Застосування Грицика у медицині
Характеристика, хімічний склад, застосування грициків звичайних в медицині і народному господарстві. Аналіз ліпофільних речовин грициків звичайних. Отримання ліпофільного екстракту з рослинного матеріалу грициків звичайних, його якісний, кількісний склад.
| Рубрика | Медицина |
| Вид | дипломная работа |
| Язык | украинский |
| Дата добавления | 16.09.2017 |
| Размер файла | 2,2 M |
Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже
Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.
Властивості жирів визначаються якісним складом жирних кислот, їх кількісним співвідношенням, відсотковим вмістом вільних, не пов'язаних з гліцерином жирних кислот, співвідношенням різних гліцеридів.
Рослинні жири або масла багаті ненасиченими жирними кислотами, тому в переважній більшості випадків вони є рідкими при звичайній температурі. Наприклад, оливкова олія являє собою в основному тріолет.
В ньому всі три гідроксильні групи гліцерину пов'язані із залишками олеїнової кислоти. Тваринні жири при звичайній температурі - тверді, оскільки містять головним чином насичені жирні кислоти. Наприклад, яловиче сало складається в основному з гліцеридів пальмітинової і стеаринової кислот.
Серед рослинних жирів тверді при звичайній температурі кокосове масло (температура плавлення 20-28 ° С) і масло бобів какао (температура плавлення 30-34 ° С). До складу останнього входять в основному пальмітинова (35%) і стеаринова (40%) кислоти.
Масла деяких рослин містять значні кількості специфічних жирних кислот, характерних саме для даних рослин. Так, масла рослин з сімейства хрестоцвітних - ріпаку та гірчиці - містять від 42 до 50% ненасиченої ерукової кислоти:
СН3-(СН2)7-СН=СН-(СН2)11-СООН
Масло рицини містить рицинолевої кислоту - оксикислотами, що має гідроксильну групу у 12-го вуглецевого атома:
СН3-(СН2)5-СН(ОН)-СН2-СН=СН-(СН2)7-СООН
Масло плодів тунгового дерева - цінна сировина для лакофарбової промисловості, приблизно на 80% складається з олеостеаріновой кислоти, що має наступну будову:
СН3-(СН2)3-СН=СН-СН=СН-СН=СН-(СН2)7-СООН
Своєрідна конфігурація олеостеаріновой кислоти надає тунгового маслу специфічні властивості - здатність до полімеризації і затвердеванию при нагріванні вище 282 ° С.
Поліненасичені кислоти позначаються як есенціальні жирні кислоти. Вони не можуть синтезуватися в організмі людини і надходять у нього тільки з їжею. Лінолева і ліноленова кислоти становлять значну частку рослинних масел і грають велику роль у синтезі простагландинів - біологічних регуляторів обмінних процесів у клітині.
B природних ненасичених жирних кислотах все подвійні зв'язку перебувають в цисположеннях. У формі трансізомерів перебувають кислоти, одержувані при гідрогенізації рослинних жирів, але на відміну від цис-ізомерів вони не володіють властивостями есенціальних жирних кислот і позбавлені здатності впливати на ліпопротеїни плазми крові.
У насінні Грициків звичайних знайдено жирне масло - 30,7-38,1%, в її складі також жирні кислоти: лінолева - 17,18%, ліноленова - 48,52%, арахісова - 10,03%, пальмітинова - 5, 34%, ейкозадіеновая - 1,21%, стеаринова - 3,46%, ейкозеновая і пентадеціловая, а також тіоглікозід - сінігрін. Також виявлено присутність тираміну.
Склад жирних кислот в жирах визначають методом ГРХ. Для аналізу використовують не самі жирні кислоти, а їх похідні - метилові ефіри. Цим досягають високої ефективності їх поділу при більш низьких температурах і більше короткому часу аналізу.
Жирні кислоти
|
линолева кислота |
(CH2CH=CH)2(CH2)7COOH |
||
|
ліноленова кислота |
CH3(CH2CH=CH)3(CH2)7COOH |
||
|
синигрін |
C10H16O9S2NK• H2 O |
||
|
тірамін |
HO-C6H4-CH2-CH2-NH2 |
ГРХ метилових ефірів жирних кислот може бути проведена як на наповнених, так і на капілярних колонках за умови отримання хроматограмм, що дають можливість кількісного розрахунку вмісту окремих компонентів суміші. Аналіз проводять при температурному режимі для колонок в межах 150-300 ° С.
В якості газу-носія використовують азот, гелій або аргон. ГРХ може бути використана і для аналізу сумішей стеринів і вуглеводнів [20].
2.2 Флавоноїди
Флавоноїди - одна з найчисленніших груп природних сполук. Їх число становить близько 2000. В основному вони є похідними бензо--Пірона, у складі якого лежить фенілпропановий скелет, що складається з С6-С3-С6 вуглецевих одиниць:
Фенілпропановий скелет
Залежно від ступеня окислення та гідроксилювання скелета флавоноїди поділяються на групи: флавони, флавоноли, флаванони, ізофлавони, антоцианідіни, катехіни, аурони, халкони, ксантони [9,37].
У рослинах флавоноїди зустрічаються у вільному вигляді та у вигляді глікозидів.
В якості цукрів у флавоноїдних глікозидах зустрічаються: D - галактоза, D - ксилоза, D - манноза, L -арабіноза, L - Рамноза. З уронових кислот зазвичай зустрічаються D - глюкуроновая кислота. В даний час всі відомі флавоноїдної глікозиди поділяються на три групи:
1) О - глікозиди, в яких цукор пов'язаний з агліконом полуацетальной зв'язком через атом кисню. О - глікозиди залежно від кількості цукрів, положення та порядку приєднання діляться на монозіди, біозідом, діглікозіди.
2) С - глікозиди або глікофлавоноіди, які поділяються на С - глікозиди, С-О - діглікозіди, С - O -біозіди. У глікофлавоноідах вуглецеві заступники пов'язані з агліконом через атом у шостому чи восьмому положеннях.
3) Комплексні сполуки - представляють собою ацілірованная глікозиди. В залежності від положення ацильного заступника вони діляться на глікозиди денсіноідного типу (аглікони яких зазвичай пов'язані з ароматичними кислотами, відомі також і складні ефіри з аліфатичними кислотами) і глікозиди зі складноефірного зв'язком в цукрових заступниках.
Флавоноїди локалізуються головним чином в квітках, листках і плодах, рідше в коренях і стеблах; утримання їх у рослинах коливається від 0.5 до 30%.
У чистому вигляді флавоноїди являють собою кристалічні сполуки з певною температурою плавлення, жовті (флавони, флавоноли, халкони та ін.,), Безбарвні (ізофлавони, катехіни, флаванони), а також пофарбовані в червоний або синій колір (антоціани) залежно від pН середовища.
Аглікони флавоноїдів розчиняються в ефірі, ацетоні, спиртах, практично нерозчинні у воді. Глікозиди флавоноїдів, що містять більше трьох залишків цукрів, розчиняються у воді, але нерозчинні в ефірі і хлороформі. Флавоноїдної глікозиди мають оптичну активність.
2.3 Кумарини
Безбарвні кристали з запахом свіжого сіна; tпл = 70 ° C, tкип = 291 ° C. Кумарин розчинний у спирті і ефірі, у воді - погано, проте 4-гідрокси заміщення надає молекулі кумарину слабокислі властивості, тому можна розчинити в слабощелочной середовищі.
Кумарини реагують як ненасичені лактони або як заміщені бензоли, трохи менше реакционноспособниє, ніж сам бензол. В реакціях, що протікають в присутності лугу, зазвичай взаємодіє кумаринових кислота (цис).
Кумарин застосовується як запашне речовина у виробництві тютюнових виробів і в парфумерній промисловості. Похідні кумарину (кумарини) використовуються в лазерах на барвниках. У медицині застосовуються як антикоагулянтів непрямої дії. Також використовується в гальванічної промисловості в якості сильного блискоутворювачі.
Фізіологічна дія самого кумарину на людину є дуже слабким. Однак на різні рослини кумарин діє помітно. У похідних кумарину фізіологічна дія виражено більшою мірою. Наприклад, похідні кумарин-3-карбонових кислот є снодійними засобами. Дикумарол (3,3 '-метилен-біс-4-оксикумарини) перешкоджає згортанню крові і є причиною хворобливих кровотеч у великої рогатої худоби, що викликаються споживанням солодкого конюшини.
2.4 Дубильні речовини
Дубильні речовини в основному аморфні, мают більш-менш ясно вираженість кислотний характер и мают властівість (по перевазі фізіологічні дубильні речовини) дубіт шкіру (кожи), тобто відніматі в них значний мірою здатність до гніття ї затвердіння при вісіханні.
При опісі дубильні речовини та патенти докладно зупинити лишь на Деяк найважлівіші для практики й краще дослідженіх.
Танін, галлодубільная кислота або просто дубильні кислота (Gallдpfelgerbsдure, Gallusgerbsдure, acide gallotannique), перебуває в різніх сортах чорнильних горішків, патологічніх кнопперсах, Сумах, альгаробілле, міроболанах; має Сполука C14H10O9.
При кіп'ятінні з оцтова ангідрідом утворена пятіацетільний ефір C14H5(C2H3O)5O9. Ці реакції візначають будова таніну як дігалловой кислоти, что представляет ангідрід галловой
С6H2(OH) 3 СО--О--С 6H2 (ОН) 2 СОНО
На підтвердження такої будови таніну Г. Шиффом (1873) отримай з галловой кислоти при нагріванні ее Із хлорокисью фосфору, а такоже при віпарюванні ее водяного розчин з міш'яковою кислотою, дігалловая кислота по рівнянню:
2C6H2(OH)3COHO -- H2O = С 6H2 (OH) 3 СО--О--С 6H2 (OH) 2 СОНО
За своих властівостях, реакціям и похіднім тотожня з таніном.
Еллагогендубільная кислота коштує в около відношенні до танніну, будучи, як и він, похіднім галловой кислоти, и часто зустрічається разом з ним у рослін.
Еллаговая кислота - ділактон гексагідроксідіфеновой кислоти, ставитися до нізькомолекулярніх фенольним сполукам, Належить до фенолкарбонові кислоти. У зв'язаний віді є компонентом елаготанінів - дубильних речовин гідролізованого групи.
Метиловий ефір галової кислоти в розчіні аміаку самоокісляється до гексагідроксідіфеновой кислоти, что у результаті внутрімолекулярної переетерифікації переетеріфікаціїллаговую кислоту[].
У природі еллаговая кислота аналогічнім чином сінтезується з таніну корілагіна.
2.5 Сапоніни
Вільні сапогенін, що не розчіняються у воде ї добро розчінні в органічніх Розчинник.
Залежних від хімічної будови агликона всі сапоніні класіфікують на стероїдні ї тритерпенові. Стероїдні сапоніні сінтезуються з холестерину и містять 27 атомів вуглецю [12].
Хімічна структура сапонінів
Тритерпенові сапоніні сінтезуються прямо зі сквалена, при авторитети во время їхньої ціклізації не відбувається втрата атомів вуглецю, смороду містять по 30 атомів вуглецю [39.].
Стероїдні сапоніні в якості сапогенін містять звічайній похідні спіростана або фуростана. Оскількі смороду, як правило, є похіднімі спіртів, що містять в 3-му положенні гідроксіл, ті їх назівають спіро- и фуростанолового глікозидами [12].
Спіростаноловие сапогенін, в основному, містять 27 атомів вуглецю. Вуглеводна частина молекули стероїдних сапонінів прієднується до 3-гідроксілу ї может містіті 1-6 моносахаридів (D-глюкоза D-ксилоза, L-Рамноза, L-арабиноза, галактуронова и глюкуроновоюкислотою). Відомі сапоніні, що містять Залишки D-хіновози, D-апіози иd-фукози.
Моносахариди могут утворюваті як лінійні, так и розгалужені ланцюги. Зустрічаються такоже глікозиди з вуглеводнім компонентом при атомах З-1, З-2, З-5, З-6, З-11. Вуглеводніх ланцюгів может буті одна (Речовини назіваються монодесмозіди), две (бідесмозіди), Рідко три (трідесмозіди). Ацильні група (Залишки оцтової, бензойної, 2-гідрокси-2-метілглутаровой, сірчаної кислот) может перебуваті як у сапогенной, так й у вуглеводної Частина молекули. Деякі спіростаноли утворять важкорозчинні комплекси з холестерином.
|
Спіростан |
||
|
Фуростан |
||
|
Діосцин |
Один з важливих представників спіростанолових глікозидів - діосцін, що складається з сапогенін диосгенина і трьох глікозидів у розгалуженій ланцюга. Діосцін, зокрема, міститься в кореневищах видів Діоскора Dioscorea. Діосгенін відіграє важливу роль у фармацевтиці, як сировина для виробництва кортікоідних препаратів.
Сапоніни ряду фуростанола, як правило, містять вуглеводну ланцюг при С-3 і залишок D-глюкози при С-26. Відщеплення залишку цукру від С-26 під дією кислот або ферментів призводить до спіростаноловим сапонінам. Фуростаноли не осідають холестерин, мають підвищену в порівнянні зі спіростаноламі гидрофильностью і зниженою поверхневою активністю.
Тритерпенові сапоніни містять 30 атомів вуглецю і відрізняються великою різноманітністю хімічних структур (серед тритерпеноїдів виділяють не менше 30 груп). Залежно від кількості п'яти- і шестичленних кілець в структурі агликона їх можна розділити на 2 групи:
а) тетрациклічні - містять у структурі агликона 4 вуглецевих кільця;
б) пентацікліческіе - містять у структурі агликона 5 вуглецевих кілець.
|
Даммаран |
Циклоартан |
Ланостан |
Кукурбітан |
|
Тетрациклічні сапоніни відносяться до груп даммарана, ціклоартана, ланостана, кукурбітана та ін.
2.6 Нітроген вмістні речовини
Азотовмісні (нітрогенвмістні) сполуки - один з найважливіших типів органічних сполук. До їх складу входить азот. Вони містять в молекулі зв'язок вуглець-водень і азот-вуглець. Входить до складу фосфоліпідів (наприклад, лецитину, сфінгоміеліна).
З азотистих основ, найбільш поширений холін - сильне підставу, легко розчинна у воді і спирті, але нерозчинний в ефірі.
Холін - витаминоподобное речовина, Вітамін B4 (Холін), що володіє мембранопротекторною (захищає мембрани клітин від руйнування та пошкодження), антиатеросклеротическим (знижує рівень холестерину в крові), ноотропним, антідепрессантним, заспокійливу дію. Холін покращує метаболізм в нервовій тканині, запобігає утворенню жовчних каменів, нормалізує обмін жирів і допомагає знизити вагу [19].
Фосфатиди, що складаються із залишків гліцерину, жирних кислот, фосфорної кислоти і холіну, називають лецитинами або холінфосфогліцерідамі. Фосфатиди, звані кефалінами або етаноламінфосфогліцерідамі, відрізняються від лецитинов тим, що в них замість холіну міститься етаноламін СН2ОН-СН2NН2 (коламін).
Холін
Фосфатидилсерин
Холін відіграє важливу роль в обміні речовин, тому що під дією відповідних ферментів він може передавати містяться в ньому метальних групи іншим речовинам.
Холін стимулює ферментативне розщеплення жирів, нормалізуючи жировий обмін; сприяє повному засвоєнню жиророзчинних вітамінів: вітаміну А, вітаміну D, вітаміну Е, вітаміну К.
2.7 Вітаміни
Вітаміни являють собою групу порівняно низькомолекулярних органічних сполук різноманітної хімічної будови, що об'єднуються за ознакою їх суворої необхідності для харчування тваринного і людського організму. У порівнянні з основними живильними речовинами - білками, жирами і вуглеводами - вітаміни потрібні в мізерно малих кількостях і виконують в організмі каталітичні функції.
Основним постачальником вітамінів для людини і тварин є рослина, де вони синтезуються. Людина отримує вітаміни або безпосередньо з харчових продуктів рослинного походження, або з харчових продуктів тваринного походження, в яких вітаміни були попередньо накопичені з рослинної їжі.
Відсутність або нестача в їжі вітамінів призводить до глибоких порушень обміну речовин і в кінцевому рахунку до захворювань, що отримав назву авітамінозів і гіповітамінозів. Залежно від нестачі того чи іншого вітаміну виникають різні авітамінози і часто досить важкі захворювання. Такі, наприклад, цинга, рахіт, пелагра, куряча сліпота, поліневрит.
Вітаміни необхідні для нормальної життєдіяльності не тільки тварин і людини, але також вищих рослин і мікроорганізмів. Так, коріння рослин не можуть нормально розвиватися без деяких вітамінів. Мікроорганізми для свого нормального розвитку і зростання також вимагають наявності в живильному середовищі багатьох вітамінів. В даний час деякі мікроорганізми застосовуються для виявлення і кількісного визначення вітамінів. Є тісний зв'язок між вітамінами і каталізаторами хімічних перетворень в організмі - ферментами. Багато вітаміни, з'єднуючись із специфічним білком, утворюють ферменти.
Таким чином, захворювання, що викликається недоліком в їжі того чи іншого вітаміну, є наслідком того, що в організмі недостатньо активний відповідний фермент, що каталізує певну ланку біохімічних перетворень, що становлять обмін речовин. Точно так само затримка росту рослинної тканини або мікроорганізму при нестачі якого-небудь вітаміну пояснюється низькою активністю відповідного ферменту, до складу якого входить цей вітамін.
Вітаміни можуть бути розділені за ознакою розчинності на дві великі групи - вітаміни, розчинні в жирах, і вітаміни, розчинні у воді. При вивченні ліпофільній фракції, отриманої з рослинної сировини Грициків звичайних, нас цікавили жиророзчинні вітаміни, до яких відносяться вітаміни групи А, К, В [20].
Група вітамінів А. Вітаміни групи А - похідні каротину. Так само, як і каротин, вони нерозчинні у воді, але розчиняються в різних жирових розчинниках і жирах. Відсутність в їжі вітамінів групи А позначається в порушенні росту, зниженні стійкості до захворювань і ослабленні зору, званому курячою сліпотою. Вітаміни групи А утворюються і зустрічаються виключно в тканинах тварин і продуктах тваринного походження, в рослинах вони відсутні. Однак утворюються ці вітаміни з каротиноїдів, широко поширених в рослинах. Тісний зв'язок між каротином і вітамінами групи А була з'ясована як в результаті дослідів на тваринах, так і в результаті дослідження їх хімічної структури. Встановлено, що вітамін А утворюється в тваринному організмі з каротину під дією особливих ферментів. Ці факти свідчать, що каротин являє собою провітамін А. Тому вітамінна промисловість виготовляє очищені препарати каротину для збагачення ними різних харчових продуктів.
Найбільш багатим джерелом вітамінів групи А є риб'ячий жир і особливо жири, що містяться в печінці деяких риб і морських тварин: акули, тріски, палтуса, кита, моржа, тюленя, білухи.
Вітамін A1 являє собою половину молекули -каротину, що містить спиртову групу:
З однієї молекули -каротину можуть утворитися дві молекули вітаміну A1. Що ж стосується - і -каротинів, то видно, що вони можуть утворити лише по одній молекулі вітаміну A1. Саме тому -каротин вдвічі активніше, як провітамін А, ніж - і -каротини.
Група вітамінів К. Під цією назвою об'єднується група так званих антігеморрагіческій факторів, необхідних для нормального згортання крові.
Ці вітаміни широко поширені в продуктах рослинного і тваринного походження. Вони розчиняються у більшості органічних розчинників, але нерозчинні у воді. Кращими джерелами вітамінів К є зелені частини рослин.
За своєю хімічною природою вітаміни групи К являють собою похідні нафтохінона [20].
Довга бічний ланцюг вітаміну K1 є залишком високомолекулярного алифатического спирту фитола, що входить до складу хлорофілу. Вітамін К1 (філохінон) каталізує утворення специфічного білка - протромбіну, необхідного для згортання крові при пошкодженні тканини. Цей вітамін відіграє важливу, але поки неясну роль в процесі фотосинтезу.
Висновки
Грицики звичайна має і забезпечену сировинну базу, однак, еколого-фитоценотические умови зростання рослини викликають необхідність оцінки екологічної чистоти сировини за вмістом важких металів і продуктивності популяцій по вмісту флавоноїдів для раціонального використання заростей.
Попереднє дослідження на основні групи біологічно активних речовин показало, що в траві грициків, що виростає в Харківській області, містяться: флавоноїди, кумарини, дубильні речовини, сапоніни, полісахариди, алкалоїди, вітамін K1.
Узагальнені відомості про найбільш поширені ліпофільних речовинах: жирних кислотах, жиророзчинних вітамінах, сапоніни, флавоніди.
Глава 3. Отримання ліпофільними екстракту з рослинного матеріалу грициків звичайних і вивчення його якісного і кількісного складу
З метою вивчення ліпофільних речовин нами була отримана ліпофільна фракція з рослинного матеріалу Грициків звичайних, зібраних у вересні 2014 року в Харківській області.
3.1 Отримання ліпофільного екстракту
Ліпофільний екстракт отримували в апараті Сокслета при безпосередньому знежирюванні рослинної сировини Грицика звичайного [41].
Рис. Апарат Сокслета.
На аналітичних вагах зважували пакет з фільтрувального паперу і поміщали в нього 5,0 г попередньо зваженого на ручних вагах подрібненої сировини. Пакет з сировиною зважували на аналітичних вагах, а потім поміщали в екстрактор. Перед тим, як зібрати прилад, зважували приймач на аналітичних вагах.
Після того, як всі частини апарату Сокслета щільно з'єднані, через холодильник наливали розчинник - хлороформ до тих пір, поки рідина не переллється через сифон в приймач, а потім в екстрактор ще додавали хлороформу приблизно на 1/3 його об'єму.
Приймач з хлороформом підігрівали на електричній плитці із закритою спіраллю. Пари розчинника піднімалися по трубці в холодильник, конденсованих і стікали в екстрактор на пакет із сировиною, де витягувалися ліпофільні речовини. Коли екстрактор наповнювався рідиною до висоти сифона, рідина зливалася в приймач. Процес отримання ліпофільної фракції проводили до повноти вилучення ліпофільних речовин (до знебарвлення екстрагента).
Витяг проводили обережно, не перегріваючи розчинник вище 600. Він повинен кипіти рівномірно, так як при сильному нагріванні частина парів розчинника, не встигаючи конденсуватися в холодильнику, буде випаровуватися, що призведе до втрат.
Досягнувши повноти витягу, розчинник відганяли і приймач зважували, попередньо висушивши його в сушильній шафі при 90-950С до постійної ваги. Знаючи вагу порожнього приймача і приймача з ліпофільними витяганнями, обчислювали відсотковий вихід ліпофільних речовин за формулою:
Х = (А - Б) * 100 / В
А - вага приймача з ліпофільним екстрактом;
Б - вага порожнього приймача;
В - навішування сировини.
В результаті експерименту вихід ліпофільної фракції з рослинної сировини склав 13,24%.
Отриманий ліпофільний екстракт являє собою масу темно-зеленого кольору зі специфічним запахом [30].
3.2 Вивчення хімічного складу ліпофільній фракції
3.2.1 Методи виділення флавоноїдів
Метод виділення залежить від характеру рослинного матеріалу і типу флавоноїду, який необхідно виділити. Вибір розчинника для екстракції залежить від полярності флавоноїду. Більш полярні розчинники використовують для екстракції глікозидів і антоціанів, а менш полярні для агликонов. Ізофлавони, флавони, дігідрофлавони, сильно метиловані флавони і флавоноли екстрагують бензолом, хлороформом, ефіром, етилацетатом. Глікозиди, сильно гідроксильовані флавоноїди, аурони, халкони, легко переходять в спирти різної концентрації або ацетон [24].
Після екстракції, спиртове витяг упарюють, до залишку додають гарячу воду, охолоджують, видаляють неполярні сполуки (жирне масло, ефірне масло) з водної фази хлороформом або чотирихлористого вуглецю. Потім флавоноїди з водної фази витягують послідовно етиловим спиртом (аглікони), етилацетатом (монозіди) і бутанолом (біозідом, тріозіди). Для розділення компонентів кожної фракції використовують колоночную хроматографію на силікагелі, поліамідних сорбентів або целюлозі.
3.2.2 Методи ідентифікації флавоноїдів
Для ідентифікації флавоноїдів використовують їх фізико-хімічні властивості; температуру плавлення, питоме обертання (глікозидів), УФ-, ІЧ-, ПМР - спектри, порівнюючи їх зі спектрами відомих зразків [1; 3; 23].
УФ спектр флавоноїдів характеризується наявністю, як правило, двох максимумів поглинання. Поглинання максимумів і їх інтенсивність характерні для різних груп флавоноїдів [30].
Реакції, специфічні для всіх груп флавоноїдів, відсутні. Найбільш часто використовуються наступні реакції:
1. Ціанідіновая реакція або проба Chinoda
Флавоноїди, флавонони і флавони при відновленні магнієм у присутності хлористоводневої кислоти дають червоне або оранжеве забарвлення, обумовлене утворенням антоцианидинов [40]:
Ціанідин хлорид
2. Борно-лимонна реакція. 5 - оксіфлавони і 5 - оксіфлавоноли взаємодіють з борною кислотою в присутності лимонної, утворюючи яскраво-жовте забарвлення з жовто-зеленою флуоресценцією (освіта Батохромний комплексу) [9]:
3. Реакція з треххлористой сурмою. 5 - оксіфлавони і 5 - флавоноли, взаємодіючи з треххлористой сурмою, утворюють комплексні сполуки, пофарбовані в жовтий або червоний колір [49]:
4. З розчином аміаку. Флавоноли, флаванони і флавони дають жовте забарвлення з розчином аміаку, при нагріванні переходить у помаранчеве або червоне: халкони і аурони дають червоне або пурпурне забарвлення без нагрівання. Антоціани в присутності аміаку або карбонату натрію дають синє або фіолетове забарвлення.
5. Флавони, халкони, аурони, що містять вільні ортогідроксільние угруповання в кільці-В, при обробці спиртових розчинів середнім оцтовокислим свинцем утворюють опади, пофарбовані в яскраво - жовтий і червоний кольори.
6. З метою виявлення флавоноїдів в рослинному матеріалі широко використовується хроматографія на папері і в тонкому шарі сорбенту. Виявлення компонентів на хроматограмі здійснюється просматриванием їх в УФ - світлі. При цьому флавонони, флавонол-3-глікозиди, флаванони, халкони виявляються у вигляді коричневих плям; флавоноли і їх 7-глікозиди - у вигляді жовтих плям [29].
3.3 Кількісне та якісне визначення біологічно активних речовин ліпофільній фракції
Попереднє дослідження на основні групи біологічно активних речовин показало, що в траві грициків, що виростає в Харківській області, містяться: флавоноїди, кумарини, дубильні речовини, сапоніни, полісахариди, алкалоїди, вітамін K1,
3.3.1 Кількісне визначення флавоноїдів
Дослідження проводили на цільних і подрібнених зразках трави грициків від промислових партій та індивідуального збору 2010-2014 років; рідкому екстракті і субстанції "сухий екстракт", отриманих в лабораторних умовах, а також, зразках рідкого екстракту промислового виробництва. Сировина збирали і сушили згідно інструкції по заготівлі та у відповідності з поставленими завданнями.
Кількісну оцінку суми екстрактивних речовин проводили гравіметричним методом за ГОСТ 24027.2-80, а також, методиці ГФХ1, в.1.
Проводили спектральні дослідження етанольних витягів з трави грициків різної концентрації та спектрів адсорбції з 2% -ним спиртовим розчином алюмінію хлориду [29].
Кількісний вміст флавоноїдів у сировині та препаратах визначали з використанням диференціального варіанту спектрофотометрического методу, запропонованого В. В. Беліковим зі співавторами і модифікованому нами для сировини і препаратів Грицика звичайного [8].
Оцінку екологічної чистоти сировини проводили за вмістом важких металів за методикою ГФ XI, в.1 і полярографическим методом.
3.3.2 Якісне визначення флавоноїдів
Для якісного аналізу трави грициків на основні групи біологічно активних речовин використовували загальноприйняті методики, методи хроматографії: висхідній (ВБХ) і кругової (КБХ) на папері, а також, в тонкому шарі сорбенту (ТШХ). Для детектування хроматограмм використовували УФ-світло і хромогенні реактиви [5].
Проведення якісних реакцій на флавоноїди показало, що трава грициків містить флавоноїди переважно у вигляді глікозидів. Методом висхідній хроматографії на папері в системах БУВ 4: 1: 5 і 15% оцтової кислоти встановлено, що флавоноїдний комплекс грициків представлений 4 компонентами, один з компонентів ідентифікований зі свідком рутин [30].
Спектри поглинання етанольних витягів з трави грициків різної концентрації мали по два максимуму поглинання: mах = 265-270 нм і mах = 370-375 нм, що відповідає поглинанню флавоноїдів.
Всі компоненти флавоноїдного комплексу грициків забезпечують специфічний фармакологічний ефект. Тому надалі стандартизацію сировини та препаратів проводили за сумою флавоноїдів.
Спектри адсорбції з 2% -ним спиртовим розчином алюмінію хлоридом збігаються зі спектром поглинання комплексу рутина з алюмінію хлоридом і мають максимум поглинання при mах = 405 нм. Спектри поглинання компонентів флавоноїдного комплексу, зокрема діосметіна, мають максимуми поглинання близькі до рутину. Це дозволяє використовувати максимум поглинання комплексу рутина з алюмінію хлоридом в кількісному аналізі і розраховувати суму флавоноїдів на рутин-стандарт.
Використовувалася методика спектрофотометричного визначення суми флавоноїдів, заснована на визначенні оптичної щільності пофарбованого комплексу флавоноїдів з 2% -ним спиртовим розчином алюмінію хлориду.
Вивчені наступні стадії:
екстракція сировини етанолом різної концентрації;
умови реакції комплексоутворення з алюмінію хлоридом (таблиця 3.1);
умови кількісної екстракції флавоноїдів із сировини.
Таблиця 3.1. Вплив умов реакції та екстракції на вихід флавоноїдів
|
Умови реакції |
Зміст флавоноїдів, % |
Умови екстракції |
||
|
Співвідношення об'ємів витягу й 2% спиртового розчину алюмінію хлориду, мол 1:1 1:2 2:2 2:3 2:4 |
0,98 1,12 1,21 1,29 1,25 |
1,07 1,28 1,15 1,27 1,28 |
Ступінь здрібнювання сировини, мм 0,5 1 2 |
|
|
Маса сировини й об'єм екстрагена, мол 0,5:50 1:100 |
||||
|
Час стійкості комплексу 20 30 40 50 |
1,2 1,24 1,28 1,28 |
0,72 0,86 0,87 1,29 |
Час екстракції, хв. 30 45 60 90 |
Вибір оптимальної концентрації етанолу проводили за даними хроматографічного аналізу, УФ-спектрами і експериментально по вмісту флавоноїдів в екстрактах залежно від концентрації етилового спирту. Оптимальним екстрагентом є 70% етиловий спирт.
На підставі отриманих результатів підібрані оптимальні умови аналізу: кількісна екстракція флавоноїдів із сировини досягається при використанні сировини зі ступенем измельченности частинок 1 мм, при триразовому по 30 хвилин настоюванні з 70% етанолом на киплячій водяній бані; співвідношень: сировини і екстрагента 1: 100, при масі сировини 0,5 г і обсязі екстрагента 50 мл; витягання і 2% спиртового розчину алюмінію хлориду в перерахунку на суху речовину 0,02: 0,06; стійкості комплексу в часі через 40 хвилин. Відносна помилка методу становить: ± 2,64 (таблиця 3.2).
Таблиця 3.2. Метрологічна характеристика методики кількісного визначення суми Флавонідів в траві Грициків звичайних
|
n |
X |
S2 |
S |
Sx |
P,% |
t (P,f) |
,% |
|
|
10 |
1,28 |
0,0023 |
0,015 |
0,0047 |
95 |
2,26 |
±2,64 |
Вміст суми флавоноїдів в цільних зразках трави грициків, заготовлених в різних еколого-фітоценотичних умовах Харківської області та подрібнених зразках промислових серій коливається від 1,1210,02% до 2,48 ± 0,09%. Оцінка якості трави грициків за змістом суми флавоноїдів не менше 1%.
Таблиця 3.3. Динаміка накопичення флавоноїдів у траві Грициків звичайних
|
№ |
Органи рослини |
Зміст флавоноїдів,% |
Метрологічна характеристика |
||
|
1 |
Трава |
1,29+0,03 |
2,% 331,175 5,03 111,757 32,54 |
F 97,07 0,53 91,79 4,82 |
|
|
2 |
Стебла |
0,47±0,02 |
|||
|
3 |
Листи |
1,09+0,1 |
|||
|
4 |
Квітки |
2,98+0,16 |
|||
|
5 |
Плоди |
1,11±0,06 |
|||
|
6 |
Семена |
0,02±0,001 |
|||
|
7 |
Корінь |
0,06+0,001 |
|||
|
I |
Фази вегетації Стадія розетки |
0,96±0,03 |
85,98 |
61,35 |
|
|
II |
Початок цвітіння |
1,18±0,02 |
46,36 |
8,64 |
|
|
III |
Від початку цвітіння до початку плодоносіння |
1,29+0,01 |
|||
|
IV |
З побурілими плодами |
1,08±0,02 |
74,73 |
17,74 |
|
|
I |
Спосіб сушіння Повітряно-тіньова |
1,40±0,02 |
13,69 |
0,952 |
|
|
II |
Штучна |
1,43±0,02 |
Для вибору оптимальних строків заготівлі трави грициків вивчена динаміка накопичення флавоноїдів в різних органах рослини, по фазах вегетації і залежно від способу сушіння сировини. Вміст флавоноїдів визначали за методикою розробленою для сировини. Результати дослідження представлені в таблиці 3.3.
Дослідження показали суттєві відмінності органів грициків за змістом суми флавоноїдів. Максимальна кількість флавоноїдів спостерігається в квітках: 2,98 ± 0,16% і незрілих плодах: 1,11 + 0,06%; найменшу кількість флавоноїдів в стеблах: 0,47 ± 0,02%.
Протягом вегетаційного періоду вміст флавоноїдів зростає досягаючи максимуму в фази цвітіння і початку плодоношення: 1,29 ± 0,03%, а потім знижується і становить: 1,08 ± 0,02%. Оптимальними термінами збору трави грициків є фази цвітіння і початку плодоношення.
Дослідження щодо впливу способу сушіння на вміст флавоноїдів у сировині показали, що повітряно-тіньова сушка при температурі 18 ° -20 ° С у порівнянні з штучної при температурі 50 ° -б0 ° С призводить до зниження кількості флавоноїдів сировину до 2%.
Якісний склад органів грициків і сировини за фазами вегетації аналізували по люмінесцептно-хроматографическим характеристикам методом кругової хроматографії на папері (таблиці 3.4).
На хроматограмах трави, зібраної в оптимальні терміни, виявляється 5 зон речовин фенольної природи розрізняються за забарвленням, розташуванню та інтенсивності флюоресценції. Зони 2, 3, 4 при обробці парами 25% амонію гідроксиду флюоресцируют жовто-зеленим і відповідають флавоноидам. Зона 4 з Rt = 0,64 ідентифікована з рутином.
Кругові хроматограми органів рослини і фаз вегетації відображають динаміку накопичення флавоноїдів, зміни якісного складу і узгоджуються з даними за кількісним вмісту флавоноїдів [32; 33].
Таблиця 3.4. Люмінесцентно-хроматографічна характеристика різних органів Грициків звичайних
|
орган |
№ зон |
|||||||||||||||
|
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
||||||||||||
|
R1 |
УФ |
NH3 |
R1 |
УФ |
NH3 |
R1 |
УФ |
NH3 |
R1 |
УФ |
NH3 |
R1 |
УФ |
NH3 |
||
|
стебло |
0,17 |
Коричнева |
Жовто-зелена |
0,45 |
Т. коричнева |
Т. жовто-зелена |
0,64 |
Т. жовта |
Жовто-зелена |
0,78 |
Синьо-блакитна |
блакитна |
||||
|
аркуш |
0,21 |
темна |
Жовто-зелена |
0,40 |
Т.коричнева коричнева |
Т.жовто-зелена |
0,62 |
Т. -жовта |
Жовто-зелена |
0,72 |
Синьо-блакитна |
Блакитнувато-зелена |
0,89 |
Синьо-фіолетова |
Синьо-блакитна |
|
|
квітка |
0,17 |
Синьо-фіолетова |
Синьо-блакитна |
0,35 |
Темна |
Жовто-зелена |
- |
0,62 |
Т. -жовта |
Жовто-зелена |
0,8 |
Синьо-блакитна |
блакитна |
|||
|
плід |
- |
- |
0,43 |
Т. коричнева |
Т. жовто-зелена |
0,62 |
Т. жовта |
Жовто-зелена |
0,72 |
Синьо-блакитна |
Блакитнувато-зелена |
Кількість зон флавоноїдів та інтенсивність їх флюоресценції максимальна у трави, квіток і листя, в фази: цвітіння і початку плодоношення, що підтверджує раціональні строки заготівлі сировини.
3.4 Дослідження екстракційних препаратів Грицика звичайного
Враховуючи, що трава Грицика звичайного використовується у вигляді настою, зборів та рідкого екстракту, а також необхідність системного підходу та уніфікації методів аналізу лікарської рослинної сировини, проведені дослідження екстракційних препаратів по вмісту флавоноїдів із застосуванням методики розробленої для сировини і модифікованої нами для настою і рідкого екстракту і субстанції «сухий екстракт» [30].
Результати досліджень представлені в таблиці 3.5.
Таблиця 3.5. Зміст флавонідів в екстракційних формах
|
Сировина, екстракційна форма |
Зміст флавоноїдів, % |
Вихід флавоноїдів із сировини, % |
Залишкова кількість флавоноїдів у сировину, % |
|
|
Трава |
1,29±0,09 |
|||
|
Настій |
0,02±0,01 |
14,7±0,81 |
85,2±2,25 |
|
|
Рідкий екстракт |
0,32±0,03 |
25,56±0,32 |
74,44+1,13 |
|
|
Рідкий екстр.ПГФА |
0,84±0,01 |
65,53+0,70 |
34,47+0,81 |
|
|
Субстанція "сухий екст." |
0,83±0,01 |
64,61±0,36 |
35,40+0,72 |
Встановлено, що вміст флавоноїдів в настої і рідкому екстракті промислового виробництва низькі: 0,02 + 0,01% і 0,32 ± 0,03%. Велика частина флавоноїдів не виймається і залишається шроті: 85,2 ± 2,25% і 74,44 + 1,13%, відповідно.
Вивчено вплив факторів на кількісний вихід флавоноїдів із сировини в рідкий екстракт і підібрані оптимальні умови його отримання: ступінь измельченности сировини 3 мм, час контакту фаз 8 годин, кількість екстракторів в батареї 4. Результати обробляли з використанням методу математичного планування. Рідкий екстракт грициків отримували методом реперколяції. Для отримання субстанції "сухий екстракт" готували 70% -ве етанольне витяг в оптимальних умовах, згущували при температурі 50-60 ° С і висушували до отримання сухої субстанції.
Вміст флавоноїдів в препаратах визначали за методикою розробленою для сировини, для аналізу брали 1 мл або 1,0 г препарату відповідного 1,0 сировини і готували розведення 1:50. Вміст суми флавоноїдів в отриманих в оптимальних умовах препаратах - рідкому екстракті: 0,84 + 0,01%, в субстанції «сухий екстракт»: 0,83 ± 0,01% (таблиця 3.5). Метрологічні характеристики свідчать, що відносна помилка методу становить: для рідкого екстракту + 3,68%, для субстанції + 3,89%.
3.5 Вивчення екобіотічних особливостей Грицика звичайного
Заготівля трави грициків проводиться в природних популяціях. Розташування основних заростей грициків в зоні антропогенного впливу збільшує ймовірність заготівлі сировини з токсичними речовинами. У зв'язку з цим вивчені екобіотіческіе особливості виду по ресурсоведческім, фитоценотических, морфологічним і та фітохімічним ознаками [31].
Грицик звичайний зустрічається практично у всіх населених пунктах обстежених районів, займає невеликі площі: 0,1-0,5 га з різною щільністю запасу сировини (таблиця 7); кількість генеративних пагонів на 1м2 коливається від 1,81 ± 0,76 до 6,13 ± 0,96 екз. / м2; маса одного модельного екземпляра (повітряно-суха маса) від 2,13 ± 0,37 до 5,04 ± 0,47г. Входить до складу разнотравних і злаково-різнотравних фітоценозів, звичайна вздовж автомобільних і шосейних доріг.
Ступінь забрудненості трави грициків важкими металами визначали у зразках сировини заготовлених в місцепроживання придорожньої зони. Проби для аналізу відбирали на відстані від 5 до 35 м від узбіччя дороги, через кожні 5 метрів. Зразки сировини проаналізовані на вміст важких металів Сu, Pb, Cd, Zn (таблиця 3.6).
Таблиця 3.6
|
Важкі метали |
Відстань від узбіччя дороги, м |
|||||||
|
5 |
10 |
15 |
20 |
25 |
30 |
35 |
||
|
Сu |
0,018 |
0,011 |
0,008 |
0,008 |
0,006 |
0,003 |
0,003 |
|
|
РЬ |
0,003 |
- |
- |
- |
- |
- |
- |
|
|
Cd |
0,004 |
0,0002 |
0,0002 |
0,0002 |
0,0002 |
0,0002 |
- |
|
|
Zn |
0,014 |
0,006 |
0,0055 |
0,002 |
0,0009 |
0,0007 |
0,0003 |
Встановлено, що Грицики звичайні відноситься до видів, накопичують важкі метали, вміст яких залежить віддаленості заростей грициків від узбіччя дороги. Вміст важких металів значно перевищує гранично допустимі концентрації, таких, для харчових продуктів [15].
Заготівлю трави грициків рекомендуємо проводити на відстані не ближче 25 метрів від узбіччя дороги.
Вміст важких металів у траві грициків в залежності від відстані від дороги.
Висновки
Проведений макроскопічний аналіз зразків цілісного сировини, заготовленого в Пермській області та сировини від промислових партій, а також гербарних зразках рослин зібраних в різних регіонах, дозволив включити в розділ «Зовнішні ознаки» опис верхніх стеблових листків і відрізків прикореневого розеткових листя; розміри розеткових, середніх і верхніх стеблових листків; уточнити тип плоду. Характеристика подрібненої сировини дана в загальноприйнятою редакції.
Для підтвердження автентичності цілісного і встановлення автентичності подрібненої сировини вивчали анатомічну будову надземної частини Грицика звичайного. Уточнено тип околоустьічних клітин і дана характеристика простих волосків епідермісу листка. За результатами макро- і мікроскопічного аналізів уточнені морфолого-анатомічні ознаки сировини, відредаговані розділи «Зовнішні ознаки», «Мікроскопія».
Встановлено основні показники для цілісного і подрібненої сировини.
Обґрунтований і введений показник «коренів, в тому числі відокремлених при аналізі, частин рослини, уражених борошнистою росою і пожовклого листя», не більше 3%.
Отримані результати дозволяють зробити висновок, що для грициків характерна широка норма реакції на зміни умов проживання.
Оптимальні умови існування - на поклади. Тут рослини крупніше, відрізняються великою кількістю і проективним покриттям, високою насіннєвою продуктивністю, що забезпечує краще відновлення заростей.
Глава 4. Визначення числових показниках ліпофільної фракції з рослинного матеріалу грициків звичайних
Визначення числових показників ліпофільній фракції зводиться до визначення кислотного числа, ефірного числа, числа омилення, йодного числа та ін. Вони є обов'язковими характеристиками для визначення речовин ліпофільній природи.
4.1 Визначення кислотного числа
Кислотним числом називають кількість міліграмів їдкого калі, необхідне для нейтралізації вільних кислот, що містяться в 1 г досліджуваної речовини.
Кислотне число показує кількість вільних кислот в досліджуваній речовині і за його величиною судять про доброякісність речовини.
Свіже речовина вільних кислот майже не містить.
Методика визначення. Близько 2 г (точна наважка) ліпофільного екстракту з рослинної сировини Грициків звичайних розчиняли в 20 мл суміші рівних обсягів 96% спирту і ефіру, попередньо нейтралізованої за фенолфталеїном 0,1 н розчином їдкого натру, додавали 3-5 крапель розчину фенолфталеїну і титрували при постійному помішуванні 0,1 н розчином їдкого натру до появи рожевого забарвлення, не зникає протягом 30 секунд.
1 мл 0,1 н розчину їдкого натру відповідає 5,61 мг їдкого калі.
Кислотне число (к.ч.) обчислювали за формулою:
К.ч. = а * 5,61 / б
а - кількість мілілітрів 0,1 н розчину їдкого натру, витраченого на титрування;
б - навішування речовини в грамах [7].
В результаті визначення встановлено, що кислотне число становить 4,61 (таблиця 4.1.).
4.2 Визначення числа омилення
Числом омилення називають кількість міліграмів їдкого калі, необхідне для нейтралізації вільних кислот і омилення складних ефірів, що містяться в 1 г досліджуваної речовини.
Методика визначення. Близько 2 г (точна наважка) ліпофільній фракції з рослинної сировини Грициків звичайних змішували в колбі з шліфом місткістю 200-250 мл з 25 мл 0,5 н спиртового розчину їдкого калі. До колбі приєднували зворотний холодильник і занурювали її в киплячу водяну баню на 1,5-2 години, підтримуючи легке кипіння до повного омилення.
Паралельно в тих же умовах ставили контрольний досвід, тобто в іншій колбі нагрівали 25 мл 0,5 н спиртового розчину їдкого калі.
Обидва розчину відразу ж після припинення нагрівання розбавляли 25 мл свіжопрокип'яченої гарячої води, додавали по 5 крапель розчину фенолфталеїну і титрували 0,5 н розчином хлористоводневої кислоти до знебарвлення.
З кількості мілілітрів 0,5 н розчину хлористоводневої кислоти, витраченого у контрольному досвіді, вичитали кількість мілілітрів 0,5 н розчину хлористоводневої кислоти, який пішов на титрування досліджуваної ліпофільній фракції.
Отримана різниця являє собою кількість 0,5 н розчину їдкого калі, витрачений на омилення складних ефірів і нейтралізацію вільних жирних кислот, що містяться у взятій навішуванні ліпофільного екстракту.
1 мл 0,5 н розчину їдкого калі містить 28,05 мг їдкого калі.
Число омилення (Ч.О.) обчислювали за формулою:
Ч.о. = (а - б) *. 28,05 / в
а - кількість мілілітрів 0,5 н розчину хлористоводневої кислоти, витрачений на титрування в контрольному досліді;
б - кількість мілілітрів 0,5 н розчину хлористоводневої кислоти, витрачений на титрування досліджуваної речовини;
в - навішування речовини в грамах [7].
В результаті визначення встановлено, що число омилення становить 97,35 (таблиця 4.1.).
4.3 Визначення ефірного числа
Ефірним числом називають кількість мілілітрів їдкого калі, витрачений на омилення складних ефірів, що містяться в 1 г досліджуваної речовини. Ефірне число (Е.ч.) визначають за різницею між число омилення і кислотним числом [6]. (таблиця 4.1.).
Е.ч. = Ч.О. - К.ч.
4.4 Визначення йодного числа
Йодним числом називають кількість грамів йоду, яке пов'язується 100 г досліджуваної речовини.
Методика визначення. Близько 1 г (точна наважка) ліпофільній фракції з рослинної сировини Грициків звичайних поміщали в суху колбу з притертою пробкою місткістю 250-300 мл, розчиняли в 3 мл хлороформу, додавали 20 мл розчину йоду монохлориду (0,1 моль / л), закривали колбу пробкою, змоченою розчином йодиду калію, обережно збовтували обертовим рухом і витримували в темному місці протягом 1 години. Потім додавали послідовно 10 мл розчину йодиду калію, 50 мл води і титрували розчином тіосульфату натрію (0,1 моль / л) при постійному енергійному збовтуванні до світло-жовтого забарвлення, після чого додавали 3 мл хлороформу, сильно збовтували, потім додавали 1 мл розчину крохмалю і титрували до знебарвлення.
Паралельно проводили контрольний досвід.
З кількості мілілітрів розчину тіосульфату натрію (0,1 моль / л), витраченого у контрольному досвіді, вичитали кількість мілілітрів розчину тіосульфату натрію (0,1 моль / л), витраченого на титрування досліджуваної ліпофільній фракції. Отримана різниця відповідала кількості мілілітрів розчину йоду (0,1 моль / л), пов'язаному навішуванням досліджуваної ліпофільній фракції.
Йодне число (I) обчислювали за формулою:
I = (а - б) * 0,01269 * 100 / В
а - кількість мілілітрів тіосульфату натрію (0,1 моль / л), витраченого на титрування в контрольному досліді;
б - кількість мілілітрів тіосульфату натрію (0,1 моль / л), витраченого на титрування досліджуваної ліпофільній фракції;
в - навішування ліпофільній фракції, в г [7].
Примітка. Приготування розчину йоду монохлориду (0,1 моль / л). 11,06 г йодиду калію і 7,10 г йодату калію поміщають в склянку з притертою пробкою, додають 50 мл води і 50 мл концентрованої хлористоводневої кислоти, закривають пробкою і струшують до повного розчинення утворюється при реакції йоду. Розчин переносять у ділильну воронку і збовтують з 10 мл хлороформу. Якщо хлороформний шар забарвлюється у фіолетовий колір, то додають при сильному збовтуванні по краплях 1% розчин йодату калію до знебарвлення хлороформного шару. Якщо ж хлороформний шар залишається безбарвним, то додають по краплях 1% розчин йодиду калію до появи блідо-рожевого забарвлення. Після відстоювання водний шар зливають у мірну колбу і доводять об'єм розчину водою до 1 л. Приготований розчин повинен мати лимонно-жовтий колір.
...Подобные документы
Ботанічна характеристика, хімічний склад, батьківщина та ареал розповсюдження фрукту. Історія його використання. Умови вирощування, догляду та зберігання. Лікувально-профілактичні властивості. Протипокази до застосування. Використання ананасу у медицині.
курсовая работа [36,2 K], добавлен 28.03.2016Виділення основних груп алкалоїдів з снодійного маку: похідні тетрагідроізохіноліну, бензилізохінодіну, кріптопіну та морфіну. Вивчення механізму дії та фармакологічних властивостей алкалоїдів опійного маку. Застосування опіоїдних препаратів в медицині.
реферат [113,2 K], добавлен 09.04.2014Характеристика, властивості вітаміну К, історія його відкриття та відомості на сучасному етапі. Поширення в природі вітаміну, оцінка активності та визначення потреби для організму людини. Лікарські засоби на основі кропиви, кукурудзи, грициків, калини.
курсовая работа [79,9 K], добавлен 26.09.2010Експертні системи стеження за післяопераційними хворими, аналізу причин гіпертонії, визначення терміну нанесення ушкоджень, іридодіагностики. Клієнт-серверна експертна система для телемедицини, клінічної епілептології, розпізнавання образів у медицині.
курсовая работа [2,6 M], добавлен 20.06.2010Огляд видового і морфологічного складу роду Polygonaceae. Короткий ботанічний опис Polygonum aviculare, ареал поширення, місця виростання. Дослідження мікроелементного та хімічного складу трави Polygonum aviculare. Використання та застосування в медицині.
курсовая работа [2,6 M], добавлен 25.05.2014Поняття стресу, класифікація та стадії розвитку. Роль нейроендокринних механізмів при звичайних і стресових станах. Аналіз роботи гіпоталамо-гіпофізарної системи, надниркових залоз. Реакція на стрес, його профілактика засобами фізичної реабілітації.
курсовая работа [1,3 M], добавлен 27.09.2020Загальна характеристика протитуберкульозних засобів та їх класифікація. Лікарські засоби, похідні ізонікотинатної кислоти, методи їх синтезу, властивості, аналіз за аналітико-функціональними групами в молекулах, застосування в медицині, побічні дії.
курсовая работа [876,8 K], добавлен 01.03.2013Якісний та кількісний склад мікрофлори у хворих з гнійно-запальними захворюваннями щелепно-лицьової ділянки, аналіз впливу різних озонових розчинів на штами мікроорганізмів. Оцінка запропонованого методу лікування та його апробація в клінічних умовах.
автореферат [45,0 K], добавлен 02.04.2009Національні програми інформатизації охорони здоров'я. Необхідність створення та впровадження новітньої інформаційної системи з реєстрації і обліку професійних захворювань в Україні. Експертні системи в медицині, характеристика найбільш відомих.
реферат [29,0 K], добавлен 09.11.2009Історія вивчення та використання лікарських рослин. Коротка ботанічна характеристика, сировина, хімічний склад на застосування деяких лікарських рослин, які впливають на захворювання дихальної системи. охорона і збереження лікарської рослинної сировини.
курсовая работа [49,4 K], добавлен 21.11.2008Визначення камеді, її склад, фізичні та хімічні властивості. Основні особливості лікарських рослин та рослинної сировини, що містять камеді. Загальна характеристика гетерополісахаридів, їх використання у науковій, народній медицині та гомеопатії.
курсовая работа [835,8 K], добавлен 16.05.2009Медична деонтологія - філософія медичної діяльності. Збереження моральності і боротьба із стресовими чинниками в медицині в цілому як основна мета деонтології. Фактори, що впливають на вибір форми спілкування з хворими. Збереження таємниці хворого.
контрольная работа [17,5 K], добавлен 18.04.2010Біологічно-активні речовини пасифлори інкарнатної, спектр їх дії та особливості медичного застосування. Анатомо-морфологічні ознаки лікарської рослинної сировини пасифлори, її фізіологічна активність, хімічний склад, методи сушіння та заготівлі, якість.
курсовая работа [442,0 K], добавлен 25.06.2015Загальні відомості про йод: опис елемента, електронно-графічна формула, фізичні та хімічні властивості, біологічна роль в організмі людини. Застосування йоду в медицині. Класифікація, характеристика, контроль якості та методи аналізу препаратів йоду.
научная работа [424,7 K], добавлен 10.03.2009Фізіотерапія як наука про лікувальне використання самої природи. Метод використання фізичних факторів з метою підвищення імунобіологічних властивостей (фізіопрофілактика). Види фізіотерапевтичних методів, правила застосування та лікувальний ефект.
реферат [22,6 K], добавлен 12.09.2009Біологічний опис нагідків лікарських. Екологія та поширення лікарської рослини, її основні фармакологічні властивості. Практичне застосування в сучасній фармакотерапії та народній медицині (рецепти). Збирання, переробка та зберігання рослинної сировини.
презентация [82,7 K], добавлен 10.04.2014Поняття алкалоїдів, їх поширення у рослинному світі. Фізико-хімічні властивості алкалоїдів, методи їх визначення в сировині. Характеристика кофеїну: поняття, властивості, застосування. Рослини, які є джерелом кофеїну: чай китайський, дерево кола, гуарана.
курсовая работа [572,8 K], добавлен 19.05.2012Будова і склад нервової тканини. Структура і функції нейрона. Молекулярна організація мієліну і його хімічний склад. Особливості метаболізму нервової тканини. Молекулярні основи генерації і передачі нервових імпульсів. Принципи функціонування синапсів.
реферат [1,9 M], добавлен 21.02.2023На основі результатів експериментальних досліджень встановлена виразна протизапальна дія екстракту “Локорин”. Протизапальна дія досліджуваного екстракту обумовлена його мембранопротекторними, антиоксидантними та капілярозміцнювальними властивостями.
автореферат [56,8 K], добавлен 12.03.2009Використання інфрачервоного, ультрафіолетового та рентгенівського випромінювання в медицині. Лікування бронхіальної астми інфрачервоним випромінюванням. Протипоказання до використання терапевтичного УФ-опромінення. Медична рентгенівська діагностика.
доклад [80,7 K], добавлен 05.11.2014
