27

Размещено на http://www.allbest.ru/

АВТОРЕФЕРАТ

диссертации на соискание ученой степени

кандидата биологических наук

Биологические особенности трансформации плазматических клеток и лабораторная диагностика множественной миеломы

14.00.46 - клиническая лабораторная диагностика

Русанова Екатерина Борисовна

Санкт-Петербург - 2009

Работа выполнена в Федеральном государственном учреждении здравоохранения "Всероссийский центр экстренной и радиационной медицины имени А.М. Никифорова" МЧС России и Государственном образовательном учреждении высшего профессионального образования Санкт-Петербургском государственном медицинском университете имени академика И.П. Павлова Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию

Научный руководитель:

доктор медицинских наук ЗУЕВА Екатерина Евгеньевна

Официальные оппоненты:

доктор биологических наук БОГОСЛОВСКИЙ Михаил Михайлович

доктор биологических наук профессор ПОЛЕВЩИКОВ Александр Витальевич

Ведущее учреждение ГОУ ДПО "Санкт-Петербургская медицинская академия последипломного образования Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию"

Защита состоится "17" декабря 2009 года в _____ часов на заседании диссертационного совета Д 205.001.01 при Федеральном государственном учреждении здравоохранения "Всероссийский центр экстренной и радиационной медицины имени А.М. Никифорова" МЧС России по адресу: Санкт-Петербург, ул. Академика Лебедева, д.4/2.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Федерального государственного учреждения здравоохранения "Всероссийский центр экстренной и радиационной медицины имени А.М. Никифорова" МЧС России.

Автореферат разослан "_____" ноября 2009 года.

Ученый секретарь диссертационного совета кандидат медицинских наукМ.В. Санников

Общая характеристика работы

Множественная миелома - заболевание системы крови, биологической основой которого является накопление трансформированных плазматических клеток и продуцируемого ими патологического белка. Органные нарушения, являющиеся критериями постановки диагноза, включают деструкцию костной ткани, гиперкальциемию, почечную недостаточность и анемию. Согласно классификации Всемирной Организации Здравоохранения (ВОЗ) 2008 г., множественная миелома (ММ) относится к В-клеточным лимфоидным опухолям низкой степени злокачественности. Для постановки диагноза и определения стадии ММ требуется наличие таких критериальных признаков, как (1) содержание плазматических клеток в костном мозге более 10% и/или наличие плазмоцитомы, подтверждённой гистологическим исследованием, (2) наличие моноклонального белка в сыворотке и/или в моче, (3) органная недостаточность, обусловленная миеломной болезнью.

ММ занимает 1% среди всех онкологических заболеваний, составляя при этом 10% от всех злокачественных заболеваний системы крови. Распространенность заболевания ММ в России и Европе колеблется от 1,2 до 6 случаев на 100000 населения в год. В Санкт-Петербурге в 2004 году заболеваемость составила 2,5 на 100000 населения, было зарегистрировано 387 больных и 97 новых случаев ММ (Абдулкадыров К.М., 2004). Возрастная медиана заболевания 71 год, лица до 40 лет среди общего количества больных составляют не более 2%, а доля пациентов моложе 30 лет колеблется от 0,18 до 1% среди всех случаев верифицированной ММ (Абдулкадыров К. М., 2004). Появление новых лекарственных препаратов и новых возможностей лечения ММ приводит к особой востребованности выявления минимальной остаточной болезни (МОБ) и верификации ремиссии заболевания.

Опухолевая трансформация В-лимфоцитов при ММ происходит в герминальных центрах периферических лимфоидных органов после соматических гипермутаций реаранжированных генов иммуноглобулинов и изотипического переключения синтеза антител (DeVita V. T., 2001). Трансформированные, претерпевшие опухолевую трансформацию, плазматические клетки наряду с нормальными мигрируют обратно в костный мозг, где под влиянием микроокружения костного мозга формируют опухолевый клон, что приводит к остеодеструкции. Цитокины, секретируемые стромальными элементами костного мозга, играют важную роль для вновь прибывших в костный мозг плазматических клеток. В частности, показано, что IL-6 является фактором роста для миеломных клеток. В результате ряда последующих активационных процессов в трансформированных плазматических клетках, последние приобретают высокую пролиферативную активность вместе со снижением их способности к апоптотической гибели (Chauhan D., 2000). Иммунофенотипический профиль миеломных клеток имеет ряд особенностей: в процессе дифференцировки В-лимфоцитов происходит потеря пан-В-клеточных маркеров, таких как CD19 и CD20 и приобретение большого количества молекул адгезии. Приобретение этих молекул связано с возвращением миеломных клеток обратно в костный мозг после изотипического переключения синтеза иммуноглобулинов в лимфатическом узле. Маркер адгезии CD56 отсутствует на поверхности плазматических клеток в норме, экспрессируется миеломными клетками и исчезает на этапе прогрессии заболевания (DiGiuseppe J. A., 2007; Куртова А.В., 2008).

В настоящее время в Санкт-Петербурге и в Российской Федерации, несмотря на проведение современного высокотехнологичного лечения, отсутствует единый алгоритм первичной диагностики выявления МОБ при ММ. Поэтому, вопрос о критериях оценки эффективности терапии в различных лечебно-профилактических учреждениях остается открытым и сегодня. Аналогичные работы за пределами Российской Федерации также носят эпизодический характер и на сегодняшний день не могут быть с уверенностью перенесены в диагностические лаборатории. Настоящее исследование посвящено определению характера продукции моноклонального белка плазматическими клетками и выявлению иммунофенотипических особенностей плазматических клеток при ММ с применением современных методов лабораторной диагностики: иммунофиксации и иммунофенотипирования методом проточной цитометрии.

Цель работы:

Выявить биологические особенности трансформации плазматических клеток при множественной миеломе для оптимизации диагностики и лабораторного мониторинга.

Задачи работы:

1. Определить характер продукции белков трансформированными плазматическими клетками при множественной миеломе.

2. Выявить особенности сочетанной продукции различных белков при множественной миеломе.

3. Разработать способ идентификации плазматических клеток методом проточной цитометрии и оценить иммунофенотипические особенности трансформированных плазматических клеток при множественной миеломе.

4. Сформировать комплекс лабораторных исследований для диагностики и мониторинга множественной миеломы.

Научная новизна и теоретическая значимость работы

Впервые определены иммунологические варианты продукции моноклонального белка при множественной миеломе и впервые оценена аберрантность (особенность) иммунофенотипического профиля трансформированных плазматических клеток для популяции больных РФ (Северо-Западного региона). Разработана панель иммунофенотипирования методом проточной цитометрии для выявления сохранных и трансформированных плазматических клеток на этапах первичной диагностики и оценки минимальной остаточной болезни. Впервые изучены биологические особенности аберрантности иммунофенотипа плазматических клеток и иммунологического варианта продукции моноклонального белка при различных типах множественной миеломы. Для миеломы Бенс-Джонса характерна экспрессия маркера CD19 в 86% случаев, для миеломы с продукцией моноклонального IgG характерно наличие экспрессии маркера CD117 в 67% случаев. Для IgA-миеломы, в частности, IgA/лямбда выявлены следующие аберрантности иммунофенотипа - в 100% случаев плазматические клетки позитивны по экспрессии CD19, в 83% выявлена экспрессия CD56 и экспрессия CD117 в 67% случаев. Впервые проведено комплексное сопоставление результатов определения концентраций основных классов иммуноглобулинов сыворотки крови, легких цепей каппа и лямбда типа сыворотки крови и мочи, уровня бета-2-микроглобулина и иммунофиксации для выявления и определения типа моноклонального белка при множественной миеломе. Впервые выявлены гендерные различия больных множественной миеломой на этапе оценки минимальной остаточной болезни: положительный результат иммунофиксации сыворотки и увеличение содержания IgA чаще наблюдали у мужчин, в то время как увеличение концентрации легких цепей каппа типа в сыворотке чаще наблюдали у женщин. Предложен алгоритм расчета относительного количества плазматических клеток, позволяющий на основании значений, полученных методом проточной цитометрии, предположить относительное количество плазматических клеток, которое будет определено методом световой микроскопии. Показано, что иммунологический вариант моноклонального белка сохраняется в ходе заболевания и позволяет проводить диагностику минимальной остаточной болезни.

Практическая значимость работы

1. Метод иммунофиксации идентифицирует моноклональный белок, что свидетельствует о трансформации плазматических клеток и является объективным критерием множественной миеломы на этапах диагностики и оценки минимальной остаточной болезни.

2. Особенности иммунофенотипического профиля плазматических клеток на этапах диагностики и оценки эффективности терапии позволяют проводить определение относительного количества трансформированных и нормальных плазматических клеток для мониторинга минимальной остаточной болезни множественной миеломы.

3. Предложенный комплекс иммунологической диагностики ММ, включающий классические методы (определения концентраций иммуноглобулинов основных классов сыворотки крови, бета-2-микроглобулина, легких цепей сыворотки и мочи, морфологическую оценку состава клеток костного мозга), и современные методы - иммунофенотипирование и иммунофиксацию, выявляет биологические особенности трансформированных плазматических клеток каждого больного множественной миеломой, подтверждает клональность заболевания и выявляет минимальную остаточную болезнь.

Апробация

Основные положения диссертационного исследования были доложены на Х Всероссийском научном форуме с международным участием имени акад.В.И. Иоффе "Дни иммунологии в Санкт-Петербурге" (2006), на научном совете СПбГМУ им. акад. И.П. Павлова в качестве победителя конкурса "Стипендия года 2007", на 7-й летней иммунологической школы им. проф. Дж. Хамфри (Москва, 2007), на международной встрече памяти Р.М. Горбачевой (Санкт-Петербург, 2007), на межвузовской конференции Общества молодых ученых СПбГМУ им. акад. И.П. Павлова "Санкт-Петербургские научные чтения" - 2007 и 2008, на международной конференции Европейской ассоциации по гематологии (Берлин, 2009). По теме диссертационного исследования были получены гранты Правительства Санкт-Петербурга Фундаментального Естествознания в 2006, 2007 и 2008 гг., грант Правительства Санкт-Петербурга в области науки и техники 2007 г., грант для молодых ученых СПбГМУ им. акад. И.П. Павлова в 2007 и 2008 гг.

лабораторная диагностика множественная миелома

Внедрение результатов исследования

При выполнении настоящей работы проведено обследование 241 пациента, 182 (75,5%) из которых были госпитализированы в клиники Санкт-Петербурга, Ленинградской области и республики Карелия и 59 амбулаторных пациентов (24,5%) в диапазоне от 32 лет до 91 года (мода - 58, медиана - 59 лет). Гендерная представленность: мужчины в числе 91 (мода - 57 лет, среднее - 59,9±1,5) и женщины в числе 150 (мода 58 лет, среднее 58,8±1,2) Исследование было выполнено в период с сентября 2006 г. по май 2009 г. Продолжительность динамического наблюдения варьировала от 6 до 40 месяцев. В исследование были включены такие биологические материалы, как периферическая кровь (ПК), аспират костного мозга (КМ) и суточная моча (СМ). Исследование биологических особенностей плазматических клеток включало: (1) количественное определение основных классов иммуноглобулинов сыворотки IgA, IgM и IgG (ИГ), легких цепей каппа и лямбда типов (ЛЦ) и бета-2-микроглобулина методом нефелометрии, (2) выявление моноклонального белка и определение его состава методом иммунофиксации, (3) иммунофенотипирование плазматических клеток костного мозга методом проточной цитометрии. Преаналитический этап с соблюдением правил транспортировки и доставки биологического материала был проведен согласно стандартной операционной процедуре Центра лабораторной диагностики Санкт-Петербургского государственного медицинского университета им. акад. И.П. Павлова.

Количественное определение концентраций ИГ, ЛЦ и бета-2-микроглобулина выполнено методом нефелометрии на автоматическом анализаторе специфических белков Immage 800 с использованием наборов производства компании Beckman Coulter (BC, США) и Dako Cytomation (DC, США). Количественное определение основных классов ИГ было выполнено на этапе первичной диагностики ММ 241 пациенту однократно и для мониторинга эффективности терапии и верификации минимальной остаточной болезни 49 пациентам. Количественное определение ЛЦ каппа и лямбда типов ПК было выполнено 151 пациенту однократно на этапе первичной диагностики ММ и 10 пациентам для мониторинга эффективности терапии. Количественное определение ЛЦ каппа и лямбда типов СМ было выполнено 104 пациентам однократно на этапе первичной диагностики ММ и 4 пациентам многократно. Количественное определение концентрации бета-2-микроглобулина ПК было выполнено 77 пациентам на этапе первичной диагностики ММ и 9 пациентам на этапе верификации МОБ. С целью изучения иммунологических вариантов моноклонального белка (МБ) был использован метод иммунофиксации. Электрофорез белковых фракций сыворотки крови и мочи проводили в электрофоретической камере (Cormay, Польша) при напряжении 100 вольт в течение 30 минут при комнатной температуре с использованием агарозных гелей и буферного раствора pH 8,6 (BC). Денситометрию электрофореграмм оценивали на денситометре Paragon Appraise (BC). Общее количество иммунофиксаций, проведенное на этапе первичной диагностики и определения МОБ, составило 319. Однократное выявление МБ методом иммунофиксации выполнено 192 пациентам и 49 пациентам для определения МОБ.

Для оценки биологических особенностей плазматических клеток (ПлК) костного мозга был использован метод иммунофенотипирования (ИФТ) с помощью проточной цитометрии. Клетки костного мозга (не менее 2Ч10⁶) были инкубированы при комнатной температуре в течение 30 минут в темноте со следующими моноклональными антителами: IgG1 (Mouse) - FITC, CD38-FITC, IgG1 (Mouse) - PE, CD56-PE, CD138-PE, IgG1 (Mouse) - ECD, CD45-ECD, IgG1 (Mouse) - PC5, CD19-PC5, CD27-PC5, IgG1 (Mouse) - PC7, CD19-PC7, CD45-PC7, CD117-PC7, CD3-FITC/ CD19-PE, CD45-FITC/ CD14-PE (BC, BD и DC). После окрашивания лизис осуществляли с использованием лизирующего раствора EasyLyse (DC). Учет результатов проводили на проточных цитометрах Partec PAS и Cytomics FC500 (BC). ИФТ клеток КМ выполнено 65 пациентам: для верификации диагноза 54 пациентам и 11 пациентам на этапе диагностики минимальной остаточной болезни.

Статистическую обработку полученных результатов проводили с использованием методов параметрической и непараметрической статистики. Методы дескpиптивной статистики включали оценку сpеднего аpифметического (M), сpедней ошибки сpеднего значения (m) для признаков, имеющих непрерывное распределение; частоты встречаемости признаков с дискретными значениями. Для оценки межгрупповых различий значений признаков, имеющих непрерывное распределение, применяли t-критерий Стьюдента и непараметрический U-критерий ВилкоксонаМаннаУитни, а при сравнении частотных величин ²-критерий Пирсона и точный метод Фишеpа (ТМФ). Анализ зависимости между признаками проводили с помощью r-критерия Пирсона, r_s-критерия Спиpмена и ²-критерия Пирсона. Статистическую обpаботку матеpиала выполняли с использованием стандаpтного пакета пpогpамм пpикладного статистического анализа (Statistica for Windows v.6.0). Кpитический уpовень достовеpности нулевой статистической гипотезы (об отсутствии значимых pазличий или фактоpных влияний) пpинимали pавным 0,05.

Результаты исследования и их обсуждение

Этап первичной диагностики

Иммунофиксация периферической крови выполнена 236 пациентам. Выявлено девять иммунологических вариантов ММ в зависимости от состава МБ: IgG/Ka - 73 (47,1%) случая, IgG/La - 21 (13,5%), IgА/La - 17 (11,0%), IgА/Ka - 11 (7,1%), миелома Бенс-Джонса с продукцией легкой каппа - 10 (6,5%) и лямбда цепи - 9 (5,8%) случаев, IgМ/Ka - 9 (5,8%), миелома с моноклональной продукцией тяжелой альфа-цепи IgA - 4 (2,6%) случая, IgМ/La - 1 (0,6%). Отрицательный результат иммунофиксации, то есть отсутствие моноклонального белка, выявили в 64 (27,1%) случаях среди всей группы пациентов. Поликлональная продукция белка (иммуноглобулины, как правило, классов IgA, IgG и легкие цепи) была выявлена в 17 (7,2%) случаях (рис.1).

Рис.1. Характеристика моноклональной продукции белка в сыворотке. Представлено девять иммунологических вариантов моноклонального белка (% от всех положительных результатов иммунофиксации сыворотки (n=155))

Иммунологический вариант МБ IgG/каппа легкая цепь был выявлен чаще: в 73 (47,1%) случаях из всех выявленных иммунологических вариантов ММ. Таким образом, полученные результаты сопоставимы с данными международных групп по миеломе (International Myeloma Foundation и Nordic Myeloma Group) и демонстрируют наличие МБ состава IgG, что составляет 60,6% (47,1% и 13,5%) среди всех миеломных белков в обследуемой группе. Иммунофиксация белков суточной мочи выполнена 92 пациентам. Выявлено два иммунологических варианта МБ: моноклональный белок в виде легкой каппа цепи наблюдали в 19 (65,5%) и легкой лямбда цепи в 10 (34,5%) случаях. Отрицательный результат иммунофиксации белков суточной мочи выявлен в 63 из 92 (68,4%) случаев (рис.2).

Рис.2. Характеристика моноклональной продукции белка в суточной моче. Представлено два иммунологических варианта моноклонального белка (в % от всех положительных результатов иммунофиксации суточной мочи (n=29))

Определение моноклонального белка в двух биологических материалах методом иммунофиксации выполнено 75 пациентам. При выявлении в сыворотке МБ, состоящего из молекулы иммуноглобулина и легкой цепи, в 16 из 75 случаев в моче был выявлен МБ, состоящий только из легкой цепи аналогичного типа: IgM/La+La (n=1), IgG/La+La (n=1), IgA/La+La (n=3), IgG/Ka+Ka (n=11). При выявлении в сыворотке МБ, состоящего из молекулы иммуноглобулина и легкой цепи, в 32 из 75 случаев был получен отрицательный результат иммунофиксации белков мочи. МБ состава каппа легкая цепь в двух биологических материалах был выявлен в четырех случаях и МБ состава лямбда легкая цепь был выявлен в трех случаях. При отрицательном результате иммунофиксации сыворотки в моче выявлен МБ состава каппа легкая цепь в одном случае и лямбда легкая цепь в двух случаях. Получены достоверные различия по результатам иммунофиксации двух биологических материалов (t-значение=3,82; p=0,0004). Различия в результатах демонстрируют необходимость сочетанного определения моноклонального белка в сыворотке и моче (рис.3).

Рис.3. Результаты иммунофиксации двух биологических материалов. Обозначения: ПК+/ - результат иммунофиксации периферической крови, СМ+/ - результат иммунофиксации суточной мочи (в % от числа пациентов, которым была выполнена иммунофиксация двух биологических материалов (n=75))

При сопоставлении результатов иммунофиксации и результатов нефелометрического определения концентраций основных классов иммуноглобулинов получены достоверные отличия (t=3, 20; p=0,002) (табл.1).

Таблица 1. Результаты иммунофиксации и концентрация основных классов иммуноглобулинов.

Примечание: ²=9,82; p=0,002; Rs=0,22; p=0,002

Выявлены достоверные различия между увеличением концентрации IgG и положительными результатами иммунофиксации белков сыворотки (t=2,36; p=0,019) (рис.4).

Рис.4. Сопоставление результатов иммунофиксации и результатов определения концентрации иммуноглобулина класса G сыворотки. Обозначения: ИФ+/ - результат иммунофиксации; IgG+/ - концентрация IgG (в % от числа пациентов, которым было выполнено определение концентрации иммуноглобулинов основных классов и иммунофиксация белков сыворотки (n=206))

Иммунологический вариант МБ IgG/каппа легкая цепь наблюдали чаще других типов МБ (47,1%), что связано с частотой иммунологического варианта миеломы IgG типа.

Увеличение концентраций IgA и IgM у больных ММ обусловлено моноклональной продукцией белка, что подтверждено методом иммунофиксации. Таким образом, корреляций между увеличением концентрации иммуноглобулинов классов IgA и IgM и положительными результатами иммунофиксации не выявлено, различия недостоверны (t=0,37; p=0,71 и t=0,35; p=0,72 соответственно).

Получены достоверные различия результатов иммунофиксации и результатов определения концентраций легких цепей сыворотки по выявлению субстрата заболевания методами нефелометрического анализа и иммунофиксации (ТМФ: p=0,009) (рис.5).

Рис.5. Сопоставление результатов иммунофиксации и результатов концентраций легких цепей каппа и лямбда типа сыворотки. Обозначения: ИФ+/ - результат иммунофиксации; ЛЦ+/ - концентрация легких цепей (в % от числа пациентов, которым было выполнено определение концентрации легких цепей и иммунофиксация белков сыворотки (n=39))

Выявлено достоверное различие между увеличением концентрации легкой цепи каппа типа выше верхней границы нормы и положительными результатами иммунофиксации (t=2,63; p=0,009). Корреляции между увеличением концентрации легкой цепи лямбда типа и положительными результатами иммунофиксации не выявлено, различия недостоверны (t=0,74; p=0,47).

При сопоставлении результатов иммунофиксации и результатов определения концентраций легких цепей суточной мочи получены достоверные различия (табл.2).

Таблица 2. Результаты иммунофиксации и результаты определения концентраций легких цепей сыворотки.

Примечание: ²=7,189; p=0,005; Rs=0,51; p=0,001

Более того, выявлены достоверные различия между увеличением концентраций легких цепей и каппа, и лямбда типа выше верхней границы нормы и положительным результатом иммунофиксации (t=2,88; p=0,007 и t=2,08; p=0,04). Показано, что определение концентрации легких цепей сыворотки крови обладает меньшей эффективностью выявления субстрата заболевания в сравнении с иммунофиксацией.

Результаты иммунофиксации периферической крови и концентрации бета-2-микроглобулина различаются недостоверно (t=1,32; p=0, 19). Повышенный уровень бета-2-микроглобулина, выявленный на этапе первичной диагностики, соответствовал прогрессии заболевания и смерти пациента по окончанию динамического наблюдения (табл.3).

Таблица 3. Результаты иммунофиксации и результаты определения концентрации бета-2-микроглобулина сыворотки.

Примечание: ²=3,22; p=0,069; Rs= 0,39; p=0,025; ТМФ: p=0,039

ИФТ методом проточной цитометрии плазматические клетки были выявлены в 45 (83,0%) образцах костного мозга, в 9 (17,0%) случаях субстрат миеломной болезни не был выявлен. Во всех случаях для плазматических клеток было характерно изменение экспрессии панлейкоцитарного антигена CD45: CD45neg в 18 (40,0%) случаях, CD45dim в 23 (51,1%) случае и гетерогенная экспрессия (CD45neg to dim и CD45neg to bright) выявлена в 4 (8,9%) случаях. Экспрессия пан-В-клеточного антигена CD19 плазматическими клетками была выявлена в 29 (64,4%) случаях ИФТ, маркера гемопоэтических стволовых клеток CD117 в 26 (57,7%) случаях и экспрессия маркера неблагоприятного прогноза и более агрессивного течения заболевания CD56 на плазматических клетках определена в 21 (46,6%) случае. В большинстве случаев ПлК демонстрировали промежуточный уровень (moderate) экспрессии CD38 (n=43) и CD138 (n=34) (²=5,75, p= 0,016).

Cогласно рекомендациям International Myeloma Foundation (IMF), для верификации диагноза необходимо определение ?10,0% ПлК среди всех клеток костного мозга. По результатам относительного количества плазматических клеток (ОКПК) в КМ в зависимости от их количества все пациенты были разделены на две группы: (1) ОКПК составило ?10,0% среди всех ядросодержащих клеток костного мозга, в 9 из 45 случаях, (2) ОКПК составило <10,0% и было выявлено в 36 случаях. В двух случаях ОКПК составило 9,0% и 9,5% среди всех ядросодержащих клеток костного мозга.

Сопоставление результатов относительного количества плазматических клеток в костном мозге методами световой микроскопии и проточной цитометрии выявило положительную корреляцию (r=0,61; p=0,003). При использовании коэффициента ранговой корреляции Спирмена были выявлены показатели умеренной силы связи (R_s=0,65; p=0,002), выявлены относительно высокие значения коэффициентов вариации (СV=151% и CV=164% для световой микроскопии и проточной цитометрии соответственно). Величины этих показателей одного порядка и связаны не с преимуществом одного метода по сравнению с другим, а с возможностью идентификации заболевания на уровне клеточного анализа. Регрессионный анализ данных позволил получить два уравнения регрессии, согласно которым на основании значений, полученных одним методом, можно вычислить относительное количество плазматических клеток (ОКПК), определяемое вторым методом:

ОКПК по данным миелограммы = 3,47 + 1,028 ОКПК по данным ИФТ (1)

ОКПК по данным ИФТ = 1,45 + 0,362 ОКПК по данным миелограммы (2)

Таким образом, результаты, полученные с помощью современной проточной цитометрии как метода выявления плазматических клеток, подтверждаются классической морфологией, и, следовательно, это дает возможность в дальнейшем, на этапе диагностики минимальной остаточной болезни, когда уровень чувствительности морфологической оценки мазка костного мозга оказывается недостаточным, обращаться к возможностям проточной цитометрии.

По результатам иммунофиксации периферической крови и иммунофенотипирования клеток костного мозга не выявлено достоверных различий (t=0,8, p=0,43), как и при сопоставлении результатов иммунофиксации суточной мочи и результатов ИФТ (t=0,17, p=0,838). Отсутствие достоверных различий результатов иммунофиксации и ИФТ сопряжено с высокой чувствительностью обоих методов и возможностью выявления как клона миеломных клеток, так и продуцируемого ими моноклонального белка.

Этап диагностики минимальной остаточной болезни

На этапе мониторинга ММ ассоциация пола пациента и результатов анализа белков периферической крови были выявлены гендерные различия: положительный результат иммунофиксации ПК наблюдали чаще у мужчин (p=0,001), так же как увеличение уровня IgA было ассоциировано чаще с мужским полом пациента (p=0,018); увеличение концентрации легкой цепи каппа типа в сыворотке крови чаще выявляли у женщин (p=0,012).

Сопоставление результатов ИФТ и иммунофиксации белков сыворотки не выявило достоверных различий (табл.4).

Таблица 4. Результаты иммунофенотипирования и результаты иммунофиксации белков сыворотки.

Примечание: ²=0,13; p=0,72; Rs=0,13; p=0,43

Отсутствие ПлК в костном мозге, как и отсутствие МБ в периферической крови, выявлено в 3 (7,5%) случаях. Отсутствие ПлК при наличии МБ в периферической крови наблюдали в 4 (10,0%) случаях. Наличие ПлК в костном мозге и МБ в сыворотке было выявлено в 24 (60,0%) случаях. Наличие ПлК при отрицательном результате иммунофиксации выявили в 9 (22,5 %) случаях, что, вероятно, связано с несекретирующим типом ММ.

На этапе оценки эффективности терапии при сопоставлении результатов иммунофиксации и результатов концентраций легких цепей суточной мочи выявлены достоверные различия (табл.5).

Таблица 5. Результаты иммунофиксации и результаты определения концентраций легких цепей суточной мочи.

Примечание: ²=3,43; p<0,061; Rs=0,59; p<0,013; ТМФ: p=0,029

Гетерогенность популяции плазматических клеток после терапии представлена в таблице 6.

Таблица 6. Результаты ИФТ клеток костного мозга на этапе оценки эффективности терапии для определения МОБ.

По результатам повторного иммунофенотипирования клеток костного мозга было выявлено: (1) ремиссия заболевания в двух случаях (пациенты 2 и 7); (2) минимальная остаточная болезнь в восьми случаях (пациенты 1, 3, 4, 5, 6, 8, 10,11) и (3) рецидив множественной миеломы в одном случае (пациент 9).

Выявлена биологическая взаимосвязь аберрантности иммунофенотипа плазматических клеток и иммунологического варианта продукции моноклонального белка при множественной миеломе в группе пациентов, которым были выполнены иммунофиксация периферической крови и ИФТ клеток костного мозга (n=40). Миелома Бенс-Джонса сопряжена с экспрессией маркера CD19 в 85,7% случаев (рис.6).

Рис.6. Определение аберратности иммунофенотипа при сопоставлении результатов иммунофиксации и результатов иммунофенотипирования в группе больных с Бенс-Джонс миеломой (в % от числа пациентов, которым было выполнено ИФТ клеток костного мозга и иммунофиксация белков мочи с моноклональной продукцией каппа или лямбда легкой цепи (n=9))

Миелома с продукцией моноклонального IgG сопряжена с экспрессией маркера CD117 в 67% случаев (n=20).

Миелома с продукцией моноклонального IgA (n=11), в частности, IgA/лямбда связана со следующей аберратностью фенотипа - в 100% случаев плазматические клетки позитивны по экспрессии CD19, в 75% выявлена экспрессия CD56 и экспрессия CD117 в 62,5% случаев (рис.7).

Рис.7. Аберрантность иммунофенотипа трансформированных плазматических клеток при иммунологическом варианте моноклонального белка IgA/лямбда (в % от числа пациентов, которым было выполнено ИФТ клеток костного мозга и иммунофиксация белков сыворотки с продукцией моноклонального белка IgA/лямбда (n=8))

Нормальные плазматические клетки в ходе развития постепенно утрачивают экпрессию В-клеточных антигенов, таких как CD19 (Orfao A., 2006). Существуют клинические наблюдения, что IgA тип миеломы протекает более агрессивно по сравнению с другими типа миеломы и характеризуется неблагоприятным прогнозом (Myeloma Guideline, 2009; Римашевская Е.В., 2005). Вероятно, это связано с последовательностью VDJ реаранжировки тяжелых цепей иммуноглобулинов. Данные наблюдения подтверждаются выявленными биологическими особенностями плазматических клеток при IgA миеломе в сохранении экспрессии пан-В-клеточного антигена и приобретении маркеров CD56 (75,0%) и CD117 (62,5%).

Выводы

1. Иммунофиксация является методом выбора для выявления и характеристики моноклонального белка в сыворотке и в моче при диагностике множественной миеломы и мониторинге эффективности терапии, так как позволяет выявлять девять иммунологических вариантов моноклонального белка, преобладающим среди которых является IgG/каппа легкая цепь (47,1%). Определение иммунологического варианта моноклонального белка в дебюте заболевания позволяет проводить мониторинг эффективности терапии с выявлением моноклонального белка аналогичного иммунологического варианта.

2. Показано, что сопоставление результатов иммунофиксации белков сыворотки и определение концентраций иммуноглобулинов основных классов подтверждает, что увеличение концентраций IgA и IgM обусловлено моноклональной продукцией белка, а концентрация IgG как моноклональной, так и поликлональной продукцией.

3. Разработанный способ идентификации плазматических клеток методом проточной цитометрии и оценка иммунофенотипических особенностей нормальных и трансформированных плазматических клеток позволяет выявить биологические особенности фенотипа миеломных клеток, в частности, CD19 - 64,4%, CD56 - 46,6%, CD117 - 57,7% случаев. Сохранные и трансформированные плазматические клетки обладают промежуточным уровнем экспрессии маркеров CD38 и CD138;

4. Выявлены взаимосвязи между иммунологическим вариантом ММ и аберраностью иммунофенотипа миеломных клеток: миелома Бенс-Джонса сопряжена с экспрессией маркера CD19 в 86% случаев; миелома с продукцией моноклонального IgG сопряжена с экспрессией маркера CD117 в 70% случаев; миелома с продукцией моноклонального IgA, в частности при моноклональной продукции IgA/лямбда - в 100% случаев плазматические клетки позитивны по экспрессии CD19, в 83% выявлена экспрессия CD56 и экспрессия CD117 - в 67% случаев.

5. При сопоставлении результатов по выявлению относительного количества плазматических клеток выявлена положительная корреляция полученных результатов, что позволяет на этапе мониторинга эффективности терапии использовать метод проточной цитометрии.

6. Показано, что положительный результат иммунофиксации белков сыворотки и увеличение концентрации IgA чаще наблюдали у мужчин, а увеличение концентрации легких цепей каппа типа сыворотки чаще наблюдали у женщин на этапе оценки минимальной остаточной болезни.

Комплекс лабораторных исследований для диагностики и мониторинга ММ, основанный на биологических особенностях трансформированных клеток, включающий как традиционные методы лабораторной диагностики определения концентрации иммуноглобулинов основных классов сыворотки крови, бета-2-микроглобулина, легких цепей сыворотки и мочи, морфологическую оценку состава клеток костного мозга, предложено дополнить методами подтверждения клональности трансформированных плазматических клеток (проточная цитометрия) и моноклональной продукции белка (иммунофиксация).

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. Результаты исследования предназначены для использования специалистами лабораторной службы, врачами-гематологами медицинских учреждений.

2. Использование метода иммунофиксации показано для выявления моноклонального белка и определения его состава на всех этапах диагностики множественной миеломы. Этап первичной диагностики позволяет определить иммунологический вариант патологического белка, в то время как проведение этапа лабораторного мониторинга множественной миеломы включает необходимость подтверждения моноклональной продукции белка при его наличии.

3. Для определения относительного количества плазматических клеток в костном мозге, выявления аберрантности их иммунофенотипа показано использование метода иммунофенотипирования с помощью проточной цитометрии.

4. Для оценки эффективности проведенной терапии и выявления минимальной остаточной болезни показано использование метода иммунофенотипирования с помощью проточной цитометрии, который позволяет выявить относительное количество трансформированных плазматических клеток среди всех плазматических клеток.

5. Для проведения диагностики минимальной остаточной болезни показана необходимость определения первичного иммунофенотипа плазматических клеток и подтверждение моноклонального характера продукции белка.

Список работ, опубликованных по теме диссертации

1. Русанова Е.Б. Метод иммунофиксации в диагностике и мониторинге множественной миеломы / Е.Б. Русанова, А.В. Куртова, Н.В. Степанова, Е.Р. Мачюлайтене, А.П. Рыжак, Д.В. Чередниченко, Е.Е. Зуева // Ученые записки СПбГМУ им. акад. И.П. Павлова. - № 1. - 2008. - С.68-72.

2. Куртова А.В. Иммунофенотипирование костного мозга для диагностики множественной миеломы. Практические аспекты / А.В. Куртова, Е.Б. Сиваченко, Л.А. Уткина, К.Ю. Слободнюк, Н.В. Степанова, М.А. Якубович, С.И. Моисеев, Е.Е. Зуева // Клиническая лабораторная диагностика. - № 1. - 2008. - С.17-20.

3. Зуева Е.Е. Образование по проточной цитометрии в России: как стать профессионалом? / Е.Е. Зуева, А.В. Куртова, Е.Б. Сиваченко // Российский иммунологический журнал. - № 3-4. - 2007. - Том 1 (10). - С.300-301.

Тезисы конференций

4. Зуева Е.Е. Стратегия иммунофенотипирования костного мозга методом проточной цитометрии для диагностики множественной миеломы / Е.Е. Зуева, Куртова A.В., Сиваченко Е.Б. // Аллергология и иммунология. - №7 (3). - 2006. - С.359.

5. Sivachenko Ye. B. Laboratory diagnostics potential for minimal residual disease monitoring in multiple myeloma. Abstracts of 7^th John Humphrey advanced summer programme in immunology / Ye. B. Sivachenko, N. V. Stepanova, A. V. Kurtova, A. P. Ryzhak, E. R. Machulajtene, Ye. E. Zueva, Moscow, 2007. - p.50.

6. Sivachenko Ye. B. Modern immunological method of immunofixation for multiple myeloma diagnostics. Hemopoietic stem cells transplantation Ye. B. Sivachenko, A. V. Kurtova, N. V. Stepanova, Ye. R. Machulaitene, G. N. Salogub, S.I. Moiseev, Ye. E. Zueva // Abstracts of International meeting dedicated to the memory of Raisa Gorbacheva, 21-22 September, 2007. - P.41.

7. Sivachenko Ye. B. The importance of complex immunological studies in patient with multiple myeloma: toward minimal residual disease monitoring. Hemopoietic Stem cells transplantation / Ye. B. Sivachenko, A. V. Kurtova, N. V. Stepanova, Ye. R. Machulaitene, G. N. Salogub, S.I. Moiseev, Ye. E. Zueva // Abstacts of International meeting dedicated to the memory of Raisa Gorbacheva, 21-22 September, 2007. - P.39.

8. Русанова Е.Б. Комбинированный подход для мониторинга минимальной остаточной болезни множественной миеломы / Е.Б. Русанова, Куртова А.В., Зуева Е.Е. // Российский иммунологический журнал. 2008. Т.2. №2-3. С.313.

9. Зуева Е.Е. Случай из практики: множественная миелома у больного с истинной полицитемией / Е.Е. Зуева, Е.Б. Русанова, В.А. Шуваев, О. Петрова, Л.В. Челомбит, А.В. Куртова // Российский иммунологический журнал. - 2008. - Т.2. - № 2-3. - С.307.

10. Rusanova E. B. Multiple myeloma: new attainments in Russian laboratory medicine / E. B.rusanova, A. V. Kurtova, N. V. Stepanova, V. A. Shuvaev, E. E. Zueva, G. N. Salogub // Haematologica. 2009. 94 (s2) Abstract 1626, p.626. Abstract book of 14^th Congress of European Hematology Association, June 4-7, 2009.

Учебно-методические пособия

11. Зуева Е.Е. Иммунная система. Иммунограмма. Рекомендации по назначению и применению в лечебно-диагностическом процессе / Е.Е. Зуева, Е.Б. Русанова, А.В. Куртова, А.П. Рыжак, О.В. Галкина, Д.В. Чередниченко. - СПб.: Триада, 2008. - 60 с.

12. Зуева Е.Е. Методы лабораторной диагностики и мониторинга множественной миеломы / Е.Е. Зуева, Е.Б. Русанова, К.Ю. Слободнюк, А.П. Рыжак, А.В. Куртова. СПб.: Изд-во СПбГМУ им. акад. И.П. Павлова, 2009. - 33 с.

Другие публикации

13. Зуева Е.Е. Диагностика множественной миеломы и мониторинг эффективности терапии / Е.Е. Зуева, Е.Б. Русанова, А.В. Куртова. // Иммунология гемопоэза. - № 2. - 2008. - С.34-59.

14. Куртова А.В. Оценка интенсивности флюоресценции методом проточной цитометрии: методические аспекты внедрения в диагностику онкогематолгических заболеваний/ А.В. Куртова, Е.Б. Русанова, К.Ю. Слободнюк, М.В. Горчакова, Е.Е. Зуева. // Клиническая онкогематология. - 2008. - т.1. - №4. - С.310-314.

Размещено на Allbest.ru