утворення більшої кількості пагонів, що були придатними для подальшого клонального мікророзмноження.
Ключові слова: культура винограду in vitro, ініціальні експланти, множинні пагони, мікроклони, живильні середовища.
Н.И. Теслюк
Одесский национальный университет имени И.И. Мечникова, ул. Дворянская, 2, Одесса, 65082, Украина
ОБРАЗОВАНИЕ МНОЖЕСТВЕННЫХ ПОБЕГОВ ВИНОГРАДА В КУЛЬТУРЕ IN VITRO НА РАЗЛИЧНЫХ ПИТАТЕЛЬНЫХ СРЕДАХ
Реферат
Для индукции множественных побегов винограда in vitro использовались полужидкие питательные среды. Цель. Изучить влияние концентрации агара в различных питательных средах, их консистенции на показатели приживаемости, роста и развития инициальных эксплантов, индукцию множественных побегов винограда. Методы. Использовали методы введения инициальных эксплантов в культуру in vitro и культивирования микроклонов, а также метод регенерации растений из меристемных тканей. Питательные среды готовили жидкими (без содержания агара), полужидкими (4 г/л агара) и твердыми (8 г/л агара) с добавлением ко всем экспериментальным средам 1 мг/л 6-БАП. Проводили учет приживаемости эксплантов, начала пролиферации пазушных почек и количества полученных побегов. Результаты. Использовали полужидкие питательные среды (4 г/л агара). Установили преимущество использования полужидких сред в сравнении с твердыми и жидкими питательными средами. Успешно проведен поиск оптимальной питательной среды для индукции множественных побегов винограда в культуре in vitro. Выявлена оптимальная питательная середа - МС модифицированная полужидкая. Ее использование способствовало лучшей приживаемости, дифференциации и регенерации меристем винограда. В среднем по сортам на ней образовывалось 9,59 шт., побегов от одного экспланта, что в дальнейшем повышало коэффициент размножения винограда в культуре in vitro до 1:9. Выводы. Использование усовершенствованного метода индукции множественных побегов способствовало лучшей приживаемости инициальных эксплантов технических сортов винограда в культуре in vitro, ускоряло процессы пролиферации пазушных микро-почек, и процессы образования большего количества побегов, которые пригодны для дальнейшего клонального микроразмножения.
Ключевые слова: культура in vitro, инициальные экспланты, множественные побеги, микроклоны, питательные среды.
З метою збільшення коефіцієнту розмноження, а, отже, і підвищення ефективності клонального мікророзмноження, доцільно використовувати метод індукції множинних пагонів винограду на штучних живильних середовищах. Незважаючи на результативність методу, робіт з індукції множинних пагонів винограду відомо мало.
На розвиток множинних пагонів впливає склад живильного середовища та вибір і концентрації фітогормонів. З аналізу літератури, а також наших попередніх досліджень [3] було зроблено висновок про те, що для успішної індукції множинних пагонів більшості сортів винограду достатньо 1 мг/л 6-бензиламінопурину (6- БАП).
Індукуючи множинні пагони, дослідники використовують як тверді, так і рідкі середовища. Так, Дорошенко Н. П. [1] етап введення в культуру in vitro розподіляє на два підетапи: культивування виділених меристем здійснювали спочатку на твердих середовищах, а потім - на рідких. Рідкі середовища в своїй роботі використовували багато авторів [2, 5, 8]. За їхніми спостереженнями, рідкі середовища мають певні переваги перед агаризованими, оскільки в них забезпечується велика рухливість поживних речовин [2, 5]. Hye-Jeong Park із співавторами [6] індукували утворення множинних пагонів на твердих середовищах МС та Ніча і Ніч із цитокінінами, а Nadra Khan із співавторами [7] використовували як рідкі так і напіврідкі середовища для клонального мі- кророзмноження винограду (Vitis vinifera L.) cv. Кінгс Рубін.
Отже, немає єдиної думки щодо оптимальної консистенції живильних середовищ для індукції множинних пагонів при клональному мікророзмно- женні винограду in vitro. Пошук та вирішення проблеми оптимальної консистенції середовища залишається актуальним. В цьому напрямку нами запропоновано використовувати напіврідкі живильні середовища для розмноження винограду in vitro методом індукції множинних пагонів [3, 4].
Сорти винограду по-різному проявляють себе в культурі in vitro і тому для успішної реалізації технологічних процесів прискореного розмноження винограду різних сортів важливо підбирати склад живильного середовища з урахуванням сортової специфіки винограду, використовувати універсальні живильні середовища та методичні прийоми культивування.
Метою нашої роботи був вибір оптимального живильного середовища на первинних етапах індукції множинних пагонів технічних сортів винограду in vitro.
Матеріали та методи
Вихідний матеріал відбирали з кущів - донорів, які ростуть на клоно-до- слідній та селекційній ділянках ННЦ “Інститут Виноградарства і Виноробства імені В.Є. Таїрова”, а також в теплицях Центру клонової та фітосанітарної селекції і які були тестовані на відсутність вірусної та бактеріальної інфекції. Дослідження проводили спільно з співробітниками групи культури тканин відділу розсадництва та розмноження винограду ННЦ ”ІВіВ імені В.Є. Таїро- ва” на дослідних сортах Каберне Совіньйон, Марсельський чорний ранній, Шардоне, Трамінер рожевий.
В своїй роботі використовували меристемні верхівки з листковими зародками розміром 1,5-2,5 мм, що в подальшому дало добре збільшення екс- планту та розвиток множинних пагонів. Меристемні верхівки виділяли під бінокулярною лупою в ламінарному боксі в стерильних умовах. В даній роботі до усіх експериментальних середовищ додавали один мг/л 6-БАП.
З метою оптимізації складу живильного середовища для утворення множинних пагонів досліджували різні варіанти середовищ:
- Мурасіге та Скуга (МС);
- МС модифікований нами щодо кількісного і якісного складу вітамінів,
сахарози та фітогормонів [3,4];
- Ніча і Ніч; та Гамборга.
Перелічені середовища готували рідкими (без вмісту агару), напіврідкими (4г/л агару) та твердими (8г/л агару). За контроль слугували тверді живильні середовища. Ініціальні експланти висаджували в окремі культуральні стакани з експериментальними варіантами середовища. Стакани з рідкими середовищами закріплювали на струшувальному апараті. Напіврідке середовище є напівпрозорим та киселеподібним. Експлант знаходився в ньому в напівзануреному плавальному положенні. На твердому живильному середовищі експлант знаходився на поверхні середовища. Культивування на твердих та напіврідких середовищах проводили без струшування. Культивування екс- плантів проводили в культуральному боксі при t = 23- 26 °С, перший тиждень при освітленні 80-1000 люкс., а потім при 2000-3000 люкс., при 16-годинно- му фотоперіоді.
Під час культивування проводили спостереження за станом ініціальних експлантів, проводячи облік приживлюваності, проліферації та кількості утворених пагонів. Далі утворені агрегати пагонів розділяли на окремі пагони, і ці пагони пересаджували на середовище для укорінення з метою подальшого розмноження. Для цього використовували середовище УгМС з додаванням 0,1-0,3 мг/л індолілоцтової кислоти (ІОК), 8 г/л агару та рН 5,2. Розраховували коефіцієнт розмноження, враховуючи кількість утворених пагонів від одного ініціального експланту за однаковий проміжок часу [4]. Результати обробляли методом дисперсійного аналізу із використанням комп'ютерних статистичних програм Excel. Дисперсійний аналіз проводили окремо за кожним досліджуваним показником.
Результати досліджень та їх обговорення
Приживлюваність ініціальних експлантів винограду. В результаті досліджень встановлено, що на показники приживлюваності меристемних верхівок при введенні в культуру in vitro впливає тип, склад живильного середовища, а також його консистенція. При розгляді впливу складу живильного середовища встановлено, що всі типи живильного середовища Гамборга є малопридатними для введення апікальних меристем винограду. На них було відмічено низький відсоток приживлюваності експлантів в межах 15,0-36,7%.
На середовищах Ніча і Ніч приживлюваність ініціальних експлантів була вищою порівняно із середовищами Гамборга, хоча і не перевищувала 60% в кращому варіанті (сорт Каберне Совіньйон 441, середовище Ніча і Ніч напіврідке). Досить часто ініціальні експланти набували коричневого кольору, середовища темніли. Приживлюваність коливалася в межах 28,3-60,0%, що співпадає із нашими попередніми дослідженнями [3, 4] та думкою Hye-Jeong Park із співавторами [6].
Хороші результати були отримані на усіх типах середовищ МС. При порівнянні стандартного середовища МС та МС модифікованого, кращим по приживлюваності ініціальних експлантів виявилося модифіковане середовище МС. Показники приживлюваності експлантів на всіх типах модифікованого середовища МС були значно вищими, ніж на стандартному середовищі МС.
Надалі вивчали вплив консистенції живильних середовищ на приживлюваність меристемних верхівок в культурі винограду in vitro. Виявлено залежність приживлюваності експлантів від консистенції живильного середовища. Встановлено, що на всіх типах твердих живильних середовищ приживлюваність експлантів була низькою, значно меншою ніж на рідких та напіврідких середовищах. Досить високий відсоток приживлюваності ініціальних експлантів було відмічено на всіх типах рідких середовищ.
Найкращі результати були отримані на всіх типах напіврідких середовищ. Особливо виділялося культивування на напіврідких середовищах МС і МС модифікованому. Але найкраща приживлюваність експлантів була на напіврідкому модифікованому середовищі МС. Так, середнє значення показника приживлюваності всіх дослідних сортів складало на модифікованому середовищі МС рідкому - 75,4±2,5%, напіврідкому - 87,1±3,9%, а на стандартному середовищі МС рідкому - 62,5±4,2%, напіврідкому - 73,3±3,4%.
Залежність приживлюваності ініціальних експлантів від консистенції середовища спостерігалася у всіх дослідних сортів. Наприклад, у сорту Трамі- нер рожевий на твердому модифікованому середовищі МС приживлюваність складала 51,7±9,5%, на рідкому - 73,3±3,6%, а на напіврідкому - 81,7±3,6%; у сорту Каберне Совіньйон відповідно на твердому - 56,7±18,9%, рідкому - 76,7±6,1%, напіврідкому - 95,0±12,4%.
Проліферація. В результаті досліджень вперше виявлено позитивний вплив напіврідких живильних середовищ на процеси проліферації винограду при індукції множинних пагонів в культурі in vitro. Як показали дослідження, проліферація бруньок, утворення пагонів у всіх дослідних технічних сортів винограду на твердих середовищах починалися на 8-10 день, на рідких - 6-7 день, а на напіврідких - 6 день. Така тенденція зберігалася у всіх варіантах досліду. В середньому за всіма показниках застосування напіврідких середовищ сприяло прискоренню процесів проліферації порівняно з рідкими середовищами на один день, а порівняно з твердими живильними середовищами - на два дні.
Для представлених технічних сортів винограду кращим живильним середовищем було напіврідке середовище МС модифіковане. При цьому слід враховувати вплив генотипу сорту - сортову специфічність в культурі in vitro. Найбільш активно проліферація ініціальних експлантів відбувалася у клонів сортів винограду Каберне Совіньйон 441 та Шардоне 4876.
Утворення множинних пагонів. Через 30-40 днів культивування від кожного ініціального експланту утворювалися пагони. Виявлено, що кількість утворених пагонів, які були придатними до подальшого клонального мікро- розмноження, залежала від типу живильного середовища. На різних живильних середовищах було одержано від 1 до 10 та більше пагонів від введеного в культуру in vitro ініціального експланту (Табл.).
На всіх типах середовища Г амборга утворення пагонів було мінімальним. У сортів Марсельский чорний ранній 1294, Трамінер рожевий 832, Шардоне 4876 на твердому середовищі Гамборга пагони взагалі не утворювалися.
ТаблицяКількість пагонів, що утворилися на різних живильних середовищах (шт)
Table Amount of the formed shoots on different nourishing media (number)
Тип живильного середовища |
Марсельський чорний ранній 1294 |
Трамінер рожевий 832 |
Каберне Совіньйон 441 |
Шардоне 4876 |
Середнє по сортах |
|
МС тв. |
1,00±0,00 |
1,00±0,00 |
1,20±0,43 |
1,00±0,00 |
1,05±0,98 |
|
МС р. |
6,50±3,72 |
4,73±1,03 |
5,90±1,63 |
3,90±1,14 |
5,26±4,42 |
|
МС н/р. |
7,83±4,27 |
6,60±0,74 |
7,33±3,53 |
5,63±0,80 |
6,85±6,01 |
|
МС мод. тв. |
1,27±1,15 |
1,00±0,00 |
1,43±0,57 |
1,00±0,00 |
1,18±0,99 |
|
МС мод. р. |
8,73±2,88 |
7,10±1,61 |
7,50±3,28 |
6,03±1,12 |
7,34±6,46 |
|
МС мод. н/р. |
10,60±3,02 |
9,20±1,31 |
11,00±2,48 |
8,17±1,12 |
9,74±8,83 |
|
Ніча і Ніч тв. |
1,00±0,00 |
1,00±0,72 |
0,94±0,24 |
0,87±0,29 |
0,94±0,66 |
|
Ніча і Ніч р. |
4,83±0,52 |
3,77±1,49 |
4,30±2,80 |
2,97±0,14 |
3,97±3,33 |
|
Ніча і Ніч н/р. |
5,37±1,00 |
4,33±1,29 |
6,30±2,69 |
3,43±1,00 |
4,86±4,02 |
|
Гамборга тв. |
0 |
0 |
0,85±0,33 |
0 |
0,85±0,52 |
|
Гамборга р. |
2,55±1,93 |
2,10±1,31 |
2,50±1,24 |
1,27±1,15 |
2,06±1,44 |
|
Гамборга н/р. |
2,93±2,31 |
2,65±0,51 |
3,87±1,00 |
1,83±1,83 |
2,82±2,22 |
На рідкому та напіврідкому середовищі цього типу кількість пагонів, що утворилися, була мінімальною - в середньому по сортах 2,06±1,44 пагонів і 2,82±2,22 пагонів, відповідно. Таким чином було зроблено висновок про недоцільність використання середовища Г амборга для індукування множинних пагонів винограду.
На живильних середовищах Ніча і Ніч ріст експлантів та утворення пагонів були повільними. На твердому агаровому середовищі утворювалися поодинокі пагони і в середньому по сортах було одержано 0,94±0,66 пагонів із одного експланту. У варіантах із рідким та напіврідким живильним середовищем кількість пагонів, що утворилися, збільшувалася і коливалася в межах 2,97-6,30 пагонів. В середньому по сортах на рідкому середовищі отримували 3,97±3,33 пагонів, а на напіврідкому - 4,86±4,02 пагонів. У варіантах із рідким та напіврідким середовищами досить часто зустрічалося надмірне потовщення пагону та збільшені крихкі листочки.
Хороші результати були отримані на усіх типах середовища МС стандартного та модифікованого. На середовищах МС стандартному іноді спостерігали прояви вітрифікації, а також утворення калюса біля основи агрегатів множинних пагонів. Таке утворення калюса, як правило, гальмувало процеси утворення множинних пагонів. Найкращим для індукції множинних пагонів всіх сортів винограду, що вивчалися, виявилося модифіковане середовище МС.
Найбільш високі показники індукції множинних пагонів були відмічені на напіврідкому середовищі МС модифікованому і складали 8-11 пагонів із одного експланту за 30-40 днів культивування (Рис.). Можливо, зниження концентрації сахарози до 15 г/л в модифікованому середовищі МС зменшувало ймовірність утворення калюса, збалансований вітамінний склад та напіврідка консистенція середовища дозволили досягти кращої приживлюваності та утворення множинних пагонів.
живильний виноград мікророзмноження
Рис. Утворення множинних пагонів винограду сорту Шардоне 4876 на напіврідкому середовищі МС модифікованому
Зменшення концентрації агару в середовищі було сприятливим для збільшення кількості пагонів. Рідка консистенція середовища позитивно впливала на аерацію експлантів та засвоєння ними живильних речовин.
В результаті досліджень було виявлено, що на твердих агарових середовищах із одного експланту, як правило, утворювався один пагін. Наприклад, у сорту Марсельский чорний ранній 1294 на твердому модифікованому середовищі МС середня кількість пагонів складала - 1,33±0,21 пагонів, на рідкому - 8,73±0,88, а на напіврідкому - 10,66±0,92 пагонів (Р<95%).
При використанні рідких середовищ (без вмісту агару) експлант занурювався на дно культуральної склянки, і у процесі культивування було необхідним безперервне струшування на качалці. При культивуванні ініціалє на напіврідких живильних середовищах (4 г/л агару) апікальні верхівки занурювалися у середовище не повністю, зависаючи у ньому. Це забезпечувало хороший контакт експланта із середовищем, запобігало його закисанню, що дозволяло проводити культивування без застосування струшування. На твердих середовищах (8г/л агару) ініціальні експланти малого розміру (1,5--2,5 мм) розміщувалися на поверхні живильного середовища і через відсутність повного контакту із середовищем частина меристемних верхівок на 2-3 день від введення у культуру in vitro темніла та всихала.
Найбільш інтенсивне утворення множинних пагонів відбувалося на напіврідких живильних середовищах (Рис.). Встановлено, що для максимального збільшення кількості множинних пагонів дослідних технічних сортівта клонів винограду найкращим було напіврідке живильне середовище МС модифіковане. В середньому по сортах на ньому утворювалося 9,59 пагонів, що в подальшому збільшувало коефіцієнт розмноження цих сортів майже у 2 рази.
На напіврідкому середовищі МС модифікованому, на відміну від інших середовищ, утворювалися великі агрегати множинних пагонів кулеподібної форми. Активно відбувалася проліферація із багаточисельних пазушних мі- кро-бруньок. Як правило, через 40-60 днів експланти являли собою агрегати бруньок та пагонів в середньому площею 6 см2.
У подальшому агрегати множинних пагонів, що утворилися, розділяли на окремі пагони. Пагони довжиною 7 мм і більше висаджували для подальшого культивування на тверде агарове середовище УгМС із 0,2-0,3 мг/л ін- долілоцтової кислоти (ІОК) та рН 5,7. Довгі пагони розділяли на одновічкові вузли. Базальну частину агрегату бруньок та пагонів, які залишалися після розділення, культивували на свіжих живильних середовищах такого ж складу, що і попередній для додаткового утворення пагонів. Таким чином, на першому етапі клонального мікророзмноження можливо збільшити кількість мікроклонів, одержаних від однієї висадженої апікальної верхівки в 7-8 разів.
Застосування розробленого методу індукції множинних пагонів сприяє підвищенню коефіцієнту розмноження винограду в культурі in vitro [6]. При клональному мікророзмноженні in vitro одновічковими мікрочубуками на твердому агаровому середовищі коефіцієнт розмноження в середньому становив 1:5 через місяць культивування, а при використанні методу індукції множинних пагонів на напіврідкому живильному середовищі МС модифікованому цей показник в середньому становив 1:9 для технічних сортів винограду.
У результаті досліджень виявлена перевага використання напіврідких середовищ порівняно із твердими та рідкими живильними середовищами. Встановлено оптимальне живильне середовище - напіврідке модифіковане середовище МС, яке сприяло кращій приживлюваності, диференціації та регенерації меристем. На цьому середовищі утворювалася більша кількість пагонів, що були придатними для подальшого клонального мікророзмноження.
Розроблене середовище було випробувано та впроваджено в Центрі клонової селекції, відділі розмноження та розсадництва ННЦ “ІВіВ імені В.Є. Таїрова”. Впровадження удосконаленого методу індукції множинних пагонів сприяло підвищенню коефіцієнту розмноження винограду в культурі in vitro до 1:9, що в подальшому зменшувало собівартість мікроклону винограду на первинних етапах клонального мікророзмноження.
Размещено на Allbest.ru
...Подобные документы
Виноград як рослина теплого клімату, промислове вирощування якої зосереджене головним чином у південних районах. Знайомство з основами захисту винограду від мілдью. Характеристика біологічних особливостей збудника мілдью винограду Plasmoparaviticola.
курсовая работа [2,0 M], добавлен 19.10.2013Стовбурові клітини як прародительки всіх без винятку типів клітин в організмі, знайомство з функціями. Загальна характеристика методу виділення клітин, вирощування органів на поживних середовищах. Аналіз найвідоміших прикладів наукових досягнень.
презентация [871,2 K], добавлен 02.02.2014Коннекторный и рестриктазно-лигазный методы конструирования рекомбинантных молекул ДНК in vitro, их применение в генной инженерии. Реакция лигирования; рестриктазные операции. Использование метода амплификации сегментов ДНК в полимеразной цепной реакции.
презентация [985,3 K], добавлен 17.08.2015Характеристика біотехнології отримання ембріонів in vitro, напрямки та перспективи її вдосконалення. Умови середовища культивування ооцит-кумулюсних комплексів. Впровадження біоритмічно осцилюючих параметрів культивування біологічних мікрооб’єктів.
статья [150,5 K], добавлен 21.09.2017Фази вегетації рослин. Умови росту й розвитку рослин. Ріст та розвиток стебла. Морфологія коренів, глибина і ширина їхнього проникнення у ґрунт. Морфогенез генеративних органів. Вегетативні органи квіткових рослин. Фаза колосіння у злаків і осоки.
курсовая работа [64,0 K], добавлен 22.01.2015Культура ткани в размножении пшеницы. Гормональная регуляция в культуре ткани, схема контроля органогенеза. Роль гуминовых кислот в процессе стимуляции роста растений, их влияние на характер белкового и углеводного обмена растений пшеницы in vitro.
курсовая работа [1,9 M], добавлен 05.11.2011Оптимізація складу живильних середовищ для культивування продуцентів біологічно активних речовин, способи культивування. Мікробіологічний контроль ефективності методів стерилізації. Методи очищення кінцевих продуктів біотехнологічних виробництв.
методичка [1,9 M], добавлен 15.11.2011Розгляд загальних положень механізму трансформації бактерій, рослин та тварин. Дослідження трансформації листових дисків тютюну шляхом мікроін’єкцій. Методика отримання трансформованих пагонів, їх підтримання і розмноження за допомогою брунькових пазух.
курсовая работа [349,3 K], добавлен 15.10.2014Культура тканин і клітин рослин як об'єкт біотехнології. Клональне мікророзмноження. Методи оздоровлення посадкового матеріалу від вірусної інфекції: метод апікальних меристем, термо- і хіміотерапія. Отримання оздоровленого посадкового матеріалу картоплі.
контрольная работа [500,0 K], добавлен 25.10.2013Сутність та фізичні основи явища випромінювання. Влив різних видів випромінювання на прокаріотів. Ультразвукові хвилі та їх вплив на різні мікроорганізми. Природа осмотичного тиску, дія гідростатичного тиску, особливості впливу цього фактора на бактерії.
презентация [403,1 K], добавлен 16.05.2015Застосування регуляторів росту в сучасних технологіях виробництва продукції рослинництва. Роль фітогормонів в обміні речовин та морфогенезі клітини. Дослідження впливу розчину бета-індолілоцтової кислоти на морфометричні показники проростків рослин.
статья [16,7 K], добавлен 02.12.2014Генетическая инженерия как конструирование in vitro функционально активных генетических структур. История развития этой науки. Получение генномодифицированных (трансгенных) сортов растений и продуктов питания, животных. Генетическое загрязнение планеты.
реферат [49,4 K], добавлен 15.09.2015Особенности роста и развития растений. Культура и морфогенетические особенности каллусных тканей. Клональное микроразмножение отдаленных гибридов. Применение культур растительной ткани. Вспомогательное использование методов in vitro в селекции растений.
реферат [7,0 M], добавлен 22.09.2009Принципы классификации бактерий, их разновидности и общая характеристика. Научная классификация рода Salmonellа. Краткое описание семейства Enterobacteriaceae. Рост и развитие патогенов in vivo и in vitro. Сальмонеллезная инфекция, распространение.
курсовая работа [64,8 K], добавлен 03.06.2014Криоконсервация — заморозка биологического материала, обеспечивающая сохранение и жизнеспособность клеток после разморозки; объекты и температурный режим, криоповреждения и криопротекторы. Методы биоинженерии: экстракорпоральное оплодотворение, in vitro.
курсовая работа [57,6 K], добавлен 16.06.2014Особливості та основні способи іммобілізації. Характеристика носіїв іммобілізованих ферментів та клітин мікроорганізмів, сфери їх застосування. Принципи роботи ферментних і клітинних біосенсорів, їх використання для визначення концентрації різних сполук.
реферат [398,4 K], добавлен 02.10.2013Методы трансгенеза в животноводстве. Использование половых клеток семенников. Факторы повышения экспрессии трансгенов в организме животных. Особенности пересадки ядер клеток, культивируемых in vitro. Перспективы генно-инженерных работ в животноводстве.
реферат [38,6 K], добавлен 26.09.2009Получение регенерантов из каллусной ткани и изучение их свойств. Тестирование индукции каллусного потенциала двух сортов шалота с различными гормонами и гормональными комбинациями. Исследование свойств регенерантов на предмет хромосомных перестроек.
практическая работа [763,8 K], добавлен 14.08.2015Розвиток допоміжних репродуктивних технологій. Різновиди штучного запліднення. Інсемінація спермою чоловіка. Інсемінація спермою донора. Запліднення in vitro. Інтрацитоплазматичне введення єдиного сперматозоїда. Донація яйцеклітин. Сурогатне материнство.
презентация [589,0 K], добавлен 27.10.2012Применение клеточных технологий в селекции растений. Использование методов in vitro в отдаленной гибридизации. Работы по культивированию каллуса с целью получения нового селекционного материала. Гибридизация соматических клеток и ее основные результаты.
реферат [28,6 K], добавлен 10.08.2009