Размещено на http://allbest.ru

Оглавление

Введение

Общая информация о вирусологических исследованиях

Правила отбора проб патологического материала для вирусологического исследования

Примеры инфекционных заболеваний и проб

Взятие крови для серологического исследования

Сопроводительные документы

Упаковка и пересылка патологического материала

Правила приема материала в лабораторию для исследования

Заключение

Список используемой литературы

ВВЕДЕНИЕ

В лабораторной диагностике вирусных болезней точность диагноза, прежде всего, зависит от правильности взятия патологического материала, его транспортировки, качества приготовления и техники исследования вируссодержащего материала, которые имеют свои особенности.

При такой работе нужно соблюдать меры собственной безопасности, избежать риска эпизоотий, и, чтобы собранный и доставленный материал нёс интересующую нас информацию, а не все, что было в окружающей среде при его взятии.

Для этого необходимо знать правила и методы отбора проб патологического материала, знать, как правильно подготовить материал к исследованию, чтобы оно получилось наиболее точным и информативным и пользоваться нормативными документами регламентирующими работу с паталогическим материалом.

Общая информация о вирусологических исследованиях

Вирусологические исследования это комплекс методов исследования, позволяющих распознать этиологию вирусного заболевания и изучить его возбудителя.

Основными этапами вирусологического исследования. Являются выделение вируса от больных и павших животных (взятие, консервирование, пересылка и подготовка материала, заражение им животных, куриных эмбрионов, культуры клеток); титрование вирусов для определения их количества в исследуемых материалах; культивирование вирусов на восприимчивых домашних и лабораторных животных, особенно на развивающихся куриных эмбрионах и культурах тканей (главным образом первично-трипсинизированных).

С помощью морфологических методов выявляют элементарные тельца, внутриклеточные включения, (например, Бабеша--Негри при бешенстве, Боллингера при оспе птиц). Иммунохимические методы (главным образом метод флуоресцирующих антител) позволяют определить специфический вирусный антиген в заражённых клетках тканевой культуры или органов и тканей инфицированных животных. С помощью серологических методов проводят видовую и группоспецифическую идентификацию вируса и антител в сыворотках переболевших животных. С этой целью используют реакции нейтрализации, РСК, реакцию гемагтлютинации, задержки гемагтлютинации, диффузионной преципитации, торможения гемадсорбции. Реакция нейтрализации позволяет улавливать антигенные различия сходных между собой вирусов даже в пределах одноимённой группы. РСК применяют для обнаружения вирусных антигенов в материалах от больных и павших животных, идентификации выделенного вируса, изучения антигенных связей между различными вирусами и определения антител у переболевших животных. Реакции гемагглютинации и задержки гемагглютинации широко применяют для диагностических целей и типирования возбудителей болезни Ньюкасла, гриппа птиц, парагриппа и некоторых аденовирусов; непрямую реакцию гемагглютинации используют для выявления адено- и макровирусов, хламидий. Реакцией преципитации в агаре изучают антигенную структуру вирусов, выявляют антитела в сыворотке и антигены в исследуемом материале[2,3]

Реакцию гемадсорбции применяют для предварительной индикации и титрования вирусов в культуре клеток, особенно тех, которые не вызывают цитопатического действия. Гемадсорбция наступает раньше проявления цитопатогенного действия, поэтому её используют как ранний метод предварительной индикации вирусов. Гемадсорбция островковая (адсорбция эритроцитов на отдельных участках монослоя клеток) типична для гриппа свиней, эпидемического паротита; диффузная (адсорбция эритроцитов на клетках всего монослоя) -- для классической чумы кур, болезни Ньюкасла, африканской чумы свиней и др. Методы очистки и концентрации вирусов используют при изучении физических, химических и морфологических свойств вирусов. Фазовые системы, образованные полимерами, используют для концентрации вирусов из больших объёмов вируссодержащих жидкостей, выделения нуклеиновых кислот вирусов. Радиобиологические методы применяют для изучения распределения и локализации вирусов (антител) в организме и, особенно для изучения процессов онтогенеза вирусов. С помощью электронной микроскопии обнаруживают вирионы в исследуемом материале и специфические конгломераты вирусов и антител (иммунная электронная микроскопия). Иммуноэлектроосмофорез обусловлен одновременным встречным движением в геле агара антигена и антитела в результате разной величины электрического заряда с образованием комплекса антиген -- антитело в виде линии преципитации и последующей его денатурацией. Метод применяют при изучении антигенной структуры вируса. Изоэлектрическое фокусирование основано на способности белков переходит в инертное (в отношении электрофоретической подвижности), а затем агрегированное состояние в изоэлектрической точке. Метод применяют для изучения белков вирусов. При иммуноферментативном методе происходит присоединение фермента к антителам с последующим образованием комплекса фермент -- антитело -- антиген, который выявляют в клетке с помощью цитохимической реакции на фермент (пероксидазу, щелочную и кислую фосфатазу, глюкозооксидазу). Метод используют с диагностической целью для выявления вирусных антигенов в культурах клеток, мазках-отпечатках, криостатных срезах, а также для изучения тонкой структуры антигенов вируса, патогенеза вирусных болезней и др.[1]

Правила отбора проб патологического материала для вирусологического исследования

При взятии вируссодержащего патологического материала большое значение имеет правильность выбора материала и его свежесть. Вирусы очень чувствительны к нагреванию и гниению. Поэтому материал надо брать от свежих трупов (не позднее 12 часов после гибели), а еще лучше от убитых клинически больных животных. При выборе материала учитывают тропизм вирусов и клиническое проявление болезни, вид и возраст животного, стадию течения болезни, наличие видимых изменений в органах и тканях и т.д.

При жизни животного в качестве вируссодержащего материала можно использовать: афты и их содержимое (ящур), пустулы (оспа), слизь и смывы со слизистых, моча (чума свиней и др.), кровь и лимфа (при пантропных инфекциях). Посмертно кроме указанных материалов берут кусочки паренхиматозных и других органов (печень, селезенка, почки, мозг, лимфотические узлы). Трупы мелких животных направляют обычно целиком.

Патологический материал необходимо брать стерильными инструментами в стерильную посуду. Поверхность органа (ткани), от которого берут патологический материал, на месте разреза следует обжечь над пламенем или прижечь нагретой металлической пластинкой.

Патологический материал должен быть взят как можно раньше после смерти животного, особенно в теплое время года, т.к. сразу же после заболевания (или впервые же 1-2 дня) барьерная роль кишечника значительно ослабевает, что наряду с повышенной проницаемостью кровеносных сосудов способствует диссеминации кишечной флоры.

Кроме того, по мере углубления инфекционного процесса количество вируса может снижаться в результате одновременного воздействия защитных сил организма.

Следует учитывать, что при многих вирусных инфекциях наблюдается феномен посмертной аутостерилизации, в результате чего вирус может быть вообще не обнаружен или его количество окажется очень незначительным.

Вторая причина необходимости экстренного взятия материала - избежать посмертных изменений в тканях, иначе они могут оказаться непригодными для бактериологических и вирусологических исследований.

Для вирусологических исследований желательно направлять пробы от животных в трех стадиях болезни:

· от больных с выраженной клиникой с указанием температуры, частоты пульса и дыхания (кровь, кость, лимфатические узлы и пораженные органы);

· от убитых в агонии (кровь, кость, лимфатические узлы и пораженные органы);

· от выздоравливающих животных (кровь).

Взятые пробы следует как можно быстрее поместить в условия, обеспечивающие замедление процессов разложения материала. Такие условия обеспечивают низкие температуры.

Если патологический материал невозможно доставить в лабораторию в течение ближайших 24-30 часов, его посылают только в консервированном виде.

Патологический материал (органы или их части) консервируют 30-50%-ным раствором химически чистого глицерина на физиологическом растворе. Физиологический раствор предварительно стерилизуют при 120⁰С в течение 30 мин.

Материал можно консервировать также в стерильном вазелиновом масле. Материал заливают консервирующей жидкостью в количестве 4-5 раз, превышающем его объем. Консервированные образцы желательно хранить в холодильнике.[4]

Небольшие трупы (поросят, мелких животных можно посылать целиком во влагонепроницаемой таре).

Трубчатые кости посылают на исследование в целом виде, очищенными от мышц и сухожилий. Кости завертывают в марлю или полотно, смоченные дезинфицирующей жидкостью и пересылают в сейф - пакетах или в стерильных полиэтиленовых пакетах.

Кишечник перед посылкой для бактериологического и вирусологического исследований освобождают от фекальных масс, а концы кишечника перевязывают. На исследование посылают части кишечника с наиболее характерными патологическими изменениями.

Кишечник помещают в банки с 30%-ным водным раствором глицерина или насыщенным водным раствором поваренной соли. Объем консервирующей жидкости должен превышать объем взятого материала в 4-5 раз.[7]

Кал для исследования отправляют в стерильных стаканах, пробирках, банках, которые закрывают пергаментной бумагой, пробками или в контейнерах.

Кал от трупов животных можно послать в отрезке невскрытого кишечника, завязанного с обоих концов, он должен быть доставлен в лабораторию не позднее 24 ч после его взятия.

Для исследования участков кожи берут наиболее пораженные ее кусочки размером 10x10 см и посылают в стерильной, герметически закупоренной посуде.

Перед взятием проб молока у коров вымя обмывают теплой водой, соски обрабатывают 70%-ным спиртом. Из каждой доли вымени берут последние порции молока по 10-15 мл в отдельные стерильные пробирки с резиновыми пробками.

Пробы мочи берут катетером в стерильную посуду. При его отсутствии мочу получают при естественном мочеиспускании или, вызывая последнее, раздражением наружных половых органов.

Пробы слизи из половых органов животных берут стерильным марлевым тампонам при помощи специальных инструментов конструкции Павловского, Жавордова, Казеева, а также применяемых при искусственном осеменении коров шприца-катетера или полистироловой пипетки, соединенной со шприцем.

Для получения смывов слизистой оболочки носовой полости, половых органов, конъюнктивы и др. полость орошают стерильным физиологическим раствором или солевым раствором Хенкса и собирают стекающий раствор в емкости.[6,10]

Иногда для получения смывов в полость вводят стерильный ватный тампон, смоченный физиологическим или солевым сбалансированным раствором. Тампоном тщательно протирают слизистую, извлекают его и помещают во флаконы с аналогичным раствором.

Мазки из носа, полости рта, прямой кишки, клоаки у птиц и т.д. берут при помощи стерильных ватных тампонов на довольно длинных стерильных деревянных палочках. После взятия мазка тампон помещают в пробирку, заполненную соответствующей жидкостью.

Наиболее часто для этого используют реактив Хенкса с антибиотиками (пенициллин, стрептомицин, нистатин) и белковым стабилизатором, например с 0,5% желатина или 0,5-1% альбумина бычьей сыворотки.[5]

Примеры инфекционных заболеваний и проб

Ниже приведены некоторые распространенные и особо опасные заболевания, и методы исследований, наиболее информативные при указанных патологиях.

Отбор проб мозга для исследования на бешенство. При подозрении на бешенство необходимо, когда это возможно, присылать целую голову, ее следует упаковать во влагонепроницаемый пакет, поместить в металлический контейнер и доставить в лабораторию в более короткие сроки.

Отбирать пробы мозга необходимо строго соблюдать меры личной безопасности: надевать резиновые перчатки, халаты с нарукавниками, резиновый или полиэтиленовый фартук, резиновые сапоги, защитные очки, защитную маску на лицо.

Отделить голову от туловища и хорошо зафиксировать. Снять кожу и мышцы с черепной коробки, сделав надрезы между глазными впадинами и от них в сторону затылка. С помощью пилы, топора, ножниц и пинцета снять черепную коробку. Отделить основные нервы, изъять мозг и поместить его на кювету или доску. Отобрать пробы коры больших полушарий и основания спинного мозга.

Для исследования на бешенство необходимо брать пробы аммоновых рогов. Для этого нужно рассечь продольными разрезами каждое центральное полушарие на расстоянии 2 см (для собак) от средней линии мозга, удалить верхние части до щели (пространства), в котором находятся аммоновы рога, представляющие собой полуцилиндрические тела белого цвета.

Нужно взять несколько кусочков аммоновых рогов и основания спинного мозга. Общий вес каждой пробы должен быть 5-10 г. Пробы мозга для исследования на бешенство обычно консервируют глицерином и маркируют с пометкой «бешенство».[6]

Вскрывать подозрительных на заболевание бешенством животных в полевых условиях запрещено!

Отбор проб мозга при прионных инфекциях (губкообразная энцефалопатия крупного рогатого скота, скрепи овец и коз, трансмиссивная энцефалопатия норок). При выполнении работ по отделению, упаковке и транспортировке головы необходимо исключить травмирование рук и попадание брызг крови на кожу и в глаза. Чтобы избежать этого, надевают халат, прорезиненный фартук, анатомические перчатки из плотной резины, резиновые сапоги, водонепроницаемый капюшон и защитную маску из оргстекла, закрывающую лицо от брызг крови.

Голову отделяют от шеи по атланто-затылочному сочленению. С дорсальной части головы крупного рогатого скота удаляют кожу.

Далее зажимают голову в тиски, осторожно, чтобы не повредить мозг, распиливают лобную кость с помощью анатомической пилы.

Затем производят надрезы лобной кости с каждой стороны от точек, находящихся на оси глазных ям, продлевая их каудально до наружных слуховых проходов. Продлевая эти разрезы каудально до большого затылочного отверстия также осторожно, чтобы исключить повреждение мозга.

Делают сагиттальный разрез посередине лобной и затылочной костей до большого затылочного отверстия. Затем разделяют и удаляют распиленные левую и правую части черепной коробки. Рассекают и снимают твердую мозговую оболочку.

Перевернуть голову, чтобы под действием силы тяжести мозг отделился от основания черепа. Продолжить работу, продвигаясь от каудального надреза вперед; для перерезания нервов вентральной стороны черепа использовать скальпель.

Извлечь мозг целиком и поместить его в ударопрочную герметичную емкость с фиксирующим раствором, при этом объем раствора должен быть в 10 раз больше объема мозга.

По окончании работ инструменты, которыми проводили отделение и распил головы, укладывают в стерилизатор с 2%-ным раствором гипохлорита натрия не менее чем на 1 час (инструменты должны быть погружены в раствор полностью). Сапоги, фартук, капюшон, маску и перчатки обрабатывают 2%-ным раствором гипохлорита натрия (протереть раствором, оставить на 1 час, затем тщательно вымыть водой), халаты обрабатывают автоклавированием при 134-138⁰С в течение 20-30 минут, Горючие отходы сжигают.[7]

Африканская чума свиней отбирают трубчатую кость и селезенку доставляют в замороженном виде в термоконтейнере (0+4⁰ С).

Классическая чума свиней отбирают трубчатую кость, селезенку, лимфоузлы доставляют в замороженном виде в термоконтейнере (0+4⁰ С).[10, 13]

Взятие крови для серологического исследования

У лошадей, крупного рогатого скота, овец и коз кровь берут из яремной вены в верхней трети шеи.

Иглы перед взятием крови от каждого животного обязательно стерилизуют кипячением. Шерсть на месте взятия крови тщательно выстригают, и кожу дезинфицируют спиртом: или 3%-ным раствором карболовой кислоты. Нужно следить, чтобы кровь стекала по стенке в пробирку струей, а не каплями. Кровь, взятая каплями и вспененная, скорее гемолизуется и часто дает неправильные результаты показаний при исследовании. Нельзя допускать, чтобы кровь попадала на землю. Для этого надо пользоваться тазиком с дезинфицирующей жидкостью, куда спускают первую порцию крови.

У свиней кровь берут из уха (иглой или шприцем) или из кончика хвоста. Хвост предварительно обмывают водой с мылом и дезинфицируют спиртом или 3%-ным раствором карболовой кислоты, а затем кончик отрезают ножницами. После взятия крови кончик хвоста обрабатывают йодом, перевязывают или прижигают.[3]

У птиц кровь берут из вены крыла или из гребешка.

Брать кровь надо по возможности утром, до кормления животных. Для серологического исследования от крупного рогатого скота, лошадей и других крупных животных, овец, свиней кровь берут в количестве 7-10 мл.

Взятую кровь выдерживают около часа при 30-35°С для свертывания, а затем выносят в прохладное помещение для отстаивания. Через 10-12 часов отстоявшуюся сыворотку переливают в другие пробирки. Если сыворотка недостаточно отстоялась или верхний слой сгустка плотно прилегает к стенкам пробирки и отстаивание начинается снизу, то сгусток отделяют от стенок пробирки тонкой предварительно прокаленной и остывшей проволокой.

Сыворотка крови должна быть доставлена в лабораторию в течение первых суток и в исключительных случаях не позднее третьего дня после взятия крови.

При пересылке сыворотки на большое расстояние, особенно летом, её необходимо консервировать 5%-ным раствором карболовой кислоты на физиологическом растворе из расчета на каждые 9 мл сыворотки 1 мл раствора карболовой кислоты или 1-2 капли раствора на 1 мл сыворотки.

Раствор карболовой кислоты необходимо подливать по каплям при постоянном встряхивании пробирки с сывороткой.

Сыворотку или кровь можно консервировать также борной кислотой (в порошке) из расчета 0,05-0,07 г (на кончике скальпеля) на одну пробирку с кровью (сывороткой). Сыворотку можно консервировать также высушиванием.[12,8]

Для высушивания сыворотку наносят на фильтровальную бумагу размером 5Ч5 см в количестве 0,4 мл и выдерживают в комнате при рассеянном свете до полного высыхания. После этого на каждой бумаге с высушенной сывороткой делают соответствующие записи простым карандашом и завертывают в пергаментную бумагу (каждую пробу отдельно), а затем упаковывают в конверт и в таком виде отсылают в лабораторию.

В лаборатории каждую пробу сухой сыворотки помещают в пробирку, заливают 2 мл физраствора, помещают в термостат на 6-10 часов или оставляют в комнате на 24 часа и затем исследуют. Сухие сыворотки сохраняют свои антигенные свойства от 40 до 130 дней.

Для серологического исследования в лабораторию можно отправлять и цельную кровь, не отделяя сыворотку, но при условии, что в пути ее не будут встряхивать и она не подвергнется гемолизу.[5]

На каждой пробе сыворотки или крови указывают ее номер или кличку животного или фамилию владельца животного. Пробы направляют с описью в двух экземплярах.

Пробирки с сыворотками плотно закрывают стерильными пробками и устанавливают для пересылки в строго вертикальном положении.

Зимой сыворотки упаковывают и пересылают так, чтобы они не замерзали.[10]

Сопроводительные документы

При пересылке патологического материала на любой вид лабораторного исследования необходимо направлять сопроводительный документ. В сопроводительном документе указать: кто и куда направляет материал, из какого хозяйства, какой материал, количество банок и на что проводить исследование.

Сообщают краткие клинические и патологоанатомические данные, желательно направлять протокол вскрытия. [7]

Сопроводительный документ должен содержать следующие сведения:

1.Наименование (штамп) направляющего учреждения

2.Ф.И.О. больного, возраст

3.Адрес проживания

4.Дата заболевания (при экзантемных заболеваниях дополнительно дата появления сыпи)

5.Предварительный диагноз

6.Цель исследования (для выделения вируса, серодиагностика, МФА, ПЦР)

7.Вид материала

8.Дата сбора материала

9.Дата отправки материала

10.Ф.И.О. врача, направившего материал

Упаковка и пересылка патологического материала

При направлении секционного материала дополнительно указываются дата смерти и дата вскрытия.

Трупы мелких животных, части трупов крупных животных и отдельные органы в свежем (нефиксированном) виде отправляют для исследования в лабораторию только с нарочным. Посылаемый материал, особенно от животных, подозрительных по заболеванию инфекционной болезнью, должен быть тщательно упакован в плотный деревянный или металлический ящик, чтобы предупредить возможность рассеивания инфекции в пути. Перед упаковкой материал необходимо завернуть в холст или мешковину, смоченную дезинфицирующим раствором (фенольного креолина, лизола, известкового молока), и уложить в ящик со стружками, мякиной или опилками.

Части органов, жидкости, отправляемые в лабораторию почтой в фиксированном или консервированном виде, должны быть помещены в герметически закупоренную стеклянную посуду с притертой стеклянной, пластмассовой, резиновой или корковой пробкой. Пробка должна быть закреплена проволокой или бечевкой и залита менделеевской замазкой (сургучом, смолкой, парафином или воском), чтобы укупорка была непроницаемой для жидкости. Укупоренную посуду вкладывают в прочный плотный ящик и хорошо обкладывают ватой, паклей, стружками, опилками или другими упаковочными материалами.

Кости обертывают целлофаном, полиэтиленовой пленкой или смоченными в дезрастворе марлей или полотном и также упаковываются в ящики. вирусологический патологический лаборатория моча

При пересылке почтой или с нарочным патологического материала от животных, подозрительных по заболеванию инфекционной болезнью, или явно инфицированного материала упаковка должна гарантировать доставку материала в целости и исключить возможность рассеивания возбудителей инфекции. На лицевой стороне посылки вверху должна быть надпись. "Осторожно - стекло" и "Верх".

Стеклянную посуду, в которой заключен посылаемый материал с подозрением на наличие особо опасных болезней (чума крупного рогатого скота, чума свиней, псевдочума птиц, ящур, бешенство), обязательно упаковывают в металлическую коробку, которую запаивают, пломбируют или опечатывают, а затем упаковывают еще в деревянный ящик.

Если такой материал доставляют с нарочным, можно отправлять его в стеклянной, герметически закупоренной посуде без металлической коробки, но в деревянном ящике. На взятый патологический материал составляют сопроводительный документ

Если при вскрытии посылки в лаборатории будут установлены несоответствие сопроводительному документу или порча патологического материала, об этом обязательно составляют акт, копию которого отправляют ветеринарному врачу, направившему материал в лабораторию.[3]

Правила приема материала в лабораторию для исследования

Нарочный (тот, кто доставляет объекты исследования) передает материал в приемную комнату, которая должна быть изолирована от других помещений.

Принимающий через окно получает материал, регистрирует и передает его, в зависимости от цели исследования, специалистам того или иного отдела. Трупы животных вскрывают во вскрывочной комнате и описывают характер обнаруженных патологоанатомических изменений.

Приемная комната должна быть оборудована раковиной с кранами, открывающимися нажимом локтя, столами или стеллажами, покрытыми пластиком или оцинкованным железом, должна иметь шкаф для спецодежды (халат, колпак, резиновые перчатки, сапоги и т.д.), лотки, контейнеры, штативы, емкости с дезинфицирующими растворами. В конце рабочего дня дезинфицируют внутреннюю поверхность окон для приема и передачи материалов в отделы и поверхность столов (стеллажей).[7]

Заключение

Как видно из вышеизложенного, важно не только собрать материал, но получить определенный для каждой болезни, собрать правильно, и в достаточно сжатые сроки отправить материал в лабораторию.

При неправильной доставке, порче материала, ошибке в сопроводительном документе, материал может быть не принят для исследования. Поэтому необходимо сразу точно и качественно собрать материал, ведь некоторые заболевания могут быть опасны для человека, а так же привести к эпизоотиям. Поэтому все зависит не только от врача-лаборанта, но и от профессиональности врача, направляющего материал.

Список используемой литературы

1. Андреевский, И. С. Книга о болезнях лошадей врача [Текст]: учебн. литература / И.С. Андреевский. - М.: Высшая школа, 2012. - 465 c.

2. Барышников, П. И. Ветеринарная вирусология врача [Текст]: учебн. литература / П.И. Барышников. - М.: Форум, 2016. - 298 c.

3. Глотова, Т. Диагностика, свойства возбудителей, эффективность препаратов врача [Текст]: учебн. литература / Татьяна Глотова. - М.: LAP Lambert Academic Publishing, 2013. - 300 c

4. Госманов, Р. Ветеринарная вирусология : учебник для студ. вузов, обучающихся по специальности 111201 - "Ветеринария" : допущено МСХ РФ/ Р. Г. Госманов, Н. М. Колычев, В. И. Плешакова. -СПб.;М.;Краснодар: Лань, 2010.-473 c

5. Кунаков, А. А. Справочник ветеринарного врача [Текст]: учебн. литература / А. А. Кунаков. - М.: Колос, 2015. - 324 c.

6. Львов, Д.К. Руководство по вирусологии. Вирусы и вирусные инфекции человека и животных / Д.К. Львов. - М.: Медицинское Информационное Агентство (МИА), 2013. - 826 c.

7. Мейер Д., Харви Д. Ветеринарная лабораторная медицина. Интерпретация и диагностика // Д. Мейер, Д. Харви. - М.: Сфоион, 2009 г.

8. Меньшиков, В.В. Клинический диагноз - лабораторные основы врача [Текст]: учебн. литература / И.И. Дедова. - М.: Медицина, 1987 г.

9. Руденко, А.М. Столетие русской военной ветеринарии / А.М. Руденко. - М.: Книга по Требованию, 2013. - 426

10. Руководство по ветеринарной паразитологии. - М.: Техноперспектива, 2018. - 482 c.

11. Сюрин, В. Ветеринарная вирусология : Учебник по спец. "Ветеринария"/ В. Н. Сюрин, Р. В. Белоусова, Н. В. Фомина. -2-е изд., перераб. и доп.. -М.: Агропромиздат, 1991.-439 c.

12. Тихоненко Т. И., Методические основы биохимии вирусов, М., 1973, 152--158 с.

13. Трушина, В.А. Профилактика заболеваний сельскохозяйственных животных и птиц / В.А. Трушина. - М.: Аквариум, 2011. - 318 c.

Размещено на Allbest.ru