Влияние скорости тепловой акклимации на жирнокислотный состав и фазовые переходы гликолипидов Saccharina japonica (J.E. Areschoug)
Исследование способности водорослей Saccharina japonica (J.E. Areschoug) реорганизовывать липидный матрикс мембран при различных скоростях прогрева морской воды. Состав жирных кислот и тепловые переходы кристалл - жидкий кристалл полярных липидов.
| Рубрика | Биология и естествознание |
| Вид | статья |
| Язык | русский |
| Дата добавления | 05.10.2020 |
| Размер файла | 127,0 K |
Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже
Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.
Разделение фаз, характерное для термотропного поведения всех исследованных гликолипидов, возможно, необходимо для обеспечения более вязкой среды для ФСП, сконцентрированных в гранальных тилакоидных мембранах, и более подвижной в стромальных мембранах, где преобладает ФС1 [32-33].
Полученные результаты показали, что при разных скоростях тепловой акклимации наблюдается начальный этап подгонки профиля термограмм гликолипидов к таковому летних образцов, сопровождающийся усилением фазового разделения гликолипидов. Однако выявленные изменения скорее можно расценивать как тенденцию: выбранного времени тепловой аккли- мации оказалось недостаточно для явных сдвигов в профиле термограмм гликолипидов, приближающих их к структуре термограмм летних образцов. Неявный и даже неоднозначный характер акклимационных изменений термотропного поведения основных компонентов липидного матрикса Б.^аротса, возможно, связан с тем, что данный вид является холодолюбивым [4]. Эти водоросли обитают на глубине и не подвергаются в естественных условиях частым перепадам температуры в широком диапазоне [34]. Поэтому Б. ]аротса, вероятно, лишена эффективных приспособительных механизмов регуляции физического состояния липидного матрикса мембран в условиях резкого повышения температуры окружающей среды. В результате наблюдаемые изменения тепловых переходов и связанного с ними ЖК состава гликолипидов Б. ]аротса носили стрессовый характер.
Заключение
Тепловая акклимация Б. ]аротса от 4 до 20°С показала, что параметры ненасыщенности (ИН и соотношение ненасыщенные/насыщенные ЖК) ЖК состава основного гликолипида водоросли МГДГ увеличивались по сравнению с их значениями в зимний период в противоположность акклиматизационному тренду при смене сезона от зимы к лету. Повышение этих параметров усиливалось при снижении скорости тепловой акклимации с 16 до 2°С/сут. Соотношение и-З/и-6 ПНЖК, которое уменьшается при тепловой акклиматизации в полярных липидах морских макрофитов, мало изменялось в МГДГ и СХДГ Б. ]аротса ни при быстрой, ни при медленной акклимации. Только в ДГДГ соотношение и-З/и-6 ПНЖК уменьшалось в соответствии с сезонным трендом, особенно при быстрой акклимации. В отличие от МГДГ, параметры ненасыщенности ЖК состава ДГДГ и СХДГ снижались при быстрой акклимации. При медленной акклимации изменения ненасыщенности ослаблялись или носили противоположный характер в СХДГ и ДГДГ сооответственно. Результатом тепловой акклимации явилось усиление фазового разделения гликолипидов, которое можно рассматривать как начальный этап подгонки профиля термограмм гликолипидов к таковому летних образцов. Вероятно, выбранные скорости тепловой акклимации слишком высокие для проявления более четких изменений термотропного поведения основных липидов тилакоидных мембран, соответствующих сезонным трендам. Причиной неоднозначного, стрессового характера изменений ЖК состава и калориметрических переходов гликолипидов Б. ]аротса при тепловой акклимации, вероятно, являются холодолюбивость и отсутствие резких колебаний температуры в естественных условиях обитания этого вида морских макроводорослей.
Литература
1. Loureiro R., Gachon C.M., Rebours C. Seaweed cultivation: potential and challenges of crop domestication at an unprecedented pace // New Phytologist. 2015. Vol. 206. PP. 489-92. doi: 10.1111/nph.13278
2. King N.G., Wilcockson D.C., Webster R., Smale D.A., Hoelters L.S., Moore PJ. Cumulative
stress restricts niche filling potential of habitat-forming kelps in a future climate // Functional Ecology. 2018. Vol. 32. PP. 288-299. doi: 10.1111/1365-2435.12977
3. Cheng L., Abraham J., Hausfather Z., Trenberth K.E. How fast are the oceans warming? //
Science. 2019. Vol. 363. PP. 128-129. doi: 10.1126/science.aav7619
4. Smale D.A. Impacts of ocean warming on kelp forest ecosystems // New Phytologist. 2019.
doi: 10.1111/nph.16107
5. Крупнова Т.Н. Прогнозирование запасов ламинарии с заблаговременностью в два года
// Известия ТИНРО. 2012. Т 170. С. 30-44.
6. Gao X., Endo H., Agatsuma Yu. Effect of increased seawater temperature on biomass, growth,
and maturation of Saccharina japonica near its southern limit in northern Japan // Journal ofApplied Phycology. 2015. Vol. 27. PP. 1263-1270. doi: 10.1007/s10811-014-0417-0
7. Perkins S.E., Alexander L.V, Nairn J.R. Increasing frequency, intensity and duration of
observed global heatwaves and warm spells // Geophysical Research Letters. 2012. Vol. 39: L20714. doi: 10.1029/2012GL053361
8. Sandblom E., Grдns A., Axelsson M., Seth H. Temperature acclimation rate of aerobic scope
and feeding metabolism in fishes: implications in a thermally extreme future // Proceedings of Royal Society B. 2014. Vol. 281: 20141490. doi: 10.1098/rspb.2014.1490
9. Charrier B., Abreu M.H., Araujo R., Bruhn A., Coates J.C., De Clerck O., Katsaros C.,
Robaina R.R., Wichard T. Furthering knowledge of seaweed growth and development to facilitate sustainable aquaculture // New Phytologist. 2017. Vol. 216. PP. 967-975. doi: 10.1111/nph.14728
10. Ernst R., Ejsing C.S., Antonny B. Homeoviscous adaptation and the regulation of membrane lipids // Journal of Molecular Biology. 2016. Vol. 428. PP. 4776-4791. doi: 10.1016/j.jmb.2016.08.013
11. Zhang Z., Qu C., Yao R., Nie Y, Xu C., Miao J., Zhong B. The parallel molecular adaptations to the antarctic cold environment in two psychrophilic green algae // Genome Biology and Evolution. 2019. Vol. 11, №7. PP. 1897-1908. doi: 10.1093/gbe/evz104
12. Kobayashi K., Endo K., Wada H. Roles of lipids in photosynthesis // Lipids in Plant and Algae Development, Subcell. Biochem. / Nakamura Y., Li-Beisson, Y Eds. Switzerland: Springer International Publishing, 2016. Vol. 86. PP. 21-50.
13. Hцlzl G., Dцrmann P. Chloroplast Lipids and Their Biosynthesis // Annual Review of Plant Biology. 2019. Vol. 70, № 1. doi:10.1146/annurev-arplant-050718-100202
14. Sanina N., Goncharova S., Kostetsky E. Seasonal changes of fatty acid composition and thermotropic behavior of polar lipids from marine macrophytes // Phytochemistry. 2008. Vol. 69, № 7. PP. 1517-1527. doi: 10.1016/j.phytochem.2008.01.014
15. Bligh E.G., Dyer W.I. A rapid method of total lipid extraction and purification // Canadian Journal of Biochemistry and Physiology. 1959. Vol. 37. PP. 911-918. doi: 10.1139/o59-099.
16. Vaskovsky V.E., Khotimchenko S.V HPTLC of polar lipids of algae and other plants // Journal of High Resolution Chromatography. 1982. Vol. 5. PP. 635-636. doi: 10.1002/ jhrc.1240051113.
17. Christie W.W. Equivalent chain length of methyl ester derivatives of fatty acids on gas chromatography A reappraisal // Journal of Chromatography. 1988. Vol. 447. PP. 305-314. doi: 10.1016/0021-9673(88)90040-4
18. Carrol K.K. Quantitative estimation of peak areas in gas-liquid chromatography // Nature. 1961. Vol. 191. PP. 377-378. doi: 10.1038/192965b0
19. Kostetsky E., Chopenko N., Barkina M., Velansky P., Sanina N. Fatty acid composition and thermotropic behavior of glycolipids and other membrane lipids of Ulva lactuca (Chlorophyta) inhabiting different climatic zones // Marine Drugs. 2018. Vol. 16. PP. 1-14. doi: 10.3390/md16120494
20. Garab G., Ughy B., Goss R. Role of MGDG and non-bilayer lipid phases in the structure and dynamics of chloroplast thylakoid membranes / Nakamura Yu., Li-Beisson Y. (Eds.).
Lipids in Plant and Algae Development. Switzerland: Springer International Publishing, 2016. PP. 127-157. doi: 10.1007/978-3-319-25979-6_6
21. Brown M.F. Curvature forces in membrane lipid-protein interactions // Biochemistry. 2012. Vol. 51. PP. 9782-9795. doi: 10.1021/bi301332v
22. Lauritzen L., Hansen H.S., Jorgesen M.H., Michaelsen K.F. The essentiality of long chains n-3 fatty acids in relation to development and function of the brain and retina // Progress of Lipid Research. 2001. Vol. 40. PP. 1-94. doi: 10.1016/S0163-7827(00)00017-5
23. Calder P.C. n-3 Polyunsaturated fatty acids, inflammation, and inflammatory diseases // American Journal of Clinical Nutrition. 2006. V 83 (suppl.). PP. 1505-1519. doi: 10.1093/ ajcn/83.6.1505S
24. Wallis J.G., Browse J. Lipid biochemists salute the genome // The Plant Journal. 2010. Vol. 61. PP. 1092-1106. doi: 10.1111/j.1365-313X.2010.04125.x
25. Костецкий Э.Я., Санина Н.М., Науменко Н.В. Влияние состава жирных кислот на структуру термограммы фазового перехода фосфатидилхолина их голотурии Cucumaria fraudatrix // Журнал эволюционной биохимии и физиологии. 1992. Т. 28, № 4. С. 426-433.
26. Kostetsky E.Y, Goncharova S.N., Sanina N.M., Shnyrov V.L. Season influence on lipid composition of marine macrophytes // Botanica Marina. 2004. Vol. 47. PP. 134-139. doi: 10.1515/BOT.2004.013
27. Umena Y, Kawakami K., Shen J.R., Kamiya N. Crystal structure of oxygen-evolving photosystem II at a resolution of 1.9A // Nature. 2011. Vol. 473. PP. 55-61. doi: 10.1038/ nature09913
28. Becker S., Graeve M., Bischof K. Photosynthesis and lipid composition of the Antarctic endemic rhodophyte Palmaria decipiens: effects of changing light and temperature levels // Polar Biology. 2010. Vol. 33. PP. 945-955. doi: 10.1007/s00300-010-0772-5
29. Yu B., Benning C. Anionic lipids are required for chloroplast structure and function of Arabidopsis // The Plant Journal. 2003. Vol. 36. PP. 762-770. doi: 10.1046/j.1365- 313X.2003.01918.x
30. Sakurai I., Hagio M., Gombos Z., Tyystjarvi T., Paakkarinen V, Aro E.M., Wada H. Requirement of phosphatidylglycerol for maintenance of photosynthetic machinery // Plant Physiology. 2003. Vol. 133. PP. 1376-1384. doi: 10.1104/pp.103.026955
31. Pineau B., Girard-Bascou J., Eberhard S., Choquet Y, Trйmoliиres A., Gиrard-Hirne C., Bennardo-Connan A., Decottignies P., Gillet S., Wollman F.A. A single mutation that causes phosphatidylglycerol deficiency impairs synthesis of photosystem II cores in Chlamydomonas reinhardtii // European Journal of Biochemistry. 2004. Vol. 271. PP. 329338. doi: 10.1046/j.1432-1033.2003.03931.x
32. Austin J.R., Staehelin A.L. Three-dimensional architecture of grana and stroma thylakoids of higher plants as determined by electron tomography // Plant Physiology. 2011. Vol. 155. PP. 1601-1611. doi: 10.1104/pp.110.170647
33. Kirchhoff H., Sharpe R.M., Herbstova M., Yarbrough R., Edwards G.E. Differential mobility of pigmentprotein complexes in granal and agranal thylakoid membranes of C3 and C4 plants // Plant Physiology. 2013. Vol. 161. PP. 497-507. doi: 10.1104/pp.112.207548
34. Белоус О.С., Титлянова Т.В., Титлянов Э.А. Морские растения бухты Троица и смежных акваторий (залив Петра Великого, Японское море). Владивосток: Дальнаука, 2013. 263 с.
References
1. Loureiro R, Gachon CM, Rebours C. Seaweed cultivation: Potential and challenges of crop domestication at an unprecedented pace. New Phytol. 2015;206:489-92. doi: 10.1111/ nph.13278
2. King NG, Wilcockson DC, Webster R, Smale DA, Hoelters LS, Moore PJ. Cumulative stress restricts niche filling potential of habitat-forming kelps in a future climate. Funct Ecol. 2018;32:288-299. doi: 10.1111/1365-2435.12977
3. Cheng L, Abraham J, Hausfather Z, Trenberth KE. How fast are the oceans warming? Science. 2019;363:128-129. doi: 10.1126/science.aav7619
4. Smale DA. Impacts of ocean warming on kelp forest ecosystems. New Phytol. 2019. doi: 10.1111/nph.16107
5. Krupnova TN. Prognozirovanie zapasov laminarii s zablagovremennost'yu v dva goda
[Forecasting of the laminaria Saccharina japonica stock with the lead time of two years]. Izvestiya TINRO = Transactions of the Pacific Research Institute of Fisheries and Oceanography. 2012;170:30-44. In Russian
6. Gao X, Endo H, Agatsuma Yu. Effect of increased seawater temperature on biomass, growth, and maturation of Saccharina japonica near its southern limit in northern Japan. J Appl Phycol. 2015;27:1263-1270. doi: 10.1007/s10811-014-0417-0
7. Perkins SE, Alexander LV, Nairn JR. Increasing frequency, intensity and duration of
observed global heatwaves and warm spells. Geophys Res Lett. 2012;39:L20714. doi: 10.1029/2012GL053361
8. Sandblom E, Grдns A, Axelsson M, Seth H. Temperature acclimation rate of aerobic scope and feeding metabolism in fishes: implications in a thermally extreme future. Proc Biol Sci. 2014;281:20141490. doi: 10.1098/rspb.2014.1490
9. Charrier B, Abreu MH, Araujo R, Bruhn A, Coates JC, De Clerck O, Katsaros C, Robaina
RR, Wichard T. Furthering knowledge of seaweed growth and development to facilitate sustainable aquaculture. New Phytol. 2017;216:967-975. doi: 10.1111/nph.1472810
10. Ernst R, Ejsing CS, Antonny B. Homeoviscous adaptation and the regulation of membrane lipids. J Mol Biol. 2016;428:4776-4791. doi: 10.1016/jjmb.2016.08.013
11. Zhang Z, Qu C, Yao R, Nie Y, Xu C, Miao J, Zhong B. The parallel molecular adaptations to the antarctic cold environment in two psychrophilic green algae. Genome Biol Evolut. 2019;11:1897-1908. doi: 10.1093/gbe/evz104
12. Kobayashi K, Endo K, Wada H. Roles of lipids in photosynthesis. Lipids in Plant and Algae Development. Nakamura Y and Li-Beisson Y, editors. Cham: Springer International Publishing; 2016. pp. 21-50.
13. Hцlzl G, Dцrmann P. Chloroplast Lipids and Their Biosynthesis. Annu Rev Plant Biol. 2019;70(1). doi: 10.1146/annurev-arplant-050718-100202
14. Sanina N, Goncharova S, Kostetsky E. Seasonal changes of fatty acid composition and thermotropic behavior of polar lipids from marine macrophytes. Phytochemistry. 2008;69(7):1517-1527. doi: 10.1016/j.phytochem.2008.01.014
15. Bligh EG, Dyer WI. A rapid method of total lipid extraction and purification. Can J Biochem Physiol. 1959;37:911-918. doi: 10.1139/o59-099
16. Vaskovsky VE, Khotimchenko SV HPTLC of polar lipids of algae and other plants. J High Resolut Chromatogr. 1982;5:635-636. doi: 10.1002/jhrc.1240051113
17. Christie WW. Equivalent chain length of methyl ester derivatives of fatty acids on gas chromatography A reappraisal. J Chromatogr. 1988;447:305-314. doi: 10.1016/0021- 9673(88)90040-4
18. Carrol KK. Quantitative estimation of peak areas in gas-liquid chromatography. Nature. 1961;191:377-378. doi: 10.1038/192965b0
19. Kostetsky E, Chopenko N, Barkina M, Velansky P, Sanina N. Fatty acid composition and thermotropic behavior of glycolipids and other membrane lipids of Ulva lactuca (Chlorophyta) inhabiting different climatic zones. Mar Drugs. 2018;16:494:1-14. doi: 10.3390/md16120494
20. Garab G, Ughy B, Goss R. Role of MGDG and non-bilayer lipid phases in the structure and dynamics of chloroplast thylakoid membranes. In: Lipids in plant and algae development. Nakamura Yu and Li-Beisson Yo, editors. Switzerland: Springer International Publishing; 2016. pp. 127-157. doi: 10.1007/978-3-319-25979-6_6
21. Brown MF. Curvature forces in membrane lipid-protein interactions. Biochemistry. 2012;51:9782-9795. doi: 10.1021/bi301332v
22. Lauritzen L, Hansen HS, Jorgesen MH, Michaelsen KF. The essentiality of long chains n-3 fatty acids in relation to development and function of the brain and retina. Prog Lipid Res. 2001;40:1-94. doi: 10.1016/S0163-7827(00)00017-5
23. Calder PC. n-3 Polyunsaturated fatty acids, inflammation, and inflammatory diseases. Am J Clin Nutr 2006;83(Suppl.):1505-1519. doi: 10.1093/ajcn/83.6.1505S
24. Wallis JG, Browse J. Lipid biochemists salute the genome. Plant J. 2010;61:1092-1106. doi: 10.1111/j.1365-313X.2010.04125.x
25. Kostetsky EYa, Sanina NM, Naumenko NV. Vliyanie sostava zhirnykh kislot na strukturu termogrammy fazovogo perekhoda fosfatidilkholina ikh goloturii Cucumaria fraudatrix [Effect of the fatty acid composition on the thermogram structure of phase phosphatidylcholine transition in holothurian Cucumaria fraudatrix]. Zhurnal evolyutsionnoy biokhimii i fiziologii. 1992;28(4):426-433.
26. Kostetsky EY, Goncharova SN, Sanina NM, Shnyrov VL. Season influence on lipid composition of marine macrophytes. Bot Mar. 2004;47:134-139. doi: 10.1515/ BOT.2004.013
27. Umena Y, Kawakami K, Shen JR, Kamiya N. Crystal structure of oxygen-evolving photosystem II at a resolution of 1.9A. Nature. 2011;473:55-61. doi: 10.1038/nature09913
28. Becker S, Graeve M, Bischof K. Photosynthesis and lipid composition of the Antarctic endemic rhodophyte Palmaria decipiens: effects of changing light and temperature levels. Polar Biol. 2010;33:945-955. doi: 10.1007/s00300-010-0772-5
29. Yu B, Benning C. Anionic lipids are required for chloroplast structure and function of Arabidopsis. Plant J. 2003;36:762-770. doi: 10.1046/j.1365-313X.2003.01918.x
30. Sakurai I, Hagio M, Gombos Z, Tyystjarvi T, Paakkarinen V, Aro EM, Wada H. Requirement of phosphatidylglycerol for maintenance of photosynthetic machinery. Plant Physiol. 2003;133:1376-1384. doi: 10.1104/pp.103.026955
31. Pineau B, Girard-Bascou J, Eberhard S, Choquet Y, Trйmoliиres A, Gиrard-Hirne C, Bennardo-Connan A, Decottignies P, Gillet S, Wollman FA. A single mutation that causes phosphatidylglycerol deficiency impairs synthesis of photosystem II cores in Chlamydomonas reinhardtii. Eur J Biochem. 2004;271:329-338. doi: 10.1046/j.1432-1033.2003.03931.x
32. Austin JR, Staehelin AL. Three-dimensional architecture of grana and stroma thylakoids of higher plants as determined by electron tomography. Plant Physiol. 2011;155:1601-1611. doi: 10.1104/pp.110.170647
33. Kirchhoff H, Sharpe RM, Herbstova M, Yarbrough R, Edwards GE. Differential mobility of pigmentprotein complexes in granal and agranal thylakoid membranes of C3 and C4 plants. Plant Physiol. 2013;161:497-507. doi: 10.1104/pp.ll2.207548
34. Belous OS, Titlyanova TV, Titlyanov EA. Morskie rasteniya bukhty Troitsa i smezhnykh akvatoriy (Zaliv Petra Velikogo, Yaponskoe more) [Marine plants of Troitsa Bay and adjacent waters (Peter the Great Bay, Sea of Japan)]. Vladivostok: Dal'nauka Publ.; 2013. 263 p. In Russian
Размещено на Allbest.ru
...Подобные документы
Биологическая роль липидов. Структура Триацилглицеролов (нейтральных жиров) – сложных эфиров глицерола и жирных кислот. Структурные компоненты мембран клеток нервной ткани и мозга. Переваривание и всасывание липидов. Кетогенез (обмен жирных кислот).
презентация [411,8 K], добавлен 06.12.2016Особенности применения метода ядерного магнитного резонанса (ЯМР) для исследования нуклеиновых кислот, полисахаридов и липидов. Исследование методом ЯМР комплексов нуклеиновых кислот с протеинами и биологических мембран. Состав и структура полисахаридов.
курсовая работа [3,5 M], добавлен 26.08.2009Клеточные стенки и клеточные мембраны. Состав мембранных липидов. Структура и функции органелл. Природа жирных кислот в мембранных липидах. Особенности строения клеточной стенки у разных организмов. Соотношение различных классов фосфолипидов в мембране.
контрольная работа [642,7 K], добавлен 26.07.2009Виды биологических мембран и их функции. Мембранные белки. Виды и функции мембранных белков. Структура биологических мембран. Искусственные мембраны. Липосомы. Методы исследования структуры мембран. Физическое состояние и фазовые переходы в мембранах.
презентация [9,0 M], добавлен 21.05.2012Белки и липиды как основные компоненты мембран. Фосфолипидный состав субклеточных мембран печени крысы. Длинные углеводородные цепи. Мембраны грамположительных бактерий. Пути биосинтеза мембранных липидов и механизмы их доставки к местам назначения.
реферат [1,3 M], добавлен 30.07.2009Изучение значения обмена липидов в организме человека. Переваривание и всасывание липидов. Анализ роли желчных кислот. Гидролиз триглицеридов. Основные продукты расщепления жиров. Активация жирных кислот и их проникновение из цитоплазмы в митохондрии.
презентация [11,9 M], добавлен 13.10.2013Липидный состав нервной ткани серого и белого вещества мозга человека. Деятельность мембран и способность к фазовым переходам в физиологических условиях. Ацилобменные реакции и их механизм. Участие липидов в рецепции, миелин и локализация ганглиозидов.азо
курсовая работа [2,5 M], добавлен 27.08.2009Исследование структурных особенностей простых липидов. Характеристика строительной, теплоизолирующей и энергетической функций липидов. Описания восков, соединений, образованных высшими карбоновыми кислотами и высокомолекулярными одноатомными спиртами.
презентация [905,6 K], добавлен 31.05.2015Строение, состав и физиологическая роль отдельных органелл клетки. Классификация белков по степени сложности. Состояние воды в живых тканях, ее функции. Полисахариды морских водорослей: состав, строение. Биологическая роль и классификация липидов.
контрольная работа [1014,7 K], добавлен 04.08.2015Общая характеристика зеленых водорослей – группы низших растений. Место обитания морских зеленых водорослей. Их размножение, строение и способы питания, химический состав. Описание наиболее распространенных видов морских водорослей Японского моря.
реферат [641,9 K], добавлен 16.02.2012Общая характеристика клетки: форма, химический состав, отличия эукариот от прокариот. Особенности строения клеток различных организмов. Внутриклеточное движение цитоплазмы клетки, метаболизм. Функции липидов, углеводов, белков и нуклеиновых кислот.
лекция [44,4 K], добавлен 27.07.2013Общая характеристика и основные этапы обмена липидов, особенности процесса переваривания. Порядок всасывания продуктов переваривания липидов. Исследование различных органов и систем в данном процессе: стенок и жировой ткани кишечника, легких и печени.
презентация [4,5 M], добавлен 31.01.2014Разнообразие и роль мембран в функционировании прокариотических и эукариотических клеток. Морфология мембран, их выделение. Дифракция рентгеновских лучей, электронная микроскопия. Разрушение клеток, разделение мембран. Критерии чистоты мембранных фракций.
курсовая работа [1,2 M], добавлен 30.07.2009Классификация липидов по строению, физиологическому значению и способности к гидролизу. Основные карбоновые кислоты, входящие в состав природных масел и жиров. Схема вероятной структуры фосфолипидов. Функции основных классов липидов в организме человека.
реферат [264,9 K], добавлен 14.01.2010Процесс образования мембран. Особенности экзоцитозного пути. Характерные особенности биосинтеза мембранных белков. Сигналы для сортировки белков в эукариотических клетках. Изменения липидного состава мембран в ответ на изменения условий окружающей среды.
реферат [3,6 M], добавлен 03.08.2009Процесс транспорта компонентов пищи из полости пищеварительного тракта во внутреннюю среду, кровь и лимфу организма. Всасывание и секреция электролитов и воды. Прямое всасывание жирных кислот в кровоток. Жирорастворимые и водорастворимые витамины.
реферат [22,2 K], добавлен 03.12.2013Структура и состав молекулы фосфолипида. Разнообразие липидов элементарных мембран, особенности их химического состава. Образование фосфолипидного бислоя. Характерные черты, свойства и строение плазмалеммы. Изучение ее избирательной проницаемости.
презентация [335,8 K], добавлен 10.02.2015Функции биологических мембран и их компонентов. Спектроскопические методы измерения скорости вращения липидов и белков внутри мембраны и скорости латеральной диффузии этих компонентов в плоскости мембраны. Использование спиновых или флуоресцентных зондов.
реферат [1,6 M], добавлен 01.08.2009Структура эукариотической клетки и классификация белков. Типы, функции и свойства липидов мембран, их многомолекулярные конфигурации. Структура органелл и диктиосомы аппарата Гольджи. Сортировка белков в эндоплазматической сети и аппарате Гольджи.
презентация [1,9 M], добавлен 27.11.2012Строение и основные компоненты клеточной оболочки водорослей. Случаи беспорядочного расположения фибрилл среди зеленых водорослей, организация цитоплазмы у различных у различных представителей вида, назначение жгутиков, митохондрий и хлоропластов.
курсовая работа [154,8 K], добавлен 29.07.2009
