Дезинфекция в условиях клиники

Размещено на http://www.allbest.ru/

1. Методы стерилизации

- термические (паровой, воздушный, глассперленовый);

- химические (газовый, растворы химических соединений);

- радиационный;

- плазменный и озоновый (группа хим. средств)

В условиях клиники наиболее распространенными методами стерилизации инструментов и медицинских зделий являются:

- паровой (автоклавирование),

- воздушный (сухожаровой шкаф),

- химический ( газовый, р-рами хим. соединений).

Стерилизацию следует осуществлять в строгом соответствии с предусмотренным режимом, удостовериться, что указанный режим реализован (прямой и непрямой контроль стерильности), а в последующем - руководствоваться сроками сохранения стерильности материала, изделий.

Стерилизация, паровой метод (автоклавирование). Надлежащая стерилизация в автоклаве возможна при строгом соблюдении правил подготовки биксов и их загрузки соответствующими изделиями, для чего следует:

- обработать внутреннюю поверхность бикса 70% спиртом и на его дно положить простыню с таким расчетом, чтобы затем ее концами накрыть содержимое бикса;

- заложить в бикс наборы резиновых изделий, перевязочного материала, белья;

- инструменты завернуть в полотенце или пеленку и заложить в бикс;

- после загрузки бикса разместить в нем 5 индикаторов: 4 - по внутренней стороне стенок бикса и 1 - в центре бикса (непрямой метод контроля стерильности);

- на крышке бикса зафиксировать бирку, на которой отметить: вид материала и лечебное отделение, для которого производится стерилизация инструментов и материалов;

- крышку бикса герметично закрыть. У бикса старого образца сдвинуть металлическую ленту-пояс и тем самым открыть окна на его стенках, которые после завершения стерилизации необходимо закрывать;

- после стерилизации на бирке бикса поставить дату и подпись медицинской сестры, проводящей автоклавирование.

Возможны различные варианты комплектации биксов: только один вид материала, наборы для типичного или конкретного оперативного вмешательства.

Стерилизация, воздушный метод. Надежная стерилизация инструментов возможна при правильном пользовании крафт-пакетами и рациональной укладке изделий в сухожаровом шкафу, для чего следует:

- в крафт-пакет заложить инструменты, прошедшие дезинфекцию и ПСО;

- крафт-пакет заклеить по его верхней кромке, либо фиксировать скрепками;

- на крафт-пакете указать содержимое, дату стерилизации и поставить подпись медицинской сестры, проводящей стерилизацию;

- все изделия можно разложить в один ряд на металлической сетке (многоразовые стеклянные шприцы - в разобранном виде);

- на сетку стерилизатора положить 5 индикаторов: 4 - по углам сетки и 1 - в центре (непрямой метод контроля).

2. Химический метод стерилизации

Осуществляется в стерильных условиях. Помещение для стерилизации должно быть оснащено вытяжным шкафом, бактерицидным облучателем. Медсестра работает в стерильной спецодежде, перчатках, респираторе.

В стерильную емкость со стерилизантом погружаются изделия медицинского назначения, прошедшие дезобработку и ПСО, плотно закрывают крышку. В журнале отмечается время начала стерилизации. По окончании стерилизации мед.изделия извлекаются из раствора стерильными пинцетами или корцангами, перекладываются в другую стерильную емкость со стерильной водой, промываются, просушиваются и выкладываются в бикс со стерильной пеленкой. Время окончания стерилизации также заносится в журнал стерилизации.

Срок хранения стерильных инструментов тот же. Контроль стерильности инструментов - прямой.

Стерильность материалов, изделий, сроки сохранения:

- закрытые биксы нового образца - 20 суток;

- при открытом биксе любого образца стерильность материалов, изделий сохраняется до 24 часов;

- крафт-пакеты, заклеенные - 20 суток;

- крафт пакеты на скрепках - 3 суток.

Контроль за стерильностью материала проводится двумя способами.

- прямой способ - бактериологический; посев с перевязочного материала и белья или использование бактериологических тестов. Посев производят следующим образом: в операционной вскрывают бикс, маленькими кусочками марли, увлажненной изотоническим раствором хлорида натрия, несколько раз проводят по белью, после чего кусочки марли опускают в пробирку, которую направляют в бактериологическую лабораторию.

Для бактериологических тестов используют пробирки с известной спороносной непатогенной культурой микроорганизмов, которые погибают при определенной температуре.

Пробирки вкладывают вглубь бикса, по окончании стерилизации извлекают и направляют в лабораторию. Отсутствие роста микробов свидетельствует о стерильности материала.

Прямой метод используется для периодического контроля один раз в 7-10 дней.

- непрямой способ контроля стерильности материала применяют постоянно при каждой стерилизации: для этого используют вещества с определенной точкой плавления: бензойную кислоту (120°С), резорцин (119°С), антипирин (110°С). Пробирки с тугоплавким веществом помещают в центре у дна бикса и вверху бикса.

В последнее время используют бумажный индикаторный контроль, цвет которого меняется от белого до фиолетового при температуре более 130-132°С.В сухожаровых стерилизаторах используют порошкообразные вещества с более высокой точкой плавления: аскорбиновую кислоту (187-192°С), янтарную кислоту (180-184°С), пилокарпина гидрохлорид (200°С), тиомочевину (180°С).

Контроль работы паровых и воздушных стерилизаторов осуществляют физическим, химическим и бактериологическим методами.Физический метод контроля работы стерилизаторов осуществляется с помощью температуры и давления.

Химический метод контроля работы стерилизаторов осуществляется с помощью химических тестов и термохимических индикаторов, изменяющих свое агрегатное состояние и цвет при достижении определенного для него плавления:

- для паровых стерилизаторов используется мочевина (карбамид) с розовым красителем температура плавления 132 градуса Цельсия

- бензойная кислота с фуксином -- температура плавления 120°С; термоиндикаторная бумага, изменяющая свой цвет под воздействием определенной температуры (l20°C- 132 С);

- для воздушных стерилизаторов: тиомочевина (тиокарбамид) без красителя, температура плавления 180°С, а также янтарная кислота, температура плавления которой 180°С

- термоиндикаторная бумага изменяет свой цвет при температуре 180°С.

Бактериологический (биологический) метод контроля стерильности проводят один раз в месяц. Контроль может свидетельствовать об инфицировании стерилизуемых объектов и указать на вид микробной флоры. Результаты посевов получают через 48-72 часа

Фенолфталеин в щелочной среде

Азопирановая проба. Проводится на наличие гемоглобина, окислителей, хлорсодержащих средств, стирального порошка, ржавчины. Состав азопирама:100 мл амидопирина;1 мл солянокислого анилина. Смешать в сухой посуде и залить 96%. спиртом до 1 литра. Смесь тщательно перемешать палочкой до полного растворения всех ингредиентов. Хранить в плотно закрытом флаконе при температуре +4 С (в холодильнике) в течение 2 месяцев, при температуре от + 18 С до 4 -- 20 ° С в течение 1 месяца.

ВНИМАНИЕ! Умеренное пожелтение реактива в процессе хранения без выпадения осадков не снижает его рабочих качеств. Непосредственно перед проверкой качества очистки изделий, готовим рабочий раствор. Смешивают в равных количествах азопирам и 3% раствор перекиси водорода (азопирамовая проба проводится так же, как амидопириновая). Реакция в течение 1 минуты. При положительной реакции окрашивание: сине-фиолетовое -- наличие крови; бурое -- наличие хлорсодержащих окислителей, ржавчина; розовое -- наличие моющего средства. Температура исследуемого изделия от + 18 ° С до от +25 0 С. Рабочий раствор азопирама с перекисью водорода должен быть использован в течение 2 часов

3. Амидопириновая проба

Проводится на наличие КРОВИ. Состав смеси: 5% спиртовой раствор амидопирина, 30% раствор уксусной кислоты, 3% раствор перекиси водорода. Смешать в отдельной емкости в равных количествах все перечисленные ингредиенты. Нанести смесь на инструмент в места, соприкасающиеся с раневой поверхностью, в места соединения подвижных частей инструмента. Индикация загрязнений, присутствия следов крови происходит немедленно или не позднее, чем через 1 минуту после контакта реактива с загрязненным участком. В данном месте появляется фиолетовое (сине-зеленое) окрашивание. Окрашивание, наступившее в течение 2 минут не учитывается. Рабочий раствор готовят непосредственно перед применением.

Внимание! При получении положительной реакции амидопириновой или азопирамовой пробы всю партию изделий медицинского назначения стерилизуют, а инструмент, на котором проводилась проба промывают под проточной водой и помещают в емкость с моющим раствором для повторной обработки. стерилизация предстерилизационная обработка проба

4. Фенолфталеиновая проба

Качество отмывания с поверхности инструмента активных веществ моющего средства проверяют реакцией спиртового раствора фенолфталеина. Нанести 2-3 капли раствора на инструмент (на места соприкосновения инструмента с раневой поверхностью и на места соединения подвижных частей инструмента). При появлении розового окрашивания, свидетельствующего о наличие неотмытых веществ, всю партию изделий промывают повторно проточной водой, затем дистиллированной.

Инструмент, на котором проводилась проба, промывают проточной водой от реактива и помещают в емкость с моющим раствором для повторной предстерилизационной очистки. При проверке качества очистки игл, реактив набирают в чистый, не имеющий следов коррозии шприц, и, последовательно меняя иглы, пропускают реактив через них, выдавливая 3-4 капли на марлевую салфетку. Затем, для более тщательного контроля, на чистую иглу накручивают маленький кусочек ваты, смоченный реактивом, и протирают наружную часть иглы. Качество очистки катетеров или других полых изделий оценивают путем введения реактива внутрь изделий с помощью чистого шприца или пипетки. Реактив оставляют внутри изделия в течение 0,5-1 минуты. После этого его сливают на марлевую салфетку. В лечебно-профилактических учреждениях ежедневному контролю подвергают 1-4% предметов медицинского назначения из каждой обработанной партии, но не менее 3-5 единиц. Результаты заносят в журнал.

Размещено на Allbest.ru