Генерування інсулін-продукуючих клітин зі стовбурових клітин. Перепрограмування соматичних клітин
Комплексне вивчення основних етапів розвитку ембріональної підшлункової залози. Специфічні біологічні маркери нормальних p-клітин, які ідентифікують кінцевий статус диференціації. Властивості специфічних білків плюрипотентних стовбурових клітин.
| Рубрика | Медицина |
| Вид | статья |
| Язык | украинский |
| Дата добавления | 26.12.2023 |
| Размер файла | 1,2 M |
Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже
Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.
36. Takahashi K., Okita K., Nakagawa M., Yamanaka S. Induction of pluripotent stem cells from fibroblast cultures. Nat Protoc. 2007;2(12):3081-9. doi: 10.1038/nprot.2007.418.
37. Gorecka J., Kostiuk V., Fereydooni A., Gonzalez L., Luo J., Dash B., et al. The potential and limitations of induced pluripotent stem cells to achieve wound healing. Stem Cell Res Ther. 2019 Mar 12;10(1):87. doi: 10.1186/s13287-019-1185-1.
38. Hochedlinger K., Jaenisch R. Induced Pluripotency and Epigenetic Reprogramming. Cold Spring Harb Perspect Biol. 2015 Dec 1;7(12): a019448. doi: 10.1101/cshperspect.a019448.
39. Matsui T., Leung D., Miyashita H., Maksakova I.A., Miyachi H., Kimura H., et al. Proviral silencing in embryonic stem cells requires the histone methyltransferase ESET. Nature. 2010 Apr 8;464(7290):927-31. doi: 10.1038/nature08858.
40. Tan S., Tao Z., Loo S., Su L., Chen X., Ye L. Non-viral vector based gene transfection with human induced pluripotent stem cells derived cardiomyocytes. Sci Rep. 2019 Oct 7;9:14404. doi: 10.1038/s41598-019-50980-w.
41. Warren L., Lin C. mRNA-based genetic reprogramming. Mol Ther. 2019 Apr 10;27(4):729-34. doi: 10.1016/j.ymthe.2018.12.009.
42. Brix J., Zhou Y, Luo Y. The epigenetic reprogramming roadmap in generation of iPSCs from somatic cells. J Genet Genomics. 2015 Dec 20;42(12):661-70. doi: 10.1016/j.jgg.2015.10.001.
43. Zhao T., Zhang Z.N., Rong Z., Xu Y. Immunogenicity of induced pluripotent stem cells. Nature. 2011 May 13;474(7350):212-5. doi: 10.1038/nature10135.
44. Haworth R., Sharpe M. Accept or reject: the role of immune tolerance in the development of stem cell therapies and possible future approaches. Toxicol Pathol. 2021 Oct; 49(7):1308-16. doi: 10.1177/0192623320918241.
45. Kim K.P., Han D.W., Kim J., Scholer H.R. Biological importance of OCT transcription factors in reprogramming and development. Exp Mol Med. 2021 Jun;53(6):1018-28. doi: 10.1038/s12276-021-00637-4.
46. Kim K.P., Wu Y., Yoon J., Adachi K., Wu G., Velychko S., et al. Reprogramming competence of OCT factors is determined by transactivation domains. Sci Adv. 2020 Sep 2;6(36): eaaz7364. doi: 10.1126/sciadv.aaz7364.
47. Kim K.P., Choi J., Yoon J., Bruder J.M., Shin B., Kim J., et al. Permissive epigenomes endow reprogramming competence to transcriptional regulators. Nat Chem Biol. 2021 Jan;17(1):47-56. doi: 10.1038/s41589-020-0618-6.
48. Ebrahimi A., Sevinj K., Gurhan Sevinj G., Cribbs A.P., Philpott M., Uyulur F., et al. Bromodomain inhibition of the coactivators CBP/ EP300 facilitate cellular reprogramming. Nat Chem Biol. 2019 May;15(5):519-28. doi: 10.1038/s41589-019-0264-z.
49. Takahashi K., Tanabe K., Ohnuki M., Narita M., Sasaki A., Yamamoto M., et al. Induction of pluripotency in human somatic cells via a transient state resembling primitive streak-like mesendoderm. Nat Commun. 2014 Apr 24;5:3678. doi: 10.1038/ncomms4678.
50. Zhang Z., Xiang D., Wu W.S. Sodium butyrate facilitates reprogramming by derepressing OCT4 transactivity at the promoter of embryonic stem cell-specific miR-302/367 cluster. Cell Reprogram. 2014 Apr;16(2):130-9. doi: 10.1089/cell.2013.0070.
51. Ishida T., Nakao S., Ueyama T., Harada Y., Kawamura T. Metabolic remodeling during somatic cell reprogramming to induced pluripotent stem cells: involvement of hypoxia-inducible factor 1. Inflamm Regen. 2020 May 12;40:8. doi: 10.1186/s41232-020-00117-8.
52. Svendsen B., Larsen O., Gabe M.B.N., Christiansen C.B., Rosenkilde M.M., Drucker D.J., et al. Insulin secretion depends on intra-islet glucagon signaling. Cell Rep. 2018 Oct 30; 25(5):1127-34.e2. doi: 10.1016/j.celrep.2018.10.018.
53. Svendsen B., Holst J.J. Paracrine regulation of somatostatin secretion by insulin and glucagon in mouse pancreatic islets. Diabetologia. 2021 Jan;64(1):142-51. doi: 10.1007/s00125-020- 05288-0.
54. Van Der Meulen T., Donaldson C.J., Caceres E., Hunter A.E., Cowing-Zitron C., Pound L.D., et al. Urocortin3 mediates somatostatindependent negative feedback control of insulin secretion. Nat Med. 2015 Jul; 21(7):769-76. doi: 10.1038/nm.3872.
55. Nair G.G., Liu J.S., Russ H.A., Tran S., Saxton M.S., Chen R., et al. Recapitulating endocrine cell clustering in culture promotes maturation of human stem-cell-derived p cells. Nat Cell Biol. 2019 Feb; 21(2):263-74. doi: 10.1038/s41556-018-0271-4.
56. Townsend S.E., Gannon M. Extracellular matrix-associated factors play critical roles in regulating pancreatic p-cell proliferation and survival. Endocrinology. 2019 Aug 1;160(8):1885-94. doi: 10.1210/en.2019-00206.
57. Staels W., Heremans Y., Heimberg H., De Leu N. VEGF-A and blood vessels: a beta cell perspective. Diabetologia. 2019 Nov;62(11):1961-68. doi: 10.1007/s00125-019-4969-z.
58. Bourgeois S., Sawatani T., Van Mulders A., De Leu N., Heremans Y., Heimberg H, et al. Towards a functional cure for diabetes using stem cell-derived beta cells: are we there yet? Cells. 2021 Jan 19;10(1):191. doi: 10.3390/cells10010191.
59. Bruin J.E., Asadi A., Fox J.K., Erener S., Rezania A., Kieffer T.J. Accelerated maturation of human stem cell-derived pancreatic progenitor cells into insulin-secreting cells in immunodeficient rats relative to mice. Stem Cell Reports. 2015 Dec 8;5(6):1081-96. doi: 10.1016/j.stemcr.2015.10.013.
60. Augsornworawat P., Maxwell K.G., Velazco-Cruz L., Millman J.R. Single-cell transcriptome profiling reveals p cell maturation in stem cell-derived islets after transplantation. Cell Rep. 2020 Aug 25;32(8):108067. doi: 10.1016/j.celrep.2020.108067.
61. Anderson S.J., White M.G., Armour S.L., Maheshwari R., Tiniakos D., Muller Y.D., et al. Loss of end-differentiated p-cell phenotype following pancreatic islet transplantation. Am J Transplant. 2018 Mar;18(3):750-5. doi: 10.1111/ajt.14521.
62. Brissova M., Aamodt K., Brahmachary P., Prasad N., Hong J.Y., Dai C., et al. Islet microenvironment, modulated by vascular endothelial growth factor-A signaling, promotes p cell regeneration. Cell Metab. 2014 Mar 4;19(3):498-511. doi: 10.1016/j.cmet.2014.02.001.
63. Staels W., Verdonck Y., Heremans Y., Leuckx G., De Groef S., Heirman C., et al. Vegf-A mRNA transfection as a novel approach to improve mouse and human islet graft revascularisation. Diabetologia. 2018 Aug;61(8):1804-10. doi: 10.1007/s00125-018-4646-7.
64. Qadir M.M.F., Alvarez-Cubela S., Belle K., Sapir T., Messaggio F., Johnson K.B., et al. A double fail-safe approach to prevent tumorigenesis and select pancreatic p cells from human embryonic stem cells. Stem Cell Reports. 2019 Mar 5;12(3):611-23. doi: 10.1016/j.stemcr.2019.01.012.
65. Yagyu S., Hoyos V., Del Bufalo F., Brenner M.K. An inducible caspase-9 suicide gene to improve the safety of therapy using human induced pluripotent stem cells. Mol Ther. 2015 Sep; 23(9):1475-85. doi: 10.1038/mt.2015.100.
66. Oshima M., Pechberty S., Bellini L., Gopel S.O., Campana M., Rouch C., et al. Stearoyl CoA desaturase is a gatekeeper that protects human beta cells against lipotoxicity and maintains their identity. Diabetologia. 2020 Feb; 63(2):395-409. doi: 10.1007/s00125-019-05046-x.
67. De Rham C., Villard J. Potential and limitation of HLA-based banking of human pluripotent stem cells for cell therapy. J Immunol Res. 2014;2014:518135. doi: 10.1155/2014/518135.
68. Marek-Trzonkowska N., Mysliwiec M., Dobyszuk A., Grabowska M., Derkowska I., Juscinska J., et al. Therapy of type 1 diabetes with CD4(+)CD25(high)CD127-regulatory T cells prolongs survival of pancreatic islets -- results of one year follow-up. Clin Immunol. 2014 Jul;153(1):23-30. doi: 10.1016/j.clim.2014.03.016.
69. Ferreira L.M.R., Muller Y.D., Bluestone J.A., Tang Q. Nextgeneration regulatory T cell therapy. Nat Rev Drug Discov. 2019 Oct;18(10):749-69. doi: 10.1038/s41573-019-0041-4.
70. Lim D., Sreekanth V., Cox K.J., Law B.K., Wagner B.K., Karp J.M., et al. Engineering designer beta cells with a CRISPR-Cas9 conjugation platform. Nat Commun. 2020 Aug 13;11:1-11. doi: 10.1038/s41467-020-17725-0.
71. English K. Mesenchymal stem cells to promote islet transplant survival. Curr Opin Organ Transplant. 2016 Dec; 21(6):568-73. doi: 10.1097/MOT.0000000000000359.
72. Ben Nasr M., Vergani A., Avruch J., Liu L., Kefaloyianni E., D'Addio F, et al. Co-transplantation of autologous MSCs delays islet allograft rejection and generates a local immunoprivileged site. Acta Diabetol. 2015 Oct;52(5):917-27. doi: 10.1007/s00592- 015-0735-y.
73. Arzouni A.A., Vargas-Seymour A., Nardi N., J.F. King A., Jones P.M. Using mesenchymal stromal cells in islet transplantation. Stem Cells Transl Med. 2018 Aug; 7(8):559-63. doi: 10.1002/sctm.18-0033.
74. Arzouni A.A., Vargas-Seymour A., Rackham C.L., Dhadda P., Huang G.C., Choudhary P., et al. Mesenchymal stromal cells improve human islet function through released products and extracellular matrix. Clin Sci (Lond). 2017 Nov 28;131(23):2835-45. doi: 10.1042/CS20171251.
75. Rackham C.L., Amisten S., Persaud S.J., King A.J.F., Jones P.M.
76. Mesenchymal stromal cell secretory factors induce sustained improvements in islet function pre- and post-transplantation. Cytotherapy. 2018 Dec; 20(12):1427-36. doi: 10.1016/j.jcyt.2018.07.007.
77. Mattapally S., Pawlik K.M., Fast V.G., Zumaquero E., Lund F.E., Randall T.D., et al. Human leukocyte antigen class I and II knockout human induced pluripotent stem cell-derived cells: universal donor for cell therapy. J Am Heart Assoc. 2018 Dec 4;7(23): e010239. doi: 10.1161/JAHA.118.010239.
78. Han X., Wang M., Duan S., Franco P.J., Kenty J.H., Hedrick P., et al. Generation of hypoimmunogenic human pluripotent stem cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 2019 May 21;116(21):10441-6. doi: 10.1073/pnas.1902566116.
Список скорочень
ПЗ -- підшлункова залоза
ЦД -- цукровий діабет
ЦД1 -- цукровий діабет 1-го типу
EPSCs -- ембріональні плюрипотентні стовбурові клітини (embryonic pluripotent stem cells)
ESCs -- ембріональні стовбурові клітини (embryonic stem cells)
hESCs -- ембріональні стовбурові клітини людини (human embryonic stem cells)
hPSCs -- плюрипотентні стовбурові клітини людини (human pluripotent stem cells)
IPCs -- інсулін-продукуючі клітини (insulin-producing cells)
iPSCs -- індуковані плюрипотентні стовбурові клітини (induced pluripotent stem cells)
MSCs -- мезенхімальні стовбурові клітини (mesenchymal stem cells)
PSCs -- плюрипотентні стовбурові клітини (pluripotent stem cells)
SCs -- стовбурові клітини (stem cells)
Размещено на Allbest.ru
...Подобные документы
Ембріональні стовбурові клітини людини. Властивості стовбурових клітин: самовідновлення, диференціювання у будь-який клітинний тип. Проведення клінічних випробувань стовбурових клітин у медицині в Україні. Метод повернення зрілих клітин в "дитячий стан".
презентация [1,4 M], добавлен 25.04.2013Вплив трансплантації культур клітин підшлункової залози і стовбурових гемопоетичних клітин на патогенез експериментального цукрового діабету на підставі вивчення особливостей вуглеводного, жирового обміну і морфологічних змін підшлункової залози.
автореферат [41,1 K], добавлен 09.03.2009Збільшення кількості клітин, їх розмноження відбувається шляхом поділу початкової клітини. Процес розмноження клітин шляхом поділу початкової клітини. Неоднакова здатність клітин до поділу. Клітинний цикл - період існування клітини від поділу до поділу.
лекция [36,2 K], добавлен 08.02.2009Особливості злоякісних клітин, їх характерні відмінності. Біохімічні показники і процеси в тканинах пухлин та пухлиноносіїв. З’ясування механізмів дії NSE для розробки нових лікувальних препаратів в комплексі лікувальних заходів онкологічних захворювань.
автореферат [42,6 K], добавлен 09.03.2009Біотехнологічні процеси заготівлі, консервування клітин, тканин ембріофетоплацентарного походження в умовах низьких температур. Вплив холоду на біологічні об'єкти. Функціональна повноцінність біологічного матеріалу. Вибір терапії від форми і стадії ЦХРД.
автореферат [44,3 K], добавлен 09.03.2009Поняття еритропоезу, особливості продукції гемоглобіну. Регуляція ембріонального і фетального еритропоеза, зміни морфології еритроцитів Характеристика фізіології гемопоезу. Будова стовбурових клітин та їх роль. Ростові фактори та механізм їх дії.
контрольная работа [228,0 K], добавлен 18.07.2011Гістологія – вчення про тканини. Належність гістології до морфологічних наук. Історія розвитку. Виникнення клітинної теорії. Методи гістологічного дослідження. Основи цитології і історія її розвитку. Біологія клітин: органели, їх будова і функції.
лекция [905,3 K], добавлен 08.02.2009Гуморальна імунна система. Відмінності імунного статусу організму вагітних жінок і породіль від нормального. Компоненти молозива та молока жінок. Формування каталітичних центрів ензимів та їх властивості знешкоджувати вірусні та бактеріальні антигени.
автореферат [106,7 K], добавлен 20.02.2009Цитомегаловірусна інфекція. Імунні комплекси антиген-антитіло, репродукція ЦМВ, цитотоксичність та анти-ЦМВ активність 6-azaC та амізону. Профілактика та лікування ЦМВ-інфекції. Виявлення ранніх білків ЦМВ за допомогою методів експрес діагностики.
автореферат [338,8 K], добавлен 12.03.2009Вивчення хімічних властивостей, функцій триптофану та механізму його перетворення в організмі. Аналіз порушення метаболізму амінокислоти. Визначення стану та поширеності патологічних змін клітин різних органів дітей та підлітків міста Чернігова.
курсовая работа [84,2 K], добавлен 21.09.2010Рак легені: етіологія, класифікація, туберкульоз як його причина. Молекулярно-генетичний механізм утворення пухлин легенів: генетичні порушення, канцерогенні фактори, стадії. Вплив протитуберкульозних препаратів на життєдіяльність проліферуючих клітин.
курсовая работа [525,8 K], добавлен 08.11.2013Розробка науково обгрунтованого складу, технології та методик контролю якості вагінальних супозиторіїв з Протефлазідом. Вивчення провідної можливості використання культури клітин крові для дослідження імунної активності розчинних лікарських засобів.
автореферат [105,9 K], добавлен 04.04.2009Поняття тканина. Епітеліальні тканини, загальна характеристика, класифікація. Будова різних видів епітелію. Процес детермінації - визначення подальшого напряму в розвитку клітин на генетичній основі. Плоский багатошаровий епітелій. Перехідний епітелій.
лекция [26,5 K], добавлен 08.02.2009Загальні відомості про німецьку вівчарку. Характеристика біохімічних показників крові. Цитоліз клітин печінки та токсичної гепатодистрофії. Особливості діагностики показників лужної фосфатази, тригліцеридів, загального білірубіну й тимолової кислоти.
контрольная работа [52,7 K], добавлен 06.03.2014Головний мозок як командний пункт всього організму. Нейрони як клітин з довгими і короткими відростками. Механізм передачі нервових імпульсів. Синапси як місце, через яке здійснюється зв’язок і передача імпульсів між нейронами і клітиною робочого органа.
презентация [13,1 M], добавлен 06.04.2015Сенсоневральна приглухуватість є поліетіологічною хворобою, в патогенезі якої передусім лежить ураження внутрішнього вуха - патологічні зміни волоскових клітин спірального органу. Часто ця хвороба розвивається у пацієнтів із серцево-судинними порушеннями.
реферат [15,5 K], добавлен 06.12.2008Характеристика збуднику лейкозу, його морфологія і хімічний склад. Антигенна варіабельність і спорідненість. Вірус лейкемії котів в культурі клітин фібробластів ембріона котів. Особливості внутрішньоклітинної репродукції. Диференційна діагностика.
курсовая работа [41,6 K], добавлен 22.04.2014Мікробний спектр біотопу сечовивідних та статевих шляхів у хворих з інфекційно-запальними захворюваннями. Прогностичні критерії оцінки ефективності етіотропної терапії. Закономірності цитоморфологічних змін епітеліальних клітин слизових оболонок.
автореферат [264,3 K], добавлен 24.03.2009Трансфіковані клітини культури клітин яєчників китайського хом’яка. Дослідження експресії трансгена. Рекомбінантні плазміди, які містять ген АРОА1 людини під контролем енхансеру чи промотору середньораннього гена цитомегаловірусу людини з інтроном.
автореферат [52,1 K], добавлен 12.03.2009Значення біологічних маркерів в динаміці раку шлунку. Тенденція до збільшення частоти мутацій р53 відповідно до проникнення пухлинних клітин в оточуючих тканинах. Відсутність достовірної кореляції передопераційної концентрації VEGF з виживанням хворих.
статья [532,5 K], добавлен 31.08.2017
