Защитные стратегии нейтрофильных гранулоцитов от патогенных бактерий
Апоптоз как физиологическая форма программируемой гибели нейтрофилов в процессе поддержания гомеостаза. Роль взаимодействия между нейтрофилами и адаптивными иммунными клетками в создании механизма деструктивной патологической активации иммунного ответа.
| Рубрика | Медицина |
| Вид | статья |
| Язык | русский |
| Дата добавления | 01.02.2019 |
| Размер файла | 1,3 M |
Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже
Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.
43. Fuchs T.A., Brill A., Duerschmied D., Schatzberg D., Monestier M., Myers D.D. Jr., Wrobleski S.K., Wakefield T.W., Hartwig J.H., Wagner D.D. Extracellular DNA traps promote thrombosis. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2010; 107: 14390-5.
44. Galdiero M.R., Bonavita E., Barajon I., Garlanda C., Mantovani A. Tumor associated macrophages and neutrophils in cancer. Immunobiology. 2013; 218: 1402-10.
45. Gan W.Q., Man S.F.P., Senthilselvan A., Sin D.D. Association between chronic obstructive pulmonary disease and systemic inflammation: a systematic review and a meta-analysis. Thorax. 2004; 59(7): 574-80. doi: 10.1136/thx.2003.019588.
46. Gardiner E.E., Andrews R.K. Neutrophil extracellular traps (NETs) and infection-related vascular dysfunction. Blood Rev. 2012; 26(6): 255-9. doi: 10.1016/j.blre.2012.09.001.
47. Goldmann O., Medina E. The expanding world of extracellular traps: not only neutrophils but much more. Front. Immunol. 2013; 3: 420.doi: 10.3389/fimmu.2012.00420.
48. Gui T., Liu X., Tao J., Chen J., Li Y., Zhang M., Wu R., Zhang Y., Peng K., Liu Y., Zhang X., Zhang Y. Validation of a recombinant human bactericidal/permeability-increasing protein (hBPI) expression vector using marine mammary gland tumor cells and the early development of hBPI transgenic goat embryos. Anim Reprod Sci. 2013; 143(14): 48-56. doi: 10.1016/j.anireprosci.2013.10.017.
49. Guinan E., Avigan D.E., Soiffer R.J., Bunin N.J., Brennan L.L., Bergelson I., Brightman S., Ozonoff A., Scannon P.J., Levy O. Pilot experience with opebacan/rBPI 21 in myeloablative hematopoietic cell transplantation. F1000Res. 2015; 4: 1480. doi: 10.12688/f1000research.7558.1. eCollection 2015.
50. Gupta A.K., Joshi M.B., Philippova M., Erne P., Hasler P., Hahn S., Resink T.J. Activated endothelial cells induce neutrophil extracellular traps and are susceptible to NETosis-mediated cell death. FEBS Lett. 2010; 584(14): 3193-7. doi: 10.1016/j.febslet.2010.06.006.
51. Gyцrgy B., Tуth E., Tarcsa E., Falus A., Buzбs E.I. Citrullination: A posttranslational modification in health and disease. Int J Biochem Cell Biol. 2006; 38: 1662-77.
52. Hakkim A., Fьrnrohr B.G., Amann K., Laube B., Abed U.A., Brinkmann V., Herrmann M., Voll R.E., Zychlinsky A. Impairment of neutrophil extracellular trap degradation is associated with lupus nephritis. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2010; 107: 9813-8.
53. Halbwachs L., Lesavre P. Endothelium-neutrophil interactions in ANCA-associated diseases. J. Am. Soc. Nephrol. 2012; 23: 1449-61.
54. Harris E.S., Weyrich A.S., Zimmerman G.A. Lessons from rare maladies: leukocyte adhesion deficiency syndromes. Curr. Opin. Hematol. 2013; 20: 16-25.
55. Heddergott C., Bruns S., Nietzsche S., Leonhardt I., Kurzai O., Kniemeyer O., Brakhage A.A. The Arthroderma benhamiae hydrophobin HypA mediates hydrophobicity and influences recognition by human immune effector cells. Eukaryot Cell. 2012; 11(5): 673-82. doi: 10.1128/EC.00037-12.
56. Hong W., Juneau R.A., Pang B., Swords W.E. Survival of bacterial biofilms within neutrophil extracellular traps promotes nontypeable Haemophilus influenzae persistence in the chinchilla model for otitis media. J Innate Immun. 2009; 1(3): 215-24. doi: 10.1159/000205937.
57. Hong Y., Eleftheriou D., Hussain A.A., Price-Kuehne F.E., Savage C.O. Anti-neutrophil cytoplasmic antibodies stimulate release of neutrophil microparticles. J. Am. Soc. Nephrol. 2012; 23: 49-62.
58. Ionita M.G., van den Borne P., Catanzariti L.M., Moll F.L., de Vries J.P. High neutrophil numbers in human carotid atherosclerotic plaques are associated with characteristics of rupture-prone lesions.Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 2010; 30: 1842-48.
59. Jaeger B.N., Donadieu J., Cognet C., Bernat C., Ordonez-Rueda D. Neutrophil depletion impairs natural killer cell maturation, function, and homeostasis. J. Exp. Med. 2012; 209: 565-80.
60. Jog N.R., Rane M.J., Lominadze G. The actin cytoskeleton regulates exocytosis of all neutrophil granule subsets. Am. J. Physiology. 2007; 292: 1690-1700.
61. Jourdain M., Carrette O., Tournoys A. Effects of inter-a-inhibitor in experimental endotoxic shock and disseminated intravascular coagulation. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 1997; 156(6): 1825-33.
62. Kain R., Firmin D.A., Rees A.J. Pathogenesis of small vessel vasculitis associated with autoantibodies to neutrophil cytoplasmic antigens: new insights from animal models. Curr. Opin. Rheumatol. 2010; 22: 15-20.
63. Kasama T., Miwa Y., Isozaki T., Odai T., Adachi M., Kunkel S. L. Neutrophil-derived cytokines: potential therapeutic targets in inflammation. Current Drug Targets: Inflammation and Allergy. 2005; 4(3): 273-9. doi: 10.2174/1568010054022114.
64. Katsumata S., Naquashima M., Cato K. Changes in coagulation-fibrinolysis marker and neutrophil elastase following the use of tourniquet during total knee arthroplasty and the influence of neutrophil elastase on thromboembolism. Acta Anaesthesiol. Scand. 2005; 49: 510-6.
65. Kawabata K., Hagio T., Matsuoka S. The role of neutrophil elastase in acute lung injury. Eur. J. Pharmacol. 2002; 451(1): 1-10.
66. Kawai T., Akira S. Toll-like receptors and their crosstalk with other innate receptors in infection and immunity. Immunity. 2011; 34: 637-50.
67. Keshari R.S., Jyoti A., Dubey M., Kothari N., Kohli M., Bogra J., Barthwal M.K., Dikshit M. Cytokines induced neutrophil extracellular traps formation: implication for the inflammatory disease condition. PLoS One. 2012; 7(10): e48111. doi: 10.1371/journal.pone.0048111.
68. Kessenbrock K., Frohlich L., Sixt M. et al. Proteinase 3 and neutrophil elastase enhance inflammation in mice by inactivating antiinflammatory progranulin. J. Clin. Invest. 2008; 118: 2438-47.
69. Knight J.S., Carmona-Rivera C., Kaplan M.J. Proteins derived from neutrophil extracellular traps may serve as self-antigens and mediate organ damage in autoimmune diseases. Front. Immunol. 2012; 3: 380. doi: 10.3389/fimmu.2012.00380
70. Kobayashi S.D., Voyich J.M., Burlak C., DeLeo F.R. Neutrophils in the innate immune response. Arch. Immunol. Ther. Exp. 2005; 53: 505-17.
71. Kobayashi Y. Neutrophil biology: an update. EXCLI J. 2015; 14: 220-7. doi: 10.17179/excli2015-102.
72. Koelink P.J., Overbeek S.A., Braber S., Morgan M.E., Henrickes P.A. Collagen degradation and neutrophilic infiltration: a vicious circle in inflammatory bowel disease. Gut. 2014; 63(4): 578-87. doi: 10.1136/gutjnl-2012-303252.
73. Kohri K., Ueki I.F., Nadel J.A. Neutrophil elastase induces mucin production by liganddependent epidermal growth factor receptor activation. Am. J. Physiol. Lung Cell Mol. Physiol. 2002; 283: 531-40.
74. Kolaparthy L.K., Sanivarapu S., Swarna C., Devulapalli N.S. Neutrophil extracellular traps: Their role in periodontal disease. J Indian Soc Periodontol. 2014; 18(6): 693-7. doi: 10.4103/0972-124X.147399.
75. Lande R, Ganguly D, Facchinetti V, Frasca L, Conrad C, et al. Neutrophils activate plasmacytoid dendritic cells by releasing self-DNA-peptide complexes in systemic lupus erythematosus. Sci. Transl. Med. 2011; 3: 73ra19.
76. Leshner M., Wang S., Lewis C., Zheng H., Chen X. A., Santy L. PAD4 mediated histone hypercitrullination induces heterochromatin decondensation and chromatin unfolding to form neutrophil extracellular trap-like structures. Front. Immunol. 2012; 3: 307. doi: 10.3389/fimmu.2012.00307.
77. Levy O. A neutrophil-derived anti-infective molecule: bactericidal/permeability-increasing protein. Antimicrob Agents Chemother. 2000; 44(11): 2925-31.
78. Levy O. Antimicrobial proteins and peptides: anti-infective molecules of mammalian leukocytes. J Leukoc Biol. 2004; 76 (5): 909-25.
79. Li P., Li M., Lindberg M.R., Kennett M.J., Xiong N., Wang Y. PAD4 is essential for antibacterial innate immunity mediated by neutrophil extracellular traps. J. Exp. Med. 2010; 207: 1853-62.
80. Liaw P.C., Ito T., Iba T., Thachil J., Zeerleder S. DAMP and DIC: The role of extracellular DNA and DNA-binding proteins in the pathogenesis of DIC. Blood Rev. 2015. pii: S0268-960X(15)00097-1. doi: 10.1016/j.blre.2015.12.004.
81. Lin A.M., Rubin C.J., Khandpur R., Wang J.Y., Riblett M., Yalavarthi S. Mast cells and neutrophils release IL-17 through extracellular trap formation in psoriasis. J Immunol. 2011; 187: 490-500.
82. Lood C., Blanco L.P., Purmalek M.M., Carmona-Rivera C., De Ravin S.S., Smith C.K., Malech H.L., Ledbetter J.A., Elkon K.B., Kaplan M.J. Neutrophil extracellular traps enriched in oxidized mitochondrial DNA are interferogenic and contribute to lupus-like disease. Nat Med. 2016; 22(2): 146-53. doi: 10.1038/nm.4027.
83. Malcolm K.C., Worthen G.S. Lipopolysaccharide stimulates p38-dependent induction of antiviral genes in neutrophils independently of paracrine factors. The Journal of Biological Chemistry. 2003; 278(18): 15693-701. doi: 10.1074/jbc.m212033200.
84. Mankovich A.R., Lee C.-Y., Heinrich V. Differential Effects of Serum Heat Treatment on Chemotaxis and Phagocytosis by Human Neutrophils. PLoS One. 2013; 8(1): e54735. doi: 10.1371/journal.pone.0054735.
85. Mannion B.A., Weiss J., Elsbach P. Separation of sublethal and lethal effects of the bactericidal/permeability increasing (BPI) protein on Escherichia coil. J. Clin. Invest. 2000; 85: 853-60.
86. Mantovani A, Cassatella MA, Costantini C, Jaillon S. Neutrophils in the activation and regulation of innate and adaptive immunity. Nat Rev Immunol. 2011; 11: 519-31.
87. Martinod K., Wagner D.D. Thrombosis: tangled up in NETs. Blood. 2014; 123(18): 2768-76. doi: 10.1182/blood-2013-10-463646.
88. Matsukawa A., Yoshinaga M. Sequential generation of cytokines during the initiative phase of inflammation, with reference to neutrophils. Inflammation Research. 1998; 47: 137-44.
89. Mayadas T.N., Cullere X., Lowell C.A. The Multifaceted Functions of Neutrophils. Annu Rev Pathol. 2014; 9: 181-218. doi: 10.1146/annurev-pathol-020712-164023
90. McCormick A., Heesemann L., Wagener J., Marcos V., Hartl D., Loeffler J., Heesemann J., Ebel F. NETs formed by human neutrophils inhibit growth of the pathogenic mold Aspergillus fumigates. Microbes. Infect. 2010; 12: 928-36.
91. Metzler K.D., Fuchs T.A., Nauseef W.M., Reumaux D., Roesler J., Schulze I., Wahn V., Papayannopoulos V., Zychlinsky A. Myeloperoxidase is required for neutrophil extracellular trap formation: Implications for innate immunity. Blood. 2010; doi: http://dx.doi.org/10.1182/blood-2010-06-290171.
92. Mуcsai A. Diverse novel functions of neutrophils in immunity, inflammation, and beyond. J Exp Med. 2013; 210(7): 1283-99. doi: 10.1084/jem.20122220.
93. Naegelen I., Beaume N., Planзon S., Schenten V., Tschirhart E.J., Brйchard S. Regulation of Neutrophil Degranulation and Cytokine Secretion: A Novel Model Approach Based on Linear Fitting. J Immunol Res. 2015; 2015: 817038. doi: 10.1155/2015/817038.
94. Neeli I., Khan S.N., Radic M. Histone deimination as a response to inflammatory stumuli in neutrophils. J Immunol. 2008; 180: 1895-902.
95. Neeli I., Dwivedi N., Khan S., Radic M. Regulation of extracellular chromatin release from neutrophils. J Innate Immun. 2009; 1(3): 194-201. doi: 10.1159/000206974.
96. Netea M.G., van de Veerdonk F.L., van Deuren M., van der Meer J.W. Defects of pattern recognition: primary immunodeficiencies of the innate immune system. Curr. Opin. Pharmacol. 2011; 11: 412-22.
97. Nordenfelt P., Tapper H. Phagosome dynamics during phagocytosis by neutrophils. J. Leukoc. Biol. 2011; 90: 271-84.
98. Papayannopoulos V., Metzler K.D., Hakkim A., Zychlinsky A. Neutrophil elastase and myeloperoxidase regulate the formation of neutrophil extracellular traps. J. Cell Biol. 2010; 191: 677-91.
99. Parker H., Dragunow M., Hampton M.B., Kettle A.J., Winterbourn C.C. Requirements for NADPH oxidase and myeloperoxidase in neutrophil extracellular trap formation differ depending on the stimulus. J Leukoc Biol. 2012; 92: 841-9.
100. Patel S., Kumar S., Jyoti A., Srinag B.S., Keshari R.S., Saluja R., Verma A., Mitra K., Barthwal M.K., Krishnamurthy H. Nitric oxide donors release extracellular traps from human neutrophils by augmenting free radical generation. Nitric Oxide. 2010; 22: 226-34.
101. Pilsczek F.H., Salina D., Poon K.K., Fahey C., Yipp B.G., Sibley C.D. A novel mechanism of rapid nuclear neutrophil extracellular trap formation in response to Staphylococcus aureus. J Immunol. 2012; 185: 7413-25.
102. Radford-Smith G., Jewell D. P. Cytokines and inflammatory bowel disease. Bailliere's Clinical Gastroenterology. 1996; 10(1): 151-64. doi: 10.1016/s0950-3528(96)90045-7.
103. Radic М., Kaplan М.J. Extracellular Chromatin Traps Interconnect Cell Biology, Microbiology, and Immunology. Front Immunol. 2013; 4: 160. doi: 10.3389/fimmu.2013.00160.
104. Rao A.N., Kazzaz N.M., Knight J.S. Do neutrophil extracellular traps contribute to the heightened risk of thrombosis in inflammatory diseases? World J Cardiol. 2015; 7(12): 829-42. doi: 10.4330/wjc.v7.i12.829.
105. Remijsen Q., Vanden Berghe T., Wirawan E., Asselbergh B., Parthoens E., De Rycke R. Neutrophil extracellular trap cell death requires both autophagy and superoxide generation. Cell Res. 2011; 21: 290-304.
106. Sangaletti S., Tripodo C., Chiodoni C., Guarnotta C., Cappetti B., Casalini P. Neutrophil extracellular traps mediate transfer of cytoplasmic neutrophil antigens to myeloid dendritic cells toward ANCA induction and associated autoimmunity. Blood. 2012; 120: 3007-18.
107. Savige J., Pollock W., Trevisin M. What do antineutrophil cytoplasmic antibodies (ANCA) tell us? Best Practice & Res Clin Rheumatol. 2005; 19: 263-76.
108. Scapini P., Lapinet-Vera J. A., Gasperini S., Calzetti F., Bazzoni F., Cassatella M. A. The neutrophil as a cellular source of chemokines. Immunological Reviews. 2000; 177: 195-203. doi: 10.1034/j.1600-065x.2000.17706.x.
109. Schorn C., Janko C., Krenn V., Zhao Y., Munoz L. E., Schett G. Bonding the foe - NETting neutrophils immobilize the pro-inflammatory monosodium urate crystals. Front. Immunol. 2012; 3: 376. doi: 10.3389/fimmu.2012.00376.
110. Schultz H., Csernok E., Nikkari S., Toivanen P., Toivanen A., Gross W.L. BPI-ANCA is found in reactive arthritis caused by Yersinia and Salmonella infection and recognise exclusively the C-terminal part of the BPI molecule. Scand J Rheumatol. 2000; 29(4): 226-31.
111. Sengelшv H., Follin P., Kjeldsen L., Lollike K., Dahlgren C., Borregaard N. Mobilization of granules and secretory vesicles during in vivo exudation of human neutrophils. J. Immunol. 1995; 154: 4157-63.
112. Singh V.V., Chauhan S.K., Rai R., Kumar A., Singh S.M., Rai G. Decreased pattern recognition receptor signaling, interferon-signature, and bactericidal/permeability-increasingprotein gene expression in cord blood of term low birth weight human newborns. PLoS One. 2013; 8(4): e62845. doi: 10.1371/journal.pone.0062845.
113. Soehnlein O. Multiple roles for neutrophils in atherosclerosis. Circulation Research. 2012; 110(6): 875-88. doi: 10.1161/circresaha.111.257535.
114. Soehnlein O., Weber C., Lindbom L. Neutrophil granule proteins tune monocytic cell function. Trends Immunol. 2009; 30: 538-46.
115. Stark M.A., Huo Y., Burcin T.L., Morris M.A., Olson T.S., Ley K. Phagocytosis of apoptotic neutrophils regulates granulopoiesis via IL-23 and IL-17. Immunity. 2005; 22: 285-94.
116. Sun L, Wang H, Wang Z, He S, Chen S, Liao D, et al. Mixed lineage kinase domain-like protein mediates necrosis signaling downstream of RIP3 kinase. Cell. 2012; 148(1-2): 213-27.
117. Suzanne M, Steller H. Shaping organisms with apoptosis. Cell Death Differ. 2013; 20(5): 669-75.
118. Swamydas M., Gao J.L., Break T.J., Johnson M.D., Jaeger M., Rodriguez C.A., Lim J.K., Green N.M., Collar A.L., Fischer B.G., Lee C.C., Perfect J.R., Alexander B.D., Kullberg B.J., Netea M.G., Murphy P.M., Lionakis M.S. CXCR1-mediated neutrophil degranulation and fungal killing promote Candida clearance and host survival. Sci Transl Med. 2016; 8(322): 322ra10. doi: 10.1126/scitranslmed.aac7718.
119. Tamassia N., Le Moigne V., Calzetti F., Donini M., Gasperini S., Ear T., Cloutier A., Martinez F.O., Fabbri M., Locati M. The MyD88-independent pathway is not mobilized in human neutrophils stimulated via TLR4. J. Immunol. 2007; 178: 7344-56.
120. Tavares N., Afonso L., Suarez M., Ampuero M., Prates D.B., Araъjo-Santos T., Barral-Netto M., DosReis G.A., Borges V.M., Brodskyn C. Degranulating neutrophils promote leukotriene B4 production by infected macrophages to kill Leishmania amazonensis parasites. J. Immunol. 2016; 196(4): 1865-73. doi: 10.4049/jimmunol.1502224.
121. Urban C.F., Ermert D., Schmid M., Abu-Abed U., Goosmann C., Nacken W., Brinkmann V., Jungblut P.R., Zychlinsky A. Neutrophil extracellular traps contain calprotectin, a cytosolic protein complex involved in host defense against Candida albicans. PLoS Pathog. 2009; 5:e1000639.
122. Vandenabeele P, Galluzzi L, Vanden Berghe T, Kroemer G. Molecular mechanisms of necroptosis: an ordered cellular explosion. Nat Rev Mol Cell Biol. 2010; 11(10): 700-14.
123. Vestweber D. Adhesion and signaling molecules controlling the transmigration of leukocytes through endothelium. Immunol. Rev. 2007; 218: 178-96.
124. Wang Y., Li P., Wang S., Hu J., Chen X.A., Wu J., Fisher M., Oshaben K., Zhao N., Gu Y., Wang D. Anticancer Peptidylarginine Deiminase (PAD) Inhibitors Regulate the Autophagy Flux and the Mammalian Target of Rapamycin Complex 1 Activity. J Biol Chem. 2012; 287(31): 25941-53. doi: 10.1074/jbc.M112.375725.
125. Wartha F, Beiter K, Albiger B, Fernebro J, Zychlinsky A, Normark S, Henriques-Normark B. Capsule and D-alanylated lipoteichoic acids protect Streptococcus pneumoniae against neutrophil extracellular traps. Cell Microbiol. 2007; 9: 1162-71.
126. Weitz A., Spotnitz R., Collins J. Log reduction of multidrug-resistant Gram-negative bacteria by the neutrophil-derived recombinant bactericidal/permeability-increasing protein. Int J Antimicrob Agents.2013; 42(6): 571-4. doi: 10.1016/j.ijantimicag.2013.07.019.
127. Wong J.J., Ritchie W., Ebner O.A., Selbach M., Wong J.W., Huang Y., Gao D., Pinello N., Gonzalez M., Baidya K. Orchestrated intron retention regulates normal granulocyte differentiation. Cell. 2013; 154: 583-95.
128. Woodfin, A., Voisin, M.B., Nourshargh, S. Recent developments and complexities in neutrophil transmigration. Curr. Opin. Hematol. 2010; 17: 9-17.
129. Yang Y., Jiang G., Zhang P., Fan J. Programmed cell death and its role in inflammation. Mil Med Res. 2015; 2: 12. doi: 10.1186/s40779-015-0039-0.
130. Yao N., Bai J., Zhang X., Zhang N., Wu W., Li W. Effects on the expression of lipopolysaccharide-induced inflammatory cytokines mediated by bovinebactericidal/permeability-increasing protein. Sheng Wu Gong Cheng Xue Bao. 2015; 31(2): 195-205.
131. Yousefi S., Mihalache C., Kozlowski E., Schmid I., Simon, H.U. Viable neutrophils release mitochondrial DNA to form neutrophil extracellular traps. Cell Death Differ. 2009; 16: 1438-44.
132. Zhao M.H., Jones S.J., Lockwood C.M. Bactericidal/permeability-increasing protein (BPI) is an important antigen for anti-neutrophil cytoplasmic autoantibodies (ANCA) in vasculitis. Clin Exp Immunol. 1995; 99(1): 49-56.
Размещено на Allbest.ru
...Подобные документы
Аутоиммунный процесс как форма иммунного ответа, индуцированная аутоантигенными детерминантами в условиях нормы и патологии. Аутоиммунитет - один из механизмов поддержания гомеостаза. Особенности возникновения аутоиммунных реакций и заболеваний.
презентация [107,2 K], добавлен 16.09.2013Механизмы регуляции иммунного ответа и нейроиммунное взаимодействие. Глюкокортикоидные гормоны и иммунологические процессы. Нейропептиды и регуляция иммунного ответа. Регуляция иммунного ответа адренокортикотропным гормоном, тиротропином, соматотропином.
презентация [1,4 M], добавлен 20.04.2015Понятие иммунного ответа организма, регулирование его интенсивности нейрогуморальным способом. Особенности осуществления модуляции функций иммунной системы. Нервная и гуморальная регуляция иммунного ответа. Механизм нейроиммунного взаимодействия.
презентация [405,1 K], добавлен 13.04.2015Пути и механизмы регуляции иммунного ответа. Нейроиммунное взаимодействие, его направления и принципы. Регуляция иммунного ответа адренокортикотропным гормоном, тиротропином, соматотропином. Глюкокортикоидные гормоны и иммунологические процессы.
презентация [1,1 M], добавлен 11.03.2015Определение понятия иммунного ответа организма. Пути и механизмы регуляции иммунного ответа с помощью нейромедиаторов, нейропептидов и гормонов. Основные клеточные регуляторные системы. Глюкокортикоидные гормоны и иммунологические процессы в организме.
презентация [405,1 K], добавлен 20.05.2015Изучение особенностей центральной модуляции функций иммунной системы посредством центрально обусловленных изменений уровня различных гормонов в крови. Описание путей и механизмов регуляции иммунного ответа. Гормональная регуляция иммунного ответа.
презентация [355,5 K], добавлен 17.05.2015Основные структуры мозга, регулирующие интенсивность иммунного ответа: заднее и переднее гипоталамическое поле, гиппокамп, ретикулярная формация среднего мозга, ядра шва и миндалины. Регуляция иммунного ответа аргинин-вазопрессином и окситоцином.
презентация [370,7 K], добавлен 06.04.2015Пути и механизмы регуляции иммунного ответа: доиммунные (проникновение антигена в ткани и сорбция антигена в лимфоидной ткани) и иммунные. Нейропептиды, симпатический и парасимпатический отделы вегетативной нервной системы и регуляция иммунного ответа.
презентация [536,9 K], добавлен 23.12.2014Гранулярный состав и продукты секреции полиморфноядерных гранулоцитов. Определение спонтанной активности MPO нейтрофилов периферической крови человека с целью проведения всех стадий анализа в растворе для спектофотометрической оценки результатов.
курсовая работа [3,2 M], добавлен 06.07.2012Первичные и врожденные нарушения нормального иммунного статуса, обусловленные дефектом одного или нескольких механизмов иммунного ответа. Факторы, определяющие неспецифическую резистентность. Действие гормонов, нейромедиаторов и пептидов на клетки.
презентация [502,4 K], добавлен 05.02.2017Апоптоз как уникальный механизм сигналиндуцированной запрограммированной гибели одной клетки или группы клеток многоклеточного организма, его основные причины и характерные симптомы. Этапы исследований данного процесса, его роль в лечении онкологии.
реферат [25,7 K], добавлен 15.03.2011Апоптоз как физиологическая смерть клетки, представляющая собой своеобразную генетически запрограммированную самоликвидацию, история исследования, механизм действия. Роль апоптоза в процессах старения, его фазы и причины патологического усиления.
реферат [380,2 K], добавлен 04.05.2015Кальпротектин как белок, который высвобождается из лейкоцитов (макрофагов и нейтрофилов) при их активации или гибели, который сигнализирует о воспалительном процессе в кишечнике. Механизм определения количественного содержания кальпротектина в кале.
презентация [374,1 K], добавлен 08.04.2016Влияние окислительных условий на динамику фагоцитарной реакции нейтрофилов. Получение полиморфноядерных гранулоцитов из периферической крови. Оценка изменения динамического состояния мембраны нейтрофилов после инкубации в окислительных условиях.
дипломная работа [6,5 M], добавлен 25.04.2012Описание механизмов защиты организма человека от различных возбудителей: вирусов, бактерий, грибов, простейших, гельминтов. Общие свойства клеточных факторов неспецифической защиты. Функции гранулоцитов и нейтрофилов. Свойства антител-иммуноглобулинов.
презентация [176,1 K], добавлен 15.02.2014Рассмотрение особенностей вегетативной нервной системы. Знакомство с основными путями и механизмами регуляции иммунного ответа. Анализ симпатического отдела вегетативной нервной системы. Общая характеристика биологически активных веществ головного мозга.
презентация [2,8 M], добавлен 30.11.2016Иммунный ответ как вид биологической функции организма, его особенности и этапы реализации, условия возникновения. Антиген как фактор иммунорегуляции, зависимость типа иммунной реакции от природы антигена. Генетическая регуляция иммунного ответа.
реферат [32,0 K], добавлен 28.09.2009История открытия витамина К, его основные формы, физико-химические свойства, источники и метаболизм. Обмен витамина К в организме, участие в свертывании крови. Профилактическое и лечебное применение витамина К при болезнях печени, желудка и кишечника.
реферат [1,6 M], добавлен 22.05.2013Ингибирующие ферменты микробов как фактор патогенности. Особенности инфекционных болезней. Ферменты "защиты и агрессии" бактерий. Организация, механизм действия токсической молекулы. Определение вирулентности микроорганизмов. Активаторы иммунного ответа.
курсовая работа [581,9 K], добавлен 28.12.2014Особенности бронхиальной астмы как хронического воспалительного заболевания дыхательных путей. Типы бронхиальной обструкции. Предрасполагающие к заболеванию и разрешающие факторы. Характеристика факторов сенсибилизации. Пути активации иммунного ответа.
презентация [179,9 K], добавлен 01.12.2014
