Кальций-фосфатные бионы: на пути к формированию патогенетической концепции
Обсуждаются существующие данные о формировании КФБ и их влиянии на развитие различных сердечно-сосудистых заболеваний. Диагностическая значимость измерения уровня КФБ в сыворотке крови и терапевтический потенциал различных видов специфической терапии.
| Рубрика | Медицина |
| Вид | статья |
| Язык | русский |
| Дата добавления | 26.03.2021 |
| Размер файла | 68,7 K |
Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже
Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.
17. Tesfamariam B. Involvement of Vitamin K-Dependent Proteins in Vascular Calcification. J Cardiovasc Pharmacol Ther. 2019;24(4):323-333.https://doi.org/10.1177/1074248419838501.
18. Mencke R, Hillebrands JL; NIGRAM consortium. The role of the anti-ageing protein Klotho in vascular physiology and pathophysiology. Ageing Res Rev. 2017;35:124-146. https:// doi.org/ 10.1016/j.arr.2016.09.001.
19. Collin-Osdoby P. Regulation of vascular calcification by osteoclast regulatory factors RANKL and osteoprotegerin. Circ Res. 2004;95(11):1046-1057.
20. Bucay N, Sarosi I, Dunstan CR, Morony S, Tarpley J, Capparelli C, Scully S, Tan HL, Xu W, Lacey DL, Boyle WJ, Simonet WS. Osteoprotegerin-deficient mice develop early onset osteoporosis and arterial calcification. Genes Dev. 1998;12(9):1260-1268.
21. Min H, Morony S, Sarosi I, Dunstan CR, Capparelli C, Scully S, Van G, Kaufman S, Kostenuik PJ, Lacey DL, Boyle WJ, Simonet WS. Osteoprotegerin reverses osteoporosis by inhibiting endosteal osteoclasts and prevents vascular calcification by blocking a process resembling osteoclastogenesis. J Exp Med. 2000;192(4):463-474.
22. Steitz SA, Speer MY, McKee MD, Liaw L, Almeida M, Yang H, Giachelli CM. Osteopontin inhibits mineral deposition and promotes regression of ectopic calcification. Am J Pathol. 2002;161(6):2035-2046.
23. Paloian NJ, Leaf EM, Giachelli CM. Osteopontin protects against high phosphate-induced nephrocalcinosis and vascular calcification. Kidney Int. 2016;89(5):1027-1036. https://doi. org/ 10.1016/j.kint.2015.12.046.
24. Heiss A, Eckert T, Aretz A, Richtering W, van Dorp W, Schдfer C, Jahnen-Dechent W. Hierarchical role of fetuin-A and acidic serum proteins in the formation and stabilization of calcium phosphate particles. J Biol Chem. 2008;283(21):14815-14825. https://doi.org/ 10.1074/jbc.M709938200.
25. Heiss A, Jahnen-Dechent W, Endo H, Schwahn D. Structural dynamics of a colloidal protein-mineral complex bestowing on calcium phosphate a high solubility in biological fluids. Biointerphases. 2007;2(1):16-20. https://doi.org/ 10.1116/1.2714924.
26. Heiss A, Pipich V, Jahnen-Dechent W, Schwahn D. Fetuin-A is a mineral carrier protein: small angle neutron scattering provides new insight on Fetuin-A controlled calcification inhibition. Biophys J. 2010;99(12):3986-3995. https://doi.org/ 10.1016/j.bpj.2010.10.030.
27. Rochette CN, Rosenfeldt S, Heiss A, Narayanan T, Ballauff M, Jahnen-Dechent W. A shielding topology stabilizes the early stage protein-mineral complexes of fetuin-A and calcium phosphate: a time-resolved small-angle X-ray study. Chembiochem. 2009;10(4):735-740. https://doi.org/ 10.1002/ cbic.200800719.
28. Chang JC, Miura RM. Regulatory inhibition of biological tissue mineralization by calcium phosphate through post-nucleation shielding by fetuin-A. J Chem Phys. 2016;144(15):154906. https://doi.org/ 10.1063/1.4946002.
29. Wu CY, Young L, Young D, Martel J, Young JD. Bions: a family of biomimetic mineralo-organic complexes derived from biological fluids. PLoS One. 2013;8(9):e75501. https:// doi.org/ 10.1371/journal.pone.0075501.
30. Kutikhin AG, Velikanova EA, Mukhamadiyarov RA, Glushkova TV, Borisov VV, Matveeva VG, Antonova LV, Filip'ev DE, Golovkin AS, Shishkova DK, Burago AY, Frolov AV, Dolgov VY, Efimova OS, Popova AN, Malysheva VY, Vladimirov AA, Sozinov SA, Ismagilov ZR, Russakov DM, Lomzov AA, Pyshnyi DV, Gutakovsky AK, Zhivodkov YA, Demidov EA, Peltek SE, Dolganyuk VF, Babich OO, Grigoriev EV, Brusina EB, Barbarash OL, Yuzhalin AE. Apoptosis- mediated endothelial toxicity but not direct calcification or functional changes in anti-calcification proteins defines pathogenic effects of calcium phosphate bions. Sci Rep. 2016;6:27255. https://doi.org/ 10.1038/srep27255.
31. Molenaar FM, van Reekum FE, Rookmaaker MB, Abrahams AC, van Jaarsveld BC. Extraosseous calcification in end-stage renal disease: from visceral organs to vasculature. Semin Dial. 2014; 27 (5): 477-487. https://doi.org/ 10.1111/sdi.12177.
32. Nigwekar SU, Kroshinsky D, Nazarian RM, Goverman J, Malhotra R, Jackson VA, et al. Calciphylaxis: risk factors, diagnosis, and treatment. Am J Kidney Dis. 2015; 66 (1): 133146. https://doi.org/ 10.1053/j.ajkd.2015.01.034.
33. GBD 2016 Causes of Death Collaborators. Global, regional, and national age-sex specific mortality for 264 causes of death, 1980-2016: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2016. Lancet. 2017; 390 (10100): 1151-1210. https://doi.org/ 10.1016/S0140-6736(17)32152-9.
34. Jensen HA, Mehta JL. Endothelial cell dysfunction as a novel therapeutic target in atherosclerosis. Expert Rev Cardiovasc Ther. 2016; 14 (9): 1021-1033. https://doi.org/ 10.1080/14779072.2016.1207527.
35. Cahill PA, Redmond EM. Vascular endothelium - Gatekeeper of vessel health. Atherosclerosis. 2016; 248: 97-109. https:// doi.org/10.1016/j.atherosclerosis.2016.03.007.
36. Mulligan-Kehoe MJ, Simons M. Vasa Vasorum in Normal and Diseased Arteries. Circulation. 2014;129:2557-2566. https:// doi.org/ 10.1161/CIRCULATIONAHA.113.007189.
37. Michel JB, Thaunat O, Houard X, Meilhac O, Caligiuri G, Nicoletti A. Topological determinants and consequences of adventitial responses to arterial wall injury. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2007;27:1259-1268. https://doi.org/ 10.1161/ATVBAHA.106.137851;
38. Gossl M, Malyar NM, Rosol M, Beighley PE, Ritman EL. Impact of coronary vasa vasorum functional structure on coronary vessel wall perfusion distribution. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2003;285:H2019-H2026. https://doi.org/ 10.1152/ajpheart.00399.2003;
39. Shi Y, O'Brien JE, Fard A, Mannion JD, Wang D, Zalewski A. Adventitial myofibroblasts contribute to neointimal formation in injured porcine coronary arteries. Circulation. 1996;94:1655- 1664. https://doi.org/ 10.1161/01.CIR.94.7.1655;
40. Shi Y. Pieniek M, Fard A, O'Brien J, Mannion JD, Zalewski A. Adventitial remodeling after coronary arterial injury. Circulation. 1996;93:340-348. https://doi.org/ 10.1161/01. CIR.93.2.340;
41. Jabs A, Okamoto E, Vinten-Johansen J, Bauriedel G, Wilcox JN. Sequential patterns of chemokine- and chemokine receptor- synthesis following vessel wall injury in porcine coronary arteries. Atherosclerosis. 2007;192:75-84. https://doi.org/ 10.1016/j.atherosclerosis.2006.05.050;
42. Moos MP, John N, Grдbner R, Nossmann S, Gьnther B, Vollandt R, Funk CD, Kaiser B, Habenicht AJ. The lamina adventitia is the major site of immune cell accumulation in standard chow- fed apolipoprotein E-deficient mice. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2005;25:2386-2391. https://doi.org/ 10.1161/01. ATV.0000187470.31662.fe;
43. Herrmann J, Lerman LO, Rodriguez-Porcel M, Holmes DR, Richardson DM, Ritman EL, Lerman A. Coronary vasa vasorum neovascularization precedes epicardial endothelial dysfunction in experimental hypercholesterolemia. Cardiovasc Res. 2001;51:762-766. https://doi.org/ 10.1016/S0008- 6363(01)00347-9;
44. Bertazzo S, Gentleman E, Cloyd KL, Chester AH, Yacoub MH, Stevens MM. Nano-analytical electron microscopy reveals fundamental insights into human cardiovascular tissue calcification. Nat Mater. 2013;12(6): 576-583. https://doi.org/ 10.1038/nmat3627.
45. Schlieper G, Grotemeyer D, Aretz A, Schurgers LJ, Krьger T, Rehbein H, Weirich TE, Westenfeld R, Brandenburg VM, Eitner F, Mayer J, Floege J, Sandmann W, Ketteler M. Analysis of calcifications in patients with coral reef aorta. Ann Vasc Surg. 2010;24(3): 408-414. https://doi.org/ 10.1016/j. avsg.2009.11.006.
46. Schlieper G, Aretz A, Verberckmoes SC, Krьger T, Behets
GJ, Ghadimi R, Weirich TE, Rohrmann D, Langer S, Tordoir JH, Amann K, Westenfeld R, Brandenburg VM, D'Haese PC, Mayer J, Ketteler M, McKee MD, Floege J. Ultrastructural analysis of vascular calcifications in uremia. J Am Soc Nephrol. 2010;21(4): 689-696. https://doi.org/ 10.1681/
ASN.2009080829.
47. Pruijm M, Lu Y, Megdiche F, Piskunowicz M, Milani B, Stuber M, Bachtler M, Vogt B, Burnier M, Pasch A. Serum calcification propensity is associated with renal tissue oxygenation and resistive index in patients with arterial hypertension or chronic kidney disease. J Hypertens. 2017;35(10):2044-2052. https:// doi.org/ 10.1097/HJH.0000000000001406.
48. Smith ER, Ford ML, Tomlinson LA, Bodenham E, McMahon LP, Farese S, Rajkumar C, Holt SG, Pasch A. Serum calcification propensity predicts all-cause mortality in predialysis CKD. J Am Soc Nephrol. 2014;25(2):339-348. https://doi.org/ 10.1681/ASN.2013060635.
49. Pasch A, Block GA, Bachtler M, Smith ER, Jahnen-Dechent W, Arampatzis S, Chertow GM, Parfrey P, Ma X, Floege J. Blood Calcification Propensity, Cardiovascular Events, and Survival in Patients Receiving Hemodialysis in the EVOLVE Trial. Clin J Am Soc Nephrol. 2017;12(2):315-322. https://doi. org/ 10.2215/CJN.04720416.
50. Keyzer CA, de Borst MH, van den Berg E, Jahnen-Dechent W, Arampatzis S, Farese S, Bergmann IP, Floege J, Navis G, Bakker SJ, van Goor H, Eisenberger U, Pasch A. Calcification Propensity and Survival among Renal Transplant Recipients. J Am Soc Nephrol. 2016;27(1):239-248. https://doi.org/ 10.1681/ASN.2014070670.
51. Dahle DO, Вsberg A, Hartmann A, Holdaas H, Bachtler M, Jenssen TG, Dionisi M, Pasch A. Serum Calcification Propensity Is a Strong and Independent Determinant of Cardiac and All-Cause Mortality in Kidney Transplant Recipients. Am J Transplant. 2016;16(1):204-212. https://doi.org/ 10.1111/ ajt.13443.
52. Bostom A, Pasch A, Madsen T, Roberts MB, Franceschini N, Steubl D, Garimella PS, Ix JH, Tuttle KR, Ivanova A, Shireman T, Gohh R, Merhi B, Jarolim P, Kusek JW, Pfeffer MA, Liu S, Eaton CB. Serum Calcification Propensity and Fetuin-A: Biomarkers of Cardiovascular Disease in Kidney Transplant Recipients. Am J Nephrol. 2018;48(1):21-31. https://doi.org/ 10.1159/000491025.
53. Bundy JD, Cai X, Scialla JJ, Dobre MA, Chen J, Hsu CY, Leonard MB, Go AS, Rao PS, Lash JP, Townsend RR, Feldman HI, de Boer IH, Block GA, Wolf M, Smith ER, Pasch A, Isakova T; CRIC Study Investigators. Serum Calcification Propensity and Coronary Artery Calcification Among Patients With CKD: The CRIC (Chronic Renal Insufficiency Cohort) Study. Am J Kidney Dis. 2019;73(6):806-814. https://doi.org/ 10.1053/j.ajkd.2019.01.024.
54. Nakazato J, Hoshide S, Wake M, Miura Y, Kuro-O M, Kario K. Association of calciprotein particles measured by a new method with coronary artery plaque in patients with coronary artery disease: A cross-sectional study. J Cardiol. 2019 May 15. pii: S0914-5087(19)30115-30117. https://doi.org/ 10.1016/j. jjcc.2019.04.008.
55. Smith ER, Hewitson TD, Cai MMX, Aghagolzadeh P, Bachtler M, Pasch A, Holt SG. A novel fluorescent probe-based flow cytometric assay for mineral-containing nanoparticles in serum. Sci Rep. 2017;7(1):5686. https://doi.org/ 10.1038/ s41598-017-05474-y.
56. Miura Y, Iwazu Y, Shiizaki K, Akimoto T, Kotani K, Kurabayashi M, Kurosu H, Kuro-O M. Identification and quantification of plasma calciprotein particles with distinct physical properties in patients with chronic kidney disease. Sci Rep. 2018;8(1):1256. https://doi.org/ 10.1038/s41598-018- 19677-4.
57. Chen W, Anokhina V, Dieudonne G, Abramowitz MK, Kashyap R, Yan C, Wu TT, de Mesy Bentley KL, Miller BL, Bushinsky DA. Patients with advanced chronic kidney disease and vascular calcification have a large hydrodynamic radius of secondary calciprotein particles. Nephrol Dial Transplant. 2019;34(6):992-1000. https://doi.org/ 10.1093/ndt/gfy117.
58. Cai MMX, Smith ER, Kent A, Huang L, Hewitson TD, McMahon LP, Holt SG. Calciprotein Particle Formation in Peritoneal Dialysis Effluent Is Dependent on Dialysate Calcium Concentration. Perit Dial Int. 2018;38(4):286-292. https://doi.org/ 10.3747/pdi.2017.00163.
59. Smith ER, Hanssen E, McMahon LP, Holt SG. Fetuin-A- containing calciprotein particles reduce mineral stress in the macrophage. PLoS One. 2013;8(4):e60904. https://doi.org/ 10.1371/journal.pone.0060904.
60. Viegas CSB, Santos L, Macedo AL, Matos AA, Silva AP, Neves PL, Staes A, Gevaert K, Morais R, Vermeer C, Schurgers L, Simes DC. Chronic Kidney Disease Circulatin g Calciprotein Particles and Extracellular Vesicles Promote Vascular Calcification: A Role for GRP (Gla-Rich Protein). Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2018;38(3):575-587. https:// doi.org/ 10.1161/ATVBAHA.117.310578.
61. Smith ER, Hewitson TD, Hanssen E, Holt SG. Biochemical transformation of calciprotein particles in uraemia. Bone. 2018;110:355-367. https://doi.org/ 10.1016/j. bone.2018.02.023.
62. Lamas GA, Goertz C, Boineau R, Mark DB, Rozema T, Nahin RL, Lindblad L, Lewis EF, Drisko J, Lee KL; TACT Investigators. Effect of disodium EDTA chelation regimen on cardiovascular events in patients with previous myocardial infarction: the TACT randomized trial. JAMA. 2013;309(12):1241-1250. https://doi.org/ 10.1001/ jama.2013.2107.
63. Escolar E, Lamas GA, Mark DB, Boineau R, Goertz C, Rosenberg Y, Nahin RL, Ouyang P, Rozema T, Magaziner A, Nahas R, Lewis EF, Lindblad L, Lee KL. The effect of an EDTA-based chelation regimen on patients with diabetes mellitus and prior myocardial infarction in the Trial to Assess Chelation Therapy (TACT). Circ Cardiovasc Qual Outcomes. 2014;7(1):15-24. https://doi.org/ 10.1161/ CIRCOUTCOMES.113.000663.
64. Yamada H, Kuro-O M, Ishikawa SE, Funazaki S, Kusaka
I, Kakei M, Hara K. Daily variability in serum levels of calciprotein particles and their association with mineral metabolism parameters: A cross-sectional pilot study.
Nephrology (Carlton). 2018;23(3):226-230. https://doi.org/ 10.1111/nep.12994.
65. Ujueta F, Arenas IA, Escolar E, Diaz D, Boineau R, Mark DB, Golden P, Lindblad L, Kim H, Lee KL, Lamas GA. The effect of EDTA-based chelation on patients with diabetes and peripheral artery disease in the Trial to Assess Chelation Therapy (TACT). J Diabetes Complications. 2019;33(7):490- 494. https://doi.org/ 10.1016/j.jdiacomp.2019.04.005.
66. Avila MD, Escolar E, Lamas GA. Chelation therapy after the trial to assess chelation therapy: results of a unique trial. Curr Opin Cardiol. 2014;29(5):481-488. https://doi.org/ 10.1097/ HCO.0000000000000096.
67. Foreman H, Trujillo TT. The metabolism of C14 labeled ethylenediaminetetraacetic acid in human beings. J Lab Clin Med. 1954;43(4):566-571.
68. Young JD, Martel J, Young D, Young A, Hung CM, Young L, Chao YJ, Young J, Wu CY. Characterization of granulations of calcium and apatite in serum as pleomorphic mineralo-protein complexes and as precursors of putative nanobacteria. PLoS One. 2009; 4 (5): e5421. https://doi.org/ 10.1371/journal. pone.0005421.
69. Peng HH, Wu CY, Young D et al. Physicochemical and biological properties of biomimetic mineralo-protein nanoparticles formed spontaneously in biological fluids. Small. 2013;9(13):2297-2307. https://doi.org/ 10.1002/smll.201202270.
70. Lebre F, Sridharan R, Sawkins MJ et al. The shape and size of hydroxyapatite particles dictate inflammatory responses following implantation. Sci Rep. 2017;7(1):2922. https://doi. org/ 10.1038/s41598-017-03086-0.
71. Xu Z, Liu C, Wei J, Sun J. Effects of four types of hydroxya patite nanoparticles with different nanocrystal morphologies and sizes on apoptosis in rat osteoblasts. J Appl Toxicol. 2012;32(6):429-435. https://doi.org/ 10.1002/jat.1745.
72. Zhao X, Ng S, Heng BC, Guo J, Ma L, Tan TT, Ng KW, Loo SC. Cytotoxicity of hydroxyapatite nanoparticles is shape and cell dependent. Arch Toxicol. 2013; 87(6):1037-1052. doi: 10.1007/s00204-012-0827-1.
73. Zhang B, Sai Lung P, Zhao S et al. Shape dependent cytotoxicity of PLGA-PEG nanoparticles on human cells. Sci Rep. 2017;7(1):7315. https://doi.org/ 10.1038/s41598-017- 07588-9.
74. Shi X, Zhou K, Huang F, Wang C. Interaction of hydroxyapatite nanoparticles with endothelial cells: internalization and inhibition of angiogenesis in vitro through the PI3K/Akt pathway. Int J Nanomedicine. 2017;12:5781- 5795. https://doi.org/ 10.2147/IJN.S140179.
75. Richards JM, Kunitake JAMR, Hunt HB, Wnorowski AN, Lin DW, Boskey AL, Donnelly E, Estroff LA, Butcher JT. Crystallinity of hydroxyapatite drives myofibroblastic activation and calcification in aortic valves. Acta Biomater. 2018;71:24-36. https://doi.org/ 10.1016/j.actbio.2018.02.024.
76. Santos C, Turiel S, Sousa Gomes P, Costa E, Santos-Silva A, Quadros P, Duarte J, Battistuzzo S, Fernandes MH. Vascular biosafety of commercial hydroxyapatite particles: discrepancy between blood compatibility assays and endothelial cell behavior. J Nanobiotechnology. 2018;16(1):27. https://doi.org/ 10.1186/s12951-018-0357-y.
77. Love SA, Maurer-Jones MA, Thompson JW, Lin YS, Haynes CL. Assessing nanoparticle toxicity. Annu Rev Anal Chem (Palo Alto Calif). 2012; 5: 181-205. https://doi.org/ 10.1146/ annurev-anchem-062011-143134.
78. Lai DY. Toward toxicity testing of nanomaterials in the 21st century: a paradigm for moving forward. Wiley Interdiscip Rev Nanomed Nanobiotechnol. 2012; 4 (1): 1-15. https://doi. org/ 10.1002/wnan.162.
79. Sukhanova A, Bozrova S, Sokolov P, Berestovoy M, Karaulov A, Nabiev I. Dependence of Nanoparticle Toxicity on Their Physical and Chemical Properties. Nanoscale Res Lett. 2018; 13 (1): 44. https://doi.org/ 10.1186/s11671-018-2457-x.
80. Martel J, Young D, Young A, Wu CY, Chen CD, Yu JS,
Young JD. Comprehensive proteomic analysis of mineral nanoparticles derived from human body fluids and analyzed by liquid chromatography-tandem mass spectrometry. Anal Biochem. 2011;418(1):111-125. https://doi.org/ 10.1016/j. ab.2011.06.018.
81. Martel J, Wu CY, Hung CY, Wong TY, Cheng AJ, Cheng ML, Shiao MS, Young JD. Fatty acids and small organic compounds bind to mineralo-organic nanoparticles derived from human body fluids as revealed by metabolomic analysis. Nanoscale. 2016; 8 (10): 5537-5545. https://doi.org/ 10.1039/c5nr08116e.
82. Wu CY, Martel J, Young JD. Comprehensive organic profiling of biological particles derived from blood. Sci Rep. 2018; 8 (1): 11310. https://doi.org/ 10.1038/s41598-018-29573-6.
83. Wu CY, Young D, Martel J, Young JD. A story told by a single nanoparticle in the body fluid: demonstration of dissolution- reprecipitation of nanocrystals in a biological system. Nanomedicine (Lond). 2015;10(17):2659-2676. https://doi. org/ 10.2217/nnm.15.88.
84. Aghagolzadeh P, Bachtler M, Bijarnia R, Jackson C, Smith ER, Odermatt A, Radpour R, Pasch A. Calcification of vascular smooth muscle cells is induced by secondary calc iprotein particles and enhanced by tumor necrosis factor-a. Atherosclerosis. 2016;251:404-414. https://doi.org/ 10.1016/j. atherosclerosis.2016.05.044.
85. Kцppert S, Bьscher A, Babler A, Ghallab A, Buhl EM, Latz E, Hengstler JG, Smith ER, Jahnen-Dechent W. Cellular Clearance and Biological Activity of Calciprotein Particles Depend on Their Maturation State and Crystallinity. Front Immunol. 2018 Sep 4;9:1991. https://doi.org/ 10.3389/fimmu.2018.01991.
86. Price PA, Thomas GR, Pardini AW, Figueira WF, Caputo JM, Williamson MK. Discovery of a high molecular weight complex of calcium, phosphate, fetuin, and matrix gamma-carboxyglutamic acid protein in the serum of etidronate-treated rats. J Biol Chem. 2002;277(6):3926-3934.
87. Price PA, Caputo JM, Williamson MK. Bone origin of the serum complex of calcium, phosphate, fetuin, and matrix Gla protein: biochemical evidence for the cancellous boneremodeling compartment. J Bone Miner Res. 2002;17(7):1171- 1179.
88. Price PA, Williamson MK, Nguyen TM, Than TN. Serum levels of the fetuin-mineral complex correlate with artery calcification in the rat. J Biol Chem. 2004;279(3):1594-600.
89. Price PA, Nguyen TM, Williamson MK. Biochemical characterization of the serum fetuin-mineral complex. J Biol Chem. 2003;278(24):22153-22160.
90. Matsui I, Hamano T, Mikami S, Fujii N, Takabatake Y, Nagasawa Y, Kawada N, Ito T, Rakugi H, Imai E, Isaka Y. Fu lly phosphorylated fetuin-A forms a mineral complex in the serum of rats with adenine-induced renal failure. Kidney Int. 2009;75(9):915-928. https://doi.org/ 10.1038/ki.2008.700.
91. Yamada S, Tokumoto M, Tatsumoto N, Tsuruya K, Kitazono T, Ooboshi H. Very low protein diet enhances inflammation, malnutrition, and vascular calcification in uremic rats. Life Sci. 2016;146:117-123. https://doi.org/ 10.1016/j.lfs.2015.12.050.
92. Price PA, Lim JE. The inhibition of calcium phosphate precipitation by fetuin is accompanied by the formation of a fetuin-mineral complex. J Biol Chem. 2003;278(24):22144- 22152.
93. Herrmann M, Schдfer C, Heiss A, Grдber S, Kinkeldey A, Bьscher A, Schmitt MM, Bornemann J, Nimmerjahn F, Herrmann M, Helming L, Gordon S, Jahnen-Dechent W. Clearance of fetuin-A--containing calciprotein particles is mediated by scavenger receptor-A. Circ Res. 2012;111(5):575- 584. https://doi.org/ 10.1161/CIRCRESAHA.111.261479.
94. Schwartz MA, Lieske JC, Kumar V, Farell-Baril G, Miller VM. Human-derived nanoparticles and vascular response to injury in rabbit carotid arteries: proof of principle. Int J Nanomedicine. 2008;3(2):243-248.
95. Cenizo Revuelta N, Gonzalez-Fajardo JA, Bratos MA, Alvarez- Gago T, Aguirre B, Vaquero C. Role of calcifying nanoparticle in the development of hyperplasia and vascular calcification in an animal model. Eur J Vasc Endovasc Surg. 2014;47(6):640- 646. https://doi.org/ 10.1016/j.ejvs.2014.03.002.
96. Hunter LW, Charlesworth JE, Yu S, Lieske JC, Miller VM. Calcifying nanoparticles promote mineralization in vascular smooth muscle cells: implications for atherosclerosis. Int J Nanomedicine. 2014;9:2689-2698. https://doi.org/ 10.2147/ IJN.S63189.
97. Galluzzi L, Vitale I, Aaronson SA, Abrams JM, Adam D,
Agostinis P, Alnemri ES, Altucci L, Amelio I, Andrews DW, Annicchiarico-Petruzzelli M, Antonov AVet al. Molecular mechanisms of cell death: recommendations of the Nomenclature Committee on Cell Death 2018. Cell Death Differ. 2018;25(3):486-541. https://doi.org/ 10.1038/s41418- 017-0012-4.
98. Ait-Oufella H, Taleb S, Mallat Z, Tedgui A. Recent advances on the role of cytokines in atherosclerosis. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2011;31(5):969-979. https://doi.org/ 10.1161/ATVBAHA.110.207415.
99. Ramji DP, Davies TS. Cytokines in atherosclerosis: Key players in all stages of disease and promising therapeutic targets. Cytokine Growth Factor Rev. 2015;26(6):673-685. https://doi.org/ 10.1016/j.cytogfr.2015.04.003.
100. Callegari A, Coons ML, Ricks JL, Rosenfeld ME, Scatena M. Increased calcification in osteoprotegerin-deficient smooth muscle cells: Dependence on receptor activator of NF-kB ligand and interleukin 6. J Vasc Res. 2014;51(2):118-131. https://doi.org/ 10.1159/000358920.
101. Zickler D, Luecht C, Willy K, Chen L, Witowski J, Girndt M, Fiedler R, Storr M, Kamhieh-Milz J, Schoon J, Geissler S, Ringden O, Schindler R, Moll G, Dragun D, Catar R. Tumour necrosis factor-alpha in uraemic serum promotes osteoblastic transition and calcification of vascular smooth muscle cells via extracellular signal-regulated kinases and activator protein 1/c-FOS-mediated induction of interleukin 6 expression. Nephrol Dial Transplant. 2018;33(4):574-585. https://doi.org/ 10.1093/ndt/gfx316.
102. Durham AL, Speer MY, Scatena M, Giachelli CM, Shanahan CM. Role of smooth muscle cells in vascular calcification: implications in atherosclerosis and arterial stiffness. Cardiovasc Res. 2018;114(4):590-600. https://doi. org/ 10.1093/cvr/cvy010.
103. Allahverdian S, Chaabane C, Boukais K, Francis GA, Bochaton-Piallat ML. Smooth muscle cell fate and plasticity in atherosclerosis. Cardiovasc Res. 2018;114(4):540-550. https:// doi.org/ 10.1093/cvr/cvy022.
104. Iyemere VP, Proudfoot D, Weissberg PL, Shanahan CM. Vascular smooth muscle cell phenotypic plasticity and the regulation of vascular calcification. J Intern Med. 2006;260(3):192-210. https://doi.org/ 10.1111/j.1365-2796.2006.01692.x.
105. Shanahan CM, Crouthamel MH, Kapustin A, Giachelli CM. Arterial calcification in chronic kidney disease: key roles for calcium and phosphate. Circ Res. 2011;109(6):697-711. https:// doi.org/ 10.1161/CIRCRESAHA.110.234914.
106. Kapustin AN, Davies JD, Reynolds JL, McNair R, Jones GT, Sidibe A, Schurgers LJ, Skepper JN, Proudfoot D, Mayr M, Shanahan CM. Calcium regulates key components of vascular smooth muscle cell-derived matrix vesicles to enhance mineralization. Circ Res. 2011;109(1):e1-12. https:// doi.org/ 10.1161/CIRCRESAHA.110.238808.
107. Kapustin AN, Chatrou ML, Drozdov I, Zheng Y, Davidson SM, Soong D, Furmanik M, Sanchis P, De Rosales RT, Alvarez-Hernandez D, Shroff R, Yin X, Muller K, Skepper JN, Mayr M, Reutelingsperger CP, Chester A, Bertazzo S, Schurgers LJ, Shanahan CM. Vascular smooth muscle cell calcification is mediated by regulated exosome secretion. Circ Res. 2015;116(8):1312-1323. https://doi.org/ 10.1161/ CIRCRESAHA.116.305012.
108. New SE, Goettsch C, Aikawa M, Marchini JF, Shibasaki M, Yabusaki K, Libby P, Shanahan CM, Croce K, Aikawa E. Macrophage-derived matrix vesicles: an alternative novel mechanism for microcalcification in atherosclerotic plaques. Circ Res. 2013;113(1):72-77. https://doi.org/ 10.1161/CIRCRESAHA.113.301036.
109. Aghagolzadeh P, Radpour R, Bachtler M, van Goor H, Smith ER, Lister A, Odermatt A, Feelisch M, Pasch A. Hydrogen sulfide attenuates calcification of vascular smooth muscle cells via KEAP1/NRF2/NQO1 activation. Atherosclerosis. 2017;265:78-86. https://doi.org/ 10.1016/j. atherosclerosis.2017.08.012.
110. Cai MMX, Smith ER, Tan SJ, Hewitson TD, Holt SG. The Role of Secondary Calciprotein Particles in the Mineralisation Paradox of Chronic Kidney Disease. Calcif Tissue Int. 2017;101(6):570-580. https://doi.org/ 10.1007/s00223-017- 0313-0.
111. Blau R, Krivitsky A, Epshtein Y, Satchi-Fainaro R. Are nanoth- eranostics and nanodiagnostics-guided drug delivery stepping stones towards precision medicine? Drug Resist Updat. 2016; 27: 39-58. https://doi.org/ 10.1016/j.drup.2016.06.003.
Matea WCT, Mocan T, Tabaran F, Pop T, Mosteanu O, Puia C, et al. Quantum dots in imaging, drug delivery and sensor applications. Int J Nanomedicine. 2017; 12: 5421-5431. https:// doi.org/ 10.2147/IJN.S138624.
Размещено на Allbest.ru
...Подобные документы
Эпидемиология сердечно–сосудистых заболеваний и смертность. Основные факторы, группы крови и факторы риска развития заболеваний человека. Программа профилактики сердечно–сосудистых заболеваний. Профилактика сердечно-сосудистой патологии в России.
дипломная работа [237,9 K], добавлен 25.06.2013Основные симптомы сердечно-сосудистых заболеваний, причины их возникновения. Классификация сердечно-сосудистых заболеваний, их этиология и лечение. Роль сестринского персонала в профилактике и уходе за больными с сердечно-сосудистыми заболеваниями.
курсовая работа [106,5 K], добавлен 02.06.2014Причины и факторы риска сердечно-сосудистых заболеваний. Статистика смертности от сердечно-сосудистых заболеваний по Европе, распространенности курения, злоупотребления алкоголем. Необходимость изменения образа жизни в целях профилактики заболеваний.
презентация [1,2 M], добавлен 02.06.2014Ишемическая болезнь сердца, инфаркт миокарда, сердечная недостаточность, гипертоническая болезнь. Факторы риска сердечно-сосудистых заболеваний. Профилактика гипертонии, диабета и повышенного уровня липидов в крови. Общие принципы рационального питания.
курсовая работа [204,7 K], добавлен 13.09.2015Лечебное применение электромагнитных волн миллиметрового диапазона. Эффект воздействия электромагнитных волн на биологические объекты. Лечение инфаркта миокарда и его осложнений. Применение КВЧ-терапии в лечении сердечно-сосудистых заболеваний.
реферат [134,8 K], добавлен 16.06.2011Факторы риска развития сердечно-сосудистых заболеваний. Гиперлипидемии как фактор риска, ССЗ. Предупреждение артериальной гипертензии. Методы профилактики ССЗ. Заболевания сердечно-сосудистой системы. Методика работы.
реферат [75,5 K], добавлен 23.01.2007Причины дефицита железа в организме. Исследования крови при анемии. Клинические проявления железодефицитной анемии. Определение содержания креатинина в сыворотке крови. Общий белок и белковые фракции. Определение содержания мочевины в сыворотке крови.
дипломная работа [226,6 K], добавлен 10.11.2015Влияние массажа на кровеносную и сердечно-сосудистую системы. Показания и противопоказания к назначению в системе реабилитации лечебного массажа при сердечно-сосудистых заболеваниях. Методика массажа при различных заболеваниях сердца и их осложнениях.
контрольная работа [34,6 K], добавлен 11.05.2011Принципы лечения инфекционных заболеваний. Особенности этиотропной, специфической, патогенетической и иммунной терапии. Организация сестринского ухода за больными в реанимационном отделении. Правила забора анализов при ангинах различной этиологии.
контрольная работа [44,4 K], добавлен 20.10.2010Этиология и патогенез инфаркта миокарда. Динамика ранних маркеров кардионекроза в остром периоде инфаркта миокарда и коагулографические факторы риска развития тромбообразования. Основные методы ранней диагностики сердечно-сосудистых заболеваний.
дипломная работа [1016,2 K], добавлен 01.12.2014Индикаторы качества профилактической медицинской помощи. Роль и значение профилактического консультирования. Оценка качества профилактического консультирования по факторам риска сердечно-сосудистых заболеваний, на основе медико-социологического опроса.
курсовая работа [447,7 K], добавлен 21.08.2011Использование физических нагрузок для улучшения здоровья и психического состояния людей, снижения риска заболеваний и реабилитации после них. Лечебная физкультура при сердечно-сосудистых заболеваниях. Комплексы упражнений при гипертонии и гипотонии.
реферат [75,2 K], добавлен 25.11.2012Особенности течения сердечно-сосудистых заболеваний. Причины, приводящие к ним. Особенности психологического состояния пациентов. Организация помощи кардиологическим больным. Проблемы сестринского ухода за ними в отделении терапии. Лечение и профилактика.
дипломная работа [636,1 K], добавлен 15.11.2014Определение сердечно-сосудистой системы. Основные причины, признаки и симптомы при сердечно-сосудистых заболеваниях: одышка, удушье, учащенное сердцебиение, боль в области сердца. Статистика заболеваний ССС по Казахстану. Основные методы их профилактики.
презентация [78,5 K], добавлен 23.11.2013Анализ крови на гемоглобин в диагностике различных заболеваний, снижение уровня гликированного гемоглобина при гипогликемии, гемолитической анемии, кровотечениях и переливании крови. Способы цитологического определения типа гемоглобина в эритроцитах.
реферат [24,9 K], добавлен 07.06.2010Значимость сестринской помощи и полноты использования средств профилактики и лечения в снижении риска возникновения заболевания и его исхода. Реализация и оценка эффективности проведенной работы в кардиологическом отделении ГБУ МЗСК "Кисловодская ЦГБ".
дипломная работа [98,7 K], добавлен 26.05.2014Анемия как проявление широчайшего спектра различных заболеваний и один из распространенных видов патологии. Основная функция эритроцитов, показатели красной крови при анемии. Причины уменьшения содержания гемоглобина и количества эритроцитов в крови.
реферат [1,6 M], добавлен 08.04.2019Рассмотрение изменений количества эритроцитов, тромбоцитов, скорости оседания крови при различных состояниях организма. Изучение изменений крови на примере острой пневмонии. Сравнительный анализ показателей заболеваемости болезнями органов дыхания детей.
дипломная работа [144,5 K], добавлен 25.07.2015Анализ причин смертности по показателям возраста, уровню дохода и видам болезней. Основные факторы риска, ведущие к развитию сердечно-сосудистых заболеваний. Современное состояние распространенности ССЗ в РК. Описание методов их профилактики у населения.
презентация [7,5 M], добавлен 26.02.2016Формирование артериальной гипертензии. Прогрессирование ремоделирования сердца и сосудов, развитие эндотелиальной дисфункции артерий. Оценка содержания ростовых факторов в плазме крови больных. Оценка антигипертензивной активности телмисартана.
статья [137,0 K], добавлен 01.09.2013
