Естественная цитотоксическая активность дендритных клеток против клеток опухолевых линий и активированных лимфоцитов

Размещено на http://www.allbest.ru//

Размещено на http://www.allbest.ru//

14.03.09 - Клиническая иммунология, аллергология

АВТОРЕФЕРАТ

диссертации на соискание учёной степени кандидата биологических наук

Естественная цитотоксическая активность дендритных клеток против клеток опухолевых линий и активированных лимфоцитов

Тыринова Тамара Викторовна

Новосибирск 2011

Работа выполнена в Учреждении РАМН Научно-исследовательском институте клинической иммунологии Сибирского отделения РАМН

Научный руководитель:

доктор медицинских наук,

профессор, член-корреспондент РАМН Черных Елена Рэмовна

Официальные оппоненты:

доктор медицинских наук Маркова Евгения Валерьевна

доктор биологических наук Мордвинов Вячеслав Алексеевич

Ведущая организация: Научно-исследовательский институт экспериментальной диагностики и терапии опухолей РОНЦ РАМН им. Н.Н. Блохина (г. Москва)

Защита состоится «____» ___________ 2012 г. в _____ часов на заседании диссертационного совета Д 001.001.01 НИИ клинической иммунологии СО РАМН по адресу: 630099, г. Новосибирск, ул. Ядринцевская, 14.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке НИИ клинической иммунологии СО РАМН

Автореферат разослан «___» _______________ 20__ г.

И.о. ученого секретаря диссертационного совета,

доктор медицинских наук Колесникова Ольга Петровна

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность исследования. Дендритные клетки (ДК), будучи профессиональными антигенпрезентирующими клетками, играют ведущую роль в запуске адаптивного иммунного ответа [Baetu T.M., 2001; Steinman R.M., 1991]. В связи с этим большой интерес к ДК обусловлен их ключевой ролью в интеграции врожденного и адаптивного иммунного ответа. С другой стороны ДК относятся к клеткам врожденного иммунитета, направленного на разрушение и удаление из организма чужеродных и потенциально опасных эндогенных компонентов. Защитная функция клеток врожденного иммунитета опосредуется через механизмы фагоцитоза и киллинга с участием контактных взаимодействий и секретируемых продуктов. Поскольку ДК захватывают антигены путем макропиноцитоза, но не обладают способностью к фагоцитозу [Lim J.P., 2011], вполне допустимо предположить, что эффекторная функция этих клеток, как и других клеток естественного иммунитета (NK-клетки, нейтрофилы, макрофаги), связана с цитотоксическим действием на клетки-мишени. Действительно, исследования показали, что ДК могут подавлять рост и пролиферацию опухолевых клеток за счет прямого цитостатического и цитотоксического эффектов [Janjic B.M., 2002; Vanderheyde N., 2004], при этом не повреждая здоровые клетки [Janjic B.M., 2002; Hubert P., 2001]. Однако данная функция ДК остается недостаточно исследованной.

Важно отметить, что в связи с малочисленностью популяции ДК в организме для изучения свойств и клинической апробации этих клеток в качестве вакцин используют культуры дендритных клеток, генерируемых in vitro из их предшественников. Большинство исследований основано на генерации миелоидных ДК in vitro путем культивирования моноцитов (CD14+) периферической крови в присутствии гранулоцитарно-макрофагального колониестимулирующего фактора (GM-CSF) и интерлейкина-4 (IL-4) [Wang M., 2009]. Относительно недавно была также описана популяция ДК, генерируемая в культуре in vitro в условиях замены IL-4 на интерферон-б (ИФН-ДК). ИФН-ДК отличаются от ИЛ4-ДК более высокой миграционной активностью, выраженной антиген-презентирующей функцией, большей стабильностью в условиях дефицита ростовых факторов, а также способностью стимулировать как Th1-, так и Th2-ответ [Carbonneil С., 2004; Paquette R., 1998; Santini S., 2000, 2003]. Кроме того, ИФН-ДК являются более эффективными стимуляторами CD8+ эффекторных Т-клеток [Lapenta C., 2006]. Согласно данным литературы интерфероны являются мощными индукторами цитотоксической активности естественных киллерных клеток. Исследования показали, что интерфероны I типа и интерферон-г при краткосрочной обработке клеток in vitro могут также усиливать цитотоксическую активность стандартно генерируемых миелоидных ДК [Fanger N.A., 1999; Liu Sh., 2001]. Однако, противоопухолевый потенциал ДК, генерируемых в присутствии интерферона-б (IFNб), остается практически не изученным.

Значение цитотоксической активности ДК in vivo подтверждается рядом фактов. Во-первых, ДК присутствуют в зоне опухолевого роста, причем более высокое их содержание коррелирует с более благоприятным прогнозом [Ladanyi A., 2007]. Во-вторых, интактные ИЛ4-ДК (не нагруженные опухолевым антигеном) при локальном введении в опухоль ингибируют опухолевый рост и в ряде случаев вызывают ремиссию [Ehtesham M.P., 2003]. Кроме того, показано, что внутриопухолевое введение ИЛ4-ДК повышает эффективность химиотерапии, что может быть обусловлено суммацией противоопухолевого эффекта цитостатиков и ДК [Ehtesham M.P., 2003]. Тем не менее, данные об эффекторной функции ИФН-ДК при онкопатологии практически отсутствуют. В этом аспекте исследования цитотоксической активности ИФН-ДК могут иметь практическую ценность, обосновывая новые перспективы для использования аутологичных ДК при онкопатологии.

Следует отметить, что цитотоксическая активность ДК может играть важную роль не только в противоопухолевом, но и в противовирусном иммунном ответе. Клетками-мишенями цитотоксической активности ДК могут быть инфицированные вирусом папилломы человека кератиноциты и клетки цервикального эпителия [Hubert P., 2001; Le Poole I.C., 2008], отличающиеся повышенной экспрессией CD40 и TRAIL-R1/R2 по сравнению с неинфицированными клетками. Кроме того, цитотоксическая активность ДК может быть направлена на элиминацию вирус-инфицированных лимфоцитов [Stary G., 2009]. Это особенно важно, поскольку инфицирование клеток иммунной системы при вирусной инфекции способствует ослаблению иммунного ответа и персистенции вирусной инфекции. Эффекторная функция ДК может также иметь большое значение в негативной регуляции активированных Т-клеток при их взаимодействии с ДК. Недавние исследования показали, что миелоидные ДК участвуют в элиминации активированных, но не покоящихся CD4+ и CD8+Т-лимфоцитов [Hoves S., 2004]. Кроме того, нами было продемонстрировано, что ИФН-ДК обладают цитотоксическим эффектом в отношении активированных NK-клеток [Черных Е.Р., 2009].

Способность ДК индуцировать гибель активированных клеток иммунной системы может являться механизмом feed-back регуляции в ограничении иммунного и воспалительного ответа. С другой стороны, известно, что наряду со стимулирующим действием ДК могут подавлять иммунный ответ [Steinman R.M., 2003] и наличие цитотоксической активности ДК может быть еще одним механизмом толерогенной активности ДК наряду с продукцией иммуносупрессивных цитокинов и генерацией регуляторных Т-клеток. Однако до сих пор цитотоксический эффект ДК в отношении клеток иммунной системы, а также возможные механизмы реализации цитотоксической активности ДК остаются во многом неисследованными.

Цель исследования:

Изучить феномен, регуляторные механизмы и роль отдельных сигнальных путей в реализации цитотоксической активности интерферон-б-индуцированных дендритных клеток.

Для достижения поставленной цели были сформулированы следующие задачи:

Охарактеризовать в культуре in vitro противоопухолевую цитотоксическую активность ДК, различающихся по степени зрелости (интактные и ЛПС-активированные) и условиям генерации (ИФН-ДК и ИЛ4-ДК). противоопухолевый цитотоксический глиома лимфоцит

Изучить механизмы, опосредующие цитотоксическую активность ИФН-ДК против опухолевых клеток.

Исследовать противоопухолевую цитотоксическую активность ИФН-ДК у больных с внутримозговыми глиомами, в том числе с высокой и низкой степенью злокачественности.

Оценить влияние иммуномодулирующих препаратов на основе производных этиленпиперазина, двуцепочечной ДНК человека и рекомбинантного интерлейкин-2 человека на цитотоксическую активность ИФН-ДК пациентов с внутримозговыми опухолями.

Исследовать влияние стероидных гормонов дегидроэпиандростерона сульфата (ДЭАС) и прогестерона на противоопухолевую цитотоксическую активность ИФН-ДК.

Изучить цитотоксическую активность ИФН-ДК против активированных Т-лимфоцитов и NK-клеток и вовлеченность отдельных сигнальных путей в реализацию данного эффекта.

Научная новизна

В результате выполнения работы впервые детально охарактеризован феномен цитотоксической активности ДК, генерированных в условиях замены IL-4 на IFNб, против разных типов клеток-мишеней. Установлено, что ИФН-ДК обладают дозозависимой цитотоксической активностью против NK-чувствительных и NK-резистентных опухолевых линий, включая TRAIL-чувствительные и TRAIL-резистентные мишени. Цитотоксический эффект ИФН-ДК против TRAIL-резистентных клеток НЕр-2 является контакт-зависимым, тогда как против TRAIL-чувствительных мишеней Jurkat частично опосредуется растворимыми факторами; обусловлен индукцией апоптоза клеток-мишеней и ассоциирован с экспрессией проапоптогенных молекул (TRAIL, FasL, В7-Н1, перфорина). При этом более высокая (по сравнению с ИЛ4-ДК) цитотоксическая активность ДК против TRAIL-чувствительных клеток-мишеней сопряжена с более высокой экспрессией TRAIL. Установлено, что апоптоз-индуцирующая активность ИФН-ДК в культурах клеток TRAIL-резистентной линии HEp-2 опосредуется с вовлечением TNFб/TNF-RI сигнального пути.

Получены новые данные о нарушении цитотоксической функции ИФН-ДК против TRAIL-резистентных клеток HЕp-2 у больных с внутримозговыми опухолями высокой степени злокачественности и продемонстрированы возможности коррекции данного нарушения при культивировании ИФН-ДК с иммуноактивными препаратами на основе производных этиленпиперазина, двуцепочечной ДНК человека или рекомбинантного IL-2. Впервые показано, что стероидные гормоны прогестерон и ДЭАС обладают ингибирующим эффектом на цитотоксическую активность ИФН-ДК здоровых доноров против TRAIL-резистентных и TRAIL-чувствительных опухолевых линий.

Установлено, что ИФН-ДК способны индуцировать апоптоз активированных в алло-СКЛ CD4+ и CD8+ Т-лимфоцитов и NK-клеток. Цитотоксическая активность ИФН-ДК против активированных лимфоцитов опосредуется с участием B7-H1 и молекул семейства TNF (TRAIL, TNFб и FasL). При этом блокирование PD-1/B7-H1-сигнального пути приводит к двукратному снижению цитотоксической активности ИФН-ДК, тогда как ингибиция TRAIL/TRAIL-R2-, TNFб/TNF-R1- и FasL/Fas-сигнальных путей существенно в меньшей степени подавляет проапоптогенный эффект ДК. Продемонстрировано, что СD4+ и CD8+ Т-клетки обладают сходной чувствительностью к PD-1/B7-H1-медиируемому апоптозу, однако различаются по чувствительности к проапоптогенным молекулам TNF семейства. В частности, цитотоксический эффект ДК против CD4+Т-лимфоцитов медиируется с участием молекул TRAIL, TNFб и FasL, тогда как против CD8+Т-лимфоцитов опосредуется только через TNFб/TNF-R1-сигнальный путь.

Теоретическая и практическая значимость

Теоретическая значимость работы заключается в расширении представлений о функциях ДК как клеток врожденного иммунитета, в частности характеристике цитотоксической активности дендритных клеток, генерируемых в культуре in vitro в условиях замены IL-4 на IFNб, а также раскрытии некоторых механизмов, опосредующих цитотоксическую функцию ДК против опухолевых мишеней и активированных лимфоцитов. Полученные результаты свидетельствуют о различной степени участия отдельных сигнальных путей в опосредовании цитотоксического эффекта ДК против опухолевых клеток и активированных лимфоцитов.

Наиболее выраженные нарушения цитотоксической активности ИФН-ДК против линии НЕр-2 у пациентов с внутримозговыми глиальными опухолями высокой степени злокачественности и низкими показателями выживаемости свидетельствуют о патогенетической значимости цитотоксической функции ДК при опухолевом росте и обосновывают возможность использования данного критерия для диагностики степени злокачественности опухолей и сроков выживания у пациентов с внутримозговыми глиомами. Более высокая противоопухолевая активность ИФН-ДК по сравнению с ИЛ4-ДК и возможность коррекции исходно сниженной активности ИФН-ДК больных в культуре in vitro обосновывает целесообразность использования ИФН-ДК при проведении иммунотерапии у больных с онкопатологией, а также возможность коррекции in vitro нарушенных свойств ИФН-ДК при патологии.

Способность ИФН-ДК индуцировать апоптоз активированных Т-лимфоцитов и NK-клеток и преимущественная роль B7-H1/PD-1-сигнального пути в реализации данного эффекта раскрывает новый механизм негативной регуляции иммунного ответа при взаимодействии ДК с клетками иммунной системы.

Положения, выносимые на защиту:

ИФН-ДК обладают дозозависимой противоопухолевой цитотоксической активностью, которая превышает аналогичную функцию ИЛ4-ДК против TRAIL-чувствительных мишеней (Jurkat), не отличается от цитотоксической активности ИЛ4-ДК против TRAIL-резистентных мишеней (HЕp-2), и в последнем случае реализуется с вовлечением TNFб/TNF-RI-сигнального пути.

Угнетение цитотоксической функции ДК у больных с внутримозговыми опухолями является характерным признаком глиом высокой степени злокачественности и сопряжено с низкой выживаемостью пациентов.

ИФН-ДК обладают цитотоксическим эффектом против активированных Т-лимфоцитов и NK-клеток, который реализуется с вовлечением B7-H1/PD-1-сигнального пути и в меньшей степени - молекул семейства TNF (TRAIL, FasL, TNFб).

Объем и структура диссертации

Диссертация написана в традиционном стиле и состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследования, 4 глав собственных исследований, обсуждения полученных результатов, заключения и выводов. Материал изложен на 136 страницах машинописного текста, включающего 7 таблиц и 21 рисунок. Прилагаемая библиография содержит ссылки на 239 литературных источника, в том числе 227 иностранных.

Апробация работы

Основные положения диссертации доложены и обсуждены на: Всероссийских научно-практических конференциях «Дни иммунологии в Сибири» (Красноярск, 2010; Абакан, 2011), на Всероссийской научной конференции «Молекулярно-генетические основы функционирования цитокиновой сети в норме и при патологии» (Новосибирск, 2010), на 11-ом международном симпозиуме по дендритным клеткам - 11th International Symposium on Dendritic Cells in Fundamental and Clinical Immunology - DC2010: Forum on Vaccine Science (Lugano, 2010), а также на 6-ой отчетной конференции ИКИ СО РАМН (Новосибирск, 2011). Апробация диссертации состоялась 13 декабря 2011 года на семинаре клинического отдела НИИ клинической иммунологии СО РАМН.

Публикации.

По теме диссертации опубликовано 16 печатных работ, из них 6 статей в журналах, рекомендованных ВАК РФ для публикации материалов диссертационных работ.

Работа выполнена в лаборатории клеточной иммунотерапии НИИ Клинической иммунологии СО РАМН (руководитель лаборатории д.м.н., профессор, член-корреспондент РАМН Е.Р. Черных).

Автор диссертации выражает искреннюю благодарность своему научному руководителю д.м.н., проф. Е.Р. Черных за поддержку и помощь, оказанную при работе над диссертацией. Реализация диссертационной работы была бы невозможна без всесторонней поддержки и активного участия в моделировании экспериментов к.м.н. Леплиной О.Ю., к.б.н. Сахно Л.В., к.х.н. Тихоновой М.А., а также без технической поддержки Салимовой Г.М. Всем им, а также многим другим сотрудникам НИИ клинической иммунологии СО РАМН автор выражает искреннюю признательность и благодарность.

СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ

Материалы и методы исследования

Диссертационная работа основана на результатах клинико-иммунологического обследования 120 доноров крови, выполненного за период 2008-2011 гг. Также в исследование были включены 37 больных внутримозговыми глиальными опухолями (17 мужчин и 20 женщин), которые были прооперированы и наблюдались в клинике нейрохирургии ФГУ «НИИ травматологии и ортопедии» Росздрава с 2008 по 2011гг. Средний возраст больных составил 42,3 ± 3,8 лет. Среди обследованных больных у 20 пациентов (54%) диагностировалась гистологически верифицированная глиобластома (Grade IV), у 8 пациентов (21,6%) - астроцитома (Grade III), а также у 9 пациентов (24,4%) глиальные опухоли Grade I-II (ангиоретикулема, фибрилярно-протоплазматическая астроцитома или менингиома).

Мононуклеарные клетки (МНК) из венозной гепаринизированной крови выделяли стандартным методом градиентного центрифугирования на фиколле-верографине.

Генерация IL-4-индуцированных ДК (ИЛ4-ДК). Дендритные клетки генерировали путем культивирования прилипающей фракции МНК. Для этого МНК в концентрации 3Ч106кл/мл помещали в 6-луночные планшеты для культивирования (TTP, Швейцария) на 2 часа в 3 мл среды RPMI-1640 (Sigma, США), дополненной 0,3мг/мл L-глютамина, 5мМ HEPES-буфера, 100 мкг/мл гентамицина и 5% сыворотки крови АВ(IV) группы. Затем неприлипшую фракцию удаляли, а оставшиеся клетки инкубировали в полной культуральной среде в присутствии GM-CSF (Sigma-Aldrich, 40нг/мл), IL-4 (Sigma-Aldrich, 40нг/мл) и 2,5% сыворотки крови плодов коровы (БиолоТ, Санкт-Петербург) в течение 5 суток при 37°С в СО2-инкубаторе при 5% СО2 с последующим добавлением на 48 ч в качестве дозревающего стимула ЛПС (Е.colli 0114:B4, Sigma-Aldrich, 10 мкг/мл). После чего проводился подсчет ДК, а также сбор супернатантов ДК.

Генерация IFNб-индуцированных ДК (ИФН-ДК). Прилипающую фракцию МНК (полученную как указано в предыдущем протоколе) инкубировали в полной культуральной среде в присутствии GM-CSF (Sigma-Aldrich, 40нг/мл), IFNб (Роферон-А, Roche, Швейцария 1000 Ед/мл) и 2,5% сыворотки крови плодов коровы (БиолоТ, Санкт-Петербург) в течение 3 суток при 37°С в СО2-инкубаторе при 5% СО2 с последующим добавлением на 24 ч в качестве дозревающего стимула липополисахарида (ЛПС Е.colli 0114:B4, Sigma-Aldrich, 10 мкг/мл). После чего проводился подсчет ДК, а также сбор супернатантов ДК в необходимых объемах для тестирования.

В отдельной серии экспериментов в культуры ДК совместно с ЛПС добавляли препараты на основе производного этиленпиперазина (5 мкг/мл), двуцепочечной ДНК человека (5 мкг/мл), а также рекомбинантного интерлейкин-2 человека (rIL-2, 50 ЕД/мл)

Влияние дегидроэпиандростерона сульфата (ДЭАС, 10-6М, Sigma-Aldrich) и прогестерона (100 нг/мл, Sigma-Aldrich) на функциональную активность ИФН-ДК оценивали, добавляя гормоны в начале культивирования (в первые сутки) или на стадии дозревания совместно с ЛПС за 24 ч до окончания культивирования.

Определение субпопуляций клеток методом проточной цитофлуориметрии. Приготовление образцов для определения относительного содержания субпопуляций ДК, экспрессирующих поверхностные CD-маркеры, проводили в соответствии с методикой Becton Dickinson. ДК (50 мкл, 0,5106 клеток/ пробу) в растворе «А» (5% желатиноля, 0,1% азида натрия, 0,02% ЭДТА, 10% сыворотки доноров АВ (IY) группы в фосфат-забуференном физиологическом растворе) помещали в лунки 96-луночных плоскодонных планшетов. К суспензии клеток добавляли по 50 мкл FITS- или фикоэритрин (Pe)-меченных моноклональных анти-HLA-DR, -TRAIL, -FasL, -B7-H1 антител (BD PharMingen, США) и инкубировали 30 мин при 4°С. Затем клетки отмывали от антител путем добавления в каждую лунку 2,5 мл раствора «А» и центрифугирования планшета при 1000 об/мин (300g) 5 мин, после чего надосадочную жидкость сливали. Затем клетки ресуспендировали в 50 мкл раствора «А» и переносили в пробирки для цитофлуориметрического анализа, содержащие 0,4 мл лизирующего раствора (FACS Lyse, Becton Dickinson, США), что обеспечивало фиксацию с полным разрушением остаточных эритроцитов.

Для определения внутриклеточной экспрессии перфорина после отмывки раствором «А» ДК инкубировали 15 мин при комнатной температуре с 5 мкл FITC-меченных моноклональных анти-HLA-DR антител (Becton Dickinson, США). Далее проводили пермеабилизацию клеток с помощью 0,2% раствора Твин-20 и инкубировали их с моноклональными анти-перфорин-антителами, конъюгированными с Ре (Becton Dickinson, США). Затем клетки ресуспендировали в 50 мкл раствора «А» и переносили в пробирки для цитофлуориметрического анализа, содержащие 0,4 мл лизирующего раствора.

Подготовленные пробы подвергали исследованию на лазерном клеточном сортере-анализаторе FACSCalibur (Becton Dickinson, США) с использованием программы Cell Quest (Becton Dickinson, США). Процент позитивных клеток, экспрессирующих соответствующие CD-маркеры, рассчитывался на 10000 клеток в моноцитарном регионе.

Определение цитотоксической активности ИФН-ДК

JAM-тест. Для оценки цитотоксической активности ДК клетки опухолевых линий Jurkat (T-клеточная лимфома), HEp-2 (клетки эпителиальной карциномы гортани человека) и U-87 (глиобластома человека) предварительно метили 3Н-тимидином (1 мКю/лунку) в течение 18 ч, отмывали и культивировали в 96-луночных планшетах (104/лунку). Эффекторные клетки (ИФН-ДК) добавляли в соотношении 40:1, 20:1 и 10:1. Через 18 ч клетки переносили на фильтры и оценивали радиоактивность на в-счетчике (Packard Instrument, Meriden, CT). Процент цитотоксичности рассчитывали по формуле [1 - (имп/мин в культурах с эффекторными клетками/ имп/мин в контрольных культурах в отсутствие эффекторных клеток)] 100.

Для изучения роли отдельных сигнальных путей в реализации цитотоксической активности ДК в отдельных экспериментах ИФН-ДК предварительно инкубировали в течение 60 мин с химерными молекулами rhTNFR1/TNFRSF1A Fc chimera (10 мкг/мл), rhFas/TNFRSF6/CD95 Fc chimera (10 мкг/мл) и rhTRAIL R2/TNFRSF10B Fc chimera (10 мкг/мл; все реактивы R&D Systems, США).

МТТ-тест. Опухолевые клетки НЕр-2, Jurkat (50Ч103 /лунку) культивировали с ЛПС-активированными ИФН-ДК больных и здоровых доноров в 96-луночных плоскодонных планшетах в течение 24 часов в различных соотношениях эффектор/мишень (2:1, 1:1, 1:2). За 3-4 часа до окончания инкубации в лунки вносили по 20 мкл 5 мг/мл раствора желтого бромид 3-(4,5-диметилтиазол-2-ил)-2,5-тетразолия (МТТ, Sigma-Aldrich, Германия), а затем через 3-4 часа планшеты центрифугировали при 1500 об/мин в течение 5 минут, удаляли супернатант и добавляли по 150 мкл диметилсульфоксида (ДМСО, MP Boimedicals, LLC, Франция). Через 30 минут после полного растворения пурпурно-синих кристаллов формазана измерялась оптическая плотность содержимого лунок на мультилуночном спектрофотометре (Thermo Scientific Multiskan FC, Finland) при длине волны 492 нм. Расчет цитотоксической активности (%) проводился по стандартной формуле: [1-(ОПэ+м-ОПэ)/ОПм] 100, где ОПэ+м - значение оптической плотности в опытных сериях; ОПэ - значение оптической плотности в лунках с эффекторами; ОПм - значение оптической плотности в лунках с мишенями.

Детекция апоптоза в опухолевых клетках. Для определения уровня апоптоза клетки НЕр-2 инкубировали в 96-луночных планшетах (104/лунку) в присутствии ЛПС-активированных ИФН-ДК в соотношении ДК:НЕр-2 10:1 в течение 18 часов. Культуры дублировали в 12 идентичных повторах с целью получения клеток в количестве, достаточном для проведения цитофлуориметрического анализа. Перед культивированием опухолевые клетки окрашивали витальным красителем CFSE (Molecular probes, USA) с конечной концентрацией 2 мкМ в RPMI-1640 в течение 15 минут, затем отмывали в RPMI-1640 с 10% FCS (БиолоТ, Санкт-Петербург). Анализ количества делений проводили на проточном цитофлуориметре FACS Calibur (Becton Dickinson, США) по каналу FL1 флуоресценции CFSE с эмиссией 517 нм. Уровень апоптоза определяли с помощью ДНК-интерколирующего красителя 7-амино-актиномицина D (7-AAD, Calboichem, Israel). Результат выражали в виде процентного соотношения позитивных клеток к общему количеству в исследуемой области.

Оценка клеточного цикла и детекция апоптоза в Т-лимфоцитах и NK-клетках. Уровень апоптоза CD3+CD4+ и CD3+CD8+ Т-лимфоцитов, а также CD16+CD56+NK-клеток оценивали в смешанной культуре лимфоцитов (СКЛ) при культивировании в течение 3 суток МНК доноров (0,1Ч106/лунку) в 96-луночных круглодонных планшетах в присутствии аллогенных ИФН-ДК в соотношении 10:1. Культуры дублировали в 12 идентичных повторах с целью получения клеток в количестве, достаточном для проведения цитофлуориметрического анализа. В отдельных экспериментах ИФН-ДК предварительно инкубировали в течение 60 мин с химерными молекулами rhTNFR1/TNFRSF1A Fc chimera (10 мкг/мл), rhFas/TNFRSF6/CD95 Fc chimera (10 мкг/мл) и rhTRAIL R2/TNFRSF10B Fc chimera (10 мкг/мл; все реактивы R&D Systems, США).

Клеточный цикл и уровень апоптоза CD4+ и CD8+(CD4-) Т-клеток и CD16+CD56+NK-клеток оценивали методом трехцветной проточной цитометрии. Для этого, 25 мкл МНК (1,0х106), полученных после культивирования в алло-СКЛ, инкубировали в течение 45 мин при 4°С в темноте с 5 мкл FITC-коньюгированных анти-CD3-антител и 5 мкл PE-коньюгированных анти-CD4 или 5 мкл FITC-коньюгированных анти-CD16-антител и 5 мкл PE-коньюгированных анти-CD56 (Сорбент, Москва). После однократной отмывки забуференным физиологическим раствором, содержащим 0,02% ЭДТА и 1% азида натрия (раствор «А») клетки фиксировали в течение 30 мин холодным 0,5% раствором парафармальдегида. Фиксированные клетки центрифугировали, осадок ресуспендировали в 0,5 мл раствора А, содержащего РНКазу в концентрации 20 мкг/мл, после чего клетки инкубировали в темноте в течение 30 мин при 37°C. Затем клетки обрабатывали 7-AAD (Calbiochem, Германия) в конечной концентрации 2 мкг/мл в темноте в течение 30 минут при 4°C. Анализ клеточного цикла проводили по оценке гистограмм ДНК (красная флуоресценция). Относительное содержание клеток с диплоидным (клетки в G0/G1 фазах клеточного цикла) и гипердиплоидным (клетки в S, G2/M фазах клеточного цикла) набором ДНК определяли в гейтах CD3+CD4+ или CD3+CD8+ (CD4-) Т-лимфоцитов (зеленая и оранжевая флуоресценция), или в гейте CD16+CD56+NK-клеток (зеленая флуоресценция). Апоптотические клетки, ДНК которых подвергалась фрагментации, формировали характерный гиподиплоидный пик. Результаты выражались в виде процентного соотношения позитивных клеток к общему количеству CD3+CD4+, CD3+CD8+ Т-лимфоцитов и CD16+CD56+NK-клеток (не менее 10000). В отдельных экспериментальных сериях определяли влияние нейтрализующих анти-PD-1 антител (5 мкг/мл, J116; eBioscience) на уровень апоптоза и распределение по клеточному циклу МНК в 3-суточной алло-СКЛ.

Статистическая обработка полученных результатов. Математическая обработка полученных результатов проводилась методами описательной, параметрической и непараметрической статистики на персональном компьютере с использованием программы «STATISTICA 6.0». Таблицы и рисунки содержат информацию в виде средних арифметических величин (М) и стандартных ошибок средних (SE), медианных значений; в отдельных случаях представлены диапазоны квартильных значений. Сравнение вариационных рядов осуществлялось с помощью непараметрического U критерия Вилкоксона-Манна-Уитни. Различия считали достоверными при уровне значимости pu < 0,05.

Результаты и обсуждение

Для оценки естественной противоопухолевой цитотоксической активности ИФН-ДК исследовали способность ДК лизировать опухолевые клетки линий HEp-2 (эпидермоидная карцинома гортани человека) и Jurkat (Т-клеточная лимфома), различающихся по чувствительности к TRAIL-индуцированному апоптозу. Согласно данным литературы опухолевые клетки линии Jurkat чувствительны к TRAIL- и FasL-опосредованному апоптозу [Hoves S., 2003; Lee N., 2003], тогда как линия НЕр-2 является TRAIL-резистентной [Jiang М., 2011] и слабо чувствительной к FasL-медиированному апоптозу [Morton E., 2007]. Кроме того, линия НЕр-2 является NK-резистентной [Jewett A., 2003], что позволяет исключить цитотоксический эффект, вызванный возможной примесью NK-клеток в популяции ДК. В качестве основного метода определения цитотоксической активности ДК был выбран стандартный тест с меченными 3Н-тимидином опухолевыми клетками [Hoves S., 2003].

ЛПС-стимулированные ИФН-ДК здоровых доноров обладали дозозависимой цитотоксической активностью против опухолевых клеток линий Jurkat и НЕр-2 (рис. 1А). Характерно, что цитотоксический эффект ИФН-ДК против линии Jurkat был выше, чем против линии НЕр-2 при всех соотношениях эффекторов-мишеней. Супернатанты ИФН-ДК (рис. 1Б), в отличие от самих ДК, при добавлении в дозе 30% (v/v) в культуры опухолевых клеток проявляли слабую цитотоксическую активность против клеток линии Jurkat, в среднем на уровне 13,0 ± 1,69%, и практически не оказывали цитотоксического действия против опухолевых клеток НЕр-2 (1,71 0,99%).



Рис. 1. Цитотоксическая активность ЛПС-стимулированных ИФН-ДК здоровых доноров (А) и супернатантов ИФН-ДК (Б) против клеток опухолевых линий

Примечание: на рис. А представлены данные в виде средних значений (M ± SE) цитотоксической активности ДК, на рис. Б - индивидуальные значения цитотоксической активности супернатантов ДК. * - pU<0,05 -достоверность различий в соотношении 20:1. pT-T - достоверность различий по Т-тесту для независимых образцов.

Сравнительный анализ цитотоксической активности ИФН-ДК и ИЛ4-ДК показал, что способность ЛПС-стимулированных ИФН-ДК лизировать клетки TRAIL-чувствительной линии Jurkat была выше в 1,8 - 2 раза при всех соотношениях эффекторов-мишеней по сравнению с ИЛ4-ДК (рис. 2А). В то же время ИФН-ДК обладали сходной c ИЛ4-ДК цитотоксической активностью против TRAIL-резистентной опухолевой линии НЕр-2 (рис. 2Б).

Рис. 2. Цитотоксическая активность ИФН-ДК и ИЛ4-ДК против опухолевых клеток линий Jurkat (А) и НЕр-2 (Б)

Здесь и далее представлены данные в виде средних значений (M ± SE) цитотоксической активности ДК. * - pU<0,05 -достоверность различий между ИФН-ДК и ИЛ4-ДК.

Для того чтоб выяснить, может ли степень зрелости влиять на цитотоксическую активность ДК, был проведен анализ цитотоксической активности интактных (неактивированных) и ЛПС-стимулированных ИФН-ДК и ИЛ4-ДК при соотношении эффекторов-мишеней 20:1. Интактные и ЛПС-активированные ИФН-ДК и ИЛ4-ДК генерировали от одних и тех же доноров, что позволило сравнить 4 типа ДК от одного индивида. Активация ЛПС сопровождалась снижением цитотоксической активности ИФН-ДК против TRAIL-чувствительной линии Jurkat (рис. 3Б), а также ИЛ4-ДК - против TRAIL-резистентной линии НЕр-2 (рис. 3А). Кроме того, как и ЛПС-активированные, интактные ИФН-ДК так же обладали более высокой цитотоксичностью против Jurkat по сравнению с аналогичными типами ИЛ4-ДК.

Рис. 3. Цитотоксическая активность различной степени зрелости ИФН-ДК и ИЛ4-ДК здоровых доноров против опухолевых линий НЕр-2 (А) и Jurkat (Б)

В то же время добавление ЛПС в культуры ИФН-ДК и ИЛ4-ДК в целом по группам значимо не влияло на уровень их цитотоксической активности против опухолевых клеток линии НЕр-2 и Jurkat, соответственно. Однако при индивидуальном анализе было выявлено, что активация ИФН-ДК ЛПС могла вызывать оппозитные эффекты, т.е. усиливать и ингибировать цитотоксическую активность против НЕр-2. Так, в 60% (6/10) случаев добавление ЛПС в культуры ИФН-ДК сопровождалось снижением цитотоксической активности против НЕр-2 в среднем в 2,5 раза (с 19,4 ± 1,9% до 7,7 ± 2,4%), в остальных 40% случаев цитотоксическая активность возрастала (в среднем с 8,5 ± 2,4% до 21,3 ± 6,0%). Направленность эффекта была сопряжена с исходным уровнем цитотоксической активности ДК. Можно предположить, что генерированные in vitro ИФН-ДК характеризовались функциональной гетерогенностью, обусловленной соотношением ДК с различной степенью зрелости. Эта гетерогенность, по-видимому, и определяла различную направленность эффекта ЛПС на цитотоксическую активность ИФН-ДК.

Рис. 4. Влияние ЛПС-стимулированных ИФН-ДК здоровых доноров на уровень апоптоза в опухолевых клетках линии НЕр-2

Представлены данные 4-х отдельных экспериментов

Чтобы выяснить, связано ли разрушение опухолевых клеток с индукцией апоптоза, был проведен анализ клеточного цикла опухолевых клеток линии НЕр-2, предварительно меченных витальным красителем CFSE (рис. 4). Совместное культивирование CFSE-меченных клеток НЕр-2 с ЛПС-стимулированными ИФН-ДК при соотношении эффекторов-мишеней 10:1 в 4-х отдельных экспериментах сопровождалось почти трехкратным увеличением количества опухолевых клеток в фазе апоптоза в среднем с 14,5 ± 3,18% до 39,0 ± 5,15%. Таким образом, киллерный эффект ИФН-ДК опосредовался через запуск программированной гибели опухолевых клеток.

Учитывая эти данные, на следующем этапе представлялось важным исследовать, посредством каких механизмов реализуется цитотоксический эффект ИФН-ДК против опухолевых клеток. Для этого был проведен анализ экспрессии различных проапоптогенных молекул в культурах ИФН-ДК.

ИФН-ДК экспрессировали на мембране молекулы TRAIL, FasL, а также содержали внутриклеточно молекулу перфорина (табл.1). Кроме того, в культурах ИФН-ДК определялось почти 40% клеток, экспрессирующих на мембране молекулу B7-H1, которая является лигандом для рецептора смерти PD-1. Таким образом, ИФН-ДК экспрессировали достаточно широкий набор молекул, обладающих проапоптогенной активностью.

Табл. 1. Экспрессия поверхностных и внутриклеточных проапоптогенных молекул ЛПС-стимулированными ИФН-ДК

Показатель	N	M ± SE, %	Median (LQ-UQ), %
TRAIL+ДК	19	9,4 ± 1,2	8,0 (5,0 - 12,0)
FasL+ДК	23	19,4 ± 2,0	15,0 (11,0 - 25,0)
B7-H1+ДК	15	38,6 ± 4,5	38,0 (28,0 - 47,0)
Perforin+ДК	8	6,5 ± 1,6	4,5 (3,5 - 9,5)

Примечание: представлены средние (M ± SE, %), медианные (Median, %) и диапазон квартильных (LQ-UQ, %) значений, N - количество наблюдений.

Согласно данным литературы, IFNб оказывает стимулирующее действие на экспрессию молекулы TRAIL [Fanger N.A., 1999]. Кроме того, как выше было продемонстрировано, ИФН-ДК обладают более высокой цитотоксической активностью против TRAIL-чувствительной линии Jurkat по сравнению с ИЛ4-ДК. Для того чтобы выяснить, связаны ли выявленные различия цитотоксической активности ДК с изменением экспрессии TRAIL, на следующем этапе был проведен сравнительный анализ экспрессии мембранной формы TRAIL в популяциях интактных и ЛПС-активированных ИФН-ДК и ИЛ4-ДК.



Рис. 5. Экспрессия TRAIL на ИЛ4-ДК и ИФН-ДК

Представлены средние (M ± SE, %) значения относительного количества ДК, экспрессирующих TRAIL.

Активация ИФН-ДК и ИЛ4-ДК ЛПС сопровождалась тенденцией к снижению экспрессии TRAIL (рис. 5). Также следует отметить, что как интактные, так и ЛПС-активированные ИФН-ДК содержали почти в 2 раза большее количество TRAIL-позитивных клеток по сравнению с аналогичными культурами ИЛ4-ДК. Таким образом, продемонстрированная выше более высокая (в сравнении с ИЛ4-ДК) цитотоксическая активность интактных и ЛПС-активированных ИФН-ДК против TRAIL-чувствительных мишеней ассоциировалась с более высокой экспрессией ИФН-ДК молекулы TRAIL.

В отношении TRAIL-резистентных клеток-мишеней, которыми являются большинство солидных опухолей [Griffith T.S., 1998; Kim K., 2000; Eggert A., 2001], литературные данные об их чувствительности к различным цитотоксическим молекулам немногочисленны. В связи с этим следующий этап исследования был посвящен изучению возможных сигнальных путей, опосредующих цитотоксическую активность ИФН-ДК против TRAIL-резистентной линии НЕр-2. С этой целью была проведена серия экспериментов с предварительной часовой обработкой ЛПС-стимулированных ИФН-ДК растворимыми формами рецепторов к лигандам, относящимся к TNF семейству (рис. 6). Предварительная обработка TNFR1:Fc ИФН-ДК приводила практически к полному блокированию цитотоксической активности против клеток опухолевой линии НЕр-2 (в среднем на 88%), тогда как добавление растворимой формы TRAILR2:Fc и Fas:Fc не подавляло киллерную активность ДК. Таким образом, полученные данные подтверждают резистентность клеток HЕp-2 к TRAIL и FasL-медиируемому апоптозу и свидетельствуют о том, что лизис клеток HЕp-2 опосредуется с вовлечением TNFб/TNF-RI сигнального пути.

Рис. 6. Нейтрализация цитотоксической функции ДК растворимыми формами R:Fc, специфичными для лигандов, относящихся к TNF-семейству

Представлены данные в виде средних значений (M ± SE) цитотоксической активности ДК при соотношении ДК:НЕр-2 20:1. * pU< 0,01- достоверность различий между контрольной группой ДК в отсутствии R:Fc (0) и ДК в присутствии TNFR1:Fc.

Учитывая тот факт, что супернатанты ИФН-ДК не обладают киллерной активностью против клеток НЕр-2, можно предположить, что цитотоксичность ДК обусловлена трансмембранной формой TNFб, которая, согласно данным литературы, также может взаимодействовать с TNF-R1 [Horiuchi T., 2010].



Для того чтобы выяснить возможное значение цитотоксической активности ДК в противоопухолевой защите, было проведено сравнительное исследование цитотоксичности ИФН-ДК здоровых доноров и больных глиальными опухолями головного мозга. При индивидуальной оценке цитотоксической активности ЛПС-стимулированных ИФН-ДК в соотношении эффекторы:мишени 20:1 группа больных характеризовалась достаточно высокой гетерогенностью по данному параметру (рис. 7). Так, у 25 из 37 пациентов (68%) цитотоксическая активность ИФН-ДК против опухолевых клеток НЕр-2 практически полностью отсутствовала, тогда как у 12 пациентов (32%) оставалась относительно сохранной. Учитывая неоднородность больных по гистологическим типам опухолей головного мозга, было проведено разделение больных на подгруппы в зависимости от степени злокачественности глиальных опухолей. Первую подгруппу (n=9) составили пациенты с низкой степенью злокачественности (Grade I-II) с такими вариантами опухолей, как ангиоретикулема, фибрилярно-протоплазматическая астроцитома или менингиома. Вторая подгруппа включала 28 больных с высокой степенью злокачественности (Grade III-IV), в т.ч. 8 пациентов с анапластической астроцитомой и 20 пациентов с глиобластомой. Проведенный анализ пациентов с учетом гистологического варианта опухоли показал (рис. 8), что ИФН-ДК больных с высокой степенью злокачественности (Grade III-IV) обладали очень слабой цитотоксической активностью во всех исследуемых соотношениях эффекторов-мишеней. В то же время ИФН-ДК пациентов с опухолями низкой степени злокачественности (Grade I-II) сохраняли способность к дозозависимому лизису клеток HEp-2 на уровне значений цитотоксической активности ИФН-ДК доноров.

В отдельной серии экспериментов был также проведен сравнительный анализ цитотоксической активности ДК больных с высокой степенью злокачественности опухоли (Grade III-IV) против TRAIL-чувствительной линии Jurkat (рис. 9). Обращает на себя внимание тот факт, что ДК больных, неспособные лизировать клетки линии HЕp-2, эффективно лизировали клетки линии Jurkat. Более того, цитотоксическая активность ИФН-ДК больных против клеток Jurkat была даже повышенной по сравнению со здоровыми донорами (50,43 ± 6,51% vs. 37,65 ± 4,98%, соответственно).

Рис. 9. Цитотоксическая активность ИФН-ДК здоровых доноров и больных опухолями головного мозга против клеток линии Jurkat в МТТ-тесте

Оценка цитотоксической активности ДК проводилась при соотношении ДК:Jurkat 1:1.

Рис. 10. Кривые выживаемости больных опухолями головного мозга с сохранной и сниженной цитотоксической активностью ИФН-ДК

10,3% - нижняя граница квартильного диапазона цитотоксической активности ИФН-ДК здоровых доноров.

Сравнение показателей выживаемости у больных с сохранным и сниженным уровнем цитотоксической активности ИФН-ДК против клеток HEp-2 (рис. 10) показало, что пациенты со сниженной цитотоксической активностью (<10,3%) характеризовались более низкой выживаемостью. Медиана выживаемости у пациентов этой группы, куда вошли 15 больных с Grade III-IV и 1 больного с Grade II, составила - 13 месяцев. В то же время в группе с сохранной цитотоксической активностью (>10,3%), к которой были отнесены 5 больных с Grade I-II и 4 - с Grade III, все пациенты к моменту проведения анализа были живы, а средний срок наблюдения составил 38,9 ± 9,5 месяцев.

Таким образом, низкая цитотоксическая активность ДК является характерным признаком пациентов с опухолями головного мозга наиболее высокой степени злокачественности и ассоциирована с низкими показателями выживаемости. При этом практически полное отсутствие цитотоксической активности в культурах клеток HЕp-2 и повышенная цитотоксическая активность против TRAIL-чувствительных мишеней свидетельствует о селективном характере дефектности ИФН-ДК. Выявленное нарушение эффекторной функции ДК может ослаблять противоопухолевый ответ и являться одной из причин несостоятельности противоопухолевой защиты у больных со злокачественными опухолями головного мозга. В этой связи представлялось важным исследовать возможные способы коррекции цитотоксической функции ИФН-ДК у больных с внутримозговыми глиальными опухолями высокой степени злокачественности. В качестве потенциальных модуляторов были выбраны иммуноактивные препараты на основе сополимера N-окси-1,4-этиленпиперазина и (N-карбоксиэтил)-1,4-этиленпиперазиния бромида (сЭП), двуцепочечной ДНК человека (ДГД) а также рекомбинантного интерлейкин-2 человека (rIL-2). Для оценки влияния иммуноактивных факторов на цитотоксический потенциал ДК больных на данном этапе был применен МТТ-тест. Цитотоксическая активность ДК больных глиальными опухолями высокой степени злокачественности против клеток линии НЕр-2, детектируемая в данном тесте, была также существенно ниже, чем у доноров.

Добавление перечисленных препаратов в культуры ИФН-ДК на этапе конечного созревания усиливало исходно низкий уровень цитотоксической активности ДК против клеток HЕp-2 практически у всех больных (рис. 11). Тем не менее, наиболее выраженной способностью к восстановлению цитотоксической активности ДК больных обладал rIL-2.

Рис. 11. Влияние иммуноактивных факторов на цитотоксическую активность ИФН-ДК больных опухолями головного мозга в МТТ-тесте

* - pU<0,05 -достоверность различий между интактными ИФН-ДК больных (0) и ИФН-ДК больных, культивированными в присутствии сЭП, ДГД или rIL-2, при соотношении ДК:НЕр-2 1:1. Вертикальная линия - среднее значение цитотоксичности ИФН-ДК здоровых доноров.

Наряду с цитокинами и другими иммуноактивными медиаторами регуляция функций ДК может осуществляться с вовлечением гормонов. Так, согласно данным литературы, гормон коры надпочечников дегидроэпиандростерон сульфата (ДЭАС) оказывает стимулирующее действие на дифференцировку и созревание ДК [Селедцова Н.В., 2007; Черных Е.Р., 2009]. В то же время прогестерон подавляет созревание ДК, индуцируя толерогенные свойства ДК [Jones L.A, 2010; Xu Y., 2011]. Можно предположить, что цитотоксическая активность ДК также подвержена гормональной регуляции.

Проведенные исследования показали (рис. 12А), что добавление ДЭАС в дозе 10-6М или прогестерона в дозе 100нг/мл на этапе конечного созревания совместно с ЛПС (за 24 ч до окончания культивирования) в культуры ИФН-ДК достоверно снижало цитотоксическую активность ДК против линий HEp-2 и Jurkat. В то же время добавление ДЭАС на этапе дифференцировки (т.е. с первых суток культивирования) сопровождалось умеренным, но значимым усилением цитотоксической активности ДК против клеток линии НЕр-2 (в среднем с 23,8 ± 1,8% до 28,9 ± 1,9%), однако не влияло на цитотоксическую активность ДК в культурах клеток Jukat (рис. 12Б). Прогестерон на этапе дифференцировки не оказывал значимого влияния на цитотоксическую активность ИФН-ДК против клеток НЕр-2 и Jurkat.



Рис. 12. Цитотоксическая активность ИФН-ДК, обработанных ДЭАС и прогестероном на этапе конечного созревания (А) и на этапе дифференцировки (Б)

Оценка цитотоксической активности ДК проводилась при соотношении ДК:опухолевые клетки 20:1. * - pU<0,05 -достоверность различий между интактными и гормон-модифицированными ИФН-ДК.

Таким образом, полученные результаты о гормон-опосредованной регуляции цитотоксичности ИФН-ДК могут представлять интерес как в плане раскрытия новых механизмов гормональной регуляции естественной киллерной активности ДК при различных физиологических и патологических состояниях, так и в аспекте направленной регуляции цитотоксической функции ИФН-ДК in vitro при проведении клеточной терапии.

Согласно данным литературы, наряду с опухолевыми клетками рецепторы к различным цитотоксическим лигандам экспрессируют активированные Т-лимфоциты и NK-клетки [Gupta S., 2005; Jeremias I., 1998; Mirandola P., 2004]. Можно предположить, что клетки иммунной системы могут выступать в качестве потенциальных мишеней цитотоксической активности ИФН-ДК. В этом случае, цитотоксическая активность ДК против Т-лимфоцитов и NK-клеток в физиологических условиях может являться одним из механизмов ограничения иммунного ответа, а при патологии - выступать в качестве одного из механизмов иммунодепрессии. В связи с этим на заключительном этапе работы было проведено исследование цитотоксического эффекта ИФН-ДК против Т-лимфоцитов и NK-клеток.

Рис. 13. Влияние ИФН-ДК на апоптоз CD4+ и CD8+Т-лимфоцитов и NK-клеток

* - pU<0,05 - достоверность различий по сравнению с контролем (МНК).

Как видно из данных рисунка 13, стимуляция МНК аллогенными ИФН-ДК сопровождалась более чем 3-кратным возрастанием уровня апоптоза CD3+CD4+ и CD3+CD8+Т-лимфоцитов, а также CD16+CD56+ NK-клеток в 3х-суточных культурах по сравнению с относительным количеством апоптотических лимфоцитов среди нестимулированных МНК.

Для того чтобы оценить возможное участие различных сигнальных путей в индукции апоптоза лимфоцитов при их взаимодействии с ДК, была проведена серия экспериментов с использованием растворимых форм рецепторов к лигандам TNF-семейства (рис. 14). Предварительная обработка ДК химерными рецепторами TRAILR2:Fc, TNFR1:Fc и Fas:Fc приводило к достоверному снижению относительного количества CD3+CD4+Т-клеток в фазе апоптоза в среднем на 20-25%. В то же время снижение уровня апоптоза среди популяции CD8+Т-лимфоцитов наблюдалось только при блокировании TNFб-опосредованного пути добавлением TNFR1:Fc к ДК (в среднем на 24%). Таким образом, цитотоксический эффект ИФН-ДК против CD4+ и CD8+ Т-лимфоцитов реализуется с вовлечением различных сигнальных путей.

Рис. 14. Влияние растворимых форм R:Fc, специфичных для лигандов TNF- семейства, на способность ИФН-ДК индуцировать апоптоз CD4+ и CD8+ Т-клеток в СКЛ

*- pU<0,05 - достоверность различий по сравнению с контролем (МНК+ДК).

Согласно данным литературы запуск программы апоптоза Т-лимфоцитов может также осуществляться через B7-H1/PD1-сигнальный путь. Для того чтобы проверить предположение об участии B7-H1/PD-1-сигнального пути в индукции апоптоза клеток иммунной системы при их взаимодействии с ДК, была проведена серия экспериментов с использованием блокирующих анти-PD-1 антител (рис. 15). Оценка клеточного цикла Т-лимфоцитов показала, что добавление нейтрализующих анти-PD-1 антител в СКЛ, индуцированную аллогенными ИФН-ДК, приводило к достоверному снижению количества CD3+CD4+ и CD3+CD8+Т-лимфоцитов в фазе апоптоза в среднем в 2 и 1,8 раза, соответственно, по сравнению с контролем (в отсутствие нейтрализующих антител).

Рис. 15. Влияние анти- PD-1 антител на уровень апоптоза Т-лимфоцитов и NK-клеток в СКЛ, индуцированной ДК здоровых доноров

*-pU<0,05 - достоверность различий показателей в отсутствии и в присутствие антител против PD-1.

Оценка влияния нейтрализующих анти-PD-1 антител на уровень апоптоза в популяции NK-клеток в присутствии ИФН-ДК (рис. 15) выявила тенденцию к снижению уровня апоптоза в популяции CD16+CD56+ NK-клеток (рU=0,18), что может указывать на возможное участие B7-H1/PD-1 сигнального пути в реализации цитотоксической активности ИФН-ДК против активированных NK-клеток.

Таким образом, можно заключить, что ИФН-ДК здоровых доноров обладают противоопухолевой цитотоксической активностью, которая ассоциируется с экспрессией ДК достаточно широкого спектра проапоптогенных молекул. В основе цитотоксического эффекта ДК лежит запуск программированной гибели опухолевых клеток. При этом цитотоксический эффект против TRAIL-резистентных мишеней требует контакта, а против TRAIL-чувствительных клеток опосредуется с участием растворимых факторов. ИФН-ДК отличаются от ИЛ4-ДК более высокой цитотоксической активностью против TRAIL-чувствительных опухолевых клеток, что сопряжено с более высоким уровнем экспрессии TRAIL. В то же время ведущую роль в реализации цитотоксической активности ИФН-ДК против TRAIL-резистентных мишеней НЕр-2 играет TNFб/TNF-R1-сигнальный путь.

Киллерная активность ИФН-ДК против TRAIL-резистентных клеток HЕp-2 существенно снижена у больных внутримозговыми глиальными опухолями высокой степени злокачественности, что свидетельствует о нарушении TNFб-медиируемого апоптоза у данной группы больных. Однако выявленная у больных глиальными опухолями высокой степени злокачественности дисфункция ИФН-ДК частично восстанавливается под действием различных иммуноактивных факторов. Кроме того, естественная киллерная активность ИФН-ДК подвержена влиянию стероидных гормонов - ДЭАС и прогестерона.

Цитотоксическая активность ИФН-ДК здоровых доноров может быть направлена против активированных Т-лимфоцитов и NK-клеток. При этом индукция апоптоза лимфоцитов при их взаимодействии с ДК реализуется с вовлечением молекул семейства TNF (TRAIL, TNFб и FasL) и B7-H1. СD4+ и CD8+Т-клетки различаются по чувствительности к проапоптогенным молекулам TNF-семейства, но обладают сходной чувствительностью к PD-1/B7-H1-медиируемому апоптозу, который вносит наиболее существенный вклад в реализацию цитотоксической активности ИФН-ДК против обоих типов Т-клеток, а также активированных NK-клеток.

ВЫВОДЫ

Генерируемые в присутствие интерферона-б ДК экспрессируют различные проапоптогенные молекулы (трансмембранные лиганды TRAIL, FasL и В7-Н1, перфорин) и характеризуются дозозависимым цитотоксическим эффектом против клеток TRAIL-чувствительных и TRAIL-резистентных опухолевых линий, что свидетельствует о наличии противоопухолевой цитотоксической активности ИФН-ДК.

ИФН-ДК характеризуются более высокой экспрессией TRAIL и более выраженной цитотоксической активностью против клеток Jurkat, что свидетельствует об их более высоком противоопухолевом потенциале в отношении TRAIL-чувствительных мишеней по сравнению с ИЛ4-ДК.

Цитотоксический эффект ИФН-ДК в культурах TRAIL-резистентных клеток HEp-2 обусловлен индукцией апоптоза и опосредуется с участием TNFб, на что указывает практически полная отмена литического эффекта ДК при блокировании TNF/TNF-R1-сигнального пути.

ИФН-ДК больных внутримозговыми опухолями высокой степени злокачественности характеризуются сниженной цитотоксической активностью против TRAIL-резистентных мишеней и сохранной цитотоксической активностью против TRAIL-чувствительных мишеней, что свидетельствует о нарушении TNFб-опосредованного механизма цитотоксичности ДК и обосновывает возможность оценки киллерной функции ДК в качестве диагностического маркера степени злокачественности и предиктора выживаемости у больных злокачественными глиомами.

...