Подтипы рецепторов нонапептидов нейрогипофиза и их функции в почках крысы

Определение спектра подтипов рецепторов гормонов у млекопитающих и анализ их физиологических эффектов. Характеристика последовательностей, сходных с последовательностями рецептора вазотоцина позвоночных, в протеомах и транскриптомах млекопитающих.

Рубрика Биология и естествознание
Вид статья
Язык русский
Дата добавления 20.08.2020
Размер файла 7,4 M

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

Размещено на http://www.allbest.ru/

Подтипы рецепторов нонапептидов нейрогипофиза и их функции в почках крысы

гормон рецептор млекопитающее вазотоцин

А. В. Кутина*, А. А. Макашов, Е. В. Балботкина,

Т. А. Каравашкина, Ю. В. Наточин

Институт эволюционной физиологии

и биохимии им. И.М. Сеченова РАН, Санкт-Петербург,

194223 Россия

Реферат

Нонапептиды нейрогипофиза вазотоцин и мезотоцин, выявляемые у большинства позвоночных, у млекопитающих заменены вазопрессином и окситоцином. С использованием биоинформатических методов нами определен спектр подтипов рецепторов этих гормонов у млекопитающих и их физиологические эффекты в почке крыс. Поиск последовательностей, сходных с последовательностями рецептора вазотоцина позвоночных, в протеомах и транскриптомах 9 видов млекопитающих и в геноме крысы выявил три подтипа рецепторов вазопрессина (V1a, V1b, V2) и один тип рецептора окситоцина. В почке ненаркотизированных крыс, получивших водную нагрузку в объеме 2 мл на 100 г массы тела, выявлены три эффекта вазопрессина: 1) увеличение реабсорбции воды и натрия, 2) возрастание экскреции ионов калия, 3) рост экскреции ионов натрия. Обосновано предположение, что каждый из этих эффектов связан с селективной стимуляцией подтипов рецепторов вазопрессина - V2, V1b и V1a - в зависимости от концентрации нонапептида. В экспериментах на ненаркотизированных крысах с водной нагрузкой показано, что инъекция окситоцина снижает реабсорбцию осмотически свободной воды в почке и увеличивает экскрецию ионов натрия. Проанализированы физиологические механизмы реализации обоих эффектов при участии рецептора окситоцина одного типа. Таким образом, спектр активируемых подтипов рецепторов изменяется в зависимости от действующей концентрации гормонов нейрогипофиза, вследствие этого изменяется и преобладающий эффект на функции почек, что обеспечивает точную регуляцию водно-солевого гомеостаза.

КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА почка, вазопрессин, рецепторы, биоинформатика, экскреция ионов, реабсорбция воды.

Введение

Нонапептиды нейрогипофиза влияют на функции различных органов и систем у млекопитающих, участвуют в регуляции социального поведения [1]. Среди периферических эффектов этих гормонов важную роль играет регуляция работы почек при поддержании водно-солевого гомеостаза [2]. В нейрогипофизе большинства позвоночных животных секретируют- ся вазопрессин-подобный (вазотоцин, вазопрессин, лизипрессин, фенипрессин) и окситоцин-подобный (окситоцин, мезотоцин, изотоцин, глумитоцин) гормоны [3]. Вазопрессин-подобные пептиды содержат остаток основной аминокислоты в положении 8 (Arg, Lys), а окситоцин-подобные - остаток нейтральной аминокислоты (Leu, Ile, Pro) [4]. Вазопрессин млекопитающих и человека участвует в регуляции функций почек: усиливает реабсорбцию воды, мочевины и натрия [5]. К основным периферическим эффектам окситоцина относятся утеротонический эффект [6] и стимуляция выведения молока [7]. Введение высоких доз вазопрессина и окситоцина выявляет их натрийуретическое действие [8-10], а инъекции низких доз окситоцина оказывают гидроуретическое действие [11]. Ранее мы показали, что введение млекопитающим вазотоцина (гормон нейрогипофиза у других классов позвоночных) вызывает интенсивный натрийурез, существенно превышающий эффект вазопрессина и окситоцина [12]. Синтезированы и охарактеризованы аналоги вазотоцина с селективным антидиуретическим и натрийуретическим действием (повышение экскретируемой фракции натрия с 0.5% до 15-20%) [13]. Выявлены также пептиды, усиливающие выведение почками ионов калия [12]. В ходе эволюции позвоночных изменялась структура как гормонов нейрогипофиза, так и соответствующих им рецепторов. Принципиально важно понять, при участии рецепторов каких подтипов опосредуются эффекты нонапептидов и их аналогов в почке. Связаны ли они с действием пептида на известные подтипы рецепторов вазопрессина (V2, V1a, V) и окситоцина [14] или существуют другие подтипы рецепторов? Описан новый рецептор мыши, имеющий более высокое сродство к вазотоцину, чем к вазопрессину и окситоцину [15]. Задача настоящей работы заключалась в том, чтобы, используя методы биоинформатики, определить спектр подтипов рецепторов к пептидам семейства вазопрессина и окситоцина у млекопитающих, а также выявить возможность воспроизведения эффектов, оказываемых аналогами вазотоцина, при введении крысам различных доз их природных гормонов - вазопрессина и окситоцина.

Таблица 1. Список версий использованных протеомов, транскриптомов и геномов

Вид

Версия

Homo sapiens

GRCh38.p12

Pan troglodytes

Clint PTRv2

Pongo abelii

Susie_PABv2

Nomascus leucogenys

Nleu_3.0

Canis lupus familiaris

CanFam3.1

Rattus norvegicus

Rnor_6.0

Mus musculus

GRCm38.p6

Monodelphis domestica

MonDom5

Ornithorhynchus

Ornithorhynchus

anatinus

anatinus-5.0.1

ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ

Гомологи гена вазотоцинового рецептора искали в геноме крысы (Rattus norvegicus), в протеомах и транскриптомах 9 видов млекопитающих: крысы, человека (Homo sapiens), шимпанзе (Pan troglodytes), орангутана (Pongo abelii), белощекого гиббона (Nomascus leucogenys), собаки (Canis lupus familiaris), мыши (Mus musculus), домового опоссума (Monodelphis domestica), утконоса (Ornithorhynchus anatinus), доступных на ресурсе Genome (http://www.ncbi.nlm. nih.gov/genome/). Список геномных сборок приведен в табл. 1. Для поиска гомологов использовали программы nHMMER и pHMMER, построенные на скрытых марковских моделях, а также оригинальный программный код на языке shell [16]. Степень гомологии оценивали по значениям e-value и score, которые автоматически присваивались программой на основании внутренних алгоритмов. В качестве запроса использовали марковскую модель, построенную по аминокислотным и нуклеотидным последовательностям рецепторов вазотоцина (V^-подтип) различных позвоночных. Пороговое значение e-value выбрано на уровне 1e-3 для аминокислотных выравниваний и 1e-10 - для нуклеотидных согласно опубликованной методике [17]. Последовательности, не удовлетворяющие данным параметрам, в дальнейшем не рассматривали. Все найденные последовательности ранжировали в порядке уменьшения показателя сходства с запрашиваемой последовательностью (индекс Score) и представляли в графическом виде для выбора порогового уровня. В ходе дальнейших исследований использовали все последовательности с индексом Score больше порогового, а также по две последовательности ниже порогового уровня у каждого вида млекопитающих. Полученные последовательности были сохранены в одном файле в формате fasta. Множественные выравнивания найденных гомологов выполнены с помощью программы MAFFT [18]. Алгоритм L-INS-i выбран нами как наиболее подходящий для работы с базами, содержащими менее 200 последовательностей [19]. Fasta-файл с результатами множественного выравнивания для дальнейшего анализа преобразовывали в nexus- файл с помощью web-инструмента Alignment Format Converter (http://www.ibi.vu.nl/programs/ convertalignwww/). С использованием программы MrBayes и файла в формате nexus, полученного на прошлом этапе, выполнена байесовская реконструкция филогении гомологов [20]: произведено 300 000 генераций в случае аминокислотных последовательностей и 20 000 в случае нуклеотидных последовательностей. Число генераций выбрано на основе предварительно проведенного вычислительного эксперимента, где после всех генераций стандартное отклонение вероятностей расщепления было ниже 0.01 (значение выбрано на основании опубликованных данных [20]). Кладограмма с апостериорными вероятностями для каждого расщепления и филограмма со средней длиной ветвей были сгенерированы и записаны в nexus-файл. Визуализацию и редактирование деревьев выполняли инструментом FigTree (github.com/rambaut/figtree/). Множественное выравнивание аминокислотных последовательностей рецепторов вазопрессина, окситоцина и нейропептида S крысы выполнено с помощью Clustal Omega 1.2.4 (https://www.ebi.ac.uk/Tools/msa/clustalo/).

Физиологические эксперименты выполнены на самках крыс линии Вистар весом 180-230 г. В каждой серии использовали 10 животных. Крысы получали стандартный гранулированный корм («Мелькомбинат», Россия) и имели свободный доступ к воде. С вечера накануне эксперимента крыс не кормили, но сохраняли доступ к воде. Содержание животных и проведение экспериментов соответствовали российским и международным правилам работы с лабораторными животными. В дни экспериментов у животных определяли фазы эстрального цикла с помощью микроскопического анализа мазков влагалищных смывов. Соотношение фаз проэструс, эструс, метэструс и диэструс составило в среднем 15 ± 6, 11 ± 5, 26 ± 6 и 48 ± 7% соответственно. Вазопрессин и окситоцин (Sigma-Aldrich, США), селективные агонисты окситоциновых (Carbetocin, Tocris, Великобритания) и V^-рецепторов (Phe2,Ile8,Orn8-вазопрессин, Bachem, США) в дозах 0.005, 0.015, 0.15 нмоль на 100 г массы тела (м.т.) вводили внутримышечно на фоне водной нагрузки (вода в объеме 2 мл на 100 г м.т. через зонд в желудок), которую использовали для подавления секреции вазопрессина. Контролем служили животные с водной нагрузкой и внутримышечной инъекцией 0.1 мл физиологического раствора на 100 г м.т. Селективные антагонисты окситоциновых (Pmp4-Tyr(Me)2-Thr4- Om8-des-Gly-NH29-вазотоцин, Bachem, США) и V- рецепторов (Pmp1-Tyr(Me)2-вазопрессин, Bachem, США) вводили в дозе 2 нмоль на 100 г м.т. внутри- брюшинно одновременно с вазопрессином в дозе 0.15 нмоль на 100 г м.т. на фоне водной нагрузки. Крыс помещали в специальные индивидуальные клетки для сбора проб мочи при спонтанных мочеиспусканиях. Осмоляльность мочи определяли на микроосмометре Advanced Instruments 3300 (США), концентрацию ионов натрия и калия - на пламенном фотометре Sherwood-420 (Великобритания). Показатели экскреции ионов и реабсорбции воды рассчитывали за период 60 мин от начала эксперимента. При расчете реабсорбции осмотически свободной воды использовали усредненное значение осмоляльности сыворотки крови у крыс после водной нагрузки, равное 288 ± 1 мОсм/кг H2O. Во всех сериях экспериментов эффекты гормонов и агонистов их рецепторов наблюдали на протяжении всего эстрального цикла, поэтому значения показателей функции почек у крыс усредняли без учета фазы цикла. Показатели функции почек нормировали на 100 г м.т. Все данные представлены как среднее ± стандартная ошибка среднего. Сравнение групп проводили с помощью однофакторного дисперсионного анализа с последующим использованием t-теста с поправкой Бонферрони. Различия считали статистически значимыми при p < 0.05.

РЕЗУЛЬТАТЫ

Поиск подтипов рецепторов вазопрессина и окситоцина методами биоинформатики.

Найденные последовательности, сходные с рецептором вазотоцина, ранжировали в порядке убывания индекса Score (рис. 1). Показано, что у последовательностей с наилучшим совпадением с запрашиваемой индекс Score составил более 600, далее степень сходства резко снижалась, и у большинства последовательностей индекс равен примерно 100. В качестве

Рис. 1. Распределение найденных последовательностей по уровню сходства (Score) с усредненным рецептором вазотоцина. Пунктиром показано пороговое значение для дальнейшего анализа порогового значения был принят уровень 200 (рис. 1).

Последовательности, у которых Score был выше порогового, анализировали вручную по базе данных NCBI. Все обнаруженные белки, сходные на уровне первичной структуры с рецептором вазотоцина, аннотировали как рецепторы окситоцина и вазопрессина различных подтипов. Из дальнейшего анализа исключали дублирующие последовательности (в том числе мутантные аллельные варианты). Найдены актуальные версии ряда последовательностей, обновленных в базах данных.

У всех изученных видов млекопитающих выявлены четыре белка-рецептора семейства вазопрессина и окситоцина: V1a (AVPR1A), V (AVPR1B), V2 (AVPR2) и рецептор окситоцина (OXTR). Исключение составили три случая. Во- первых, среди последовательностей P. abelii, отобранных по уровню Score, не найден V..-рецептор. Просмотр результатов поиска выявил последовательность XP_009233694.1 (Score = 144.7) - фрагмент Vj.-рецептора. В базе данных NCBI найдена ее обновленная версия XP_024096521.1. Во-вторых, V2- рецептор не найден в протеоме M. domestica. Ручной поиск в базе NCBI также не выявил рецептор вазопрессина данного подтипа у этого вида опоссумов, но найден белок, аннотированный как фрагмент V2- рецептора у D. virginiana. В-третьих, у R. norvegicus обнаружены две аминокислотные последовательности, аннотированные как V-рецептор вазопрессина (NP_001276729.1 и NP_058901.3).

Наиболее сходными с белками-рецепторами семейства вазопрессина у всех изученных видов оказались рецепторы нейропептида S (NPSR1) и гонадотропин-рилизинг гормона (GNRHR).

Рис. 2. Филограмма аминокислотных последовательностей рецепторов вазопрессина, окситоцина, нейропептида S и гонадотропин-рилизинг гормона у млекопитающих

Аминокислотные последовательности этих белков включены в построение филограмм наряду со всеми найденными последовательностями рецепторов вазопрессина и окситоцина. Обозначения и номера аминокислотных последовательностей белков, использованных для построения филограмм, приведены в табл. 2. Построение филограммы (рис. 2) показало, что все последовательности с индексом Score выше 200 четко разделились на четыре клады, соответствующие рецепторам вазопрессина V, V и Vj.-подтипов и рецептору окситоцина. Отдельные клады, сестринские по отношению к V^.-рецепторам, сформировали рецепторы нейропептида S и гонадотропин-рилизинг гормона. Анализ опубликованной ранее последовательности кДНК «вазотоцинового» рецептора мыши (GenBank: AK033957) [15], а также предсказанной по ней структуры белка показал их соответствие нуклеотидной и аминокислотной последовательностям рецептора нейропептида S. На рис. 3 представлены результаты множественного выравнивания последовательностей рецепторов вазопресси- на, окситоцина и рецептора нейропептида S крысы. Показано, что по аминокислотной последовательности рецепторы вазопрессина и окситоцина идентичны друг другу примерно на 50%: V^-рецептор имеет 54% гомологии с V^-рецептором, 51% - с окситоциновым и 46% - с Vj.-рецептором. Рецептор нейропептида S имеет меньшее сходство с рецепторами вазопрессина (с V - 33, с V - 33, с V2 - 30%) и окситоцина (32%), он содержит радикальные замены в лигандсвязывающих участках (рис. 3).

В транскриптомах 9 видов млекопитающих проведен поиск нуклеотидных последовательностей, сходных с транскриптом гена рецептора вазотоцина. Выявленные таким образом мРНК полностью соответствовали белкам, обнаруженным на предшествующем этапе исследования в протеоме. У R. norvegicus найдены две разные последовательности мРНК, кодирующие рецептор вазопрессина V-подтипа: NM_017205.3 и NM_001289800.1. У M. domestica, как и при поиске по протеому, не найдена последовательность, соответствующая V-рецептору. Наиболее близкими к нуклеотидной последовательности мРНК рецептора вазотоцина оказались мРНК рецепторов гонадотропин-рилизинг гормона и нейропептида S. Обозначения и номера нуклеотидных последовательностей, использованных для построения филограмм, приведены в табл. 2. На рис. 4 представлена фило-

Таблица 2. Идентификаторы нуклеотидных последовательностей мРНК и аминокислотных последовательностей белков-рецепторов млекопитающих, схожих с рецептором вазотоцина позвоночных

Вид

Белок

мРНК

Обозначение на филограммах

Homo sapiens

NP 000697.1

NM 000706.4

Avpr1a Homo

NP 000698.1

NM 000707.4

Avpr1b Homo

NP 000907.2

NM 000916.3

Oxtr Homo

NP 000045.1

NM 000054.4

Avpr2 Homo

NP 997055.1

NM 207172.1

Npsr1A Homo

NP 001287864.1

NM 001300933.1

Npsr1G Homo

NP 997056.1

NM 207173.1

Npsr1B Homo

NP 000397.1

NM 000406.2

Gnrhr Homo

Pan troglodytes

XP 016778615.1

XM 016923126.2

Avpr1a Pan

XP 525039.2

XM 525039.6

Avpr1b Pan

XP 001144020.1

XM 001144020.5

Oxtr Pan

XP 001145732.2

XM 009439827.2

Avpr2 Pan

XP 024213409.1

XM 024357641.1

Npsr1 Pan

XP 526608.1

XM 526608.5

Gnrhr Pan

Pongo abelii

XP 002823515.2

XM 002823469.3

Avpr1a Pongo

XP 002813528.1

XM 002813482.3

Oxtr Pongo

XP 024089895.1

XM 024234127.1

Avpr1b Pongo

XP 024096521.1

XM 024240753.1

Avpr2 Pongo

XP 002818110.2

XM 002818064.3

Npsr1 Pongo

XP 024101999.1

XM 024246231.1

Gnrhr Pongo

Nomascus leucogenys

XP 003252777.1*

XM 003252729.3

Avpr1a Nleu

XP 003272998.1

XM 003272950.3

Avpr1b Nleu

XP 012357682.1

XM 012502228.1

Oxtr Nleu

XP 003279348.1

XM 003279300.2

Avpr2 Nleu

XP 003279243.1

XM 003279195.2

Npsr1 Nleu

XP 003268473.1

XM 003268425.1

Gnrhr Nleu

Canis lupus familiaris

NP 001185587.1

NM 001198658.1

Avpr1a Canis

NP 001185588.1

NM 001198659.1

Oxtr Canis

XP 545695.2

XM 545695.3

Avpr1b Canis

NP 001003177.1

NM 001003177.1

Avpr2 Canis

XP 022283280.1

XM 022427572.1

Npsr1 Canis

NP 001003121.1

NM 001003121.1

Gnrhr Canis

Rattus norvegicus

NP 444178.2

NM 053019.2

Avpr1a Rat

NP 058901.3

NM 017205.3

Avpr1b Rat

NP 001276729.1

NM 001289800.1

Avpr1b Rat

NP 037003.2

NM 012871.3

Oxtr Rat

NP 062009.1

NM 019136.1

Avpr2 Rat

NP 001100278.1

NM 001106808.1

Npsr1 Rat

NP 112300.2

NM 031038.3

Gnrhr Rat

Mus musculus

NP 058543.2

NM 016847.2

Avpr1a Mus

NP 036054.1

NM 011924.2

Avpr1b Mus

NP 001074616.1

NM 001081147.1

Oxtr Mus

NP 062277.1

NM 019404.2

Avpr2 Mus

NP 783609.1

NM 175678.3

Npsr1 Mus

NP 034453.1

NM 010323.2

Gnrhr Mus

Monodelphis domestica

XP 001372716.1

XM 001372679.3

Avpr1a MonDom

XP 001372263.1

XM 001372226.2

Avpr1b MonDom

XP 016279957.1

XM 016424471.1

Oxtr MonDom

XP 001365641.2

XM 001365604.4

Npsr1 MonDom

XP 001362289.1

XM 001362252.2

Gnrhr MonDom

Ornithorhynchus

anatinus

XP_001520677.1

XM_001520627.2

Avpr1a OrnAnat

XP_007660695.1

XM_007662505.1

Oxtr OrnAnat

XP_007663815.1

XM_001520222.2

Avpr2 OrnAnat

XP_007658276.1*

XM_007660086.1

Avpr1b OrnAnat

XP_016082441.1* #

XM_016226955.1

Npsr1 OrnAnat

NP_001116830.1

NM_001123358.1

Gnrhr OrnAnat

Примечание: * - неполная последовательность, # - нЄ обнаружена при автоматическом поиске, добавлена вручную из базы NCBI.

Рис. 3. Множественное выравнивание аминокислотных последовательностей рецепторов вазопрессина, окситоцина и нейропептида S крысы. Серой заливкой выделены трансмембранные домены 1-7, рамкой обведены участки связывания рецептора с лигандами

Рис. 4. Филограмма нуклеотидных последовательностей мРНК рецепторов вазопрессина, окситоцина, нейропептида S и гонадотропин-рилизинг гормона у млекопитающих грамма мРНК рецепторов семейства вазопрессина, которая в целом оказалась сходной с филограммой белков. В геноме крысы выявлено пять локусов, сходных с геном рецептора вазотоцина (табл. 3). Обнаружена дупликация гена V^-рецептора на длинном плече хромосомы 13 (рис. 5). Белки, кодируемые этими генами, полностью идентичны.

Рис. 5. Дупликация гена V-рецептора в хромосоме 13 у крысы Rattus norvegicus (Chr 13 (NC_005112.4): 48 358 720 - 48 406 569)

Физиологические эффекты вазопрессина и окситоцина на почки крыс

В опытах на крысах показано, что эффект вазопрессина на экскрецию ионов натрия, калия или реабсорбцию осмотически свободной воды зависит от дозы гормона. Этот нонапептид вводили животным на фоне водной нагрузки, которая на время угнетала секрецию вазопрессина нейрогипофизом. Инъекция вазопрессина в дозе 0.005 нмоль на 100 г м.т. оказала антидиуретическое действие. Несмотря на водную нагрузку, моча животных была осмотически концентрированной (осмоляльность составила 546 ± 31 мОсм/кг H2O; 89 ± 14 мОсм/кг H2O в группе без вазопрессина), происходила реабсорбция осмотически свободной воды в канальцах почек (рис. 6). Экскреция ионов калия была такой же, как в контроле, а выведение ионов натрия уменьшилось вдвое, т.е. вазопрессин в этой дозе оказал антинатрийуретическое действие (рис. 6).

Таблица 3. Результаты поиска генов, сходных с нуклеотидной последовательностью рецептора вазотоцина, в геноме крысы Rattus norvegicus

Score

Хромосома (нить)

Начало - конец гена, п.н.

ID транскрипта

ID белка

Длина белка, а.о.

Avprla (ID гена - ENSRN0G00000004400)

852.5

7(-)

67341080-67345308

ENSRNOT

00000005829

ENSRNOP

00000005829

424

LOC100909648 (ID гена - ENSRN0G00000049261)

500.8

13(-)

48390417-48400632

ENSRNOT

00000074204

ENSRNOP

00000067252

421

Avprlb (ID гена - ENSRN0G00000048522)

500.5

13(+)

48367307-48378831

ENSRNOT

00000074512

ENSRNOP

00000064689

421

Oxtr (ID гена - ENSRN0G00000005806)

464.3

4(-)

144403358-144416116

ENSRNOT

00000007724

ENSRNOP

00000007724

388

Avpr2 (ID гена - ENSRN0G00000059862)

238.2

X(-)

156889410-156891213

ENSRNOT

00000091495

ENSRNOP

00000071931

371

Повышение дозы вазопрессина в 3 раза (до 0.015 нмоль на 100 г м.т.) привело к росту реабсорбции осмотически свободной воды, а выведение натрия было таким же, как в контрольной группе. Действие гормона в этой дозе вызывало усиление экскреции ионов калия на 130% (рис. 6), т.е. приводило к селективному калийурезу. При повышении дозы до 0.15 нмоль на 100 г м.т. вазопрессин не только усиливал реабсорбцию осмотически свободной воды, но и повышал выведение одновалентных катионов. При этом наблюдался рост экскреции ионов калия и натрия с преобладанием выведения ионов натрия (рис. 6).

Введение в таких же физиологических условиях окситоцина (0.005 и 0.015 нмоль на 100 г м.т.) привело к усилению диуреза, селективному натрийурезу и уменьшению реабсорбции осмотически свободной воды (рис. 7). Экскреция ионов калия не отличалась от экскреции в контроле. Повышение дозы оксито- цина до 0.15 нмоль на 100 г м.т. привело к антидиуретическому эффекту, росту реабсорбции осмотически свободной воды, наряду с ростом экскреции ионов натрия отмечался подъем выведения ионов калия. Экскреция ионов натрия при действии окситоцина была ниже, чем после введения вазопрессина в той же дозе (рис. 6, 7).

Рис. 6. Влияние внутримышечного введения различных доз вазопрессина на фоне водной нагрузки у крыс на экскрецию почками ионов натрия, калия и реабсорбцию осмотически свободной воды. * - значимость отличий (р < 0.05) от контроля (0 нмоль/100 г м.т.)

Рис. 7. Влияние внутримышечного введения различных доз окситоцина на фоне водной нагрузки у крыс на экскрецию почками ионов натрия, калия и реабсорбцию осмотически свободной воды. * - значимость отличий (р < 0.05) от контроля (0 нмоль/100 г м.т.)

Селективный V^-агонист воспроизвел натрийуретический эффект вазопрессина, при этом экскреция натрия усилилась в значительно большей степени, чем при действии гормона (рис. 8). Блокада V^-рецепторов полностью препятствовала развитию индуцированного вазопрессином натрийуреза; окситоциновый антагонист не вызывал такого эффекта (рис. 8). При действии окситоцина и агониста его рецепторов в отличие от V^-агониста усиление экскреции натрия сопровождалось усилением образования осмотически свободной воды (рис. 9).

Рис. 8. Сопоставление действия вазопрессина и V1a- агониста (V1a-ar) в дозе 0.15 нмоль/100 г м.т. на экскрецию натрия и эффект антагонистов V^-рецепторов (V-ант) и рецепторов окситоцина (O-ант) на натрийуретическое действие вазопрессина у крыс, получивших водную нагрузку (ВН). Значимость отличий (р < 0.05): * - от ВН, $ - от ВН + вазопрессин

Рис. 9. Сопоставление действия агонистов V-рецепторов (V-аг) и рецепторов окситоцина (O-аг) в дозе 0.015 нмоль/і00 г м.т. на фоне водной нагрузки (ВН) на экскрецию натрия почками и клиренс осмотически свободной воды (CH2O) у крыс. * - значимость отличий (p < 0.05) от ВН

Обсуждение

В крупноклеточных нейронах гипоталамуса синтезируются различные нонапептиды, которые секретируются в кровь в нейрогипофизе. У большинства млекопитающих это вазопрессин и окситоцин, в то время как у позвоночных других классов - вазотоцин и мезотоцин [4, 21]. Эффекты нонапептидов опосредуются рецепторами, входящими в семейство мембранных G-связанных рецепторов. Согласно современным представлениям, у позвоночных произошли три последовательных дупликации генов рецепторов вазопрессин- и окситоцин-подобных пептидов. Данные, полученные при изучении круглоротых и хрящевых рыб, позволяют предположить, что у челюстноротых позвоночных было как минимум шесть разных генов, кодирующих рецепторы гормонов семейства вазопрессина: пять подтипов вазопрессиновых (вазотоциновых) рецепторов (V1a, V , V2a, V2b, V2c) и один подтип рецептора окситоцина (у разных животных он называется окситоциновым, изотоциновым или мезотоциновым в зависимости от гормона окситоцинового ряда) [22]. V-рецептор пока описан только у рыб, V^-рецептор обнаружен у всех позвоночных, кроме млекопитающих (у сумчатых в виде псевдогена). Передача сигнала рецепторами данного семейства происходит при участии фосфолипазы С, инозитолтрифосфата и кальция. Исключением является V-рецептор, который активирует аденилатциклазу и стимулирует образование сАМР в качестве вторичного посредника.

В поисках ответа на вопрос о молекулярных механизмах полифункциональности вазопрессина и окси- тоцина проведен поиск их рецепторов у млекопитающих, сходных по аминокислотной и нуклеотидной последовательности с рецептором вазотоцина других позвоночных. Данные настоящей работы подтвердили, что в геноме крыс имеются гены трех подтипов V-рецепторов - V , V , и V2, и один ген рецептора окситоцина. Следующим, наиболее близким к ним по структуре белком является рецептор нейропептида S. Учитывая низкую степень гомологии с другими рецепторами вазопрессина и окситоцина, особенно лигандсвязывающих участков, маловероятным представляется его участие в реализации эффектов вазопрессина и окситоцина в почке, хотя это требует отдельной экспериментальной проверки. Выявленные в данной работе различия в действии возрастающих доз вазопрессина (рис. 6), а также во влиянии вазотоцина и его аналогов [12] на экскрецию одновалентных катионов и реабсорбцию воды в почке крыс могут быть связаны с различиями в спектрах активации трех существующих подтипов V-рецепторов. Это предположение подтверждается результатами нашей работы, а также более ранними исследованиями с применением агонистов и антагонистов V-рецепторов [12]. Наиболее хорошо изучен механизм антидиуретического и антинатрийуретического эффектов вазопрессина, направленных на обеспечение осмотического концентрирования мочи. Vj.-рецепторы активируются уже при низких концентрациях вазопрессина в крови, повышают проницаемость собирательных трубок для воды и активность транспортеров натрия в дистальных отделах нефрона [5, 23]. По-видимому, при повышении концентрации вазопрессина наряду с V..-рецепторами активируются V - и V-рецепторы и изменяется экскреция ионов натрия и калия. Ранее было показано, что агонист V^-рецепторов усиливает экскрецию калия [24], а стимуляция V-рецепторов угнетает реабсорбцию натрия в толстом восходящем отделе петли Генле [10, 12, 13, 25] и приводит к натрийурезу. Нами показано, что натрийуретическое действие вазопрессина полностью устраняется антагонистом V- рецепторов. V -агонист, лишенный V..-активности, в значительно большей степени усиливает экскрецию натрия, чем вазопрессин, активирующий все подтипы V-рецепторов. Соотношение вовлечения подтипов V-рецепторов в физиологический ответ почки на введение вазопрессина в разных дозах может зависеть от различий в плотности рецепторов в мембранах канальцевых клеток нефронов и от разного сродства рецепторов к гормону. Различными методами показано присутствие в почке всех подтипов рецепторов вазопрессина и окситоцина (AVPR2 > AVPR1A > OXTR > AVPR1B) [26], экспрессия Vj.-рецептора значительно превышает экспрессию всех остальных подтипов рецепторов этого семейства. Для активации V-рецепторов у крысы требуется в 100 раз более высокая концентрация вазопрессина, чем для передачи сигнала через V2-рецепторы. Более сложным представляется обсуждение механизма действия окситоцина в почке. В разных дозах этот нонапептид вызывает противоположные эффекты (рис. 7): в низкой дозе увеличивает выведение осмотически свободной воды и ионов натрия, а в высокой - усиливает реабсорбцию осмотически свободной воды и экскрецию ионов калия при повышении натрийуретического эффекта. Анализ протеома, транскриптома и генома крысы не выявил подтипов рецептора окситоцина, поэтому механизм физиологического эффекта следует объяснять, исходя из существования рецептора одного типа. Согласно анализу мРНК, кодирующей рецептор окситоцина [27, 29], этот рецептор наиболее представлен в проксимальном отделе нефрона. Известно, что снижение реабсорбции натрия в проксимальном канальце создает условия для увеличения клиренса осмотически свободной воды [11]. Этот эффект наблюдали при изучении механизма действия ингибиторов карбоангидразы [30] и глюкагоноподобного пептида-1 в почке [10]. Выполненные ранее эксперименты показали, что окситоцин [11] вызывает уменьшение реабсорбции жидкости в проксимальном канальце, вследствие чего больший объем жидкости поступает в последующие отделы нефрона. Так как на фоне водной нагрузки прекращается секреция вазопрессина нейрогипофизом, увеличение под действием окситоцина объема жидкости, поступающей в дистальный сегмент нефрона, способствует росту клиренса осмотически свободной воды. Нами показано, что усиление экскреции натрия и воды под действием окситоцина воспроизводится при введении селективного агониста рецепторов окситоцина. Кроме того, полученные данные указывают на различия в механизмах натрийуреза, вызванного окситоцином и вазопрессином - рост экскреции натрия обусловлен снижением реабсорбции натрия в проксимальном и дистальном отделах нефрона при активации рецепторов окситоцина и V^-рецепторов соответственно. Эффекты, наблюдающиеся при введении высокой дозы окситоцина (0.15 нмоль/100 г м.т.), аналогичны описанным для вазопрессина и, вероятно, связаны с действием нонапептида на рецепторы вазопрессина. В отличие от окситоцина селективный агонист рецепторов окситоцина в этой дозе не оказывает антидиуретического действия.

Выводы

1. Анализ аминокислотных и нуклеотидных последовательностей в протеомах и транскриптомах 9 видов млекопитающих выявил три подтипа рецепторов вазопрессина и один рецептор окситоцина.

2. При исследовании генома крысы методами биоинформатики выявлены гены, кодирующие четыре подтипа рецепторов к нонапептидам семейства вазопрессина и окситоцина (Avpr1a, Avprпb, Avpr2, Oxtr).

3. В экспериментах на ненаркотизированных крысах, получавших водную нагрузку в объеме 2 мл на 100 г м.т., установлены три эффекта вазопрессина в почке: 1) увеличение реабсорбции осмотически свободной воды, 2) возрастание экскреции ионов калия,

3) снижение реабсорбции ионов натрия. Обосновано предположение об обусловленности этих эффектов селективной стимуляцией V-, V - и V2-рецепторов в почке соответственно.

4. В экспериментах на ненаркотизированных крысах с водной нагрузкой показаны два эффекта окситоцина в почке: 1) снижение реабсорбции воды, 2) усиление экскреции натрия. Обсуждены возможные физиологические механизмы их реализации при участии одного подтипа рецептора окситоцина.

5. В зависимости от действующей концентрации гормонов нейрогипофиза изменяется спектр активируемых подтипов рецепторов и преобладающий эффект на функции почек, что обеспечивает точную регуляцию водно-солевого гомеостаза.

Список литературы

1. Stein D.J. // CNS Spectr. 2009. V. 14. P. 602-606.

2. Bankir L., Bichet D.G., Morgenthaler N.G. // J. Intern. Med.

2017. V. 282. P. 284-297.

3. Wallis M. // Gen. Comp. Endocrinol. 2012. V. 179. P. 313-318.

4. Acher R., Chauvet J. // Front. Neuroendocrinol. 1995. V. 16. P. 237-289.

5. Kortenoeven M.L., Pedersen N.B., Rosenbaek L.L., Fenton R.A. // Am. J. Physiol. Renal Physiol. 2015. V. 309. P. F280- F299.

6. Arrowsmith S., Wray S. // J. Neuroendocrinol. 2014. V. 26. №

6. P. 356-369.

7. Crowley W.R. // Compr. Physiol. 2015. V. 5. P. 255-291.

8. Verbalis J.G., Mangione M.P., Stricker E.M. // Endocrinology. 1991. V. 128. P. 1317-1322.

9. Musabayane C.T., Forsling M.L., Balment R.J. // Ren. Fail.

1997. V. 19. P. 23-32.

10. Kutina A.V., Golosova D.V., Marina A.S., Shakhmatova E.I., Natochin Y.V. // J. Neuroendocrinol. 2016. V. 28. № 4. P. 1-8.

11. Наточин Ю.В., Голосова Д.В., Шахматова Е.И. // Докл. АН.

2018. Т. 479. С. 712-715.

12. Kutina A.V., Marina A.S., Shakhmatova E.I., Natochin Yu.V. // Regul. Pept. 2013. V. 185. P. 57-64.

13. Karavashkina T.A., Kutina A.V., Shakhmatova E.I., Natochin Yu.V. // Gen. Comp. Endocrinol. 2011. V. 170. P. 460-467.

14. Pare P., Paixao-Cortes V.R., Tovo-Rodrigues L., Vargas- Pinilla P., Viscardi L.H., Salzano F.M., Henkes L.E., Bortolini M.C. // Genet. Mol. Biol. 2016. V. 39. P. 646-657.

15. Usui M., Aoshima H., Yamamoto Y., Luziga C., Mamba K. //

J. Vet. Med. Sci. 2006. V. 68. P. 655-661.

16. Wheeler T.J., Eddy S.R. // Bioinformatics. 2013. V. 29. P.

2487-2489.

17. Pearson W.R. // Curr. Protoc. Bioinformatics. 2013. V. 43. P. 3.5.1-3.5.9.

18. Nakamura T., Yamada K.D., Tomii K., Katoh K. // Bioinformatics. 2018. V. 34. P. 2490-2492.

19. Katoh K., Standley D.M. // Mol. Biol. Evol. 2013. V. 30. P. 772-780.

20. Ronquist F., Huelsenbeck J.P. // Bioinformatics. 2003. V. 19. P. 1572-1574.

21. Warne J.M., Harding K.E., Balment R.J. // Comp. Biochem. Physiol. B. Biochem. Mol. Biol. 2002. V. 132. P. 231-237.

22. Yamaguchi Y., Kaiya H., Konno N., Iwata E., Miyazato M., Uchiyama M., Bell J.D., Toop T., Donald J.A., Brenner S., et al. // Gen. Comp. Endocrinol. 2012. V. 178. P. 519-528.

23. Bachmann S., Mutig K. // Pflugers Arch. 2017. V. 469. № 7-8. P. 889-897.

24. Кутина А.В., Марина А.С., Наточин Ю.В. // ДАН. 2014. Т. 459. № 6. С. 762-764.

25. Perucca J., Bichet D.G., Bardoux P., Bouby N., Bankir L. // J. Am. Soc. Nephrol. 2008. V. 19. P. 1721-1731.

26. Yu Y., Fuscoe J.C., Zhao C., Guo C., Jia M., Qing T., Bannon D.I., Lancashire L., Bao W., Du T., et al. // Nat. Commun. 2014. V. 5. P. 3230.

27. Lee J.W., Chou C.L., Knepper M.A. // J. Am. Soc. Nephrol. 2015. V. 26. P. 2669-2677.

28. Bankir L. // Cardiovasc. Res. 2001. V. 51. P. 372-390.

29. Ostrowski N.L., Lolait S.J. // Adv. Exp. Med. Biol. 1995. V. 395. P. 329-340.

30. Rosin J., Katz M.A., Rector F.C. Jr., Seldin D.W. // Am. J. Physiol. 1970. V. 219. P. 1731-1738.

Размещено на Allbest.ru

...

Подобные документы

  • Общие черты млекопитающих, их типы, классы и подтипы. Отрицательное и положительное значение млекопитающих в жизни человека. Рекордсмены среди млекопитающих: землеройка-малютка, синий кит, кенгуру, бегемот. Значение волосяного покрова для зверей.

    презентация [10,2 M], добавлен 26.04.2014

  • Классы птиц и млекопитающих, являющиеся вершиной эволюции позвоночных, возникли независимо друг от друга. Рыбы – водные позвоночные животные, дышащие жабрами. Строение тела и скелет птиц, млекопитающих и рыб. Отличительные признаки млекопитающих.

    контрольная работа [19,8 K], добавлен 24.04.2009

  • История открытия Г-КСФ, их характеристики и классификация. Исследование локализации рецепторов Г-КСФ в головном мозге крысы на базе распределения CD 114 позитивных клеток для последующего применения в изучении расположения рецепторов в мозге человека.

    дипломная работа [2,2 M], добавлен 19.06.2019

  • Функция обонятельных рецепторов. Каналы обонятельных рецепторов, управляемые нуклеотидами. Сопряжение рецептора с ионными каналами. Вкусовые рецепторные клетки, характеристика основных категорий. Трансдукция ноцицептивных и температурных стимулов.

    реферат [24,0 K], добавлен 27.10.2009

  • Особенности строения и жизнедеятельности млекопитающих. Органы полости, нервная система и поведение млекопитающих. Происхождение, размножение и развитие млекопитающих. Основные экологические группы млекопитающих. Значение млекопитающих и их охрана.

    реферат [25,3 K], добавлен 03.07.2010

  • Наиболее важные черты общей организации млекопитающих, их строение на примере крысы. Порядок вскрытия крыс, знакомство с общим расположением внутренних органов, топография. Кровеносная, дыхательная, пищеварительная, мочеполовая и нервная системы крысы.

    реферат [557,3 K], добавлен 09.12.2009

  • Исследование данных о строении, жизнедеятельности и экологии мелких млекопитающих. Определение зверьков по справочникам-определителям. Годичные и сезонные изменения численности мелких млекопитающих, демографические характеристики популяций лесной мыши.

    контрольная работа [23,3 K], добавлен 10.07.2010

  • Определение понятия "гормон". Ознакомление с историей изучения эндокринных желез и гормонов, составлением их общей классификации. Рассмотрение специфических особенностей биологического действия гормонов. Описание роли рецепторов в данном процессе.

    презентация [144,7 K], добавлен 23.11.2015

  • Исследование рецепторов как сложных образований, состоящих из нервных окончаний, обеспечивающих превращение влияния раздражителей в нервный импульс. Классификация рецепторов и механизм физиологии рецепции. Адаптация рецепторов и сенсорные модальности.

    реферат [1,1 M], добавлен 19.02.2011

  • Краткая характеристика класса млекопитающих. Среда обитания. Особенности строения пищеварительной системы, ротовых органов. Трофические группы млекопитающих: растительноядные и животноядные. Роль млекопитающих в экосистемах и в народном хозяйстве.

    курсовая работа [1,7 M], добавлен 04.11.2011

  • История происхождения первых млекопитающих. Млечные железы, вырабатывающие молоко для вскармливания детенышей, волосяной покров, более или менее постоянная температура тела как признаки класса млекопитающих. Строение кожи, скелета и внутренних органов.

    презентация [11,0 M], добавлен 26.02.2010

  • Описание особенностей оплодотворения и формирования бластомеров в клетке. Понятие поздней гаструляции, специфика протекания ее этапов у низших и высших млекопитающих. Изменения плаценты в процессе эволюции, характеристика ее типов и основные функции.

    реферат [13,6 K], добавлен 01.12.2011

  • Основные этапы обработки зрительной информации. Методы исследования функции нервной системы. Тестирование зрительной функции млекопитающих с помощью оптического картирования коры головного мозга по внутреннему сигналу. Схема экспериментальной установки.

    курсовая работа [6,0 M], добавлен 17.10.2012

  • Классы иммуноглобулинов и их функции, принципиальная особенность, нейтрализующее действие в минимальных концентрациях. Процесс рекомбинации генов, кодирующих легкие и тяжелые цепи иммуноглобулинов. Конфигурация Т-клеточных рецепторов, виды генов.

    реферат [35,6 K], добавлен 02.04.2016

  • Характеристика вкусовых рецепторов, реагирующих на различные вещества. Вкусовой анализатор и его функционирование, нейрофизиологическая система, обеспечение анализа химических веществ, поступающих в полость рта. Сигналы вкусовых рецепторов в организме.

    реферат [22,5 K], добавлен 09.08.2010

  • Синтез серотонина и виды серотониновых рецепторов, их современная классификация. Связывающие свойства серотониновых рецепторов и их сопряжение с эффекторными системами клеток. Регуляция функций центральной нервной системы и периферических органов.

    презентация [365,1 K], добавлен 23.10.2013

  • Генетический полиморфизм и его причины. Взаимодействие рецептора и гормона. Основные примеры полиморфных маркеров, ассоциированных с поведенческими реакциями. Анализ ассоциаций изученных полиморфных локусов с различными формами агрессивного поведения.

    дипломная работа [667,1 K], добавлен 02.02.2018

  • Особенности желез внутренней секреции. Методы исследования функции желез внутренней секреции. Физиологические свойства гормонов. Типы влияния гормонов. Классификация гормонов по химической структуре и направленности действия. Пути действия гормонов.

    презентация [2,2 M], добавлен 23.12.2016

  • Модели исследования, методы обнаружения, морфологические признаки и фармакологическая коррекция апоптоза кардиомиоцитов млекопитающих. Перспективы применения антиапоптотических веществ в клинической практике при лечении сердечно-сосудистых заболеваний.

    курсовая работа [2,2 M], добавлен 03.10.2014

  • Рецепторный потенциал как преобразователь внешних воздействий в электрические сигналы. Фоторецепторы сетчатки позвоночных. Как акулы используют закон Ома и теорию вероятностей. Электрорецепторные клетки, чувствительность пресинаптической мембраны.

    реферат [786,5 K], добавлен 08.08.2009

Работы в архивах красиво оформлены согласно требованиям ВУЗов и содержат рисунки, диаграммы, формулы и т.д.
PPT, PPTX и PDF-файлы представлены только в архивах.
Рекомендуем скачать работу.