Nedd9 регулирует метастазирование немелкоклеточного рака легкого за счет активации эпителиально-мезенхимального перехода и миграционной способности опухолевых клеток

Размещено на http://www.allbest.ru/

Казанский (Приволжский) федеральный университет

NEDD9 РЕГУЛИРУЕТ МЕТАСТАЗИРОВАНИЕ НЕМЕЛКОКЛЕТОЧНОГО РАКА ЛЕГКОГО ЗА СЧЕТ АКТИВАЦИИ ЭПИТЕЛИАЛЬНО-МЕЗЕНХИМАЛЬНОГО ПЕРЕХОДА И МИГРАЦИОННОЙ СПОСОБНОСТИ ОПУХОЛЕВЫХ КЛЕТОК

Ю.А. Топчу, А.М. Мазитова, М.В. Тихомирова,

З.И. Абрамова, А.Я. Денека

г. Казань

Аннотация

метастазирование рак легкое белок

В статье представлены результаты исследования механизмов регуляции роста и метастазирования немелкоклеточного рака легкого онкогенным белком Nedd9 с использованием трансгенной мышиной модели аденокарциномы легкого. Показано, что при активации опухолевого образования в легких мышей на фоне полностью «выключенного» Ывёё9 у животных наблюдаются усиление злокачественности течения заболевания и повышение метастатической способности опухолевых клеток и показан механизм, лежащий в основе данных наблюдений. Сделано предположение, что отсутствие активности белка Nedd9 на ранних этапах развития опухоли, включая момент опухолевой трансформации клетки, позволяет опухолевым клеткам приобретать мезенхимальные свойства, такие как повышенная подвижность и способность к инвазии, за счет компенсаторного перестроения внутриклеточных белковых сигнальных путей и активации эпителиально-мезенхимального перехода.

Ключевые слова: рак легкого, метастазирование, эпителиально-мезенхимальный переход, иммуногистохимия, трансгенная мышиная модель

Annotation

Nedd9 Regulates Metastasis of Non-Small Cell Lung Cancer through Activation of Epithelial-Mesenchymal Transition and Tumor Cells Migration

Y.A. Topchu, A.M. Mazitova,M.V. Tikhomirova, Z.I. Abramova, A.Y. Deneka Kazan Federal University, Kazan, 420008 Russia

Non-small cell lung cancer (NSCLC) has a low survival rate, with metastasis contributing to the vast majority of deaths. Elevated expression of the protein Nedd9 (neural precursor cell expressed, developmentally down-regulated 9) has been reported in a large subset of lung cancers and other malignancies as a promotor of aggressive phenotypes and drug resistance. This study was performed to identify the mechanisms by which Nedd9 regulates invasion and metastasis of non-small cell lung cancer in the transgenic murine model.

Aiming to address the research goals, we performed a set of in vivo and in vitro experiments with the help of such methods as magnetic resonance imaging (MRI), immunohistochemical staining of tissues and microscopy, western blotting.

We found that Nedd9 constitutive null genotype enhanced tumor growth in an inducible Kras/Trp53 model, in which Kras mutation is induced specifically in the lung tissue by inhalation of adenovirus. Pathological examination of the tissues demonstrated that Nedd9 null genotype also was associated with higher invasive capacity in vivo, including direct invasion to the heart. We carried out a set of experiments to unveil the mechanism underlying the phenotype discovered.

Overall, our data support the model in which Nedd9 provides critical support for early stages of the NSCLC growth, and progression beyond this early stage in the absence of Nedd9 requires extensive intracellular protein signaling reprogramming, allowing tumor cells to acquire mesenchymal properties, such as increased mobility and invasion due to a compensatory rearrangement of intracellular protein signaling pathways and activation of the epithelial-mesenchymal transition (EMT). These results are novel and have not been previously described in the literature.

The biological mechanism by which Nedd9 regulates growth, invasion, and metastasis of NSCLC has been poorly investigated, and its study carries not only fundamental implication - discovery of novel mechanisms driving tumor development, but also significant practical importance: assessment of levels of Nedd9 activity in NSCLC patients can potentially serve as a biomarker of response to chemotherapy.

Keywords: lung cancer, metastasis, epithelial to mesenchymal transition, immunohistochemistry, transgenic murine model

Введение

В настоящее время смертность от рака легкого занимает лидирующее место среди всех онкологических заболеваний и зачастую ассоциируется с рефрактерными к лечению дистальными метастазами [1]. Представляемое исследование направлено на выявление механизмов, за счет которых поддерживающий белок Nedd9 (Neural precursor cell expressed, Developmental^ Down-regulated 9) регулирует инвазию и метастазирование немелкоклеточного рака легкого (НМРЛ). Метастазы являются проявлением наиболее агрессивного типа этого заболевания и зачастую ассоциируются с устойчивостью к химиотерапии. Биологический механизм, за счет которого Nedd9 регулирует рост, инвазию и метастазирование НМРЛ, мало изучен, а его изучение имеет не только фундаментальное значение - открытие новых механизмов развития опухоли, но и практическую ценность: оценка уровня активности Nedd9 в опухолях пациентов может служить предиктором ответа на химиотерапевтическое воздействие.

Nedd9 является поддерживающим белком в множестве внутриклеточных белковых каскадов. В литературе описаны механизмы регуляции белком Nedd9 сигнальных путей интегринов, SRC-киназы, киназы фокальной адгезии (FAK) и нижележащих путей PI3K-AKT-mTOR, Ras-ERK, играющих ключевые роли в росте и прогрессировании множества опухолей а также актвации эпителиально-мезенхимального перехода (ЭМП) [2-4]. Высокие уровни белка Nedd9 зачастую ассоциируются с метастазами и прогрессированием НМРЛ, а также некоторых других онкологических заболеваний [5-9].

Наиболее частыми причинами возникновения НМРЛ у человека являются активирующая мутация Kras (около 30%) [10], а также потеря аллеля Trp53 (около 60% случаев) [11]. Обнаружение этих мутаций позволило создать удобный инструмент для изучения роста и метастазирования немелкоклеточного рака легкого - мышиную модель, трансгенную по Kras/p53. У этих мышей введенный мутантный аллель Тгр53 сочетается с активирующей мутацией аллеля Kras, что приводит к развитию опухолей в легком, по патоморфологическим свойствам схожих с аденокарциномой человека. В литературе также описана трансгенная мышиная модель полного нокаута Nedd9 [12]. У этих мышей наблюдается полный нокаут аллелей во всем организме, однако спонтанного опухолеобразования на этом фоне не наблюдается. В настоящем исследовании нами была использована мышиная модель, полученная путем скрещивания мышей трансгенных по Kras/Trp53 и трансгенных по Nedd9 (KraslTrp53INedd9). Модель была описана ранее [13].

С использованием описанной модели нами впервые была исследована роль белка Nedd9 в регулировании ЭМП и метастазирования рака легкого с момента инициации опухолевой трансформации. Было обнаружено, что при активации опухолевого образования на фоне полностью «выключенного» Nedd9 у животных наблюдаются усиление злокачественности течения заболевания и повышение метастатической способности опухолевых клеток. Установлено, что механизмом, лежащим в основе ухудшения прогноза заболевания, является компенсаторное изменение во внутриклеточных белковых сигнальных путях - усиление процессов ЭМП и подвижности клеток. Полученные результаты являются новыми и в литературе не описаны.

Материалы и методы

Мышиная модель. В настоящем исследовании использовалась мышиная модель, полученная путем скрещивания мышей линии B6.129S/S4-Krastm4TyjIJI B6.129P2-Trp53tm1Brn с мышами трансгенными по Nedd9. Исследование проводилось в соответствии с этическими нормами, одобренными Локальным этическим комитетом КФУ (приказ № 0.1.1.67-061209-л/16 от 12 декабря 2016 г.)

Аденовирусная активация онкогенного KrasG12D и инактивация Trp53 была индуцирована посредством введения 9-недельным мышам 2.5-10⁶ аденовирусных частиц, несущих Cre-рекомбиназу (UIowa-4, Центр вирусных векторов Университета Айовы, Айова Сити, Айова, США) в 75 мкл среды MEM с 0.01 M CaCl₂, в трахею способом обычной ингаляции у анестезированных мышей с использованием стандартных методик [13]. Образование опухолей легкого было подтверждено через 12 недель после активации и контролировалось с помощью магнитно-резонансной томографии (МРТ).

МРТ легких мышей. Для проведения МРТ мышей первоначально анестезировали 2%-ным изофлураном в кислородной смеси, во время сканирования животные находились под действием 0.5%-ного изофлурана. Сканирование проводилось с помощью магнитного спектрометра Brnker DRX300 мощностью 7 Tesla на программном обеспечении ParaVision 3.0.2 (Bruker, Биллерика, Массачусетс, США) и одной настроенной цилиндрической радиочастотной катушки 1 H. Для измерения объема опухолей в легком проводился с помощью обведения области опухоли вручную в серии соседних изображений с использованием программного обеспечения ImageJ (Национальный институт здоровья, Бетесда, Мэриленд, США). Расчет объема опухоли производился путем умножения толщины фрагмента изображения на площадь опухоли и суммированием для каждой мыши.

Подготовка и иммуногистохимическое окрашивание образцов опухолей и метастазов мышей. Образцы тканей легких и опухолей собирались и фиксировались в 10%-ном растворе формальдегида в фосфатном буфере в течение 24-48 ч, затем дегидратировались для получения парафиновых блоков. Дегидратирование тканей было проведено путем обработки в серии растворов этанола и ксилена (70%-ный этанол - 3 ч, 95%-ный этанол - 2 ч, 100% -ный этанол - 2 ч, этанол - ксилен - 2 ч, ксилен - 3 ч), после чего они погружались в парафин.

Парафиновые срезы толщиной 5 мкм были наложены на предметные стекла, после чего хранились при комнатной температуре до использования. Готовые образцы анализировались после гематоксилин-эозинового окрашивания по стандартному протоколу (Sigma-Aldrich, Сэнт Луис, Монтана, США). Имунногистохимическое окрашивание срезов опухолей проводилось первичными антителами к виментину (№3 932, Cell Signaling, Беверли, Массачуссетс, США) и маркером макрофагов F4-80 (sc-377009, Santa Cruz, Даллас, Техас, США) и вторичными антителами к кролику Alexafluor 488 tagged и вторичными антителами к мыши Alexafluor 594 (Life Technologies, Юджин, Орегон, США). На конечном этапе слайды были зафиксированы раствором Vectashield с DAPI (4 6-диамидино-2фенилиндол) (H-1200, Vector Labs, Бурлингэйм, Калифорния, США) для визуализации ДНК.

Иммуноблоттинг и антитела. Для анализа уровня экспрессии белков методом вестерн-блот использовали тканевые лизаты. Все этапы проводили при 4 °С. Ткани опухолей легких от четырех мышей в каждой группе лизировали в буфере T-PER (Sigma, США) с добавлением ингибиторов протеаз и фосфатаз в 1%-ной концентрации. Концентрацию белка в лизатах определяли по методу Лоури. Затем выравнивали концентрацию образцов добавлением лизирующего буфера до концентрации наиболее разбавленного. После этого лизаты кипятили в растворе 2%-ного додецилсульфата натрия (SDS) в течение 10 мин для полной денатурации белков. Далее образцы разгоняли методом электрофореза в градиентном (4-12%) полиакриламидном геле при 120 В. С геля белки переносили на поливинилиденфторидную (PVDF) мембрану методом электроблоттинга при напряжении 20 В в течение 3 ч. Мембрану с белками инкубировали в течение часа в блокирующем буфере Super Block (Sigma-Aldrich, США). После этого мембрану инкубировали с первичными антителами в конечной концентрации 100 нг/мл в течение 12-24 ч при 4 °С, разведенными в блокирующем буфере. Были использованы первичные антитела к виментину (№ 3932, Cell Signaling, Беверли, Массачуссетс, США) и Я-актину (ab8227, Abcam, Кембридж, Великобритания). Мембрану отмывали в TBS-T три раза по 5 мин и в течение 1 ч инкубировали с вторичными антителами, которые были конъюгированы с пероксидазой хрена (HRP). Вторичные антитела разводили в блокирующем буфере в концентрации 1 мкг/мл. По окончании инкубации мембраны отмывали три раза по 5 мин в TBS-T. Белки визуализировали с использованием реакции пероксидазы хрена и ее субстрата, приготовленного как смесь растворов SuperSignal West Pico Stable Peroxide Solution и SuperSignal West Pico Luminol Enhacer Solution с помощью светочувствительной пленки. Полученные пленки сканировались.

Результаты и их обсуждение

С целью изучения роли белка Nedd9 в регулировании ЭМП и метастазирования рака легкого с момента инициации опухолевой трансформации нами была использована порода мышей, трансгенных по Kraslp53INedd9. После инициирования роста опухолей в легких животных мы следили за развитием опухолей с помощью магнитно-резонансного томографического сканирования (рис. 1, а). Было обнаружено, что у животных с «выключенным» Nedd9 опухоли достигали большего размера, а также росли быстрее по сравнению с контрольной группой - мышами с неизмененным Nedd9 (рис. 1, б).

Рис. 1 Сравнительный анализ опухолевой нагрузки в легких мышей с интактным Ыгёё9 и «выключенным» Ыгёё9 (Ыгёё^^). Репрезентативные изображения (а) и график (б), демонстрирующий объем опухолей, на основании МРТ-сканов легких мышей в возрасте 29 недель. Опухоли отмечены стрелками

На следующем этапе исследования нами были получены срезы ткани органов грудной полости мышей (легкие, сердце, тимус) и проведено патоморфологические исследование. С помощью окраски гематоксилин-эозином обнаружено, что помимо большей опухолевой нагрузки у некоторых животных с «выключенным» Нвёё9 имелись метастазы в плевру и признаки прямой инвазии в сердечную ткань (рис. 2), чего не наблюдалось в контрольной группе. Сами опухоли имели больший размер.

Рис. 2 Гематоксилин-эозин окрашенные срезы опухолей в ткани легких мышей с интактным Ыгёё9 и «выключенным» Ыгёё9 (Ыгёё9^^). Стрелкой отмечено место инвазии опухоли в ткань сердца

В работе [7] белок Nedd9 описан как регулятор ЭМП, и нами было выдвинуто предположение, что в клетках опухолей мышей с «выключенным» №ёё9 будет отмечаться повышенная экспрессия мезенхимальных маркеров. Окрашивание срезов ткани с помощью метода флуоресцентного иммуногистохимического окрашивания на мезенхимальный маркер виментин показало, что на периферии опухолевых образований в легких мышей с «выключенным» №ёё9 отмечается большое количество клеток амебоидной формы (рис. 3, а). Данное наблюдение было подтверждено с помощью метода вестерн-блот с использованием лизатов, полученных из опухолевой ткани мышей. Обнаружено, что у животных с нокаутом №ёё9 уровни виментина значительно повышены (рис. 3, б). Таким образом, можно сделать вывод, что опухолевая трансформация и инициация роста опухолей на фоне «выключенного» Нвёё9 приводят к селекции мезенхимальной субпопуляции опухолевых клеток и, следовательно, к усилению инвазивной способности НМРЛ.

Заключение

В ряде работ (см., например, [9, 14, 15]) для уменьшения уровня экспрессии белка Nedd9 в клеточных линиях НМРЛ применялись методы технология РНКинтерференции, после чего наблюдалось уменьшение инвазии и роста опухолевых клеток и ксенографтов. Наши результаты, полученные от мышиной модели аденокарциномы легкого с более физиологичным абсолютным «выключением» №ёё9 до момента инициации опухолевого процесса, демонстрируют противоположные результаты.

Рис. 3 Отсутствие белка Nedd9 повышает метастатическую активность опухолевых клеток за счет активации эпителиально-мезенхимального перехода (ЭМП). а) Иммунофлюоресцентное иммуногистохимическое окрашивание срезов опухолей в ткани легких мышей с интактным Ыебб9 и «выключенным» Ыебб9 {Ыейй9^^') на мезенхимальный маркер виментин (оранжевый), маркер маркофагов F4-80 (зеленый) и DAPI (синий). б) Вестерн-блот-анализ на маркер ЭМП виментин в лизатах опухолевой ткани мышей (от 4 мышей с «выключенным» Ыеёё9 и 4 контрольных мышей)

На основании собственных результатов и опубликованных данных нами сделан вывод, что отсутствие активности белка Nedd9 на ранних этапах развития опухоли, включая момент опухолевой трансформации клетки, приводит к компенсаторному перестроению внутриклеточных белковых сигнальных путей и в конечном итоге вызывает более злокачественное прогрессирование заболевания. Метастазирование опухолевых клеток усиливается за счет приобретения опухолевыми клетками мезенхимальных свойств и усиления процесса эпителиально-мезенхимального перехода. Мы предполагаем, что белок Nedd9 играет важную роль в процессе развития опухоли от момента инициации ее роста. Эта роль отличается от таковой в уже сформированных опухолях (будь то клеточные линии или ксенографты) и ранее не описана в литературе.

Благодарности. Исследование выполнено при финансовой поддержке РНФ в рамках научного проекта № 18-75-00104. Часть работы выполнена за счет средств субсидии, выделенной в рамках государственной поддержки Казанского (Приволжского) федерального университета в целях повышения его конкурентоспособности среди ведущих мировых научно-образовательных центров.

Информация о вкладе авторов. Топчу Юлия Алексеевна - проведение экспериментальных исследований, анализ и интерпретация полученных данных, работа с текстом статьи; Мазитова Александра Маратовна - проведение экспериментальных исследований, анализ и интерпретация полученных данных, работа с текстом статьи; Тихомирова Мария Владимировна - проведение экспериментальных исследований, анализ полученных данных; Абрамова Зинаида Ивановна - редактирование и обсуждение текста статьи; Денека Александр Ярославович - постановка проблемы исследования, концептуализация выводов, написание первоначального варианта текста.

Литература

1. Siegel R.L., Miller K.D., Jemal A. Cancer statistics, 2017 // Ca-Cancer J. Clin. 2017. V. 67, No 1. P. 7-30. doi: 10.3322/caac.21387.

2. Greuber E.K., Smith-Pearson P., Wang J., Pendergast A.M. Role of ABL family kinases in cancer: From leukemia to solid tumors // Nat. Rev. Cancer. 2013.V. 13, No 8. P. 559-571. doi: 10.1038/nrc3563.

3. Law S.F., Estojak J., Wang B., Mysliwiec T., Kruh G., Golemis E.A. Human enhancer of filamentation 1, a novel p130^cas-like docking protein, associates with focal adhesion kinase and induces pseudohyphal growth in Saccharomyces cerevisiae // Mol. Cell. Biol. 1996. V. 16, No 7. P. 3327-3337. doi: 10.1128/MCB.16.7.3327.

4. Pugacheva E.N., Jablonski SA., Hartman T.R., Henske E.P., Golemis EA. HEF1-dependent Aurora A activation induces disassembly of the primary cilium // Cell. 2007. V. 129, No 7. P. 1351-1363. doi: 10.1016/j.cell.2007.04.035.

5. Morimoto K., Tanaka T., Nitta Y., Ohnishi K., Kawashima H., Nakatani T. NEDD9 crucially regulates TGF-beta-triggered epithelial-mesenchymal transition and cell invasion in prostate cancer cells: Involvement in cancer progressiveness // Prostate - 2014. V. 74, No 8. P. 901-910. doi: 10.1002/pros.22809.

6. Feng Y., Wang Y., Wang Z., Fang Z., Li F., Gao Y., Liu H., Xiao T., Li F., Zhou Y., Zhai Q. , Liu X., Sun Y., Bardeesy N., Wong K.-kin., Chen H., Xiong Zh.-qi., Ji H. The CRTC1NEDD9 signaling axis mediates lung cancer progression caused by LKB1 loss // Cancer Res. 2012. V. 72, No 24. P. 6502-6511. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-12-1909.

7. Miao Y., Li A.-L., Wang L., Fan Ch.-F., Zhang X.-P., Xu H.-T., Yang L.-H., Liu Y., Wang E.-H. Overexpression of NEDD9 is associated with altered expression of E-Cadherin, P-Catenin and N-Cadherin and predictive of poor prognosis in non-small cell lung cancer // Pathol. Oncol. Res. 2013. V. 19, No 2. P. 281-286. doi: 10.1007/s12253-012-9580-2.

8. Singh M.K., Dadke D., Nicolas E., Serebriiskii I.G., Apostolou S., Canutescu A., Egleston B.L., Golemis E.A. A novel Cas family member, HEPL, regulates FAK and cell spreading // Mol. Biol. Cell. 2008. V. 19, No 4. P. 1627-1636. doi: 10.1091/mbc.E07-09-0953.

9. Miao Y., Wang L., Liu Y., Li A.-L., Liu Sh.-L., Cao H.-Y., Zhang X.-P., Jiang G.-Y., Liu D., Wang E.-H. Overexpression and cytoplasmic accumulation of Hepl is associated with clinicopathological parameters and poor prognosis in non-small cell lung cancer // Tumour Biol. 2013. V. 34, No 1. P. 107-114. doi: 10.1007/s13277-012-0517-x.

10. Mitsudomi T., Viallet J., Mulshine J.L., Linnoila R.I., Minna J.D., Gazdar A.F. Mutations of ras genes distinguish a subset of non-small-cell lung cancer cell lines from small-cell lung cancer cell lines // Oncogene. 1991. V. 6, No 8. P. 1353-1362. doi: 10.1016/01695002(92)90122-Z.

11. Takahashi T., Nau M.M., Chiba I., Birrer M.J., Rosenberg R.K., Vinocour M., Levitt M., Pass H., Gazdar A.F., Minna J.D. p53: A frequent target for genetic abnormalities in lung cancer // Science. 1989. V. 246, No 4929. P. 491-494. doi: 10.1126/science.2554494.

12. Seo S., Asai T., Saito T., Suzuki T., Morishita Y., Nakamoto T., Ichikawa M., Yamamoto G., Kawazu M., Yamagata T., Sakai R., Mitani K., Ogawa S., Kurokawa M., Chiba Sh., Hirai H. Crk-associated substrate lymphocyte type is required for lymphocyte trafficking and marginal zone B cell maintenance // J. Immunol. 2005. V. 175, No 6. P. 34923501. doi: 10.4049/jimmunol.175.6.3492.

13. Deneka A., Kopp M., Nikonova A.S., Gaponova A.V., Nagele A., Hensley H., Golemis E. Constitutive Nedd9 null genotype promotes lung cancer aggressiveness // Cancer Res. 2017 - V. 77, No 13 Suppl. Abstr. No 1834. doi:10.1158/1538-7445.AM2017-1834.

14. Jin Y., Li F., Zheng C., Wang Y., Fang Z., Guo C., Wang X., Liu H., Deng L., Li Ch., Wang H., Chen H., Feng Y., Ji H. NEDD9 promotes lung cancer metastasis through epithelial-mesenchymal transition // Int. J. Cancer.2014. V. 134, No 10. P. 2294-2304. doi: 10.1002/ijc.28568.

15. Chang J.X., Gao F., Zhao G.Q., Zhang G.J. Effects of lentivirus-mediated RNAi knockdown of NEDD9 on human lung adenocarcinoma cells in vitro and in vivo // Oncol. Rep. V. 32, No 4. P. 1543-1549. doi:10.3892/or.2014.3347.

References

1. Siegel R.L., Miller K.D., Jemal A. Cancer statistics, 2017. Ca-Cancer J. Clin., 2017, vol. 67, no. 1, pp. 7-30. doi: 10.3322/caac.21387.

2. Greuber E.K., Smith-Pearson P., Wang J., Pendergast A.M. Role of ABL family kinases in cancer: From leukemia to solid tumors. Nat. Rev. Cancer, 2013, vol. 13, no. 8, pp. 559-571. doi: 10.1038/nrc3563.

3. Law S.F., Estojak J., Wang B., Mysliwiec T., Kruh G., Golemis E.A. Human enhancer of filamentation 1, a novel p130^cas-like docking protein, associates with focal adhesion kinase and induces pseudohyphal growth in Saccharomyces cerevisiae. Mol. Cell. Biol., 1996, vol. 16, no 7, pp. 3327-3337. doi: 10.1128/MCB.16.7.3327.

4. Pugacheva E.N., Jablonski S.A., Hartman T.R., Henske E.P., Golemis E.A. HEF1-dependent Aurora A activation induces disassembly of the primary cilium. Cell, 2007, vol. 129, no. 7, pp. 1351-1363. doi: 10.1016/j.cell.2007.04.035.

5. Morimoto K., Tanaka T., Nitta Y., Ohnishi K., Kawashima H., Nakatani T. NEDD9 crucially regulates TGF-beta-triggered epithelial-mesenchymal transition and cell invasion in prostate cancer cells: Involvement in cancer progressiveness. Prostate, 2014, vol. 74, no. 8, pp. 901-910. doi: 10.1002/pros.22809.

6. Feng Y., Wang Y., Wang Z., Fang Z., Li F., Gao Y., Liu H., Xiao T., Li F., Zhou Y., Zhai Q., Liu X., Sun Y., Bardeesy N., Wong K.-kin., Chen H., Xiong Zh.-qi., Ji H. The CRTC1-NEDD9 signaling axis mediates lung cancer progression caused by LKB1 loss. Cancer Res., 2012, vol. 72, no. 24, pp. 6502-6511. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-12-1909.

7. Miao Y., Li A.-L., Wang L., Fan Ch.-F., Zhang X.-P., Xu H.-T., Yang L.-H., Liu Y., Wang E.-H. Overexpression of NEDD9 is associated with altered expression of E-Cadherin, P-Catenin and NCadherin and predictive of poor prognosis in non-small cell lung cancer. Pathol. Oncol. Res., 2013, vol. 19, no. 2, pp. 281-286. doi: 10.1007/s12253-012-9580-2.

8. Singh M.K., Dadke D., Nicolas E., Serebriiskii I.G., Apostolou S., Canutescu A., Egleston B.L., Golemis E.A. A novel Cas family member, HEPL, regulates FAK and cell spreading. Mol. Biol. Cell, 2008, vol. 19, no. 4, pp. 1627-1636. doi: 10.1091/mbc.E07-09-0953.

9. Miao Y., Wang L., Liu Y., Li A.-L., Liu Sh.-L., Cao H.-Y., Zhang X.-P., Jiang G.-Y., Liu D., Wang E.-H. Overexpression and cytoplasmic accumulation of Hepl is associated with clinicopathological parameters and poor prognosis in non-small cell lung cancer. Tumour Biol., 2013, vol. 34, no. 1, pp. 107-114. doi: 10.1007/s13277-012-0517-x.

10. Mitsudomi T., Viallet J., Mulshine J.L., Linnoila R.I., Minna J.D., Gazdar A.F. Mutations of ras genes distinguish a subset of non-small-cell lung cancer cell lines from small-cell lung cancer cell lines. Oncogene, 1991, vol. 6, no. 8, pp. 1353-1362. doi: 10.1016/0169-5002(92)90122-Z.

11. Takahashi T., Nau M.M., Chiba I., Birrer M.J., Rosenberg R.K., Vinocour M., Levitt M., Pass H., Gazdar A.F., Minna J.D. p53: A frequent target for genetic abnormalities in lung cancer. Science, 1989, vol. 246, no. 4929, pp. 491-494. doi: 10.1126/science.2554494.

12. Seo S., Asai T., Saito T., Suzuki T., Morishita Y., Nakamoto T., Ichikawa M., Yamamoto G., Kawazu M., Yamagata T., Sakai R., Mitani K., Ogawa S., Kurokawa M., Chiba Sh., Hirai H. Crkassociated substrate lymphocyte type is required for lymphocyte trafficking and marginal zone B cell maintenance. J. Immunol., 2005, vol. 175, no. 6, pp. 3492-3501. doi: 10.4049/jimmunol.175.6.3492.

13. Deneka A., Kopp M., Nikonova A.S., Gaponova A.V., Nagele A., Hensley H., Golemis E. Constitutive Nedd9 null genotype promotes lung cancer aggressiveness. Cancer Res., 2017, vol. 77, no. 13, suppl., abstr. 1834. doi: 10.1158/1538-7445.AM2017-1834.

14. Jin Y., Li F., Zheng C., Wang Y., Fang Z., Guo C., Wang X., Liu H., Deng L., Li Ch., Wang H., Chen H., Feng Y., Ji H. NEDD9 promotes lung cancer metastasis through epithelial-mesenchymal transition. Int. J. Cancer, 2014, vol. 134, no. 10, pp. 2294-2304. doi: 10.1002/ijc.28568.

15. Chang J.X., Gao F., Zhao G.Q., Zhang G.J. Effects of lentivirus-mediated RNAi knockdown of NEDD9 on human lung adenocarcinoma cells in vitro and in vivo. Oncol. Rep., 2014, vol. 32, no. 4, pp. 1543-1549. doi: 10.3892/or.2014.3347.

Размещено на Allbest.ru