Модулирующее действие дофамина на потенциал-активируемые и хемоуправляемые токи мультиполярных нейронов спинного мозга пескоройки

Размещено на http://www.allbest.ru/

АВТОРЕФЕРАТ

Диссертации на соискание ученой степени

кандидата медицинских наук

03.00.13. - Физиология

МОДУЛИРУЮЩЕЕ ДЕЙСТВИЕ ДОФАМИНА НА ПОТЕНЦИАЛ-АКТИВИРУЕМЫЕ И ХЕМОУПРАВЛЯЕМЫЕ ТОКИ МУЛЬТИПОЛЯРНЫХ НЕЙРОНОВ СПИННОГО МОЗГА ПЕСКОРОЙКИ

Букинич Анна Александровна

САНКТ-ПЕТЕРБУРГ 2009

Работа выполнена в лаборатории эволюции межнейронного взаимодействия (заведующий лабораторией - доктор медицинских наук, член-корреспондент РАН Н. П. Веселкин) Учреждения Российской академии наук Института эволюционной физиологии и биохимии имени И. М. Сеченова РАН.

Научный руководитель:

доктор медицинских наук, член-корреспондент РАН, заведующий лабораторией эволюции межнейронного взаимодействия

Н. П. ВЕСЕЛКИН

Официальные оппоненты:

доктор медиц. наук, профессор

Н. П. ЕРОФЕЕВ

кандидат медицинский наук

Г.Б. ВАЙНШТЕЙН

Ведущая организация:

Учреждение Российской академии наук Институт физиологии им. И.П.Павлова РАН (Санкт-Петербург)

Защита состоится «10» февраля 2009 г. в «_» часов на заседании кандидатского совета Д 002.127.01 Учреждения Российской академии наук Института эволюционной физиологии и биохимии им. И. М. Сеченова РАН по адресу: 194223, г. Санкт-Петербург, пр. М. Тореза, 44.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Учреждения Российской академии наук Института эволюционной физиологии и биохимии им. И. М. Сеченова РАН.

Автореферат разослан «_» _______ 2008 года

Ученый секретарь

диссертационного совета,

доктор биологических наук

М. Н. Маслова

1. Актуальность темы исследования

Дофамин является важнейшим нейромедиатором и нейромодулятором в центральной нервной системе позвоночных животных (Nicola et al., 2000; Carlsson, 2001; Seamans and Yang, 2004), а также гормоном, вырабатываемым мозговым веществом надпочечников и другими тканями (например, почками) (Missale et al., 1998). У млекопитающих и у человека с его участием связывают контроль двигательной активности (Furmidge et al., 1991; Lynch, 1991), эмоций (Weiner et al., 1989; Nieoullon, 2002, 2003; Salqado-Pineda et al., 2005), мышления (Nieoullon, 2002, 2003; Nieoullon and Coquerel, 2003), положительного подкрепления, потребления пищи (Шабанов и соавт., 2000, 2002), эндокринных функций (Missale et al., 1998). Кроме того, дофамин участвует в патогенезе и этиологии некоторых нейрологических и психиатрических заболеваниях, таких как болезнь Паркинсона, хорея Гентингтона, синдром Туретта, (Meltzer, 1980), шизофрения (Snyder et al., 1974), анорексический невроз (Barry and Klawans, 1976), гиперреактивное дефективное расстройство у детей, лекарственная зависимость к кокаину и амфетаминам (Greengerd et al., 1999).

Дофамин и дофамин-иммунореактивные клетки показаны в спинном мозге и гипоталамусе у представителей разных классов позвоночных животных, включая млекопитающих, рептилий, амфибий и рыб (McGeer and McGeer, 1962; Commissiong and Sedgwick, 1974, 1975; Commissiong and Neff, 1979; Константинова, 1979; Bennis et al., 1990; Roberts et al., 1989).

В немногочисленных исследованиях на круглоротых было показано модулирующее действие дофамина на спинальные нейроны миноги (Kemnitz, 1997), и модулирующее действие дофамина на Са²⁺-токи нейронов спинного мозга (Wikstrom et al., 1999). В то же время исследование роли дофамина в механизмах регуляции межнейронного взаимодействия на самых ранних этапах филогенеза позвоночных представляет существенный интерес в плане изучения становления его роли. Принимая во внимание тот факт, что эффекты дофамина исследуются в основном в неостриатуме и прилежащем ядре млекопитающих, о механизмах модулирующего действия дофамина на нейроны спинного мозга позвоночных известно немного. Исследование функциональной роли дофамина в спинном мозгу личинки миноги может выявить особенности становления его роли в онтогенезе, а также позволит получить сведения о формировании механизмов регуляции двигательной активности.

Мультиполярные нейроны спинного мозга пескоройки, являющиеся в функциональном отношении в основном мотонейронами и интернейронами, участвуют во всех функциях спинного мозга. Изучение модулирующего действия дофамина на потенциал-активируемые и хемоуправляемые токи на мембранах мультиполярных нейронов является адекватным подходом в плане изучения формирования функций дофамина в онтогенезе у низших позвоночных.

Таким образом, учитывая все вышесказанное, мы поставили ЦЕЛЬЮ НАСТОЯЩЕЙ РАБОТЫ исследование механизмов модулирующего действия дофамина на потенциал-активируемые Na⁺ и К⁺-токи, а также на хемоуправляемые токи, вызванные ГАМК и глицином, на мембранах мультиполярных нейронов спинного мозга пескоройки.

Для достижения указанной выше цели были поставлены следующие ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫЕ ЗАДАЧИ:

1) Исследовать потенциал-активируемые Na⁺ и К⁺-токи, а также ГАМК- и глицин-активируемые токи на мембранах изолированных мультиполярных нейронов спинного мозга пескоройки.

2) Исследовать влияние агонистов и антагонистов дофаминовых рецепторов на потенциал-активируемые Na⁺ и К⁺-токи, а также на хемоуправляемые токи, вызванные ГАМК и глицином.

3) Получить данные о механизмах модуляции дофамином потенциал-активируемые Na⁺ и К⁺-токов, а также ГАМК- и глицин-активируемых токов на мембранах мультиполярных нейронов спинного мозга пескоройки.

НАУЧНАЯ НОВИЗНА ИССЛЕДОВАНИЙ. На изолированных мультиполярных нейронах спинного мозга пескоройки были впервые исследованы кинетические и фармакологические свойства потенциал-активируемых Na⁺ и К⁺-токов, а также хемоуправляемых токов, вызванных ГАМК и глицином. Впервые было высказано предположение о наличии на мембранах мультиполярных нейронов спинного мозга пескоройки гетерогенных дофаминовых рецепторов. Результаты исследований показали, что дофамин не изменяет порог активации потенциал-активируемого натриевого тока и сопротивление клеточной мембраны мультиполярных нейронов спинного мозга пескоройки. Впервые было показано, что агонисты Д1 и Д2-рецепторов на мембранах мультиполярных нейронов спинного мозга пескоройки уменьшают амплитуду потенциал-активируемых Na⁺ и К⁺-токов, и ГАМК- и глицин-активируемых токов, а агонисты Д3-рецепторов -- увеличивают амплитуду потенциал-активируемых Na⁺ и К⁺-токов, и ГАМК- и глицин-активируемых токов. Частичная блокада антагонистом Д1-рецепторов (+)-SCH-23390 действия агониста Д1-рецепторов (+)-SKF-38393 была показана при изучении потенциал-активируемых Na⁺-токов. Также было показано, что антагонист Д2-рецепторов - сульпирид полностью блокирует эффекты агониста Д1-рецепторов (+)-SKF-38393 на потенциал-активируемых Na⁺ и К⁺-токах и полностью блокирует эффекты дофамина на потенциал-активируемых К⁺ токах. Феномен частичной блокады антагонистом Д1-рецепторов (+)-SCH-23390 эффектов, вызванных дофамином и агонистом Д2-рецепторов квинпиролом, нами был получен при изучении эффектов дофамина на ГАМК- и глицин-активируемые токи. Таким образом, были впервые получены данные о модулирующем действии дофамина на потенциал-активируемые Na⁺ и К⁺-токи и хемоуправляемые токи, вызванные ГАМК и глицином на мембранах мультиполярных нейронов спинного мозга пескоройки.

ПОЛОЖЕНИЯ, ВЫНОСИМЫЕ НА ЗАЩИТУ.

Дофамин оказывает модулирующее действие на потенциал-активируемые и хемоуправляемые токи на мембране мультиполярных нейронов спинного мозга пескоройки.

Модуляция дофамином потенциал-активируемых и хемоуправляемых токов осуществляется за счет разных подтипов дофаминовых рецепторов, которые в разном количественном соотношении экспрессируются на мембране мультиполярных нейронов спинного мозга пескоройки.

ТЕОРЕТИЧЕСКОЕ И ПРАКТИЧЕСКОЕ ЗНАЧЕНИЕ РАБОТЫ. Результаты проведенного исследования представляют интерес для общей нейрофизиологии, нейробиологии, физиологии нервной клетки и медицины. Они вносят вклад в понимание механизмов модулирующего действия дофамина на потенциал-активируемые Na⁺ и К⁺-токи, а также на хемоуправляемые токи, вызванные ГАМК и глицином, на мембранах мультиполярных нейронов спинного мозга пескоройки и расширяют уже имеющиеся представления о механизмах модуляции дофамином Na^+, К⁺ и ГАМК-активируемых токов в центральной нервной системе позвоночных. Механизмы модуляции дофамином глицин-активируемых токов на нейронах спинного мозга были изучены впервые. Полученные результаты имеют существенное значение для понимания осуществления актов движения у круглоротых. Результаты настоящей работы могут быть использованы для дополнения и уточнения уже имеющихся данных о модулирующем действии дофамина у позвоночных животных.

АПРОБАЦИЯ РАБОТЫ. Материалы диссертации были доложены и обсуждены на следующих научных собраниях: на Седьмой Всероссийской медико-биологическая конференция молодых исследователей (С-Петербург, 18 апреля 2004); на XIII Международном совещании по эволюционной физиологии, посвященных памяти академика Л.А. Орбели (Санкт-Петербург, 2006 г.); на ХХ Съезде Физиологического общества им. И. П. Павлова (Москва, 4-8 июня 2007).

ПУБЛИКАЦИИ. Основные результаты диссертации отражены в пяти публикациях.

СТРУКТУРА И ОБЪЕМ РАБОТЫ: Диссертация состоит из введения, 4 глав, выводов и списка литературы. Изложена на 119 страницах машинописного текста, иллюстрирована 23 рисунками и 3 таблицами. Библиография включает 237 наименований.

2. Методика и объект исследования

В качестве модельного препарата в настоящем исследовании использовался спинной мозг пескоройки - личинки миноги Lampetra planeri. Эксперименты выполнены на отдельных мультиполярных нейронах спинного мозга пескоройки, изолированных ферментативно-механическим способом. Для опытов отбирали крупные особи размером 15-18 см. До использования в эксперименте животные содержались в больших резервуарах с аэрированной водой при температуре зимой не выше 0-4 ^оС, летом -- не выше 18-20^оС.

МЕТОДЫ, ИСПОЛЬЗОВАННЫЕ ПРИ ИССЛЕДОВАНИИ МОДУЛИРУЮЩЕГО ДЕЙСТВИЯ ДОФАМИНА НА ПОТЕНЦИАЛ-АКТИВИРУЕМЫЕ И ХЕМОУПРАВЛЯЕМЫЕ ТОКИ МУЛЬТИПОЛЯРНЫХ НЕЙРОНОВ СПИННОГО МОЗГА ПЕСКОРОЙКИ.

Изоляцию клеток осуществляли ферментативно-механическим способом, который включал в себя обработку изолированных фрагментов протеолитическим ферментами (1) и последующую механическую диссоциацию ткани путем пипетирования через пипетки Пастера (2).

1) Ферментативная обработка мозга проводилась в два этапа. На первом этапе фрагменты изолированного мозга, длиной около 1 см, инкубировались в течение 20 мин. в растворе с коллагеназой (1.6 мг/мл, Collagenase Type IA, Sigma, USA, раствор для коллагеназы № 3), после чего (второй этап) снимали мягкую мозговую оболочку, изготавливали фронтальные срезы толщиной 1.5 мм и помещали их на 1 час 15 мин. в раствор с проназой (0.5 мг/мл, Pronase E, Sigma, USA, раствор для проназы № 4). После ферментативной обработки срезы мозга промывались в четырех сменах физиологического раствора № 1 (10 мл) с добавлением 0.03 мг/10мл стрихнина по 10, 5, 5 и 10 мин. В первый промывочный раствор добавляли бычий сывороточный альбумин (8мг/10мл); (BSA, Sigma, USA.). Инкубирование проводились в условиях помешивания на шейкере при постоянной аэрации растворов смесью 98 % O₂+2 % CO₂; температура поддерживалась на уровне 18-20^оС.

2) Механическую диссоциацию спинномозговой ткани осуществляли путем многократного пропускания срезов через пипетки Пастера с диаметром кончиков от 150 мкм до 600 мкм. Через 10-15 минут мозг полностью распадался на отдельные клетки, и клетки переносили в экспериментальную камеру для проведения электрофизиологических тестов.

Экспериментальная камера состояла из одного отсека, в котором производили выбор клетки для тестирования и путем приложения отрицательного давления в пипетке добивались контакта внутрипипеточного раствора с цитоплазмой клетки (конфигурация «целая клетка»).

Изготовление пипеток. Для обеспечения контакта с клеткой применялись микропипетки, изготовленные из микрогематокритных капилярных трубок (Fischer Sci. brand, USA). Пипетки вытягивались в две стадии на кузнице МЭ-3 (Киев, Украина) в модификации Батуевой И. В. Кончик пипетки оплавляли, после чего его внутренний диаметр составлял 1.5-2.5 мкм. Оплавленные микропипетки покрывались изоляционным воском, заполнялись пипеточным раствором, приведенным в табл. № 1, и закреплялись в держателе установки. Держатель, в свою очередь, крепился на микроманипуляторе, с помощью которого кончик пипетки подводился к клетке в экспериментальной камере.

Регистрация токов. Токи регистрировались монополярно относительно индифферентного электрода в условиях фиксации потенциала на целой клетке (метод пэтч-кламп в конфигурации «whole-cell» - «целая клетка»). Емкостной ток и ток утечки компенсировали с помощью метода, описанного в литературе (Сигворс и соавт., 1987). В работе был использован усилитель AXOPATCH-1D с головкой CV 4 (Axon Instruments, USA). Во входной головке применялось сопротивление обратной связи 5 ГОм. Регистрируемые токи оцифровывались аналого-цифровым преобразователем DigiData-1200 (Axon Instruments, USA) и сохранялись на твердом диске компьютера (IBM PC-486, USA) программой CLAMPEX пакета pCLAMP 6.2. Высокочастотные шумы до ввода в ЭВМ удалялись фильтром Бесселя второго порядка с полосой пропускания 3 кГц. Программа CLAMPEX позволяет фиксировать потенциал или ток на мембране на заданном уровне и смещать их в соответствии с задачей эксперимента. Анализ данных проводился программой CLAMPFIT 6.2, CLAMРFIT 8.1, Microsoft Excel, Sigma Plot. Документальная запись осуществлялась струйным принтером DeskJet 500C (Hewlett Packard, USA).

Растворы, используемые в экспериментах. Растворы, использованные в экспериментах, представлены в табл. № 1. Каждый раствор использовался согласно задачам конкретного эксперимента. Смена суперфузирующих растворов в экспериментальной камере осуществлялась путем переключения протока.

Средние величины параметров, представленных в главе "Результаты и их обсуждение", приведены со средней квадратичной ошибкой и расчитывались по общепринятой методике, описанной в литературе (Лакин, 1980). Достоверность различий оценивалась по критерию Стьюдента.

Таблица № 1. Растворы, используемые в опытах на изолированных клетках.

Сокращения: ЭГТА - Этиленгликоль тетрауксусная кислота; ТЭА - тетраэтиламмоний.

Использованные растворы:

Физ. р-р № 1 - физиологический раствор для изолированных клеток;

препар. р-р № 2 - раствор для препаровки спинного мозга;

р-р для коллагеназы № 3 - раствор для ферментативной обработки мозга после добавления коллагеназы;

р-р для проназы № 4 - раствор для ферментативной обработки мозга после добавления проназы; пипеточный раствор № 5.

Исследование основных свойств потенциал-активируемых и хемоуправляемых токов, вызванных ГАМК и глицином, изолированных мультиполярных нейронов методом пэтч-кламп.

Исследование трансмембранных ионных токов мультиполярных нейронов проводили в режиме фиксации мембранного потенциала (МП) на целой клетке. Диапазон МП находился в пределах от -120 до 30 мВ. В большинстве тестов данной экспериментальной серии МП мультиполярных нейронов поддерживали на уровне -100 мВ. Выбор этого значения был определен двумя причинами. Во-первых, при таком уровне МП удается снизить до минимума инактивацию потенциал-зависимых каналов мембраны. Во-вторых, амплитуда исследуемых токов при данном значении МП была оптимальна.

Проведенные тесты показали, что при фиксации мембранного потенциала (МП) на уровне -100 мВ поляризация мембраны от -120 до 30 мВ импульсом тока длительностью 50 - 100 мс вызывала появление интегрального трансмембранного тока, который помимо емкостного тока и тока утечки включал в себя ионный компонент, состоящий из Na⁺ и К⁺-тока (n=32). Сопротивление клеточной мембраны мультиполярных нейронов спинного мозга пескоройки составило 124.58 21.36 МОм (n=32), среднее значение емкости мембраны - 302 34 пФ (n=10).

Характеристики Na⁺-тока исследовались в условиях блокады калиевого тока тетраэтиламмонием (ТЭА) (физиологический раствор № 1 с добавлением от 15 до 45 мМ ТЭА). Было показано, что этот ток однороден и полностью блокируется 1 мкМ тетродотоксином (ТТХ). При стимуляции клетки импульсами длительностью 50 - 100 мс, последовательно поляризующим мембрану потенциалами от -120 до 30 мВ, входящий натриевый ток возникал и был максимальным при подаваемом потенциале около -50 мВ, и далее при увеличении потенциала амплитуда тока уменьшалась.

К⁺-ток исследовался в условиях блокады натриевой проводимости ТТХ (физиологический раствор № 1 с добавлением 1мкМ ТТХ). Этот ток активировался при потенциале около -50 мВ и далее линейно возрастал пропорционально МП. В условиях ТТХ-блока выходящий ток достигал своего максимального значения за 5-10 мсек и по достижении своего пикового значения удерживался на плато в течение 50 мс и более, не обнаруживая отчетливой инактивации. Длительность фазы нарастания тока зависела от уровня деполяризации мембраны.

При исследовании хемоуправляемых токов, вызванных ГАМК (n=32) и глицином (n=35) было показано, что амплитуда и полуширина токов насыщения при фиксации потенциала на -100 мВ составили в среднем 2.17±0.45 нА и 742±110 мсек для ГАМК, и 5.09±0.42 нА и 525±114 мсек для глицина. Потенциал реверсии, вычисленный согласно соотношению: V_rev= -b/a, составил -35 мВ для ГАМК- и -30 мВ для глицин-активируемых токов. Полученные значения близки к потенциалу реверсии хлорного тока, вычисленному по уравнению Нернста для используемых в тестах концентраций ионов хлора (-37.0. мВ, исходя из внеклеточной и внутрипипеточной концентрации ионов Сl^-, равных соответственно 133 и 30 мМ). Последнее свидетельствует в пользу того, что токи, вызываемые аппликацией ГАМК и глицина, связаны с активацией хлорной проводимости.

Исследование влияния дофамина, агонистов и антагонистов Д1 и Д2-рецепторов на потенциал-активируемые Na⁺ и K⁺-токи, и хемоуправляемые токи, вызванные ГАМК и глицином, изолированных мультиполярных нейронов спинного мозга пескороек.

При аппликации 10 мкМ дофамина (n=29) в условиях фиксации потенциала на уровне -100 мВ было установлено, что дофамин не вызывает изменений порога активации потенциал-активируемого натриевого тока: при регистрации натриевых токов в физиологическом растворе этот параметр составил, в среднем, -52±14.76 мВ, при действии дофамина - 53±15.67 мВ.

В этой же серии экспериментов регистрировали и сопротивление клеточной мембраны исследуемых нейронов. В нормальном физиологическом растворе этот параметр составил в среднем 124.58±21.36 МОм. При аппликации 10 мкМ дофамина сопротивление клеточной мембраны не измененялось и составило в среднем 124.49±21.35 МОм.

Однако было показано, что дофамин (10 мкМ) статистически достоверно увеличивал в среднем на 8.6±6.1% (n=5), и уменьшал, в среднем, 13.5±2.2% (n=24) пиковую амплитуду натриевого тока на разных клетках. В контрольный серии экспериментов, когда вместо дофамина подавали физиологический раствор, подобные эффекты не наблюдали: уменьшение амплитуды Na⁺-тока составило, в среднем, 0.17±0.06% (n=9, р=0.04), а увеличение -- 0.42±0.14% (n=6, р=0.02). Сопоставление величин изменения пиковой амплитуды натриевого тока при действии дофамина и в контрольной серии экспериментов позволяет нам делать вывод о наличии эффектов дофамина на пиковую амплитуду натриевого тока. Тот факт, что, дофамин действует на пиковую амплитуду натриевого тока, был доказан и при сравнении размаха вариации. Простое взвешенное отклонение или размах вариации при действии дофамина на амплитуду потенциал-активируемых Na⁺-токов составил 9.9±2.5%, а в контроле (при действии физиологического раствора на амплитуду потенциал-активируемых Na⁺-токов) -- 0.2±0.5%.

Для исследования механизма действия дофамина была проведена серия экспериментов с применением специфических агонистов Д1 и Д2-рецепторов. Тесты показали, что специфический агонист Д1-рецепторов (+)-SKF-38393 (10 мкМ) уменьшал пиковую амплитуду Na⁺-тока в среднем на 31.1±10.6% (n=5; p<0.01), в то время как специфический агонист Д2-рецепторов квинпирол (10 мкМ) одних случаях уменьшал амплитуду Na⁺-тока, в среднем, на 13.2±3.1% (n=4; р<0.01), а в других - увеличивал в среднем на 30.7±17.0% (n=4; р<0.01) на разных клетках.

Применение специфических антагонистов Д1 и Д2-рецепторов (при изучении Na⁺-токов) показало, что антагонист Д2-рецепторов сульпирид (10 мкМ) полностью блокирует как эффекты агониста Д1-рецепторов (+)-SKF-38393 (10 мкМ) (n=6, p>0.05), так и агониста Д2-рецепторов квинпирола (10 мкМ) (n=5, p>0.05). Эффект агониста Д1-рецепторов (+)-SKF-38393 (10 мкМ) на амплитуду Na⁺-тока был заблокирован антагонистом Д1-рецепторов (+)-SCH-23390 (10мкМ) (при учете, что эффект (+)-SKF-38393 на амплитуду Na⁺-тока был принят за сто процентов) на 58.5±12.7% (n=6, p<0.01). Эффект агониста Д2-рецепторов квинпирола (10 мкМ) (уменьшение амплитуды Na⁺-тока) не был заблокирован антагонистом Д1-рецепторов (+)-SCH-23390 (10 мкМ) (n=5, p<0.01).

В результате экспериментов было показано, что при аппликации агониста Д1-рецепторов (+)-SKF-38393 (10 мкМ) происходит уменьшение амплитуды К⁺-токов в среднем на 14.3±4.3% (n=6, p<0.01). Агонист Д2-рецепторов квинпирол (10 мкМ) уменьшал амплитуду К⁺токов, в среднем,на 5.5±2.5%, (n=6, p<0.01), и увеличивал амплитуду К⁺токов в среднем на 13.2±3.0% (n=6, p<0.01) на разных клетках. В контрольных тестах, когда вместо квинпирола подавали физиологический раствор, подобные эффекты не наблюдали: уменьшение амплитуды К⁺-тока составило, в среднем, 0.49±0.07% (n=15, р=0.003), а увеличение -- 0.65±0.19% (n=7, р=0.01). Простое взвешенное отклонение или размах вариации при действии квинпирола на амплитуду потенциал-активируемых К⁺-токов составил 8.4±1.0%, а в контроле при регистрации в физиологическом растворе на амплитуду потенциал-активируемых К⁺-токов -- 0.1±0.6%. Таким образом, доказано, что квинпирол оказывает действие на амплитуду потенциал-активируемых К⁺-токов.

Применение специфических антагонистов Д1 и Д2-рецепторов (при изучении К⁺-токов) показало, что антагонист Д2-рецепторов сульпирид (10 мкМ) полностью блокирует как эффекты агониста Д1-рецепторов (+)-SKF-38393 (10 мкМ) (n=5, p=0.2), так и агониста Д2-рецепторов квинпирола (10 мкМ) (n=5, p>0.05). Антагонист Д1-рецепторов (+)-SCH-23390 (10 мкМ) на эффект, вызванный агонистом Д2-рецепторов квинпиролом (10 мкМ) (уменьшение амплитуды К⁺-тока) никакого действия не оказал (n=7, p<0.01), и не заблокировал действие агониста Д1-рецепторов (+)-SKF-38393 (10 мкМ) на амплитуду К⁺-тока (n=11, p<0.01). Эффекты дофамина (10 мкМ) на амплитуду К⁺-тока были полностью заблокированы антагонистом Д2-рецепторов сульпиридом (10 мкМ) (n=6, p>0.05).

Изучение модулирующего действия дофамина было продолжено на хемоуправляемых токах, вызванных ГАМК и глицином, на мембране мультиполярных нейронов спинного мозга пескоройки.

Тесты показали, что аппликация дофамина (5 мкМ) уменьшает амплитуду ГАМК-активируемого тока (2 мМ), в среднем, на 33.3±8.7% (n=8, p<0.01), и увеличивает амплитуду, в среднем, на 37.3±11.8% (n=5, p<0.01) на разных клетках. В контрольных тестах, когда вместо дофамина подавали физиологический раствор, подобные эффекты не наблюдали: уменьшение амплитуды ГАМК-активируемого тока (2 мМ) составило, в среднем, 4.44±1.91% (n=9, р=0.04), а увеличение -- 4.24±1.39% (n=8, р=0.02). Простое взвешенное отклонение или размах вариации при действии дофамина (5 мкМ) на амплитуду ГАМК-активируемого тока (2 мМ) составил 10.0±4.2%, а в контроле (при действии физиологического раствора на амплитуду ГАМК-активируемого тока (2 мМ)) -- 0.01±0.6%.

При изучении действия агонистов Д1 и Д2-рецепторов на амплитуду хемоуправляемых токов было показано, что агонист Д1-рецепторов (+)-SKF-38393 (5 мкМ) уменьшает амплитуду ГАМК-активируемого тока (2 мМ), в среднем, на 63.1±11.7% (n=8, p<0.01). Агонист Д2-рецепторов квинпирол (5 мкМ) вызывает в разных клетках эффекты подобные дофамину: увеличение амплитуды ГАМК-активируемого тока на 61.0±13.8% (n=8, p<0.01), и уменьшение амплитуды на 55.7±2.0% (n=6, p<0.01). Концентрация ГАМК составляла 2 мМ.

При исследовании действия антагонистов на эффекты, вызванные дофамином (5 мкМ) на амплитуду ГАМК-активируемых токов (2 мМ) было показано, что антагонист Д2-рецепторов сульпирид (5 мкМ) не блокирует эффекты, вызванные дофамином: уменьшение амплитуды составило 35.0±5.9% (n=6, p<0.01), увеличение амплитуды -- 35.5±13.0% (n=5, p<0.01). (Для сравнения, дофамин вызывал уменьшение амплитуды ГАМК-активируемого тока, в среднем, на 33.3±8.7%, и увеличение амплитуды, в среднем, на 37.3±11.8%.). В тоже время действие дофамина (5мкМ) на ГАМК-активируемые токи было заблокировано антагонистом Д1-рецепторов (+)-SCH-23390 (5 мкМ) (при учете, что эффекты дофамина на ГАМК-активируемые токи были приняты за сто процентов) на 63.0±4.7% в случае уменьшения амплитуды ГАМК-активируемых токов (n=7, p<0.001) и 77.1±2.0% в случае увеличения амплитуды ГАМК-активируемых токов (n=5, p<0.01). Эффекты агониста Д2-рецепторов квинпирола 5 мкМ на амплитуду ГАМК-активируемых токов были заблокированы антагонистом Д1-рецепторов (+)-SCH-23390 5 мкМ (при учете, что эффекты квинпирола на ГАМК-активируемые токи были приняты за сто процентов) на 78.8±0.4% в случае уменьшения (n=6, p<0.01) и на 85.0±5.7% в случае увеличения амплитуды ГАМК-активируемых токов (n=10, p<0.01).

При изучение модулирующего действия дофамина (5 мкМ) на амплитуду глицин-активируемого тока (0.2 мМ) было показано, что дофамин на разных клетках уменьшает на 36.1±10.1% (n=9, p<0.01) амплитуду глицин-активируемого тока и увеличивает его на 31.4±7.5% (n=6, p<0.01). В контрольных тестах, когда вместо дофамина подавали физиологический раствор, подобные эффекты не наблюдали: уменьшение амплитуды глицин-активируемого тока составило, в среднем, 1.5±0.43% (n=6, р=0.02), а увеличение -- 1.56±0.6% (n=11, р=0.03). Простое взвешенное отклонение или размах вариации при действии дофамина (5 мкМ) на амплитуду глицин-активируемого тока (0.2 мМ) составил 3.0±0.5%, а в контроле (при действии физиологического раствора на амплитуду глицин-активируемого тока) -- 0.0±0.2%.

Действие квинпирола (5 мкМ) -- агониста Д2-рецепторов тоже оказалось на разных клетках разнонаправленным: наблюдалось как уменьшение амплитуды глицин-активируемого тока (0.2 мМ) на 31.2±6.8% (0.2 мМ, n=10, p<0.01), так и увеличение амплитуды глицин-активируемого тока (0.2 мМ) на 25.0±1.4% (n=6, p<0.01). При аппликации (+)-SKF-38393 (5 мкМ) -- агониста Д1-рецепторов амплитуда глицин-активируемого тока (0.2 мМ) только уменьшалась - в среднем на 39.4±14.9% (n=6, p<0.01).

При исследовании действия сульпирида (5 мкМ) - антагониста Д2-рецепторов на эффект дофамина (5 мкМ) на амплитуду глицин-активируемого тока (0.2 мМ), было показано, что эффекты дофамина не блокируются антагонистом Д2-рецепторов сульпиридом: амплитуда глицин-активируемого тока уменьшалась в результате инкубации в растворе с дофамином и с сульпиридом на 31.8±8.8% % (n=7, p<0.002) и увеличивалась на 33.1±6.4% % (n=5, p<0.008). (Для сравнения, дофамин уменьшал амплитуду глицин-активируемого тока на 36.1±10.1% и увеличивал на 31.4±7.5%).

Эффект дофамина (5 мкМ) был заблокирован антагонистом Д1-рецепторов (+)-SCH-23390 (5 мкМ) (при учете, что эффекты дофамина на глицин-активируемые токи были приняты за сто процентов) на 78.0±1.7% в случае уменьшения амплитуды глицин-активируемых токов (n=7, p<0.01) и на 72.2±3.4% в случае увеличения амплитуды глицин-активируемых токов (n=5, p<0.01).

Антагонист Д1-рецепторов (+)-SCH-23390 (5 мкМ) блокирует эффекты агониста Д2-рецепторов квинпирола (5 мкМ) (при учете, что эффекты квинпирола на глицин-активируемые токи были приняты за сто процентов) на 72.0±0.2% в случае уменьшения (n=9, p<0.01) и на 70.0±10.3% амплитуды в случае увеличения амплитуды глицин-активируемых токов (n=6, p<0.01).

Таким образом, проведенные эксперименты свидетельствуют о том, что дофамин оказывает действие на потенциал-активируемые Na⁺ и K⁺-токи, и хемоуправляемые токи, вызванные ГАМК и глицином, на мембране мультиполярных нейронов спинного мозга пескоройки. Это действие дофамина относится к модулирующему, так как в данном случае дофамин не вызывал каких-либо постсинаптических токов, а изменял функциональное состояние натриевых, калиевых и хлорных каналов.

Было показано, что эффект дофамина на потенциал-активируемые и хемоуправляемые токи нельзя классифицировать просто как активирующий или ингибирующий, поскольку аппликация дофамина вызывала сложный комплексный эффект. В одних случаях этот эффект выражался в увеличении, а в других в уменьшении амплитуды изученных токов. В целом подобный результат хорошо согласуется с результатами других исследователей (Nicola et al., 2000). В частности, было показано неоднозначное действие дофамина на спайковую активность спинного мозга миноги (Kemnitz, 1997), клеток стриатума крыс (Calabresi et al., 1987; Cereda et al., 1995; Schiffmann et al., 1995).

Известно, что действие дофамина основано на активации двух основных классов дофаминовых рецепторов - Д1 и Д2 (Missale et al., 1998). Активация одного класса рецепторов приводит к уменьшению амплитуды тока, активация другого - к увеличению амплитуды тока (Nicola et al., 2000). Известно также, что дофаминовые Д1 и Д2 рецепторы колокализуются на мембране нейрона (Aizman et al., 2000; Fellous and Suri, 2002) и эффект дофамина зависит от их количественного распределения на мембране (Ding and Perkel, 2002). Поскольку действие дофамина выражалось как в уменьшении, так и в увеличении амплитуды изученных токов, а в отсутствие дофамина подобных изменений не наблюдалось и амплитуда оставалась стационарной то, можно предположить, что действие дофамина является суммой противоположно-направленных эффектов, вызываемых активацией различных классов дофаминовых рецепторов. Для проверки этого предположения был проведен более детальный фармакологический анализ с применением специфических агонистов и антагонистов различных семейств дофаминовых рецепторов.

При исследовании действия специфического агониста Д1-рецепторов (+)-SKF-38393 было показано, что амплитуда исследуемых токов уменьшалась. Этот результат соответствует данным литературы. В частности, уменьшение пиковой амплитуды Na⁺ токов при активации дофаминовых рецепторов группы Д1 было получено на изолированных нейронах гиппокампа крыс. Было показано, что этот феномен связан с тем, что активация Д1-рецепторов приводит к фосфорилированию альфа субъединиц натриевых каналов и это происходит с участием протеинкиназы А (Cantrell et al., 1997; Cantrell et al., 1999; 1999). Уменьшение амплитуды Na⁺ -токов при действии агонистов Д1-рецепторов на срезах неостриатума и добавочных ядер крыс было показано и в других работах (Nicola et al., 2000; Surmeier et al., 1992; Surmeier and Kitai, 1993; Maurice et al., 2001). В шипиковых нейронах стриатума крыс (пэтч-кламп, срезы) активация Д1-рецепторов агонистом Д1-рецепторов приводит к уменьшению потенциал-независимых К⁺-токов утечки и К⁺-тока входящего выпрямления через увеличение входного сопротивления и деполяризацию синаптического входа в нейроны (Kitai and Surmeier, 1996; Gorelova et al., 2002). Активация Д1-рецепторов уменьшает амплитуду ГАМК_А-активируемых токов в изолированных нейронах неостриатума крыс через РКА/DARPP-32/PP1 (протеин киназа А/дофамин и циклический аденозин 3', 5'-монофосфат-регулирующий фосфопротеин, 32 кД/протеин фосфатаза-1) сигнальный каскад (Flores-Hernandez et al., 2000).

Действие квинпирола -- агониста Д2-рецепторов на амплитуду исследуемых токов оказалось неоднозначным: в одних случаях оно выражалось в уменьшении амплитуды токов, в других - в увеличении амплитуды. Динг и Персел показали (Ding and Percel, 2002), что активация Д2-рецепторов квинпиролом приводила и к уменьшению Na⁺ токов, и к увеличению Na⁺ токов в базальных ганглиях птиц. Сурмейер и соавт. (Surmeier et al., 1992) описали такой же эффект в стриатуме крыс. Подобный феномен был обьяснен тем, квинпирол активирует рецепторы Д2-класса: Д2 и Д3-рецепторы, являющиеся разными подтипами Д2-рецепторов (Missale et al., 1998). Активация Д2-рецепторов квинпиролом приводит к уменьшению Na⁺ токов, а активация Д3-рецепторов квинпиролом приводит к увеличению Na⁺ токов (Ding and Percel, 2002). Активация Д2-рецепторов приводит и к уменьшению и к увеличению амплитуды К⁺-токов входящего выпрямления через торможение аденилатциклазы и протеинкиназы А (Nicola et al., 2000). Активация Д2-рецепторов уменьшает амплитуду ГАМК_А-активируемых токов в пирамидных нейронах крыс (Delgado et al., 2000; Seamans et al., 2001).

Таким образом, сопоставление полученных результатов с данными литературы дает возможность предположить, что на мембранах мультиполярных нейронов спинного мозга пескоройки присутствуют как минимум три типа дофаминовых рецепторов. Первый тип - рецептор из класса Д1, активация которого уменьшает амплитуду изученных токов и два других типа рецепторов - из класса Д2 (Д2 и Д3), активация которых приводит к уменьшению (Д2) или к увеличению (Д3) амплитуды изученных токов. Для более обоснованного вывода относительно типов рецепторов, представленных на мембранах исследуемых нейронов был проведен дальнейший фармакологический анализ с применением специфических антагонистов.

Этот анализ показал, что антагонист рецепторов группы Д2 - сульпирид, полностью блокирует эффекты не только квинпирола -- агониста Д2-рецепторов, но и (+)-SKF-38393 -- агониста Д1-рецепторов на амплитуду потенциал-активируемых Na⁺ и К⁺-токов. Действие дофамина полностью блокировалось сульпиридом при изучении действия дофамина на амплитуду потенциал-активируемых К⁺-токов. Похожие данные были приведены у других исследователей. В частности, Грин и соавт. (Green et al., 1996) показали, что у брюхоногих моллюсков при исследовании изолированных париетальных нейронов методом пэтч-кламп антагонист Д2-рецепторов сульпирид блокирует ионные токи, вызванные аппликацией дофамина. Подобное действие объяснялось авторами данной работы тем, что у брюхоногих моллюсков имеются дофаминовые рецепторы отличные от таковых у высших позвоночных животных.

В наших исследованиях антагонист рецепторов группы Д1 - (+)-SCH-23390, частично блокирует эффекты, вызванные активацией рецепторов Д1 - (+)-SKF-38393, но не блокирует изменения амплитуды потенциал-активируемых Na⁺-токов, вызванные активацией рецепторов Д2 -квинпиролом. Учитывая, что (+)-SKF-38393 (агонист Д1-рецепторов) может активировать как Д1, так и Д5 тип дофаминовых рецепторов, относящихся к одному Д1 классу дофаминовых рецепторов (Missale et al., 1998), мы можем предположить, что отсутствие полной блокады антагонистом Д1-(+)-SCH-23390 действия агониста Д1-рецепторов объясняется специфической химической чувствительностью Д1 и Д5 дофаминовых рецепторов к действию антагонистов у пескоройки или специфику дофаминовых рецепторов этого животного.

При сравнении полученных данных с данными литературы оказалось, что у высших позвоночных антагонисты одного дофаминового класса рецепторов (Д1 или Д2) в большинстве случаев блокируют эффекты агонистов этого же класса дофаминовых рецепторов и не влияют на активацию рецепторов другого класса дофаминовых рецепторов (Surmeier et al., 1992; Ibaсez-Sandoval et al., 2006). В тоже время имеются данные, что на срезах неостриатума крыс in vivo антагонист Д1-рецепторов (+)-SCH-23390 блокирует эффекты, вызванные агонистом Д2-рецепторов (уменьшение калий-зависимого высвобождения ацетилхолина), и эффекты, вызванные Д1-агонистом (увеличение высвобождения цАМФ) (Plantje et al., 1984; 1984). Таким образом оказалось, что как и в этих исследованиях на высших позвоночных животных у миноги (пескоройки) антагонист Д1-рецепторов SCH-23390 блокирует эффекты, вызванные не только агонистом Д1-рецепторов, но и Д2-рецепторов на ГАМК и глицин-активируемых токах.

При изучении влияния антагонистов на действие агонистов дофамина на потенциал-активируемые и хемоуправляемые токи нами были получены отличные друг от друга данные. В частности, при изучении действия дофамина на потенциал-активируемые токи было показано, что эффекты, вызванные агонистами блокируются антагонистом Д2-рецепторов, а при изучении действия дофамина на хемоуправляемые токи -- антагонистом Д1-рецепторов. Подобное расхождение может быть обьяснено тем, что при действии дофамина на хемоуправляемые токи показан другой возможный путь реализации данных процессов, в частности было показано прямое протеин-протеиновое быстрое связывание и функциональное взаимодействие между дофаминовыми и ГАМК_А-рецепторами (Д5- ГАМК_А) Лиу и соавт. (Liu et al., 2000). Таким образом, можно предположить, что различие в механизмах, через которые опосредуется вышеописанные процессы приводит к разным результатам при изучении действия антагонистов на потенциал-активируемые и хемоуправляемые токи.

Таким образом, наши исследования свидетельствуют, что катехоламины, в частности дофамин, выполняют модулирующую функцию у представителей позвоночных, находящихся на низшей ступени эволюционного древа. нейрон мозг пескоройка дофамин

Выводы:

1) Дофамин вызывает индивидуальное и разнонаправленное действие в разных нейронах спинного мозга пескоройки.

2) Фармакологический анализ с использованием специфических агонистов и антагонистов дофаминовых рецепторов показал, что в модуляции дофамином потенциал-активируемых и хемоуправляемых токов участвуют разные подтипы дофаминовых рецепторов - Д1, Д5, Д2 и Д3-рецепторы.

3) Направленность модулирующего действия дофамина на потенциал-активируемые и хемоуправляемые токи может определяться преобладанием определенного подтипа дофаминовых рецепторов на мембране данного нейрона.

4) Полученные данные указывают на отличия фармакологической чувствительности дофаминовых рецепторов пескоройки по сравнению с дофаминовыми рецепторами млекопитающих (высших позвоночных).

Список работ, опубликованных по теме диссертации

1. Букинич А.А. Модулирующее действие дофамина на Na⁺ -K⁺ токи дорсальных чувствительных и мультиполярных клеток спинного мозга пескоройки, Мат. Седьмой Всероссийской медико-биологическая конференции молодых исследователей. С-Петербург, Россия, 18 апреля 2004, с. 41.

2. Букинич А.А., Цветков Е. А., Веселкин Н. П. Особенности дофаминовых рецепторов мультиполярных нейронов спинного мозга пескоройки, Сб. тезисов ХIII Межд. совещ. по эвол. физиологии. С-Петербург, Россия, 2006, с. 37-38.

3. Букинич А.А., Цветков Е. А., Веселкин Н. П. Особенности дофаминовых рецепторов на мембране мультиполярных нейронов спинного мозга пескоройки, Ж. эвол. биох. и физиол. 2007. Т. 43, № 1, С. 39-45.

4. Букинич А. А., Веселкин Н. П. Антагонист Д2-рецепторов блокирует эффект дофамина на мембранах мультиполярных нейронов спинного мозга пескоройки, Журнал эволюц. биохимии и физиологии. 2007. Т. 43. № 2. С. 206-209.

5. Букинич А.А., Цветков Е. А., Веселкин Н. П. Модулирующее действие дофамина на амплитуду токов, вызванных ГАМК и глицином, мультиполярных нейронов спинного мозга пескоройки, Сб. тезисов ХХ Съезда физиологического Общества, Москва, Россия, 2007, 4-8 июня, С. 163.

Размещено на Allbest.ru