стовбурова клітина сигнальний шлях транскрипційний

Розробка протоколів для диференціації плюрипотентних клітин до p-клітин, що виробляють інсулін. Оцінка ефективності процесу диференціації використовуються специфічні маркери. Встановлення стадій із використанням специфічних індукувальних факторів.

Рубрика Медицина
Вид статья
Язык украинский
Дата добавления 28.12.2023
Размер файла 597,1 K

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

2. Johnson JD. The quest to make fully functional human pancreatic beta cells from embryonic stem cells: climbing a mountain in the clouds. Diabetologia. 2016 Oct;59(10):2047-57. doi: 10.1007/ s00125-016-4059-4.

3. Ameri J, Borup R, Prawiro C, Ramond C, Schachter KA, Scharfmann R, et al. Efficient Generation of Glucose-Responsive Beta Cells from Isolated GP2+ Human Pancreatic Progenitors. Cell Rep. 2017 Apr 4;19(1):36-49. doi: 10.1016/j.celrep.2017.03.032.

4. Russ HA, Parent AV, Ringler JJ, Hennings TG, Nair GG, Shveygert M, et al. Controlled induction of human pancreatic progenitors produces functional beta-like cells in vitro. EMBO J. 2015 Jul 2;34(13):1759-72. doi: 10.15252/embj.201591058.

5. Korytnikov R, Nostro MC. Generation of polyhormonal and multipotent pancreatic progenitor lineages from human pluripotent stem cells. Methods. 2016 May 15;101:56-64. doi: 10.1016/j. ymeth.2015.10.017

6. Arroyave F, Montano D, Lizcano F. Diabetes Mellitus Is a Chronic Disease that Can Benefit from Therapy with Induced Pluripotent Stem Cells. Int J Mol Sci. 2020 Nov 18;21(22):8685. doi: 10.3390/ ijms21228685.

7. Zhu Y, Liu Q, Zhou Z, Ikeda Y. PDX1, Neurogenin-3, and MAFA: critical transcription regulators for beta cell development and regeneration. Stem Cell Res Ther. 2017 Nov 2;8(1):240. doi: 10.1186/s13287-017-0694-z.

8. Yoshihara E, Wei Z, Lin CS, Fang S, Ahmadian M, Kida Y, et al.

9. ERRy Is Required for the Metabolic Maturation of Therapeutically Functional Glucose-Responsive p Cells. Cell Metab. 2016 Apr 12;23(4):622-34. doi: 10.1016/j.cmet.2016.03.005.

10. Jennings RE, Berry AA, Kirkwood-Wilson R, Roberts NA, Hearn T, Salisbury RJ, et al. Development of the human pancreas from foregut to endocrine commitment. Diabetes. 2013 Oct;62(10):3514-22. doi: 10.2337/db12-1479.

11. . Wang X, Sterr M, Burtscher I, Chen S, Hieronimus A, Machicao F, et al. Genome-wide analysis of PDX1 target genes in human pancreatic progenitors. Mol Metab. 2018 Mar;9:57-68. doi: 10.1016/j.molmet.2018.01.011.

12. . Li SW, Koya V, Li Y, Donelan W, Lin P, Reeves WH, et al. Pancreatic duodenal homeobox 1 protein is a novel beta-cell-specific autoantigen for type I diabetes. Lab Invest. 2010 Jan;90(1):31-9. doi: 10.1038/labinvest.2009.116.

13. . Guo S, Dai C, Guo M, Taylor B, Harmon JS, Sander M, et al. Inactivation of specific p cell transcription factors in type

14. 2 diabetes. J Clin Invest. 2013 Aug;123(8):3305-16. doi: 10.1172/ JCI65390.

15. . Cavelti-Weder C, Zumsteg A, Li W, Zhou Q. Reprogramming of Pancreatic Acinar Cells to Functional Beta Cells by In Vivo Transduction of a Polycistronic Construct Containing Pdx1, Ngn3, MafA in Mice. Curr Protoc Stem Cell Biol. 2017 Feb 2;40:4A.10.1- 4A.10.12. doi: 10.1002/cpsc.21.

16. . Zhang T, Wang H, Wang T, Wei C, Jiang H, Jiang S, et al. Pax4 synergistically acts with Pdx1, Ngn3 and MafA to induce HuMSCs to differentiate into functional pancreatic p-cells. Exp Ther Med. 2019 Oct;18(4):2592-2598. doi: 10.3892/etm.2019.7854.

17. . Gradwohl G, Dierich A, LeMeur M, Guillemot F. neurogenin3 is required for the development of the four endocrine cell lineages of the pancreas. Proc Natl Acad Sci U S A. 2000 Feb 15;97(4):1607- 11. doi: 10.1073/pnas.97.4.1607.

18. . Wang S, Yan J, Anderson DA, Xu Y, Kanal MC, Cao Z, et al. Neurog3 gene dosage regulates allocation of endocrine and exocrine cell fates in the developing mouse pancreas. Dev Biol. 2010 Mar 1;339(1):26-37. doi: 10.1016/j.ydbio.2009.12.009.

19. . German-Diaz M, Rodriguez-Gil Y, Cruz-Rojo J, Charbit- Henrion F, Cerf-Bensussan N, Manzanares-Lopez Manzanares J, et al. A New Case of Congenital Malabsorptive Diarrhea and Diabetes Secondary to Mutant Neurogenin-3. Pediatrics. 2017 Aug;140(2):e20162210. doi: 10.1542/peds.2016-2210.

20. . Talchai C, Xuan S, Lin HV, Sussel L, Accili D. Pancreatic p cell dedifferentiation as a mechanism of diabetic p cell failure. Cell. 2012 Sep 14;150(6):1223-34. doi: 10.1016/j.cell.2012.07.029.

21. . Valdez IA, Dirice E, Gupta MK, Shirakawa J, Teo AKK, Kulkarni RN. Proinflammatory Cytokines Induce Endocrine Differentiation in Pancreatic Ductal Cells via STAT3-Dependent NGN3 Activation. Cell Rep. 2016 Apr 19;15(3):460-470. doi: 10.1016/j.celrep.2016.03.036.

22. . Cheng CW, Villani V, Buono R, Wei M, Kumar S, Yilmaz OH, et al. Fasting-Mimicking Diet Promotes Ngn3-Driven p-Cell Regeneration to Reverse Diabetes. Cell. 2017 Feb 23;168(5):775- 788.e12. doi: 10.1016/j.cell.2017.01.040.

23. . Aguayo-Mazzucato C, Koh A, El Khattabi I, Li WC, Toschi E, Jermendy A, et al. Mafa expression enhances glucose-responsive insulin secretion in neonatal rat beta cells. Diabetologia. 2011 Mar;54(3):583-93. doi: 10.1007/s00125-010-2026-z.

24. . Noso SKY, Kawabata Y, Babaya N, Hiromine Y, Kawasaki E, Awata T, et al. Association Study of MAFA and MAFB Genes Related to Organ-Specific Autoimmunity, with Susceptibility to Type-1 Diabetes in Japanese and Caucasian Populations. J Genet Syndr Gene Ther. 2013;4:204. doi: 10.4172/2157-7412.1000204.

25. . Rezania A, Bruin JE, Arora P, Rubin A, Batushansky I, Asadi A, et al. Reversal of diabetes with insulin producing cells derived in vitro from human pluripotent stem cells. Nat Biotechnol. 2014;32:1121-

26. doi: 10.1038/nbt.3033.

27. . He KH, Juhl K, Karadimos M, El Khattabi I, Fitzpatrick C, Bonner- Weir S, et al. Differentiation of pancreatic endocrine progenitors reversibly blocked by premature induction of MafA. Dev Biol. 2014 Jan 1;385(1):2-12. doi: 10.1016/j.ydbio.2013.10.024.

28. . Zhu Z, Li QV, Lee K, Rosen BP, Gonzalez F, Soh CL, et al. Genome Editing of Lineage Determinants in Human Pluripotent Stem Cells Reveals Mechanisms of Pancreatic Development and Diabetes. Cell Stem Cell. 2016 Jun 2;18(6):755-768. doi: 10.1016/j.

29. stem.2016.03.015.

30. Churchill AJ, Gutierrez GD, Singer RA, Lorberbaum DS, Fischer KA, Sussel L. Genetic evidence that Nkx2.2 acts primarily downstream of Neurog3 in pancreatic endocrine lineage development. Elife. 2017 Jan 10;6:e20010. doi: 10.7554/ eLife.20010.

31. Bohuslavova R, Smolik O, Malfatti J, Berkova Z, Novakova Z, Saudek F, et al. NEUROD1 Is Required for the Early a and p Endocrine Differentiation in the Pancreas. Int J Mol Sci. 2021 Jun 23;22(13):6713. doi: 10.3390/ijms22136713.

32. Bastidas-Ponce A, Scheibner K, Lickert H, Bakhti M. Cellular and molecular mechanisms coordinating pancreas development. Development. 2017 Aug 15;144(16):2873-2888. doi: 10.1242/ dev.140756.

33. Jennings RE, Scharfmann R, Staels W. Transcription factors that shape the mammalian pancreas. Diabetologia. 2020 Oct;63(10): 1974-1980. doi: 10.1007/s00125-020-05161-0.

34. Romer AI, Singer RA, Sui L, Egli D, Sussel L. Murine Perinatal p-Cell Proliferation and the Differentiation of Human Stem Cell- Derived Insulin-Expressing Cells Require NEUROD1. Diabetes. 2019 Dec;68(12):2259-2271. doi: 10.2337/db19-0117.

35. Mastracci TL, Anderson KR, Papizan JB, Sussel L. Regulation of Neurod1 contributes to the lineage potential of Neurogenin3+ endocrine precursor cells in the pancreas. PLoS Genet. 2013;9(2):e1003278. doi: 10.1371/journal.pgen.1003278.

36. Sun ZY, Yu TY, Jiang FX, Wang W. Functional maturation of immature p cells: A roadblock for stem cell therapy for type 1 diabetes. World J Stem Cells. 2021 Mar 26;13(3):193-207. doi: 10.4252/wjsc.v13.i3.193.

37. Aigha II, Abdelalim EM. NKX6.1 transcription factor: a crucial regulator of pancreatic p cell development, identity, and proliferation. Stem Cell Res Ther. 2020 Oct 29;11(1):459. doi: 10.1186/s13287-020-01977-0.

38. Kim KP, Han DW, Kim J, Scholer HR. Biological importance of OCT transcription factors in reprogramming and development. Exp Mol Med. 2021 Jun;53(6):1018-1028. doi: 10.1038/s12276- 021-00637-4.

39. Malik V, Zimmer D, Jauch R. Diversity among POU transcription factors in chromatin recognition and cell fate reprogramming. Cell Mol Life Sci. 2018 May;75(9):1587-1612. doi: 10.1007/s00018- 018-2748-5.

40. Tsunemoto R, Lee S, Szucs A, Chubukov P, Sokolova I, Blanchard JW, et al. Diverse reprogramming codes for neuronal identity. Nature. 2018 May;557(7705):375-380. doi: 10.1038/ s41586-018-0103-5.

41. Takahashi K, Yamanaka S. Induction of pluripotent stem cells from mouse embryonic and adult fibroblast cultures by defined factors. Cell. 2006 Aug 25;126(4):663-76. doi: 10.1016/j.cell.2006.07.024.

42. Tantin D. Oct transcription factors in development and stem cells: insights and mechanisms. Development. 2013 Jul; 140( 14):2857- 66. doi: 10.1242/dev.095927

43. Wu G, Scholer HR. Role of Oct4 in the early embryo development. Cell Regen. 2014 Apr 29;3(1):7. doi: 10.1186/2045-9769-3-7.

44. Jerabek S, Ng CK, Wu G, Arauzo-Bravo MJ, Kim KP, Esch D, et al. Changing POU dimerization preferences converts Oct6 into a pluripotency inducer. EMBO Rep. 2017 Feb;18(2):319-333. doi: 10.15252/embr.201642958.

45. Malik V, Glaser LV, Zimmer D, Velychko S, Weng M, Holzner M, et al. Pluripotency reprogramming by competent and incompetent POU factors uncovers temporal dependency for Oct4 and Sox2. Nat Commun. 2019 Aug 2;10(1):3477. doi: 10.1038/s41467-019-11054-7.

46. An Z, Liu P, Zheng J, Si C, Li T, Chen Y, et al. Sox2 and Klf4 as the Functional Core in Pluripotency Induction without Exogenous Oct4. Cell Rep. 2019 Nov 12;29(7):1986-2000.e8. doi: 10.1016/j. celrep.2019.10.026.

47. Velychko S, Kang K, Kim SM, Kwak TH, Kim KP, Park C, et al. Fusion of Reprogramming Factors Alters the Trajectory of Somatic Lineage Conversion. Cell Rep. 2019 Apr 2;27(1):30-39.e4. doi: 10.1016/j.celrep.2019.03.023.

48. Kim KP, Choi J, Yoon J, Bruder JM, Shin B, Kim J, et al. Permissive epigenomes endow reprogramming competence to transcriptional regulators. Nat Chem Biol. 2021 Jan;17(1):47-56. doi: 10.1038/ s41589-020-0618-6.

49. Kim KP, Wu Y, Yoon J, Adachi K, Wu G, Velychko S, et al. Reprogramming competence of OCT factors is determined by transactivation domains. Sci Adv. 2020 Sep 2;6(36):eaaz7364. doi: 10.1126/sciadv.aaz7364.

50. Constable S, Lim JM, Vaidyanathan K, Wells L. O-GlcNAc transferase regulates transcriptional activity of human Oct4. Glycobiology. 2017 Oct 1;27(10):927-937. doi: 10.1093/glycob/cwx055.

51. Li S, Xiao F, Zhang J, Sun X, Wang H, Zeng Y, et al. Disruption of OCT4 Ubiquitination Increases OCT4 Protein Stability and ASH2L-B-Mediated H3K4 Methylation Promoting Pluripotency Acquisition. Stem Cell Reports. 2018 Oct 9;11(4):973-987. doi: 10.1016/j.stemcr.2018.09.001.

52. Mai T, Markov GJ, Brady JJ, Palla A, Zeng H, Sebastiano V, et al. NKX3-1 is required for induced pluripotent stem cell reprogramming and can replace OCT4 in mouse and human iPSC induction. Nat Cell Biol. 2018 Aug;20(8):900-908. doi: 10.1038/ s41556-018-0136-x.

53. Velychko S, Adachi K, Kim KP, Hou Y, MacCarthy CM, Wu G, et al. Excluding Oct4 from Yamanaka Cocktail Unleashes the Developmental Potential of iPSCs. Cell Stem Cell. 2019 Dec 5;25(6):737-753.e4. doi: 10.1016/j.stem.2019.10.002.

54. Shu J, Zhang K, Zhang M, Yao A, Shao S, Du F, et al. GATA family members as inducers for cellular reprogramming to pluripotency. Cell Res. 2015 Feb;25(2):169-80. doi: 10.1038/cr.2015.6.

55. Buganim Y, Markoulaki S, van Wietmarschen N, Hoke H, Wu T, Ganz K, et al. The developmental potential of iPSCs is greatly influenced by reprogramming factor selection. Cell Stem Cell. 2014 Sep 4;15(3):295-309. doi: 10.1016/j.stem.2014.07.003.

56. Balzano F, Garroni G, Cruciani S, Bellu E, Dei Giudici S, Oggiano A, et al. Behavioral Changes in Stem-Cell Potency by HepG2-Exhausted Medium. Cells. 2020 Aug 12;9(8):1890. doi: 10.3390/cells9081890.

57. Ferhi S, Santaniello S, Zerizer S, Cruciani S, Fadda A, Sanna D, et al. Total Phenols from Grape Leaves Counteract Cell Proliferation and Modulate Apoptosis-Related Gene Expression in MCF- 7 and HepG2 Human Cancer Cell Lines. Molecules. 2019 Feb 10;24(3):612. doi: 10.3390/molecules24030612.

58. Franko A, Hartwig S, Kotzka J, RuoH M, Nussler AK, Konigsrainer A, et al. Identification of the Secreted Proteins Originated from Primary Human Hepatocytes and HepG2 Cells. Nutrients. 2019 Aug 3;11(8):1795. doi: 10.3390/nu11081795.

59. Mudbhary R, Hoshida Y, Chernyavskaya Y, Jacob V, Villanueva A, Fiel MI, et al. UHRF1 overexpression drives DNA hypomethylation and hepatocellular carcinoma. Cancer Cell. 2014 Feb 10;25(2):196- 209. doi: 10.1016/j.ccr.2014.01.003.

60. Grubelnik G, Bostjancic E, Pavlic A, Kos M, Zidar N. NANOG expression in human development and cancerogenesis. Exp Biol Med (Maywood). 2020 Mar;245(5):456-464. doi: 10.1177/1535370220905560.

61. Grskovic M, Chaivorapol C, Gaspar-Maia A, Li H, Ramalho- Santos M. Systematic identification of cis-regulatory sequences active in mouse and human embryonic stem cells. PLoS Genet. 2007 Aug;3(8):e145. doi: 10.1371/journal.pgen.0030145.

62. Gong S, Li Q, Jeter CR, Fan Q, Tang DG, Liu B. Regulation of NANOG in cancer cells. Mol Carcinog. 2015 Sep;54(9):679-87. doi: 10.1002/mc.22340

63. Mato Prado M, Frampton AE, Stebbing J, Krell J. Gene of the month: NANOG. J Clin Pathol. 2015 Oct;68(10):763-5. doi: 10.1136/jclinpath-2015-203238

64. Marucci L. Nanog Dynamics in Mouse Embryonic Stem Cells: Results from Systems Biology Approaches. Stem Cells Int. 2017;2017:7160419. doi: 10.1155/2017/7160419.

65. Ghaleb AM, Yang VW. Kruppel-like factor 4 (KLF4): What we currently know. Gene. 2017 May 5;611:27-37. doi: 10.1016/j. gene.2017.02.025.

66. Camacho-Vanegas O, Till J, Miranda-Lorenzo I, Ozturk B, Camacho SC, Martignetti JA. Shaking the family tree: identification of novel and biologically active alternatively spliced isoforms across the KLF family of transcription factors. FASEB J. 2013 Feb;27(2):432-6. doi: 10.1096/fj.12-220319.

67. Lv H, Zhang Z, Wang Y, Li C, Gong W, Wang X. MicroRNA- 92a Promotes Colorectal Cancer Cell Growth and Migration by Inhibiting KLF4. Oncol Res. 2016;23(6):283-90. doi: 10.3727/096 504016X14562725373833.

68. Jia ZM, Ai X, Teng JF, Wang YP, Wang BJ, Zhang X. p21 and CK2 interaction-mediated HDAC2 phosphorylation modulates KLF4 acetylation to regulate bladder cancer cell proliferation. Tumour Biol.

69. 2016 Jun;37(6):8293-304. doi: 10.1007/s13277-015-4618-1.

70. El-Karim EA, Hagos EG, Ghaleb AM, Yu B, Yang VW. Kruppel- like factor 4 regulates genetic stability in mouse embryonic fibroblasts. Mol Cancer. 2013 Aug 6;12:89. doi: 10.1186/14764598-12-89.

71. Kuruvilla JG, Kim CK, Ghaleb AM, Bialkowska AB, Kuo CJ, Yang VW. Kruppel-like Factor 4 Modulates Development of BMI1(+) Intestinal Stem Cell-Derived Lineage Following y-Radiation- Induced Gut Injury in Mice. Stem Cell Reports. 2016 Jun 14;6(6):815-824. doi: 10.1016/j.stemcr.2016.04.014.

72. Wang B, Zhao MZ, Cui NP, Lin DD, Zhang AY, Qin Y, et al. Kruppel-like factor 4 induces apoptosis and inhibits tumorigenic progression in SK-BR-3 breast cancer cells. FEBS Open Bio. 2015 Mar 2;5:147-54. doi: 10.1016/j.fob.2015.02.003.

73. Fadous-Khalife MC, Aloulou N, Jalbout M, Hadchity J, Aftimos G, Paris F, et al. Kruppel-like factor 4: A new potential biomarker of lung cancer. Mol Clin Oncol. 2016 Jul;5(1):35-40. doi: 10.3892/ mco.2016.883.

Список скорочень:

ПШЗ -- підшлункова залоза

ЦД1 -- цукровий діабет 1-го типу

ЦД2 -- цукровий діабет 2-го типу

Ad -- аденовірус (Adenovirus)

ESC -- ембріональні стовбурові клітини (Embryonic stem cells)

GSIS -- секреція інсуліну, стимульована глюкозою (Glucose-stimulated insulin secretion)

iPSC -- індуковані плюрипотентні стовбурові клітини (Induced pluripotent stem cells)

KLF4 -- Kruppel-подібний фактор 4 (Kruppel-like factor 4)

MAFA -- V-maf гомолог А онкогену м'язово-апоневротичної фібросаркоми (V-maf musculoaponeurotic fibrosarcoma oncogene homolog A)

NANOG -- скорочено від Tir na nOg (ірл. Земля юних)

NEUROD1 -- нейронна диференціація 1 (Neuronal Differentiation 1)

NEUROG3 -- нейрогенін 3 (neurogenin 3)

NKX6.1 -- NK6 гомеобокс 1 (NK6 homeobox 1)

OCT -- октамер-зв'язуючий транскрипційний фактор (octamer-binding transcription factor)

PAX -- білок парного боксу (paired box gene)

PDX1 -- гомеобокс підшлункової залози та дванадцятипалої кишки 1 (pancreatic and duodenal homeobox 1)

POU -- Pit-OCT-Unc домен

SC -- стовбурові клітини (stem cells)

SOX -- транскрипційний фактор SRY-box (Transcription Factor SRY-box).

Размещено на Allbest.ru

...

Подобные документы

  • Ембріональні стовбурові клітини людини. Властивості стовбурових клітин: самовідновлення, диференціювання у будь-який клітинний тип. Проведення клінічних випробувань стовбурових клітин у медицині в Україні. Метод повернення зрілих клітин в "дитячий стан".

    презентация [1,4 M], добавлен 25.04.2013

  • Збільшення кількості клітин, їх розмноження відбувається шляхом поділу початкової клітини. Процес розмноження клітин шляхом поділу початкової клітини. Неоднакова здатність клітин до поділу. Клітинний цикл - період існування клітини від поділу до поділу.

    лекция [36,2 K], добавлен 08.02.2009

  • Особливості злоякісних клітин, їх характерні відмінності. Біохімічні показники і процеси в тканинах пухлин та пухлиноносіїв. З’ясування механізмів дії NSE для розробки нових лікувальних препаратів в комплексі лікувальних заходів онкологічних захворювань.

    автореферат [42,6 K], добавлен 09.03.2009

  • Біотехнологічні процеси заготівлі, консервування клітин, тканин ембріофетоплацентарного походження в умовах низьких температур. Вплив холоду на біологічні об'єкти. Функціональна повноцінність біологічного матеріалу. Вибір терапії від форми і стадії ЦХРД.

    автореферат [44,3 K], добавлен 09.03.2009

  • Вплив трансплантації культур клітин підшлункової залози і стовбурових гемопоетичних клітин на патогенез експериментального цукрового діабету на підставі вивчення особливостей вуглеводного, жирового обміну і морфологічних змін підшлункової залози.

    автореферат [41,1 K], добавлен 09.03.2009

  • Життєвий шлях вченого-універсала Рудольфа Вірхова. Целюлярна патологія Вірхова, її величезний вплив на подальший розвиток медицини. Поняття патологічного процесу як суми порушень життєдіяльності окремих клітин. Цікаві випадки з життя німецького вченого.

    курсовая работа [643,8 K], добавлен 15.11.2014

  • Оцінка стоматологічного стану осіб із хворобами пародонта Донецької області. Лікування генералізованого пародонти ту II-го та III-го ступеня тяжкості з використанням остеопластичних матеріалів, оцінка його клінічної ефективності та розробка рекомендацій.

    автореферат [671,3 K], добавлен 02.04.2009

  • Мікробний спектр біотопу сечовивідних та статевих шляхів у хворих з інфекційно-запальними захворюваннями. Прогностичні критерії оцінки ефективності етіотропної терапії. Закономірності цитоморфологічних змін епітеліальних клітин слизових оболонок.

    автореферат [264,3 K], добавлен 24.03.2009

  • Розробка науково обгрунтованого складу, технології та методик контролю якості вагінальних супозиторіїв з Протефлазідом. Вивчення провідної можливості використання культури клітин крові для дослідження імунної активності розчинних лікарських засобів.

    автореферат [105,9 K], добавлен 04.04.2009

  • Електросон як методика електролікування, її специфічні риси та особливості застосування. Техніка проведення процедур за допомогою даної електросну, його терапевтична та біологічна дія, оцінка практичної ефективності при різноманітних хворобах і станах.

    реферат [101,6 K], добавлен 23.12.2010

  • Метод гетерогенного твердофазного імуноферментного аналізу для визначення вмісту антитіл до екзогенного та ендогенного інсулінів у сироватках крові людей. Діагностичні характеристики імуноферментного методу (чутливість, специфічність, відтворюваність).

    автореферат [47,5 K], добавлен 07.03.2009

  • Рак легені: етіологія, класифікація, туберкульоз як його причина. Молекулярно-генетичний механізм утворення пухлин легенів: генетичні порушення, канцерогенні фактори, стадії. Вплив протитуберкульозних препаратів на життєдіяльність проліферуючих клітин.

    курсовая работа [525,8 K], добавлен 08.11.2013

  • Загальні відомості про німецьку вівчарку. Характеристика біохімічних показників крові. Цитоліз клітин печінки та токсичної гепатодистрофії. Особливості діагностики показників лужної фосфатази, тригліцеридів, загального білірубіну й тимолової кислоти.

    контрольная работа [52,7 K], добавлен 06.03.2014

  • Головний мозок як командний пункт всього організму. Нейрони як клітин з довгими і короткими відростками. Механізм передачі нервових імпульсів. Синапси як місце, через яке здійснюється зв’язок і передача імпульсів між нейронами і клітиною робочого органа.

    презентация [13,1 M], добавлен 06.04.2015

  • Сенсоневральна приглухуватість є поліетіологічною хворобою, в патогенезі якої передусім лежить ураження внутрішнього вуха - патологічні зміни волоскових клітин спірального органу. Часто ця хвороба розвивається у пацієнтів із серцево-судинними порушеннями.

    реферат [15,5 K], добавлен 06.12.2008

  • Характеристика збуднику лейкозу, його морфологія і хімічний склад. Антигенна варіабельність і спорідненість. Вірус лейкемії котів в культурі клітин фібробластів ембріона котів. Особливості внутрішньоклітинної репродукції. Диференційна діагностика.

    курсовая работа [41,6 K], добавлен 22.04.2014

  • Поняття еритропоезу, особливості продукції гемоглобіну. Регуляція ембріонального і фетального еритропоеза, зміни морфології еритроцитів Характеристика фізіології гемопоезу. Будова стовбурових клітин та їх роль. Ростові фактори та механізм їх дії.

    контрольная работа [228,0 K], добавлен 18.07.2011

  • Вивчення хімічних властивостей, функцій триптофану та механізму його перетворення в організмі. Аналіз порушення метаболізму амінокислоти. Визначення стану та поширеності патологічних змін клітин різних органів дітей та підлітків міста Чернігова.

    курсовая работа [84,2 K], добавлен 21.09.2010

  • Характеристика стану здоров’я школярів та його динаміка протягом навчання в початковій школі. Вплив факторів внутрішньошкільного середовища на стан здоров’я учнів. Розробка комплексу профілактичних заходів з оптимізації дії керованих факторів ризику.

    автореферат [70,0 K], добавлен 09.03.2009

  • Трансфіковані клітини культури клітин яєчників китайського хом’яка. Дослідження експресії трансгена. Рекомбінантні плазміди, які містять ген АРОА1 людини під контролем енхансеру чи промотору середньораннього гена цитомегаловірусу людини з інтроном.

    автореферат [52,1 K], добавлен 12.03.2009

Работы в архивах красиво оформлены согласно требованиям ВУЗов и содержат рисунки, диаграммы, формулы и т.д.
PPT, PPTX и PDF-файлы представлены только в архивах.
Рекомендуем скачать работу.