Влияние некоторых гепатопротекторов на морфофункциональное состояние органов иммунной системы при токсических поражениях печени

Размещено на http://www.allbest.ru/

Академия наук Республики Узбекистан

Институт иммунологии

УДК: 616.36-002-036.11-036.12-099-092.9

Влияние некоторых гепатопротекторов на морфофункциональное состояние органов иммунной системы при токсических поражениях печени

14.00.36 - аллергология и иммунология

АВТОРЕФЕРАТ

диссертации на соискание ученой степени

кандидата медицинских наук

Ашурова Фарида ?а??ор ?изи

Ташкент 2012

Работа выполнена в Ташкентской медицинской академии МЗ РУз и Институте иммунологии АН РУз

Научный руководитель:

доктор медицинских наук, Аскаров Тахир Аскарович

Официальные оппоненты:

доктор медицинских наук, профессор Исмаилова Гули Аминджановна

доктор медицинских наук, профессор Сыров Владимир Николаевич

Ведущая организация: Ташкентский Педиатрический медицинский институт

Защита диссертации состоится «___»_________2012г. в __час. на заседании Специализированного совета Д.015.89.01 при Институт иммунологии АН РУз по адресу: 100060, г. Ташкент, ул. Я. Гулямова, 74.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Института иммунологии АН РУз.

Автореферат разослан «___»_________2012 года.

Ученый секретарь специализированного совета, доктор медицинских наук Камалов З.С.

иммунологический гепатопротектор гепатит

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность проблемы. Несмотря на значительные успехи современной гепатологии, вопрос патогенетически обоснованного лечения больных вирусными гепатитами остается открытым. Существующее лечение направлено на ликвидацию воспалительного процесса и предупреждение некроза в печени, детоксикацию организма, стимулирование регенерации печеночных клеток и нормализацию нарушенного обмена (Баган Н. Ю., 1991; Гутникова А.Р. с соавт., 2002). В то же время клиническая практика показывает необходимость комплексного подхода к лечению вирусных и токсических гепатитов с включением препаратов, влияющих на иммунную систему (Джураева Н.Р., 1994; Кошкаров А.Ж., 2006). Нарушения иммунологической реактивности могут усугублять течение основного заболевания, влиять на исходы патологического процесса и прогноз. Все это указывает на необходимость включения в комплексное лечение патологий печени препаратов с иммуномодулирующими свойствами (Махмудов О.С. с соавт.,1995; Рузыбакиев Р.М. с соавт., 2001).

А.Н. Емельянова с соавт. (2004) получили положительный эффект на динамику цитокинов при лечении вирусного гепатита ронколейкином. Включение интерлейкина в лечение больных хроническим гепатитом С способствует положительной динамике иммунологических показателей (Журкин А.Т. с соавт., 2001). Мамаев С.Н. с соавт. (2002) показали, что применение интерферона-б усиливает продукцию цитокинов особенно ИЛ-2, синтез которого до лечения был снижен.

В настоящее время для лечения заболеваний печени используются гепатотропные вещества синтетической природы, микроэлементы (Абдусаматов А.А., 2000), цитокиновые препараты (Мамаев С.Н., 2001; Емельянова А.Н. с соавт., 2004). Хорошо зарекомендовал себя при лечении вирусных гепатитов разработанный в Узбекистане синтетический препарат кобавит, в состав которого входят кобальт и витамин U (Кошкаров А.Ж., 2006).

Помимо выше приведенных данных в литературе имеются сообщения об использовании в терапии патологий печени различных растительных веществ (Турищев С.Н., 1999; Катикова О.Ю. с соавт., 2002; Набиев А.Н., 2003). Они оказывают позитивный эффект на морфофункциональное состояние печени (Белобородова Э.И. с соавт., 2004), функции митохондрий, активность печеночных монооксигеназ (Иноятова Ф.Х. с соавт., 1996; Катикова О.Ю. с соавт., 2002).

Степень изученности проблемы. Анализ научной литературы показал, что для патогенетического лечения патологий печени используются препараты различной природы и происхождения. Нарушения в иммунном статусе при заболеваниях печени требуют проведения адекватных иммунокорригирующих мероприятий (Сулейманова З.Р. с соавт., 2003; Жолмухамедов К.К. с соавт., 2005; Новикова Л.В. с соавт., 2006). В качестве иммунокорректоров, очевидно, следует отдать предпочтение растительным веществам, благодаря их низкой или полному отсутствию токсичности, специфичности действия, отсутствию выраженных побочных эффектов при длительном применении (Махмудов Т.М. с соавт., 1993; Мусаев М.У. с соавт., 1998; Захидов У. Б. с соавт., 2000; Гладких Л.В. с соавт., 2005).

Это выгодно отличает растительные вещества от препаратов, полученных из других источников или созданных направленным синтезом. Биотрансформация растительных препаратов требует меньших энергетических затрат в печени, чем для обезвреживания веществ животного или синтетического происхождения, тем более, что патологический процесс в данном случае развивается в самой печени.

Актуальной задачей остается на сегодняшний день разработка гепатопротекторов из местных видов сырья (Сыров В.Н. с соавт., 2001; Сыров В.Н. с соавт., 2007). Наличие достаточной сырьевой базы для получения гепатопротекторов является надежным гарантом удовлетворения потребностей в этих препаратах медицинских учреждений республики.

Исходя из выше сказанного, представляет научный и практический интерес изучение иммунотропных свойств препаратов, используемых в качестве гепатопротекторов.

Связь диссертационной работы с тематическими планами НИР.

Диссертационная работа выполнена в соответствии с планами НИР Института иммунологии АН РУз и Ташкентской медицинской академии.

Цель исследования: Иммунологическая и иммуноморфологическая оценка действия на иммунную систему некоторых гепатопротекторов (протопин, гепатин и ЖСБ) растительной и солевой природы в условиях острого и хронического гепатита в эксперименте.

Задачи исследования:

1. Изучить эффект гепатопротекторов (протопин, гепатин и ЖСБ) на иммунологические показатели в эксперименте в системе in vivo у здоровых животных;

2. Исследовать влияние гепатопротекторов на иммунологические показатели при остром и хроническом токсическом гепатите;

3. Изучить влияние гепатопротекторов на морфологические показатели печени, органов иммунной системы и морфометрические показатели тимуса при патологиях печени;

4. Изучить эффект гепатопротекторов на монооксигеназную систему печени;

5. Исследовать корреляционные взаимосвязи в иммунной системе при лечении острого и хронического токсических гепатитов.

Объект и предмет исследования: селезенка, тимус, печень, лимфатические узлы, костный мозг, кровь экспериментальных животных, желчегонный сбор Базарова, препараты протопин и гепатин.

Методы исследования: Экспериментальные иммунологические и общеморфологические методы исследования.

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Гепатопротекторы протопин, гепатин и ЖСБ обладают способностью стимулировать иммунологическую реактивность организма и титр антител к эритроцитам барана в крови мышей, усиливать пролиферацию клеток в центральных и периферических органах иммунитета, повышать число эритроцитов и лейкоцитов крови у нормальных мышей и у животных с острым и хроническим токсическим гепатитом.

2. Протопин, гепатин и ЖСБ при остром и хроническом гепатите восстанавливают морфологические нарушения не только в печени, но и в органах иммунитета - тимусе, селезенке и лимфатических узлах.

Научная новизна. Установлено, что гепатопротекторы протопин, гепатин и ЖСБ обладают способностью существенно повышать иммунологическую реактивность организма у нормальных мышей. Изученные гепатопротекторы корригируют нарушения в иммунной системе при остром и хроническом токсическом гепатите. Показано, что гепатопротекторы восстанавливают функциональную активность антигенспецифических цитотоксических Т-клеток при хроническом токсическом гепатите.

Протопин, гепатин и ЖСБ восстанавливают морфологические и морфометрические изменения в печени, центральных (тимус) и периферических (селезенка, лимфатические узлы) органах иммунитета при остром и хроническом токсическом гепатите. Гепатопротекторы стимулируют метаболическую функцию печени при остром токсическом гепатите.

Под воздействием протопина, гепатина и ЖСБ происходит увеличение числа и силы корреляционных взаимосвязей в иммунной и кроветворной системах как в норме, так при остром и хроническом токсических гепатитах.

Научная и практическая значимость результатов исследования. Полученные результаты могут быть экспериментальным обоснованием для использования изученных гепатопротекторов в качестве иммуномодулирующих веществ для коррекции нарушений в иммунной системе при патологиях печени различной этиологии и вторичных иммунодефицитах.

Реализация результатов. Результаты исследований включены в научно-практическую деятельность кафедры фармакологии и клинической фармации Ташкентского фармацевтического института.

Апробация работы. Материалы диссертации были представлены на научно-практической конференции «Клиническая иммунология, иммуногенетика - междисциплинарные проблемы» с международным участием, посв. 25-летию Института иммунологии АН РУз (11-12 октября 2010), доложены и обсуждены на межкафедральной апробации в Ташкентской медицинской академии (2011), научном семинаре в лаборатории экспериментальной иммунологии Института иммунологии АН РУз (2011), апробационном совете при Институте иммунологии АН РУз (2011).

Опубликованность результатов. По теме диссертации опубликованы 10 работ, из них 1 монография, 5 журнальные статьи, 2 тезиса и 2 методические рекомендации.

Структура и объем диссертации. Диссертация изложена на 134 страницах компьютерного текста и состоит из введения, обзора литературы, материалов и методов исследования, 2 глав собственных исследований, заключения, выводов и практических рекомендаций. Диссертация иллюстрирована 25 таблицами и 31 рисунками. Библиографический указатель включает 216 источников, из которых 164 русскоязычных и 52 дальнего зарубежья.

ОСНОВНОЕ СОДЕРЖАНИЕ ДИССЕРТАЦИИ

Во введении обоснована актуальность выбранной темы, сформулированы цель и задачи работы, её научная новизна и практическая значимость результатов исследований, сформулированы положения, выносимые на защиту.

В первой главе «Обзор литературы» рассматриваются работы по изучению вторичных иммунодефицитных состояний при гепатитах и способах их коррекции.

Во второй главе описаны материал и методы исследований. В экспериментах использовали 186 белых беспородных мышей массой тела 18-22 г, 2-3 мес. возраста обоего пола, 80 крыс массой 180-220 гр. и 12 морских свинок массой 350-400 г. Животные содержались на стандартном рационе вивария.

Получение антигенов. В качестве антигена использовали эритроциты барана (ЭБ), которые брали у животных из яремной вены в стерильные флаконы с гепарином. ЭБ хранили в течение 7-10 дней при температуре +4⁰С. Перед иммунизацией ЭБ 2-3 раза отмывали в среде 199 в течение 10 минут при 1000 об/мин. ЭБ в различных дозах вводили мышам внутрибрюшинно или внутривенно.

Определение антителообразующих клеток в селезенке in vivo и гематологические исследования. Количество антителообразующих клеток (АОК) в селезенке определяли на 5-е сутки после иммунизации животных ЭБ методом локального гемолиза в агарозе по Jerne N. и Nordin A. (1963). Для постановки реакции готовили 0,6% раствор агарозы (фирма «Serva») на однократном растворе Хенкса при температуре +49⁰С. Затем в пластиковые чашки Петри для культивирования тканей (диаметр 40 мм) наливали 0,1 мл суспензии клеток селезенки, 0,03 мл 20% раствора ЭБ и 1 мл раствора агарозы при +49⁰С. Смесь агарозы, ЭБ и клетки селезенки равномерно распределяли по дну чашки и помещали их на 1,5 часа в термостат при +37⁰С. После этого в чашки наливали по 1 мл комплемента морской свинки разведенного в физиологическом растворе в соотношении 1:20 и снова помещали в термостат на 1 час при +37⁰С. Затем комплемент сливали и на чашках подсчитывали зоны гемолиза («бляшки»), делали перерасчет числа АОК на всю селезенку (абсолютный показатель) и 1 млн. клеток селезенки (относительный показатель). В периферической крови мышей подсчитывали число эритроцитов и лейкоцитов в камере Горяева.

Определение антител в периферической крови. В 96-ти луночные планшеты помещали по 50 мкл физиологического раствора (Петров Р. В. с соавт., 1984). Затем в первую лунку помещали 50 мкл сыворотки иммунизированной мыши, тщательно смешивали и титровали последовательным переносом в последующие лунки до предпоследней в ряду. В последней лунке находился только физ. раствор (контроль). Затем во все лунки добавляли по 50 мкл 1% раствора ЭБ. Планшеты на 1 час помещали в термостат при +37⁰С. После этого определяли титр антител в реакции гемагглютинации. За титр антител принимали последнее разведение сыворотки, которое давало реакцию с ЭБ (наличие «зонтика» в лунке). Результаты выражали в логарифмах с основанием 2 (log₂).

Определение общего количества клеток в органах иммунитета. После забоя у животных извлекали селезенки, брыжеечные лимфатические узлы, тимус и бедренную кость (Петров Р.В., Зарецкая Ю.М.,1965). Тимус, лимфатические узлы и селезенку очищали от жировой ткани и гомогенизировали в стеклянном гомогенизаторе в среде 199. Затем суспензии клеток пропускали через трехслойный капроновый фильтр.

Бедренную кость мышей очищали от мышц, срезали эпифизы и с помощью шприца с тонкой иглой средой 199 вымывали костный мозг из костного канала. Во всех клеточных суспензиях органов иммунной системы подсчитывали число ядросодержащих клеток в камере Горяева и делали перерасчет на весь орган. Таким способом определяли общее количество клеток в центральных (тимус, костный мозг) и периферических (лимфатические узлы, селезенка) органах иммунитета.

Изучение функциональной активности антигенспецифических цитотоксических Т-клеток. В отдельной серии экспериментов был изучен эффект гепатопротекторов на функцию антигенспецифических цитотоксических Т-клеток при хроническом токсическом гепатите (ХТГ).

В опыте использовали мышей линии BALB/c массой 20-22 г. У мышей моделировали ХТГ путем еженедельного подкожного введения гелиотрина в дозе 50 мг/кг в течение 6 недель. В результате этого, как было показано ранее, формируется ХТГ. Затем мышам однократно внутрибрюшинно вводили эритроциты барана (ЭБ) в дозе 410⁹ (Whisler, Stobo, 1975). Через 8 дней животных забивали, извлекали селезенки (содержащие антигенспецифические цитотоксические Т-клетки), готовили суспензию клеток и в дозе 210⁷ (КСГД - клетки селезенки гипериммунизированных доноров) вместе в ЭБ в дозе 210⁸ вводили однократно внутривенно интактным сингенным реципиентам. Спустя 5 дней мышей забивали, извлекали селезенки и определяли в них число АОК. В данной модели после введения гипериммунной дозы антигена (ЭБ) в селезенках накапливаются антигенспецифические цитотоксические Т-клетки, которые после введения подавляют иммунный ответ к ЭБ, введенного в оптимальной дозе. Число АОК рассчитывали на весь орган и на 10⁶ клеток селезенок. Помимо этого подсчитывали общее количество ядросодержащих клеток селезенок (ЯСКС).

Исследовали следующие вещества: 1) протопин вводили в дозе 1 мг/кг ежедневно внутрижелудочно в течение 4 дней; 2) гепатин вводили ежедневно внутрижелудочно в течение 4 дней в дозе 25 мг/кг; 3) желчегонный сбор Базарова (ЖСБ) вводили ежедневно внутрижелудочно в течение 4 дней в дозе 30 мг/кг. Препараты вводили со дня введения клеток селезенки и антигена, т.е. на стадии функционирования антигенспецифических цитотоксических Т-клеток.

Морфологические и морфометрические исследования. Кусочки печени, селезенки, тимуса и лимфатические узлы фиксировались в 10% растворе нейтрального формалина в течение 48 часов, после промывки в проточной воде длительностью 2-4 часа проводилось обезвоживание в спиртах возрастающей концентрации и в хлороформе, заливались в парафин с воском. Из парафиновых блоков изготавливались гистологические срезы толщиной 5-8 мкм, которые были окрашены следующими гистологическим и гистохимическими методами: для общей морфологии гематоксилином и эозином.

Окраска гематоксилином-эозином является самым распространенным методом окраски гистологических срезов. Парафиновые срезы депарафинируют в хлороформе и промывают в дистиллированной воде, затем на срезы наливают раствор гематоксилина на 3 мин. Промывка в водопроводной воде в течение 10 мин и срезы докрашиваются эозином от 0,2 до 3 мин в зависимости от толщины срезов. Обезвоживают в спиртах восходящей концентрации, начиная с 70є до 96є, просветляют в карбол-ксилоле, ксилоле и заключают в бальзам. Результат: ядра клеток окрашиваются в сине-фиолетовый цвет, цитоплазма - в розовый цвет.

Гистометрия структурных элементов тимуса осуществляли на гистологических препаратах с помощью винтовых окуляр-микрометров, которые позволяют производить более точные замеры (Автандилов Г.Г., 1990). Основная задача - это определение линейных размеров гистологических объектов и сравнение их с известной величиной, принятой за единицу измерения (эталоном), выраженное в числах. Такое сопоставление называется определением микрометрического значения. Микрометрическое значение выражает длину объекта, соответствующую одному интервалу (эталону) делений окулярной измерительной пластинки. Перед измерением толщины капсулы, коркового и мозгового слоев тимуса определяли микрометрическое значение используемой оптической системы.

Микрометрическое значение (m) определяли по формуле: m=ас/b, где а - отсчитанное число делений по шкале объекта-микрометра; b - соответствующее им число делений шкалы окуляр-микрометра; с - цена одного деления объекта-микрометра, что равно на 10 мкм. Измерения проводились под бинокулярным микроскопом фирмы Лейка, на предметный столик установили объект-микрометр, в котором 1 мм разлелен на 100 частей (одно деление соответствует 0,01 мм, или 10 мкм). В нашем исследовании 18 делений объект-микрометра совпали с 22 делением окуляр-микрометра. Один интервал деления объект-микрометра равен на 0,01 мм (цена деления), тогда а=18*0,01 мм, b=22, а m = (18*0,01):22=0,0082 мм= 8,2 мкм.

В каждом сроке эксперимента измерению площади соединительной ткани, коркового вещества и мозгового вещества тимуса подверглось несколько полей зрения, более или менее равномерно распределенных по всей площади среза, вычисляли средние арифметические и квадратные ошибки.

Моделирование острого токсического гепатита (ОТГ). ОТГ у мышей вызывали с помощью гепатотропного яда - четыреххлористого углерода (CCL₄), который вводили ежедневно подкожно в течение 3-х дней в виде 20 % масляного раствора по 0,2 мл (Петров Р.В. с соавт., 1984). В день последнего введения CCL₄ животных иммунизировали ЭБ в дозе 210⁸/мышь и еще через 5 дней определяли число АОК в селезенке.

Моделирование хронического токсического гепатита (ХТГ). В опыте использовали белых беспородных мышей массой 20-22 г. Гепатит вызывали еженедельным подкожным введением гелиотрина в дозе 50 мг/кг в течение 6 недель. В результате этого, как было показано ранее, формируется ХТГ, что было доказано функциональными и морфологическими исследованиями. После формирования ХТГ животных (спустя 6 недель) однократно внутрибрюшинно иммунизировали ЭБ в дозе 210⁸/мышь. На 5-е сутки после иммунизации животных забивали и в селезенке определяли количество АОК.

Гексеналовая проба. Мышам внутрибрюшинно вводили гексенал в дозе 70 мг/кг. Тестируемые вещества водили за 30 минут до инъекции гексенала. Продолжительность сна оценивали по боковому положению животных и отсутствию эффекта переворачивания.

Исследованные гепатопротекторные препараты. 1. Гепатин. В его состав входят следующие вещества: калий монофосфат - 0,0106 г. (ГОСТ 4198-75); натрий дифосфат - 0,0796 г (ГОСТ 11773-76); натрий хлорид - 0,0076 г (ВФС 42 Уз-0129-96; ГОСТ 4233-77); хлорид меди - 0,0106 г (ГОСТ 4167-74); натрий гидрокарбонат - 0,0796 г (ГФ-XI с. 430; ГОСТ 4201-79); борная кислота - 0,0100 г (ГФ-Х1 с. 10; ГОСТ 9656-75). Гепатин выпускается в виде таблеток по 0,2 гр. Гепатин производится ЧМП фирмой «Технооргсинтез» (г. Ташкент).

2. Желчегонный сбор Базарова (ЖСБ). В его составе: полынь горькая - 1,0 г (Artemisia absithium L.) (ВФС 42 Уз-0264-99); трава душицы - 1,0 г (Herba origami vulgaris ) (ВФС 42 Уз-0024-2000); цветки календулы - 1,0 г (Flores Calendulae) (ВФС 42 Уз-0105-96); цветы бессмертника песчаного - 1,0 г (Horls Helichrysi) (ВФС 42 У3-0010-2000); тысячелистник - 1,0 г (Achillea millefolium L.) (ВФС 42 Уз-0256-99); горец перечный - 1,0 г (Polygonum hidropiper L.) (ВФС 42 Уз-0348-2000). Две столовые ложки сбора добавляют в 0,5 л кипяченой воды, настаивают 30 минут. ЖСБ выпускается НПФ «Авиценна» (г. Андижан, Узбекистан).

3. Протопин. Является алкалоидом, выделенным из растения дымянка Вайана. Лекарственная форма препарата «Протопин» получена в Институте химии растительных веществ АН РУз. Результаты клинических исследований показали высокую эффективность препарата и решением Фармакологического комитета РУз протопин разрешен к широкому применению в качестве желчегонного и гепатозащитного лекарственного средства в терапии патологий печени.

В третьей главе «Влияние гепатопротекторов на иммунную систему и корреляционные взаимосвязи в норме и при патологиях печени» приведены результаты исследований по изучению эффекта гепатопротекторов на иммуногенез в норме и патологиях печени. В первой серии изучен эффект гепатопротекторов на иммунологические показатели у здоровых животных. Установлено, что у животных, получавших протопин, иммунный ответ к ЭБ недостоверно повышается в 1,54 раза, гепатин - в 2,14 раза (р<0,05), ЖСБ - в 1,94 раза. Следовательно, гепатин и ЖСБ обладают достаточно выраженной иммуностимулирующей активностью.

При введении животным протопина общее количество клеток в селезенке недостоверно повышается в 1,49 раза. Гепатин и ЖСБ не приводят к достоверным изменениям в показателе ЯСКС.

Установлено, что под воздействием протопина, гепатина и ЖСБ соответственно в 1,57, 1,71 и 1,53 раза повышается число клеток в тимусе мышей (р<0,05). Следовательно, вещества обладают стимулирующим эффектом в отношении тимических клеток. Введение мышам протопина в 1,51 раза увеличивает число клеток в костном мозге бедра (р<0,05), а под воздействием гепатина и ЖСБ - соответственно в 1,65 и 1,47 раза. Под воздействием протопина количество клеток в лимфатических узлах повышается в 1,52 раза (р<0,05), а при введении гепатина и ЖСБ - соответственно в 1,81 и 1,71 раза.

На основании полученных результатов можно придти к заключению, что изученные вещества обладают свойством влиять на состояние центральных и периферических органов иммунитета. Достоверная разница между активностью веществ не обнаружена.

Показано, что однократное введение мышам протопина, гепатина и ЖСБ достоверно в 1,5, 1,83 и 1,61 раза соответственно повышает уровень титра антител к ЭБ.

Установлено, что все изученные вещества не приводят к достоверным изменениям в показателях эритроцитов и лейкоцитов периферической крови мышей.

Нами проведены исследования по изучению гепатопротекторов на иммуногенез при ОТГ. Установлено, что ОТГ число АОК в селезенке снижается в 5,12 раза. У мышей с ОТГ, получавших протопин, число АОК в селезенке достоверно повышается в 2 раза, а при введении гепатина и ЖСБ - в 3,54 и 3,0 раза соответственно. При этом, иммуностимулирующая активность гепатина и ЖСБ достоверно превышает активность протопина, но разницы в активности между гепатином и ЖСБ не обнаружено.

Далее исследовали эффект веществ на титр антител к ЭБ. При ОТГ титр антител к ЭБ в периферической крови достоверно снижается в 1,89 раза, а при введении протопина их уровень повышается в 1,39 раза; под воздействием гепатина и ЖСБ - соответственно в 1,64 и 1,50 раза.

Анализ влияния веществ на состояние центральных и периферических органов иммунитета у мышей с ОТГ дал следующие результаты. При ОТГ общее число клеток в тимусе снижается в 2,48 раза, а при введении протопина их уровень повышается в 1,3 раза, гепатина - в 1,70 раза, а ЖСБ - в 1,50 раза.

При ОТГ обще число клеток в костном мозге уменьшается в 1,81 раза. Под воздействием протопина число костномозговых клеток достоверно повышается в 1,40 раза, а гепатина и ЖСБ - соответственно в 1,49 раза и 1,43 раза. Оба этих показателя достоверно не отличаются от контроля. Другими словами, при введении этих веществ происходит полное восстановление уровня клеток в костном мозге при ОТГ.

Установлено, что общее число клеток в лимфатических узлах мышей с ОТГ снижается в 2 раза, а под воздействием протопина повышается в 1,33 раза, гепатина - в 1,55 раза, ЖСБ - в 1,44 раза.

При ОТГ уровень эритроцитов периферической крови достоверно снижается в 1,80 раза. Введение мышам с ОТГ протопина повышает число эритроцитов в 1,40 раза (р<0,05), гепатина - в 1,53 раза и ЖСБ - в 1,50 раза. Количество лейкоцитов при ОТГ уменьшается в 1,62 раза. При введении протопина число лейкоцитов повышается в 1,32 раза, гепатина - в 1,42 раза, ЖСБ - в 1,36 раза. Таким образом, вещества обладают способностью повышать уровень эритроцитов и лейкоцитов в периферической крови мышей с ОТГ.

Проведено исследование по изучению влияния протопина и гепатина на метаболическую функцию печени в условиях ОТГ. Установлено, что под действием CCl₄ наблюдается резкое угнетение монооксигеназной ферментной системы. Продолжительность гексеналового сна у мышей с интоксикацией в 2,4 раза больше, чем у интактных животных. Трехдневное введение препаратов опытным животным существенно уменьшает продолжительность гексеналового сна. Таким образом, препараты протопин и гепатин стимулируют детоксицирующую функцию печени. Полученные данные свидетельствуют, что протопин и гепатин обладают выраженным гепатопротекторным действием.

Далее были проведены исследования по изучению корреляционных взаимосвязей между иммунологическими и гематологическими показателями у мышей с ОТГ, получавших иммуномодулирующие вещества.

Всего изучено 9 связей, из которых 7 иммунологических и 2 гематологических показателей: 1) общее число АОК на селезенку (АОК/сел); 2) число АОК на 1 млн. клеток селезенки (АОК/1млн); 3) общее число ядросодержащих клеток селезенки (ЯСКС); 4) титр антител к ЭБ в периферической крови (титрАТ); 5) число клеток тимуса (Тимус); 6) число клеток лимфатических узлов (ЛУ); 7) число клеток костного мозга (КМ); 8) количество эритроцитов периферической крови; 9) количество лейкоцитов периферической крови.

В контроле общее число корреляционных взаимосвязей равно 18, из которых одна связь с высокой и 17 - со средней степенью. Прямая связь с высокой степенью выявлена между эритроцитами и ЛУ (r=0,79).

При ОТГ всего выявлено 15 корреляционных взаимосвязей (1 с высокой степенью и 14 со средней), что на 3 меньше, чем в контроле. В сравнении с контрольной группой имеются некоторые различия. При ОТГ наблюдаются изменения в характере корреляционных взаимосвязей между иммунологическими и гематологическими показателями.

У мышей с ОТГ, получавших протопин выявлено 18 связей, из которых 2 с высокой степенью и 16 - со средней степенью. Картина взаимосвязей практически соответствует контрольной группе. Следовательно, при назначении протопина происходит восстановление взаимоотношений в иммунном статусе у мышей с ОТГ.

При введении мышам с ОТГ гепатина общее число корреляционных взаимосвязей составляет 23, что на 8 больше, чем у мышей с ОТГ и на 5 больше, чем в контрольной группе. Из них 5 связей с высокой степенью и 18 со средней степенью. При введении гепатина мышам с ОТГ происходит восстановление корреляционных взаимосвязей между иммунологическими и гематологическими показателями. Причем их количество даже превышает уровень контроля. У животных с ОТГ, получавших ЖСБ выявлено 13 взаимосвязей, из которых 1 с высокой степенью и 12 со средней степенью. Из трех изученных гепатопротекторов ЖСБ оказался наименее активным.

Если сравнить результаты, полученные при изучении эффекта гепатопротекторов на иммунный статус и характер корреляционных взаимосвязей, то видно, что гепатин в обоих случаях оказался наиболее активным.

Далее были проведены исследования по изучению эффекта протопина, гепатина и желчегонного сбора Базарова на иммунологические показатели при ХТГ. При ХТГ число АОК в селезенке снижается в 5,87 раза. У мышей с ХТГ, получавших протопин, число АОК в селезенке достоверно повышается в 2,1 раза, а под воздействием гепатина и ЖСБ - соответственно в 3,2 и 2,59 раза. Обнаружено, что иммуностимулирующая активность гепатина и ЖСБ достоверно превышает активность протопина. Выраженность иммуностимулирующей активности гепатина и ЖСБ одинакова. При ХТГ наблюдается достоверное (в 1,70 раза) снижение числа спленоцитов. В группах мышей с ХТГ, получавших протопин, гепатин и ЖСБ происходит достоверное повышение показателя ЯСКС соответственно в 1,20, 1,30 и 1,25 раза.

Установлено, что при ХТГ титр антител к ЭБ в крови достоверно снижается в 1,76 раза, а при введении протопина их уровень достоверно повышается в 1,24 раза, гепатина - в 1,48 раза, ЖСБ - в 1,40 раза.

Показано, что при ХТГ общее число клеток в тимусе снижается в 2,10 раза, а под воздействием протопина их число достоверно повышается в 1,30 раза, гепатина - в 1,40 раза и ЖСБ - в 1,35 раза. При ХТГ обще число клеток в костном мозге уменьшается в 1,91 раза. При введении протопина число костномозговых клеток достоверно повышается в 1,35 раза, гепатина и ЖСБ - соответственно в 1,45 и 1,41 раза.

Установлено, что общее число клеток в лимфатических узлах при ХТГ снижается в 2,4 раза. Под воздействием протопина количество клеток в лимфатических узлах животных с ХТГ повышается в 1,4 раза, гепатина - в 1,6 раза, ЖСБ - в 1,5 раза. Достоверной разницы между активностями этих веществ не обнаружено. На основании полученных результатов можно придти к заключению, что изученные препараты обладают свойством повышать число иммунокомпетентных клеток в центральных и периферических органах иммунитета у мышей с ХТГ.

При ХТГ уровень эритроцитов в периферической крови достоверно снижается в 1,61 раза; при введении мышам протопина их число достоверно повышается в 1,25 раза, а гепатина и ЖСБ - соответственно в 1,35 и 1,29 раза. Количество лейкоцитов при ОТГ уменьшается в 1,49 раза. При введении протопина число лейкоцитов достоверно повышается в 1,19 раза, гепатина - в 1,28 раза, ЖСБ - в 1,23 раза. Полученные результаты свидетельствуют о том, что изученные вещества обладают способностью повышать уровень эритроцитов и лейкоцитов в периферической крови мышей с ХТГ.

Далее был изучен эффект гепатопротекторов на функциональную активность антигенспецифических цитотоксических Т-клеток у мышей с ХТГ. Установлено, что в селезенках мышей контрольной группы образуется в среднем 2906,379,3 АОК. В группе мышей, получавших КСГД, число АОК на селезенку уменьшается в 3,66 раза и составляет 793,851,3. Это свидетельствует о том, что в селезенках накапливаются антигенспецифические цитотоксические Т-клетки и они подавляют иммунный ответ к ЭБ.

Представлял интерес выяснить, изменяется ли активность антигенспецифических цитотоксических Т-клеток в процессе формирования ХТГ. В селезенках животных, получавших КСГД с ХТГ, образуется 2106,3109,6 АОК. Следовательно, при ХТГ функциональная активность антигенспецифических цитотоксических Т-клеток существенно ослабевает, и они утрачивают способность подавлять иммунный ответ к ЭБ.

Если же вместе с КСГД от доноров с ХТГ вводить изученные препараты, то активность антигенспецифических цитотоксических Т-клеток в определенной степени восстанавливается. Причем в наибольшей степени в отношении стимулирования активности антигенспецифических цитотоксических Т-клеток обладает препарат гепатин. В данной группе число АОК достоверно ниже (993,8±63,7), чем в группах, получавших протопин (1406,3±67,1) и ЖСБ (1256,3±74,1).

Приведенные результаты свидетельствуют о способности изученных гепатопротекторов в определенной степени восстанавливать функциональную активность антигенспецифических цитотоксических Т-клеток при ХТГ, вызванном гелиотрином. Таким образом, в механизме действия гепатопротекторов на иммунологическую реактивность организма, помимо других активностей, лежит их способность повышать функцию антигенспецифических цитотоксических Т-клеток, играющих важную роль в иммунологических реакциях организма.

Далее были проведены исследования по изучению эффекта гепатопротекторов на корреляционные взаимосвязи между иммунологическими и гематологическими показателями у мышей с ХТГ. В контрольной группе обнаружено 21 корреляционных связей, из которых 2 с высокой степенью и 19- со средней степенью.

При ХТГ выявлена 21 корреляционная взаимосвязь, из которых 2 с высокой и 19 - со средней степенью. Иными словами, общее число связей соответствует контрольным показателям. При ХТГ в отличие от контроля наблюдается перераспределение направленности и силы корреляционных взаимосвязей внутри иммунной и кроветворной систем.

У мышей с ХТГ, получавших протопин, общее число связей равно 22, из которых 3 с высокой степенью и 19 - со средней степенью. Появляется новая прямая связь с высокой степенью, отсутствующая во всех предыдущих группах: между титрАТ и тимусом (r=0,82). Следует отметить, что при введении протопина животным с ХТГ, показатель АОК/сел имеет 8 связей из 8 возможных, что не было зафиксировано в предыдущих группах. Иначе говоря, данный показатель коррелирует со всеми иммунологическими и гематологическими параметрами. Под воздействием протопина наблюдается повышение корреляционных взаимосвязей внутри иммунной и кроветворной систем.

При введении гепатина мышам с ХТГ обнаружено 21 корреляционных взаимосвязей, из которых 5 с высокой и 16 со средней степенью. Хотя общее число связей не отличается от предыдущих групп, число сильных связей в 2,5 раза больше, чем в контроле и у мышей с ХТГ, не получавших гепатопротекторы. Таким образом, под воздействием гепатина наблюдаются определенные положительные сдвиги в характере корреляционных взаимосвязей у мышей с ХТГ.

Установлено, что при введении ЖСБ мышам с ХТГ общее число взаимосвязей составляет 20, из которых одна с высокой и 19 со средней степенью. Характер корреляционных взаимосвязей в целом соответствует контролю.

На основании полученных данных можно придти к заключению, что под воздействием изученных гепатопротекторов наблюдаются определенные положительные сдвиги в силе и направленности корреляционных взаимосвязей внутри иммунной и кроветворной систем у мышей с ХТГ. Наиболее выраженным стимулирующим эффектом обладает гепатин. Затем следуют протопин и ЖСБ.

В четвертой главе «Влияние гепатопротекторов на морфологию печени и органов иммунитета при патологиях печени» проведены морфологические исследования органов иммунитета (тимус, лимфатические узлы, селезенка) и печени у животных с ОТГ и ХТГ, получавших протопин, гепатин и ЖСБ.

Результаты морфологического исследования печени при моделировании ОТГ и лечении протопином показали что, в большинстве случаев в гепатоцитах выявляется сохранение дистрофических изменений смешанного характера. В третьей функциональной зоне долек печени отмечалось развитие белково-вакуольной дистрофии и колликвационного некроза. Морфологическое исследование печени при лечении ОТГ гепатином показало, что патоморфологические изменения, развившиеся как в паренхиме, так и строме печени, характерные для острого отравления CCl₄ становятся минимальными. В третьей функциональной зоне долек печени отмечалось значительное уменьшение объема жировой дистрофии.

Во второй функциональной зоне долек печени гепатоциты почти полностью восстановлены с сохранением балочного расположения, что свидетельствует о восстановлении структурно-функциональных элементов гепатоцитов печени под действием гепатина.

Результаты морфологического исследования печени после лечения ОТГ ЖСБ показали восстановление структурно-функциональных компонентов гепатоцитов почти всех отделов долек печени. Лишь сохраняется локальная мелкокапельная жировая дистрофия в перипортальной зоне долек.

Далее были проведены гистологические исследования тимуса в условиях ОТГ и введении гепатопротекторов. В тимусе под лечебным действием протопина отмечалось уменьшение степени дисциркуляторных и отечных явлений со стороны сосудов и стромальных компонентов. В дольках тимуса, особенно в коре значительно уменьшался отек интерстиции, набухание ретикулоэпителиальных клеток. Под воздействием гепатина в ткани тимуса дольчатое строение сохранилось, отмечалось уменьшение выраженности дисциркуляторных и отечных явлений со стороны стромы. В дольках хорошо различается кора и мозговой слой. В коре отека интерстиции нет, ретикулоэпителиальные клетки в состоянии гипертрофии, среди них количество лимфоцитов увеличилось. Мозговой слой хорошо различим, по сравнению с корой окрашен более интенсивно за счет гиперплазии телец Гассаля и мигрирующих лимфоцитов из коркового слоя.

По сравнению с предыдущими сериями экспериментов при лечении ОТГ ЖСБ в ткани тимуса значительно стихают дисциркуляторные, дистро-фические и отечные явления. В селезенке при лечении ОТГ протопином отмечалось некоторое стихание дисциркуляторных и отечных изменений, уменьшение цитолитических процессов в лимфоидных клетках, а также уменьшение активности макрофагальной реакции.

При введении гепатина также отмечалось уменьшение объема дисциркуляторных явлений, в отличие от предыдущей серии сохранилась в белой пульпе и маргинальной зоне лимфобластическая и макрофагальная реакция с нарушением границы между морфофункциональными зонами белой пульпы.

При лечении ОТГ препаратом ЖСБ отмечается вместе с уменьшением объема дисциркуляторных и отечных изменений, выраженное усиление пролиферативных процессов со стороны лимфоидных и макрофагальных клеток. Под действием протопина в лимфатических узлах, как и в других органах, в первую очередь уменьшается объем дисциркуляторных и отечных явлений. При этом периферический синус лимфатического узла спадается, в паракортикальной зоне уменьшается отек.

При лечении гепатином в лимфатических узлах преобладает развитие лимфопролиферативных изменений в виде бластотрансформации лимфоцитов и плазматической и макрофагальной реакции почти во всех морфофункциональных зонах лимфатического узла.

В качестве отличительного морфологического признака лечения ЖСБ явилось появление в строме лимфатического узла большого количества макрофагов и тучных клеток. В коре, мозговом слое и даже в просвете синусов мозгового слоя появились активизированные лимфоидные и макрофагальные клетки. Также периферический синус лимфатического узла был резко расширен за счет отека, в просвете которого появились активизированные лимфоциты и плазматические клетки.

В последней серии проведены морфологические исследования печени и органов иммунитета в условиях ХТГ и лечении гепатопротекторами. При лечении ХТГ протопином отмечалось уменьшение объема дистрофических и некротических изменений, но активность перипортальной лимфоидной инфильтрации сохранилась. В паренхиме печени наблюдалось расширение синусоидов и пространства Диссе с некоторым нарушением балочного расположения гепатоцитов.

При лечении ХТГ гепатином в отличие от предыдущей серии объем перипортальной лимфоидной инфильтрации несколько уменьшался, но активность межбалочной лимфоидной инфильтрации сохранилась. При этом гепатоциты расположены, не нарушая балочного строения, между балками пространства Диссе, которые остаются расширенными, в них обнаруживается лимфоциты, плазматические клетки и отмечается гипертрофия Купферовских клеток.

Результаты микроскопического исследования ткани печени после лечения ХТГ препаратом ЖСБ показали, что в отличие от предыдущих серий экспериментов значительно уменьшалась активность дистрофических, некротических и даже воспалительных изменений. Лишь небольшая лимфоидная инфильтрация обнаруживается вокруг портальных трактов.

При лечении ХТГ протопином в тимусе на фоне аксидентальной трансформации отмечалось появление морфологических признаков активации стромальных ретикулоэпителиальных клеток в виде гиперплазии и гипертрофии и появления активно функционирующих телец Гассаля. Со стороны лимфоцитов также наблюдалась небольшая активация реакции бластотрансформации.

Лечение ХТГ гепатином также привело к повышению активности стромальных структурных элементов в виде гипертрофии ретикулоэпителиальных клеток и расширения объема телец Гассаля. Лимфоциты находились в состоянии активности и бластотрансформации.

Результаты микроскопического исследования тимуса после лечения ХТГ препаратом ЖСБ в отличие от предыдущих серий экспериментов показали некоторое восстановление морфофункциональных зон ткани тимуса. При этом отмечалось развитие аксидентальной трансформации 2-3 степени в виде сохранения коркового слоя, повышения активности лимфоцитов в нем.

В селезенке при лечении ХТГ протопином отмечалось некоторое стихание дисциркуляторных и отечных изменений, разрыхление ткани как в красной, так и в белой пульпе, а также уменьшение цитолитических процессов в лимфоидных клетках и уменьшение активности макрофагальной реакции.

В селезенке при лечении ХТГ гепатином в отличие от предыдущей серии экспериментов также отмечалось уменьшение объема дисциркуляторных явлений, сохранилась в белой пульпе и маргинальной зоне лимфобластическая и макрофагальная реакция с нарушением границы между морфофункциональными зонами белой пульпы.

В селезенке при лечении ХТГ препаратом ЖСБ отмечается вместе с уменьшением объема дисциркуляторных и отечных изменений, выраженное усиление пролиферативных процессов со стороны лимфоидных и макрофагальных клеток. Наблюдается выраженная активация герминативного центра, усиление гиперплазии ретикулярных и лимфобластных клеток с появлением маргинальной зоны и периартериального вала.

В лимфатических узлах при ХТГ с лечением протопином и гепатином как в других органах в первую очередь уменьшается объем дисциркуляторных и отечных явлений, нарастают атрофические и гиперпластические изменения.

В лимфатических узлах при ХТГ с лечением ЖСБ в качестве отличительного морфологического признака лечения явилось появление в коре и паракортикальной зоне большого количества активизированных лимфоцитов и плазматических клеток.

Таким образом, при лечении ХТГ различными препаратами в лимфатических узлах отмечается стабилизация дисциркуляторных и деструктивных изменений, происходит вторичная активация лимфоидных, ретикулярных и макрофагальных клеток с появлением, как в коре, так и в паракортикальной зоне лимфатических узлов активизированных лимфоцитов и плазматических клеток.

Проведенный комплекс морфологических исследований убедительно показал, что изученные гепатопротекторы (протопин, гепатин, ЖСБ), помимо влияния на печень, способны восстанавливать морфологические изменения в центральном (тимус) и периферических (селезенка, лимфатические узлы) органах иммунитета. Способность изученных гепатопротекторов корригировать морфо-функциональные нарушения в органах иммунитета является экспериментальным обоснованием их применения при вторичных иммунодефицитных состояниях различной этиологии.

Далее проведено морфометрическое исследование структурных элементов тимуса при токсическом гепатите и его лечении.

Вес тимуса после забоя 10 половозрелых интактных крыс массой тела от 180 до 200 гр. составил в среднем 236,6±15,8 мг. При моделировании ОТГ, вызванный введением CCl₄ масса тимуса за счет токсической инволюции значительно уменьшается и в среднем составляет 192,7±14,3 мг, что 1,2 раза меньше чем показателей нормы. После лечения ОТГ гепатином тимус сохраняет свою массу в пределах 212,6±16,2 мг, что, хотя по сравнению с нормой меньше на 12%, а по сравнению с ОТГ без лечения на 10% больше. Аналогические данные получены после лечения ОТГ протопином и ЖСБ, особенно после лечения ЖСБ масса тимуса увеличивается по сравнению с ОТГ без лечения на 14% и приближается к показателям нормы.

Результаты гистометрического исследования различных морфофункциональных зон ткани тимуса показали, что площадь соединительной ткани тимуса в норме составляет 6,3% от общей площади гистологического среза долек тимуса. Необходимо отметить тот факт, что в норме сравнительная площадь коркового вещества тимуса занимает значительную большую часть и в среднем составляет 73,0%, а площадь мозгового вещества тимуса значительно меньше и составляет 20,7%. При ОТГ гистометрически отмечалось значительное уменьшение площади коркового вещества за счет токсического повреждения, и быстрой убыли лимфоцитов и в среднем составила 32,9%, что в 2 раза меньше, чем в норме. Соответственно расширялась площадь мозгового вещества тимуса и в среднем она составила 54,8%.

После лечения ОТГ гепатином, протопином и ЖСБ отмечалась общая тенденция изменений морфометрических показателей тимуса в виде утол-щения капсулы и междольковой соединительнотканной стромы за счет фиб-роматоза и липоматоза. Со стороны паренхимы долек тимуса наблюдалось продолжение истончения площади коркового слоя и расширения площади мозгового слоя долек тимуса. Необходимо отметить, что при лечении ОТГ ЖСБ отмечается некоторое истончение капсулы, расширение коркового слоя, что составило в среднем 26,1%. Также отмечалось расширение площади мозгового слоя долек тимуса за счет увеличения содержания в данном слое большого количества активизированных лимфоцитов.

При ХТГ масса тимуса по сравнению с нормой еще больше уменьшается и в среднем составляет 162,7±3,6 мг, что почти на 2 раза меньше нормы. После лечения гепатотропными препаратами тимус сохраняет в определенной степени свою массу, а после лечения ЖСБ приближается к норме.

Результаты гистометрии ткани тимуса показали, что по сравнению с ОТГ при ХТГ основные морфометрические перестройки происходят со сто-роны капсуды, междольковой стромы и мозгового слоя долек тимуса. При ХТГ без лечения капсула утолщается по сравнению с нормой в 2 раза, что свидетельствует о развитии в тимусе токсической инвалюции паренхимы и фиброматозе стромы органа. Такая картина отмечалась в сериях ХТГ с лече-нием гепатотропными препаратами, особенно в группе с лечением ЖСБ капсула утолшается 2,3 раза по сравнению с нормой.

Хроническое воздействие гепатотропных токсинов приводит к прежде-временной инвалюции тимуса с значительным истончением коркового слоя долек и расширением площади мозгового слоя тимуса. После лечения ХТГ различными гепатотропными препаратами морфометрические показатели площадей различных зон долек тимуса сохраняют тенденцию в виде истон-чения коры и расширения мозгового слоя. Такая картина характерна для токсической инвалюции тимуса и лечебного воздействия на центральный орган иммуногенеза. Расширение площади долек тимуса свидетельствует об повышении функциональной активности тимуса, которое доказывается мор-фологическими данными в виде гипертрофии ретикулоэпителия и гиперпла-зии активизированных лимфоцитов мозгового слоя долек тимуса.

ВЫВОДЫ

1. Гепатопротекторы (протопин, гепатин и ЖСБ) существенно повышают иммунный ответ и титр антител к эритроцитам барана, количественное содержание клеток в органах иммунной системы, число эритроцитов и лейкоцитов в периферической крови у интактных мышей.

2. При остром и хроническом гепатите препараты протопин, гепатин и ЖСБ корригируют нарушения в иммунной и кроветворной системах. Изученные препараты усиливают функциональную активность антигенспецифических цитотоксических Т-клеток при хроническом токсическом гепатите.

3. Протопин, гепатин и ЖСБ восстанавливают морфологические нарушения в печени, тимусе, селезенке и лимфатических узлах при остром и хроническом гепатите.

4. Изученные гепатопротекторы стимулируют монооксигеназную систему печени при его токсическом поражении.

5. Протопин, гепатин и ЖСБ восстанавливают нарушенные корреляционные взаимосвязи в иммунной системе при остром и хроническом гепатите.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

Гепатопротекторы протопин, гепатин и ЖСБ после проведения клинических исследований можно рекомендовать для использования в качестве иммуномодулирующих препаратов при иммунодефицитных состояниях различной этиологии.

СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

1.Монография: Аскаров Т.А., Ашурова Ф.М., Батырбеков А.А., Влияние некоторых гепатопротекторов на морфофункциональное состояние органов иммунной системы при токсических поражениях печени, Ташкент, 2011. 106 стр.

Журнальные статьи:

2. Ашурова Ф.К., Тулаганов Р.Т., Набиев А.Н., Алиев Х.У. Оценка иммуномодулирующей активности новых гепатопротекторов растительного происхождения //Фармацевтический журнал. Ташкент, 2008. - № 3. С. 69-70.

3. Ашурова Ф.К., Тулаганов Р.Т., Алиев Х.У., Аскаров Т.А. Влияние гепатотропных веществ на иммунологические показатели в эксперименте //Патология. Ташкент, 2008. - № 3. С. 11-13.

4. Ашурова Ф.К. Влияние гепатотропных веществ на иммуногенез при остром токсическом гепатите в эксперименте //Практическая фитотерапия (Москва). - 2010, В номере: Материалы 3-го симпозиума «Фитолектины в клинической практике» в рамках 17 Российского национального конгресса «Человек и лекарства» (12-16.04.2010г.) Москва, 2010. С. 23-27.

5. Ашурова Ф.К. Коррекция иммунологических нарушений с помощью гепатотропных веществ при экспериментальном остром токсическом гепатите //Журнал теоретической и клинической медицине - Ташкент, 2011. - №1. - С. 6-8.

6. Аскаров Т.А., Ашурова Ф.К. Влияние некоторых гепатопротекторов на иммуногенез и морфометрические показатели тимуса при хроническом токсическом гепатите //Физиология и патология иммунной системы - Москва. - 2011.- Т.15.- №6.- С.20-24.

Тезисы, методические рекомендации:

7. Ашурова Ф.К. Исследование гепатотропного действия протопина и гепатина //Сб. науч. тр. Научно-практической конференции «Клиническая иммунология, иммуногенетика - междисциплинарные проблемы» с международным участием, посв. 25-летию Института иммунологии АН РУз (11-12 октября 2010г.). - Т. - 2010. С. 31.

8. Ашурова Ф.К. Коррекция вторичного иммунодефицита при хроническом токсическом гепатите с помощью протопина и гепатина //Сб. науч. тр. научно-практической конференции «Клиническая иммунология, иммуногенетика-междисциплинарные проблемы» с международным участием, посв. 25-летию Института иммунологии АН РУз (11-12 октября 2010г.). - Т. - 2010. С. 31-32.

9. Аскаров Т.А., Ашурова Ф.К., Исраилов Р.И. Иммуноморфологическое обоснование использования некоторых гепатопротекторов в качестве иммуномодуляторов при остром токсическом гепатите. - Методические рекомендации. - Ташкент, 2010. - 28 с.

10. Аскаров Т.А., Ашурова Ф.К., Исраилов Р.И. Перспективы использования некоторых гепатопротекторов в качестве иммуноактивных средств при хроническом токсическом гепатите. - Методические рекомендации. - Ташкент, 2010. - 24 с.

...