Изучение эпизоотологии эхинококкоза у крупного рогатого скота, усовершенствование его диагностики и лечения у инвазированных животных

Осмотр начинают с диафрагмальной поверхности и тупого края, для чего подрезают остатки диафрагмы, поверхность печени очищают тупым краем ножа.

Определяют наличие изменений в величине, массе и форме органа, состояние краев (острые - в случае атрофии, притупленные - при увеличении), состояние глиссоновой капсулы (гладкая, блестящая в норме или зернисто-узловатая при циррозе), консистенцию ткани (плотная или дряблая) и цвет печени (в норме вишнево-коричневый, при гиперемии красно-коричневый, при жировой дистрофии и желтухе желтый). Затем орган переворачивают висцеральной стороной (воротами) кверху, осматривают поверхность, придерживая за желчный пузырь или за срезанную воротную вену, разрезают печеночные (портальные) лимфатические узлы и паренхиму печени (см. рис. 6, б). Делают несквозной разрез печени вдоль желчных путей глубиной 2-3 см немного касательно от себя. Срезанный пласт печени отворачивают ножом от себя, слегка надавливают на ткань и осматривают разрезанные желчные ходы и паренхиму (см. рис.6, в).

Определяют кровенаполнение печени, цвет, блеск, характер поверхности разреза, рисунок строения, способ паренхимы, состояние желчных протоков, наполнение желчного пузыря. При необходимости вскрывают желчный пузырь, осматривают слизистую оболочку и стенку его (в норме слизистая бархатистая, серо-зеленоватого цвета, желчь вязкая, желтовато-зеленого цвета). Печень сильно изменяется при многих инфекционных, инвазионных болезнях, при отравлении микотоксинами, органическими и минеральными ядами. В ткани печени можно обнаружить изменения, характерные для нарушения белкового, углеводного, липидного, водного, пигментного и минерального обменов. Огромная роль печени во всех видах обмена веществ в организме и детоксирующая функция ее обусловливают частоту и разнообразие патологических изменений в ней. Чаще всего в печени обнаруживают дистрофические изменения. Причины дистрофии разнообразны, основная из них интоксикация организма, сопровождающаяся острым или хроническим гепатитом с распадом паренхимы печени. Поражение печени с признаками дистрофии наблюдают при скармливании недоброкачественных (заплесневелых, загнивших и т.д.) и не сбалансированных (с дефицитом отдельных компонентов) кормов.

Дистрофия печени появляется также при атонии преджелудков, гастритах и энтеритах животных. У животных, поступивших на убой из промышленных комплексов, в печени часто обнаруживают изменения, характерные для кетоза (орган увеличен, дряблой консистенции, желто-оранжевого цвета, сальная поверхность на разрезе). Воспалительные процессы в печени могут протекать по типу атрофического или гипертрофического цирроза, который характеризуется разрастанием соединительной ткани и глубокими структурными изменениями. Цирроз может быть первичным (в результате интоксикации и нерационального кормления) и вторичным (при болезнях печени). По этиологическим факторам различают цирроз постнекротический, билиарный, инфекционного и паразитарного происхождения. При атрофическом (портальном) циррозе печень уменьшена в объеме, плотная и бугристая, с зернистой поверхностью, серо-коричневого или желтого цвета.

Атрофический цирроз может сопровождаться паренхиматозной и механической желтухой. Гипертрофический цирроз характеризуется значительным увеличением органа (иногда в 2-3 раза), гладкой поверхностью, плотной консистенцией и паренхиматозной желтухой. Воспаление печени по типу гипертрофического цирроза возникает при некоторых инфекционных и инвазионных болезнях (сальмонеллез, бруцеллез, колибактериоз, псевдотуберкулез, лептоспироз, актиномикоз, некробактериоз, кокцидиоидомикоз, фасциолез, дикроцелиоз, эхинококкоз и др.). Постнекротический цирроз развивается в результате застойной гиперемии, токсической гепатодистрофии и обширных некрозов паренхимы печени. Билиарные циррозы встречаются при фасциолезе, дикроцелиозе, закупорке желчных протоков и застое желчи; холециститах, опухолях, абсцессах печени. Орган при этом незначительно увеличен (на поздних стадиях уменьшен в объеме), бугрист, желтого цвета.

Цирроз инфекционного происхождения протекает на фоне основной болезни (сальмонеллез, туберкулез, бруцеллез, некробактериоз и др.) преимущественно по типу гипертрофического воспаления. Цирроз паразитарного происхождения встречается при фасциолезе, эхинококкозе, дикроцелиозе и протекает по типу атрофических и билиарных изменений. Протоки расширены, стенки их утолщены, могут содержать паразитов, в том числе обызвествленных. В протоках заметно разрастание соединительной ткани с наличием плотных фибринозных тяжей серо-белого цвета. В печени крупного рогатого скота иногда встречаются новообразования, абсцессы, капиллярная эктазия и другие патологические изменения. Некроз паренхимы и абсцессы могут обусловливать микотоксикозы, кокковые формы микроорганизмов, синегнойная палочка, возбудители некоторых инфекционных и инвазионных болезней. В печени часто диагностируют фасциолез, дикроцелиоз и эхинококкоз, тонкошейные финны.

При фасциолезе в желчных ходах обнаруживают паразитов - печеночных двуустков. Стенки желчных ходов увеличены, утолщены и могут быть обызвествленными. Дикроцелиоз в печени диагностируют чаще всего в регионах с известковыми почвами. Возбудитель болезни (ланцетовидный сосальщик) локализуется в желчных протоках и вызывает в них воспалительный процесс. Поражения, характерные для личиночной стадии эхинококков и тонкошейных финн, отличаются локализацией. В первом случае личинки расположены в паренхиме, во втором - на серозной оболочке и легко удаляются. Иногда при осмотре печени обнаруживают увеличенный желчный пузырь (при холециститах и пониженной проходимости желчных протоков). Застой желчи бывает при закупорке или сжатии желчных протоков.

На пораженность ларвоцистами исследуются печень, легкие, сердце, селезенка и почки. У всех убойных животных легкие оглядывали снаружи и прощупывали, затем делали 2-3 разреза и осматривали поверхность разреза. Сердце исследовали путем двух-трех продольных и одного поперечного несквозных разрезов. Печень и почки - осмотр и прощупывание, затем после 2-3 несквозных разрезов осмотр паренхимы. Аналогично исследование проводили на наличие эхинококковых ларвоцист и селезенку.

Локализацию ларвоцист Е.grаnulоsus определяли в каждом органе. Для установления качественных и количественных изменений в органах и тканях сельскохозяйственных животных, инвазированных эхинококками, мы употребили методы, принятые в ветеринарно-санитарной практике. Органолептически оценивали внешний вид, цвет, запах, состояние жира, сухожилий, проводили пробу варкой (ГОСТ 7269-79).

Лабораторные исследования включали в себя: реакцию с сернокислой медью, реакцию на пероксидазу, определение рН, аммиака с реактивом Несслера, определение степени обескровленности туши; микроскопический анализ мяса (определение количества бактерий и степени распада мышечной ткани) (ГОСТ 23392-78).

Реакция с сернокислой медью:

В коническую колбу умещают 20 г фарша, добавляют 60 мл дистиллированной воды и тщательно перемешивают. Колбу покрывают стеклом и нагревают в течение 10 мин. в кипящей водяной бане. Затем горячий бульон фильтруют через плотный слой ваты толщиной 0,5 см в пробирку, помещенную в стакан с холодной водой. Если в фильтрате остаются хлопья белка, то его снова фильтруют через фильтровальную бумагу. После фильтрации 2 мл профильтрованного бульона наливают в пробирку и добавляют 3 капли 5-процентного раствора сернокислой меди, встряхивают 2 - 3 раза и выдерживают 5 мин. Бульон из несвежего мяса характеризуется образованием хлопьев или выпадением желеобразного сгустка сине-голубого или зеленоватого цвета.

Реакция на пероксидазу:

В пробирку вносят 2 мл вытяжки, приготовленной из мясного фарша и дистиллированной воды в соотношении 1:4, добавляют 5 капель 0,2-процентного спиртового раствора бензидина, содержимое пробирки взбалтывают, после чего добавляют две капли 1-процентного раствора перекиси водорода. Мясо считают свежим, если вытяжка приобретает сине-зеленый цвет, переходящий в течение 1 - 2 мин. в буро-коричневый (положительная реакция). Мясо считают несвежим, если вытяжка, либо не приобретает специфического сине-зеленого цвета, либо сразу проявляется буро-коричневый (отрицательная реакция).

Определение pH мяса:

pH мяса находят потенциометром (pH-метром) в водной вытяжке, приготовленной в соотношении 1:10. Смесь настаивают в течение 30 мин. при периодическом перемешивании и фильтруют через бумажный фильтр.

2.3 Санитарные правила и нормы САнПИН 3.2.569-96

5.1.1.8. Убой сельскохозяйственных животных (крупного рогатого скота, овец, свиней, оленей) должен производиться только в специально отведенных для этого местах, где обеспечено надежное уничтожение пораженных эхинококком органов и запрещен допуск собак.

Убой овец, оленей и прочих животных в кошарах, на прикошарных участках, на местах выпаса и расположения отар, гуртов, стад, а также подворный убой животных запрещается. В порядке исключения при перегоне овец, оленей и других животных допускается убой ограниченного числа голов для питания членов бригады (при соответствующем разрешении). Ветеринарный врач или техник проводит предубойный осмотр животных, а также послеубойную ветеринарно-санитарную экспертизу туш и внутренних органов. Все пораженные эхинококком продукты убоя вывозят на ближайший утильзавод, а при его отсутствии - сжигают или сбрасывают в биотермическую яму. На убойных площадках такие органы подлежат сжиганию в специальных печах.

Рис. 8. - Нормы отбора проб

ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННОЙ ИССЛЕДОВАНИЙ

3.1 Природно-климатические условия и хозяйственная характерис-тика Западно-Казахстанской области

Западно-Казахстанская область является одним из самых динамично развивающихся индустриально-аграрных и культурных регионов Республики Казахстан. Выгодное географическое расположение, широко развитая сеть коммуникаций, природные богатства и интеллектуальные ресурсы области привлекают к региону внимание отечественных и иностранных инвесторов. Наша область сотрудничает с 83 странами мира. Расположенная в самом центре Евразии, область имеет огромные возможности экономического и социального развития.

Регион граничит с 5 областями Российской Федерации. Территория области - 151,3 тыс. км², протяженность с севера на юг - 425 км и с востока на запад- 585 км. Территория области с учетом особенностей почвенно-климатических условий. Степени распаханности сельскохозяйственных условий, сложившейся специализации хозяйств разделена на три природно-экономические зоны.

Первая - зерново-животноводческая, вторая животноводческо-зерновая и третья - животноводческая. В пределах этих зон с учетом природно-экономических условий выделены дополнительно три региона. В первой зоне - регионе почв, подверженных одной эрозии.

В первой и второй зонах - общий регион почв, подверженных ветровой эрозии. Система земледелия в первой зоне - почвозащитная на неполивных землях с выращиванием зерновых культур. В эту зону входят следующие районы и землепользователи: все сельские округа Бурлинского, Чингирлауского районов, Зеленовского района (за исключением Янайкинского сельского округа), Теректинского (за исключением Аксугумского, Шагатайского, Конеккеткенского, Шалкарского и Анкатинского сельских округов), а так же Актауский, Амангельдинский, Достыкский, Каменский и Ульяновские сельские округа Таскалинского района. Таловский сельский округ Жаныбекского и Алгабасский и Шолаканкатинский сельские округа Сырымского района и земли г. Уральска. Общая площадь первой зоны составляет 2907,6 тыс. га, в том числе пашни 608,0 тыс. га. Система земледелия второй зоны - почвозащитная на неполивных землях с выращиванием зерновых и кормовых культур.

Bо вторую зону входят Акобинский, Борсинский, Жанибекский, Жаксыбайский и Камыстинский, Тауский сельские округа Жаныбекского района; Коскульский, Егиндыкольский и Караколский Каратобинского района; Биригский, Богатыревский, Березенский, Казталовский, Кошанколский, Караобинский и Теренкольский сельские округа Казталовского района; Казахстанский, Кошинский, Мерекенский, и Чижинский сельские округа Таскалинского района; Янайкинский сельский округ Зеленовского района; Алгабасский и Бударинский сельские округа Акжаикского района; Аксугумский, Анкатинский, Конеккеткенский, Шагатайский, Шалкарский сельские округа Теректинского района; Аралтобинский, Булдуртинский, Буланский, Елтайский, Жосалинский, Талдыбуланский сельские округа Сырымского района.

Третья зона животноводческого (в основном мясное скотоводство и овцеводство) направления. Сюда входят все сельские округа Джангалинского, Бокейординского районов; Узункульский, Куйгенколский Жаныбекского района; Косубинский, Саройский, Жетыкульский - Сырымского; Аккозинский, Сулыкольский, Саралжинский, Шоптыкульский и Жусандыойский сельские округа Каратобинского районов, сельские округа Акжаикского района, кроме Алгабасского и Бударинского и сельские округа Ажбайский, Бостандыкский, Жалпакталский, Жанажолский, Карасуский, Караузенский, Акпатерский, Талдыкудукский и Талдыапанский Казталовского района. В третьей зоне сосредоточено 7741,1 тыс. га всех земель, в том числе 10,2 тыс. га пашни. В этой зоне зараженность сельскохозяйственных животных эхинококкозом на протяжении многих лет очень высокая и стойкая. Так, например, по данным исследований М.Ш. Шалменова [81] в Каратобинском районе зараженность КРС составила в 1997 году 33,1%, овец 65,4% , то в 1999 году КРС был заражен на 50,7% и овцы на 77,2%. Поверхность области представляет собой в основном равнинную территорию, понижающуюся с северо-востока на юго-запад. Территория расчленена на пять крупных геоморфологических районов: западная часть Подуральского плато; южная часть возвышенности Общий сырт; предсыртовый уступ; овражная часть прикаспийской низменности; долина среднего течения Урал.

Первая зона расположена в двух геоморфологических районах - Подуральском плато и Общем Сырте. Они представляют собой увалисто-волнистую равнину, расчлененную речными долинами на отдельные повышения - сырты. Абсолютные высоты этих регионов заключены в пределах 80-200 м. максимальные - 250-260 м. Вторая зона занимает предсыртовый уступ и северную часть прикаспийской низменности. Третья зона, самая большая, занимает северную часть прикаспийской низменности, расположена ниже 50 м абсолютной высоты, постепенно понижающейся в южном направлении до нулевой отметки, а местами и ниже, до 10 м.

Главными источниками водных ресурсов Западно-Казахстанской области являются поверхностные и подземные воды, количество которых довольно ограничено. В пределах области насчитывается около 200 рек и речек, общая длина которых, не считая реку Урал, составляет 4,7 тыс.км.

В средний по водности год объем поверхностного стока составляет 2,2 млрд. куб. м. Свыше 80 рек являются временными водотоками несущими воду лишь весной, остальные относятся к бессточным, то есть, образующим в своих устьях озера или разливы. Всего 8 рек имеют длину свыше 200 км, протяженность р. Урал - 560 км. Более 80% водных ресурсов поступает с сопредельных территорий Российской Федерации по трансграничным рекам Урал, Чаган. Большой и Малый Узени.

В поддержании инвазии в области играют не последнюю роль климатические условия. Среднегодовая температура воздуха варьирует от 6,4-7,2⁰ градуса, на западе и юге области до 4-4,2⁰ градуса на севере и востоке. Среднегодовое количество осадков меняется от 190 мм на юге до 282 мм на севере области. Лето сухое. Большое количество осадков приходится на холодное время года. Относительно высокая влажность почв способствует длительному выживанию и сохранению яиц эхинококка.

Климат Западно-Казахстанской области отличается резкой континентальностью, которая возрастает с северо-запада на юго-восток. Она проявляется в резких температурных контрастах дня и ночи, зимы и лета, в быстром переходе от зимы к лету. Для всей области характерна неустойчивость и дефицитность атмосферных осадков, малоснежие и сильное сдувание снега с полей, большая сухость воздуха и почвы, интенсивность процессов испарения и обилие прямого солнечного освещения в течение всего вегетационного периода. Зима холодная, преимущественно пасмурная, но не продолжительная, а лето жаркое и довольно длительное.

Первая зона - наиболее влагообеспеченный район области. Но даже здесь условия увлажнения очень жесткие и в большинстве лет влаги недостаточно. Годовая сумма осадков - 280-320 мм, а за теплый период выпадает 125-135 мм. Устойчивый снежный покров сохраняется обычно 120-130 дней, высота его достигает 25-30 см, запасы воды в снеге - 75-95 мм.

Bторая зона более засушлива, чем первая Сумма положительных температур воздуха выше на 10⁰С колеблется в пределах 2800-3000⁰С; продолжительность периода с температурой выше 10⁰С - 155-160 дней. За этот период выпадает 100-130 мм осадков. За год 240-260 мм.

Безморозный период - 145-155 дней. Зима с устойчивым в основном снежным покровом длится около четырех месяцев. Продолжительность периода с устойчивым снежным покровом - 110-120 дней, средняя высота снежного покрова - 20-25 см, запасы воды в снеге 75-90 мм. Запасы влаги в метровом слое почвы к началу весны составляют не более 80 мм. Третья зона - зона резко засушливых, жарких пустынных степей, полупустынь и пустынь. Сумма положительных температур воздуха выше 10⁰С равняется 3000-3400⁰С. За этот период выпадает 100-120 мм осадков, за год - от 190 до 230 мм. Безморозный период длится 160-180 дней. Продолжительность периода с устойчивым снежным покровом - 80-105 дней, средняя из наибольших декадных высот снежного покрова - 10-15 см, запасы воды в снеге - 40-50 мм.

На крайнем юге снежный покров при небольшой высоте лежит 1,5-2 месяца. В этой зоне летние осадки очень неустойчивы. Количество их резко колеблется по годам, нередко в течение двух-трех месяцев подряд выпадает не более 5 мм осадков.

3.2 Эпизоотологическая и эпидемиологическая ситуацияпо эхинококкозу в Западно-Казахстанской области

(Западно-Казахстанская область является в большей степени животноводческим регионом. Животноводческий комплекс состоит в основном из скотоводства и овцеводства. По состоянию на 01.01.2016 год в Западно-Казахстанской области учтено КРС - 415,6 тыс. голов, овец - 774,0 тыс. голов, коз -172,6 тыс. голов, лошадей - 101,6 тыс. голов, свиней - 25,9 тыс. голов, верблюдов - 2,9 тыс. голов.)

(Материалом для изучения годовой динамики показателей зараженности сельскохозяйственных животных послужили докумeнты, иcпользуeмыe в paботe для оцeнки эпизоотичecкой cитуaции: cтaтиcтичecкaя вeтepинapнaя отчeтноcть; aкты о пpовeдeнии paзличныx вeтepинapныx мepопpиятий (иccлeдовaния, пpививки, обpaботки, диaгноcтичecкиe убои и вcкpытия пaвшиx животныx и т.п.); экcпepтизы и вeдомоcти диaгноcтичecкиx лaбоpaтоpий о peзультaтax бaктepиологичecкиx, cepологичecкиx, клинико-гeмaтологичecкиx, гиcтологичecкиx и дpугиx иccлeдовaний; paзличныe фоpмы плeмeнного и зоотexничecкого учeтa, включaя cвeдeния о чиcлeнноcти, возpacтном и половом cоcтaвe животныx в paзpeзe нaceлeнныx пунктов, фepм (отдeлeний)..)

(B Уpальской области, в хозяйствах с преимущественным развитием животноводства, эхинококкоз широко распространен среди крупного рогатого скота и овец. В результате проведенных исследований было установлено, что в Западно-Казахстанской области крупный рогатый скот заражен в среднем на 19,6%, овцы на 18,4%, свиньи на 1,19 %. )

(Из данных таблицы видно, что наиболее стойкую зараженность эхинококкозом отмечали в Теректинском, где инвазированность крупного рогатого скота составляла 33,0%, овец 30,0%; в Каратюбинском крупный рогатый скот 25,6%, овцы 25,14%; в Буpлинском, где крс заражен на 25,7% и овцы на 16,0 %; чуть меньше в Жангалинском, где крс-16,5%, овцы заражены на 15,0%; в Жаныбекском овцы заражены на 23,33%; в Казталовском овцы заражены на 15,21%. Наибольший показатель инвазиpованности овец отметили в Чингиpлауском pайоне 37,25%.)

Cоглacно отчeтaм облacтной caнитapно - эпидeмиологичecкой cтaнции, eжeгодно нa тeppитоpии облacти peгиcтpиpуют до 67 cлучaeв эxинококкозa cpeди людeй, из ниx 20% пpиxодитcя нa дeтeй до 14 лeт. Так, в 2012 году - 27 человек. Нaиболee нeблaгопpиятнaя обcтaновкa по эxинококкозу людeй обcтоит нa тeppитоpии г. Уpaльcк: здecь зa пять лeт было зapeгиcтpиpовaно 93 cлучaя зaболeвaния, поэтому г. Уpaльcк отноcитcя к зонe мaкcимaльного pиcкa зapaжeния. По cтaтиcтикe болee 70% cлучaeв зapaжeния эxинококкозом пpоиcxодят чepeз контaкты c домaшними животными - cобaкaми (ри. 9).



Рис. 9. - Эхинококкоз печени крупного рогатого скота

Рис. 10. - Эхинококкоз печени мелкого рогатого скота

3.3 Результаты послеубойного осмотра внутренних органов крупного рогатого скота

(Послеубойный осмотр производили после разделки туши убитого животного, определяли состояние, и наличие патологоанатомических изменений внутренних органов.)Туши здоровых животных характеризовались тем, что мышцы развиты удовлетворительно; остистые отростки спинных и поясничных позвонков, седалищные бугры, маклоки выделяются не резко; подкожный жир выделяется не резко, покрывает тушу от 8-го ребра к седалищным буграм; шея, лопатки, передние ребра и бедра, тазовая полость и область паха имеют отложения жира в виде небольших участков. Туши животных, инвазированных гидатидной формой эхинококкоза, отмечали менее развитые мышцы, выступающие остистые отростки позвонков, седалищные бугры и маклоки, слабое развитие жировой прослойки. В результате вскрытия и осмотра патологоанатомических изменений выявлено не было. Селезенка не увеличена, консистенция упругая, цвет пульпы - красно-коричневый с наличием серо-белых полосок - трабекул, при соскобе тыльной стороной ножа с поверхности разреза снимается незначительное количество пульпы. Печень осматривали и прощупывали с диафрагмальной и висцеральной сторон. Разрезали и осматривали портальные и лимфатические узлы и производили с висцеральной стороны по ходу желчных протоков 2-3 несквозных разреза, контролируя цвет, блеск, рисунок строения, состояние паренхимы и желчных протоков, степень и характер кровенаполнения, наличие паразитов.

Цвет печени в норме зависит от ее кровенаполнения, возраста (красно-коричневый с темным оттенком). Обращали внимание на изменение в величине, состояние краев (острые, притупленные), глиссоновой капсулы (гладкая, блестящая, зернисто-узелковая и др.), цвет (красно-коричневый или вишнево-коричневый, желтый и т.д.). Пальпировали печень для установления ее консистенции (плотная, дряблая). Желчный пузырь осматривали визуально, после чего вскрывали, обращая внимание на состояние желчи, слизистой оболочки.

Эхинококковые пузыри обнаруживали в печени, легких, почках, селезенке; располагались они преимущественно вблизи поверхности органа, выступая над его серозной оболочкой, цвет которой изменялся на матово-серый. (При интенсивной инвазии пораженные органы значительно увеличивались в размере и массе, консистенция была более плотной по сравнению с не пораженным органом, отмечалась атрофия паренхимы.

Дифференцировали эхинококкоз от туберкулеза - не наблюдалось изменений (туберкул) в региональных лимфатических узлах; финноза - при данном заболевании тонкошейные финны располагаются на периферии органа и имеют ясно выраженную головку, находящуюся на тонкой шейке; для дифференциации от дегенеративно измененных бычьих или свиных цистицерков тщательно исследовали наличие финн или следов их распада. )

3.4 Органолептические и физико-химические показатели продуктов убоя

Для определения происходящих под действием эхинококкозной инвазий и изменений в организме продуктивных животных, мы исследовали органолептические показатели органов. Для этого были отобраны пробы мяса, сердце, легкие, селезенка, печень и почки, как у клинически здоровых животных, так и животных, инвазированных эхинококками.

Рис. 11. - Послеубойный осмотр крупного рогатого скота

Органолептические показатели мяса и внутренних органов исследовали согласно ГОСТу (7269-79) и законодательным нормативам (внешний вид и цвет, консистенция, запах мяса, состояние жира и сухожилий).

Согласно «Правил ветеринарного осмотра убойных животных и ветеринарно-санитарной экспертизы мяса и мясных продуктов» мясо считается полученным от здорового животного при наличии хороших органолептических показателей туши и отсутствие патогенных микробов.

Результаты исследований

При естественном освещении пробы мышц были светло-красного цвета, на разрезе слегка влажные, хорошо обескровленные и не оставляли влажного пятна на фильтровальной бумаге. Мышцы плотной, упругой консистенции, образующаяся при надавливании пальцем ямка быстро выравнивалась, поверхность чистая, на ощупь не липкая, имела корочку подсыхания, со специфическим запахом, характерным для говядины. Жир белого цвета, твердой консистенции, при раздавливании слегка крошился. Сухожилия были упругими, плотными, поверхности суставов гладкие, блестящие. Для определения качества бульона, полученного из мяса клинически здоровых животных и животных, инвазированных эхинококком, проводили пробу варкой по ГОСТу 7269-79 (рис.12).

Рис. 12. - Исследование качества бульона

Табл. 1. - Определения качества бульона, полученного из исследуемых проб

Вид исследований
Определение качества бульона
Проба от здоровых животных	Проба от больных животных	ГОСТ 7269-79
Ароматный, прозрачный, капли жира собирались на поверхности	Мутноватый, количество жира значительно меньше	Прозрачный и ароматный

В ходе проведения ветеринарно-санитарной экспертизы было выявлено, что водные экстракты, полученные из мяса от клинически здоровых животных и животных инвазированных, фильтровались примерно с одинаковой скоростью, однако фильтрат, полученный от клинически здоровых животных, был прозрачнее, чем полученный от больных.

Табл. 2. - Определение рН

Вид исследований
рН (контроль - рН 5,6-5,8)
Проба от здоровых животных	Проба от больных животных
5,93	6,21-6,48

Мясо, полученное от клинически здоровых животных, имело рН в среднем 5,93±0,06; рН мяса, полученного от инвазированных животных, находилось в пределах 6,21-6,48 (в среднем - 6,35±0,08), что свидетельствует о необходимости проведения бактериологического исследования (рис. 13 ).

Микроскопический анализ мазков-отпечатков проводили с целью определения количества бактерий и степени распада мышечной ткани.

Рис. 13 . - Микробиологическое исследование

Таб. 3. - Микробиологические показатели исследуемых проб

Микробиологический показатель	Норма для мяса СанПиН 2.3.2.1078-01 п.1.3.1.1.	Не инвазиро- ванные (контроль) n=3	Пораженные эхинококкозом
БГКП (колиформы)	1,0	-	Обнаружены единичные кокки (4-5) в поле зрения микроскопа
S. aureus	Не допуск	-	-
Salmonella typhimurium,	25	-	-

Таким образом, в ходе проведение бактериологического исследования, исследуемых проб было установлено что, в мазках отпечатках мяса, полученного от клинически здоровых животных, микроорганизмов и признаков распада мышечной ткани не выявили. В мазках отпечатках мяса, полученного от животных, инвазированных эхинококками, обнаружили грамположительные и грамотрицательные условно патогенные бактерии, идентифицированные в ходе проведения бактериологических исследований как Staphylococcus aureus, Salmonella typhimurium, Escherichia coli и слабую исчерченность мышечных волокон.

Таб. 4. - Качественная реакция на пероксидазу

Вид исследований
Качественная реакция на пероксидазу
Проба от здоровых животных	Проба от больных животных
вытяжка, полученная из мяса клинически здоровых животных, приобретала сине-зеленый цвет, который спустя несколько минут постепенно переходил в буро-коричневый (положительная реакция на пероксидазу).	Проба, полученная из мяса больных животных, окрашивалась в коричневый цвет (отрицательная реакция на пероксидазу).

Таб. 5. - Реакция с сернокислой медью

Вид исследований
Реакция с сернокислой медью
Проба от здоровых животных	Проба от больных животных
Проба (бульон), полученные из мяса клинически здоровых животных, оставались прозрачными.	Проба (бульоня), полученный от инвазированных животных, приобретал слабозаметное помутнение.

Так как в процессе разложения в мясе накапливается аммиак, то по количеству последнего можно судить о степени свежести продукта, для этого в лабораторной практике используется реактив Несслера.

Таб. 6. - Реакция аммиака с реактивом Несслера (на свежесть)

Вид исследований
Реакция аммиака с реактивом Несслера (на свежесть)
Проба от здоровых животных	Проба от больных животных
Экстрат мяса цвет темно красный	экстрактом мяса ярко-желтого цвета, наблюдалось незначительное помутнение,

Для определения количества летучих жирных кислот (ЛЖК) проводили анализ на приборе для перегонки водяным паром.

Таб. 7. - Определения количества летучих жирных кислот

Вид исследований
ЛЖК
Проба от здоровых животных	Проба от больных животных
Влага%мг	Белок % мг	Жир % мг	Фенилал-анин, % мг	Влага%мг	Белок % мг	Жир % мг	Фенилалан-ин, % мг
72,8	18,8	8,3	793	75,2	17,5	6,6	784

В результате исследований в мясе, полученном от клинически здоровых животных, было определено 3,72 мг летучих органических кислот, что соответствует нормам для свежего мяса. В пробах мяса, полученного от животных, инвазированных эхинококкозом, количество летучих жирных кислот составляло 4,53 мг, что говорит о сомнительной свежести мяса. В ходе исследований ни в одной пробе сероводород обнаружен не был.

Таким образом, ларвоцисты эхинококков, как в целом сами инвазированные эхинококками животные, могут являться резервентами возбудителей сальмонеллезов, а мясо и мясопродукты, полученные от этих животных, могут представлять опасность для людей как возможные источники пищевых отравлений (токсикоинфекций).

 ЗАКЛЮЧЕНИЕ

В заключение хочется сказать, что всегда заболевание легче предотвратить, чем с ним бороться. Ведь если заболевание эхинококкоз перейдет из маленького очага в большие масштабы, то придется затрачивать большие материальные затраты, которые будут складываться из приобретения лекарств, различных дезинфицирующих препаратов и так далее. По этому, лучше всего во время проводить профилактические работы.

ВЫВОДЫ

В результате наших исследований удалось выяснить, что на территории

Западно-Казахстанской области значительную долю в структуре заболеваемости занимает эхинококкоз - в области крупный рогатый скот заражен в среднем на 19,6 %, овцы на 18,4 %, свиньи на 1,19 %.

- При проведении общего послеубойного осмотра туш и внутренних органов было установлено следующее: Туши здоровых животных характеризовались тем, что мышцы развиты удовлетворительно. Туши животных, инвазированных гидатидной формой эхинококкоза, отмечали менее развитые мышцы, выступающие остистые отростки позвонков, седалищные бугры и маклоки, слабое развитие жировой прослойки.

В результате вскрытия и осмотра лимфатических узлов патологоанатомических изменений выявлено не было. Селезенка не увеличена, консистенция упругая, цвет пульпы - красно-коричневый с наличием серо-белых полосок - трабекул, при соскобе тыльной стороной ножа с поверхности разреза снимается незначительное количество пульпы. Печень осматривали и прощупывали с диафрагмальной и висцеральной сторон. Желчный пузырь осматривали визуально, после чего вскрывали, обращая внимание на состояние желчи, слизистой оболочки.

Эхинококковые пузыри обнаруживали в печени, легких, почках, селезенке; располагались они преимущественно вблизи поверхности органа, выступая над его серозной оболочкой, цвет которой изменялся на матово-серый. При интенсивной инвазии пораженные органы значительно увеличивались в размере и массе, консистенция была более плотной по сравнению с не пораженным органом, отмечалась атрофия паренхимы.

Мясо, полученное от клинически здоровых животных, имело рН в среднем 5,93±0,06; рН мяса, полученного от инвазированных животных, находилось в пределах 6,21-6,48 (в среднем - 6,35±0,08), что свидетельствует о необходимости проведения бактериологического исследования. В мазках-отпечатках мяса, полученного от животных, инвазированных эхинококками, обнаружили грамположительные и грамотрицательные условно патогенные бактерии идентифицированные в ходе проведения бактериологических исследований как Staphylococcus aureus, Salmonella typhimurium, Escherichia coli и слабую исчерченность мышечных волокон.

При определения количества летучих жирных кислот нами было зарегистрировано у инвазированных животных увеличение массовой доли влаги на 2,4%; уменьшение количества белка на 1,3%; жира - на 1,7%; фенилаланина - на 9 мг%.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

Усилить в условиях хозяйств контроль, за состоянием здоровья, как промежуточных хозяев (крупный и мелкий рогатый скот, свиньи), так и дефинитивных (собаки, грызуны).

Своевременно проводить диспансеризацию поголовья животных, дегельминтизацию прифермских собак, дезинфекцию оборудования и животноводческих помещений.

Внести коррективы в правила по ветеринарно-санитарной экспертизе, запретить выпуск мясопродуктов после их зачистки в случаях выявления эхинококкозной инвазии.

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ

1. Баженов Л.Г., Турсунов Н.Т. Возможности диагностики эхинококкоза

различной локализации с помощью иммуноферментного анализа // Медицинская паразитология и паразитарные болезни. - 2010. -№ 4. - С. 55-57.

2. Дейнека И.Я. Эхинококкоз человека.- М., - 1968. - 376 с.

3. Gottstein B. Molecular and immunological diagnosis of echinococcosis. Clinical Microbiology Reviews, Jul 1992, 248-261, Vol 5, N 3.

4. Шабловская Е.А. Мельник Р.П. Паразитарные болезни человека.- Киев, 1984, - 256 с.

5. Casado N., Rodriguez-Caabeiro F., Hernandez S. In vitro survival of Echinococcus granulosus protoscolices in several media, at + 4 С and + 37°C. Z Parasitenkd. 1986; 72 (2): 273-8.

6. Петровский Б.В., Милонов О.Б. Хирургия эхинококкоза - М. - 1985 г. - 216 с.

7. Celik С, Amanvermez R., Ozkan K.Free amino acid concentration in hydatid cyst fluids from fertile and infertile human and animal Echinococcus granulosus. Parasite. 2001 Dec; 8 (4): 343-8.

8. Yoneva A., Mizinska - Boevska Y. In vitro cultivation of helminths and establishment of cell cultures. Experimental pathology and parasitology, 4/7, 2001.

9. Черепанов А.А., Околелов В.И. Мониторингпаразитарной ситуации на животноводческих фермах // Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями: матер. Междунар. научн.-практ. конф. / ВИГИС. - М., 2002. -Вып.№3.-С.360-363.

10. Бессонов А.С. Эхинококкоз: распространение, клинические признаки, диагностика и лечение (по материалам симпозиума, организованного неформальной группой ВОЗ по эхинококкозу и медицинским факультетам университета Эль-Эйн, ОАЭ) // Ветеринария. - М.,1997.-№4. - С.46-50.

11. Яременко Н.А., Кленова И.Ф. Эпизоотология гельминтозов на пастбищах // Ветеринария.- М.,200.-№7.-С.3-5.

12. Смирнов Н.Ф., Трофимов В.С., Шлычков М.И. Плодоносность эхинококковых цист у сельскохозяйственных животных Куйбышевской области // Тезисы докладов научно-практич. Конф. «Современное состояние и перспективы оздоровления хозяйств от эхинококкоза и цистицеркоза». - Караганда. - М.,1990.-С.133-135.

13. Романов И.А., Беспалова Н.С. Особенности циркуляции возбудителя эхинококкоза в Воронежской области // Тезисы докладов научно-практич. Конф. «Современное состояние и перспективы оздоровления хозяйств от эхинококкоза и цистицеркоза». - Караганда. - М.,1990.-С.121-122.

14. Демшин Н.И., Пигалкин А.У. Динамика основных гельминтозов крупного рогатого скота и свиней в Хабаровском крае // Всесоюзн. конф. природн. очагов болезней и общие вопросы паразит. Животных.- М.,1972.-Вып. - Ч 2.-С.77-81

15. Слепнев Н.К. зараженность домашних животных эхинококкозом в Белоруссии // Тезисы докладов научно-производств. конф. « Проблемы паразитарных болезней с.-х. ж-х. - М.,1972.-С.141-142.

16. Давидянц В.А., Чобанян А.Г., Казанчан С.М. Эпизоото-эпидемиологическая характеристика эхинококкоза в Армянской ССР //Тезисы докладов научно-практич. конф. «Современное состояние и перспективы оздоровления хозяйств от эхинококкоза и цистицеркоза».- Караганда. - М.,1990.-С. 50-51.

17. Шамхалов В.М. Санитарно - гельминтологическая оценка скотопрогонных трасс в отношении цестодозов животных и меры борьбы с ними в Дагестане // Материалы научн.конф. ВИГИС.-1979.- Вып.31.-С.153-155.

18. Акматов Б.А., Асанов К.Б., Колков М.Г. Эхинококкоз и альвеококкоз на юге Киргизии // Здравоохранение Киргизии. - 1974. - № 3. - С. 27-31.

19. Айманбетов М.А., Абдырасулов С.А., Акматалиев К.А. Гельминтофауна Нарыжской области // Здравоохранение Киргизии. -1986.-№ 4.-С. П-13.

20. Акматов Б.А., Кенжаев М.Г. Распространённость эхинококкоза в Киргизии // Здравоохранение Киргизии. - 1988. - № 6. - С. 8-11.

21. Нейман П.К., Шумакович Е.Е. Гельминты коз и сибирского козерога (Сарга sibiri) на юге Киргизии // Сб. науч. тр. Всесоюзного инст-та гельминтологии. - 1975. - 22. - С. 119-125.

22. Зарипов X. К изучению вопроса локализации эхинококковых поражений в органах и тканях сельскохозяйственных животных // Сб. науч. тр. Таджидского СХИ. - 1976. - т.26. - С. 112-118.

23. Ситов К.Е., Зубитская М.А., Шеткин Ю.В., Даврон М.Т., Бурханов Э., Хаджаев У. Поражённость эхинококкозом убойных животных в Самаркандской области // Актуальные вопросы медицинской паразитологии в Узбекистане. Ташкенский гос. Медицинский инст-т. -Ташкент: 1989.-С. 61-65.

24. Корниенко-Конева З.П., Пелевин В.К. О гельминтофауне собак города Ашхабада в связи с распространением в Туркмении ценуроза и эхинококкоза // Сборник НИР по ветеринарии в Туркменистане, посвященный IV международной конференции паразитологов стран Азии. - Ашхабад, 1958. - С.307-310.

25. Кибакин В.В. Состояние вопроса изучения гельминтофауны собак в Туркмении в связи с распространением ценуроза и эхинококкоза сельскохозяйственных животных //Сборник НИР по ветеринарии в Туркменистане, посвящ. IV междун.конф. паразитологов стран Азии - Ашхабад, 1958. - С.239-245.

26. Чуйко Л.С. Материалы К изучению распространения эхинококкоза крупного рогатого скота в Алма-Атинской области//ТР. КазНИВИ.-Алма-Ата.,1961.-Т.10.-С.685-686.

27. Бондарева В.И. К вопросу эпизоотологии эхинококкоза сельскохозяйственных животных на юго-востоке Казахстана //Труды КазНИВИ.-Алма-Ата, 1961.-Т.10. - С.635-640.

28. Каспакбаев А.С., Кереев Я.М. Эпизоотологическая ситуация по эхинококкозу сельскохозяйственных животных на юго-востоке Казахстана //Сб.научн.тр.КазНИВИ.-Алма-Ата., Эпизоотология, иммунитет, диагностика и химиопрофилактика паразитов сельхоз. животных в Казахстане.1984-С.70-73.

29. Тищенко В. В. Распространение эхинококкоза среди с.-х. ж-х в Джамбульской области//В сб.: Проблемы патологии, иммунитета и химиопрофилактики гельминтозов с.-х. ж-х. -Алма-Ата-1968.-С.297-300

30. Рамазанов В.Т., Каспакбаев А.С., Кереев Я.М., Шалменов М.Ш., Байбуриев М.Б., Циверко И.Л., Музанов И.З., Талдахметов Ш.Т., Сейсенов Б.С. //Рекомендации мероприятий по борьбе с эхинококкозом и ценурозом с/х животных в Казахстане.-Алматы.,1994 - 20 с.

31. Шалменов М.Ш., Кармалиев Р.С. Эхинококкоз сельскохозяйственных животных в Западно-Казахстанской области //Инфекционные паразитарные болезни сельскохозяйственных животных.- Алматы.,1999.-С.249-252.

32. Байтурсинов К.К., Прядко Э.И. К изучению распространения эхинококкоза и цистицеркоза верблюдов в Казахстане //Тезисы докладов научно-практической конференции «Современное состояние и перспективы оздоровления хозяйств от эхинококкоза и цистицеркоза».- Караганда.- М., 1990.- С.22-23.

33. Гулецкая Н.В. Материалы к вопросу о распространении главнейших гельминтозов сельскохозяйственных животных в Алма-Атинской области Казахской ССР //Труды КазНИВИ.- Алма-Ата, 1940.- Т.3.- С.132-143.

34. Чуйко Л.С. О пораженности овец эхинококкозом в Алма-Атинской области //Труды КазНИВИ.- Алма-Ата, 1963.- Т.11.- С.186-191.

35. Рамазанов В.Т., Искаков К.М., Шокибаев Ш.К. К распространению эхинококкоза в Алма-Атинской и Талды-Курганской области //Вестник сельскохозяйственной науки Казахстана.-Алма-Ата, 1973.- №4.- С.53-57.

36. Рамазанов В.Т., Каспакбаев А.С. Распространение эхинококкоза овец в Талды-Курганской области //Труды КазНИВИ.- Алма-Ата, 1979.- С.46-49.

37. Ульянов С.Д., Байдалиев А.Б. //Кн.: Оздоровление хозяйств Южного Казахстана от эхинококкоза и ценуроза.-Чимкент.,1961.-С.123.

38. Байдалиев А.Б. Широкий производственный опыт оздоровления некоторых хозяйств Чимкентской области от ценуроза и эхинококкоза и материалы по эпизоотологии и иммунитету: Автореф. дис. канд. вет. наук.-Алма-Ата.,1963. -23 с.

39. Кущенко З.В., Байбуриеву М.Б. К изучению экстенсивности и интенсивности эхинококковой инвазии овец на юге Казахстана //в кн.: Болезни овец и меры борьбы с ними в Казахстане. - Алма-Ата., 1975. - С.220-221.

40. Джумагулов К.Б., Торгаутов Б.К. О распространении эхинококкоза в Чимкентской области // Материалы 4-й Всесозн. Научн.-практич. Конф.-Чимкент.-М.,1989.-С.57-58.

41. Байбуриев М.Б. Некоторые вопросы эпизоотологии эхинококкоза в Чимкентской области //Тезисы докладов научно-практическ. конф «Современное состояние и перспективы оздоровления хозяйств от эхинококкоза и цистицеркоза». - Караганда. - М.,1990.-С.20-21.

42. Байбуриев М.Б., Талдахметов Ш. Эпизоотологическая ситуация по эхинококкозу животных на юге Казахстана // В сб.:Терапия и профилактика паразитов с.-х. ж-х.-Алма-Ата.,1992.-С.13-20.

43. Шантаев С.У., Жанбырбаев М.Ж., Талдахметов Ш. Эхинококкоз крупного рогатого скота //Сб.научн.трудов практической конф. «эхинококкоз и очаговые заболевания паренхиматозных органов человека. - Шымкент., 1998.-С.128-129.

44. Петров В.С. К эпизоотологии эхинококкоза овец и чабанских собак в Джамбульской области //Тезисы докладов научно-практического семинара «Перспективы ликвидации потерь от эхинококкоза в животноводстве». - Фрунзе 14-16 октября 1987.- Москва, 1987. - С.44.

45. Биттиров А.М. Химиотерапия экспериментального ценуроза овец: автореф. канд. вет. наук. - М., 1990. - 15 с.

46. Рамазанов В.Т. Ларвальные цестодозы овец в Талды-Курганской области и пути их искоренения // В кн.: Болезни овец и меры борьбы с ними в Казахстане.-Алма-Ата.,1975.-С.276-279.

47. Байдалиев А.Б., Байбуриев М.Б. Ларвальные цестодозы овец в Кзыл-Ординской области и меры борьбы сними // Тезисы докладов расшир.юбил.заседания уч. Совета Южно-Казахстан.НИВС,посвящен.50 летию КазССР.-Чимкент.,1970.-С.52-55.

48. Артемьев Г.М. Эхинококкоз и ценуроз овец в условиях Павлодарской области //Материалы респ. Семинара по борьбе с паразитарными болезнями с.-х. ж-х, посвященного 100 летию со дня рождения академика К.И.Скрябина.-Алма-Ата.,1979.-С.9-13.

49. Мустафин А.О. Методические рекомендации по профилактике ценуроза и эхинококкоза овец. - Павлодар.,1989.-14с.

50. Радионов П.В. Гельминты и гельминтозы овец Кустанайской области, и изучение мер борьбы с ними: Автореф. дис. канд. вет. наук.-Алма-Ата.,1968.-17с.

51. Карамендин О.С. Гельминтозы овец Кокчетавской области //Вестник сельхоз. Науки Казахстана.-1971.-№4.-С.71-73.

52. Кадыров Н.Т. Гельминтофауна и основные гельминтозы овец Акмолинской области // Кн.: Природная очаговость болезней и вопросы паразит. Казахстана и респ. Средней Азии.- Алма-Ата, 1961.-Вып.3.-С.371-383.

53. Прядко Э.И., Румянцев А.П. Роль гельминтозов в причинах заболеваемости и отхода крупного рогатого скота в Казахстане//Тезисы докладов научн. Конф.ВОГ.-М.,1960.-С.116.

54. Гутовский В.И. К вопросу о распространения эхинококкоза с.-х. ж-х. в Карагандинской, Северо-Казахстанской и Джамбулской областях //Тр.КазНИВИ.-Алма-Ата.,1961.-Т.10-С.675-677.

55. Жилин А.Д. Материалы по эпизоотологии эхинококкоза в Центральном Казахстане //В сб.: Проблемы патологии, иммунитета и химиопрофилактика гельминтозов с.-х. ж-х.-Алма-Ата.,1968-С.293-296.

56. Шумилина З.В. Изучение степени зараженности с.-х. ж-х эхинококкозом в Западно-Казахстанской области //Тр.КазНИВИ. - Алма-Ата., 1961. - Т. 10 - С. 687-689.

57. . Шалменов М.Ш., Есенгалиев Т.Т. Перспективы снижения эхинококкоза с.-х. ж-х в Уральской области //Тезисы докладов в научно-практич.конф. «Современное состояние и перспективы оздоровления хозяйств от эхинококкоза и цистицеркоза».- Караганда.-М.,1990.-С.172-173.

58. Шалменов М.Ш., Есенгалиев Т.Т. К эпизоотологии и профилактики эхинококкоза в Уральской области // Сб.: вопросы современной вет. паразитологии в Казахстане-Алма-Ата.,1990-С.171-174.

59. Ашетова И.Н. Биологические особенности цестодозов верблюдов в Западном Казахстане //Вестник сельхоз. науки Казахстана.-2000.-№3.-С.49.

60. Кондратьев В.П. Степень участия чабанских бродячих и сельских собак в распространении ларвальных цестодозов среди сельскохозяйственных животных в Курганской области //Тр. ВИГИС, М.,1964,Т.11,С.84-88.

61. Давыдов А.С., Смирнов Н.Ф., Стужина И.М. Гельминтофауна тонкого отдела кишечника собак в Куйбышевской области // эпизоотология, профилактика и лечение заразных и незаразных заболеваний с.-х. животных в Куйбышевской области, Куйбышев,1977, Вып№7,С.121-123.

62. Сафронов М.Г. Гельминты и гельминтозы с.-х. животных в Якутской АССР: Автореф. дис. канд. вет. наук.-М.,1955.- 12с.

63. Козлов Д.П. К обнаружению эхинококков и альвеококков у животных семейства nidе Хабаровского края и Камчатки//Тр.ГЕЛАН.-М.,1961.-№11.-С.122-126.

64. Кикоть В.И. Природная очаговость эхинококкоза в горно-таежной зоне Дальнего Востока //МППБ.-1980.-№5.-С.60-65.

65. Шумакович Е.Е., Никитин В.Ф., Кузнецов М.И. К изучению гельминтофауны собак и диких плотоядных на Среднем и Нижнем Поволжье //Тр. ВИГИС.-М.,1962.-Т.9.-С.127-153.

66. Васильева. В.А., Нейбокина Л.А. Гельминтофауна животных Мордовского региона//Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями (зоонозы), М.,2002. Вып.3,С.76-77.

67. Бурей М.Л., Тэлэмлутца Н.Н. Инвазированность собак ассоциацией возбудителей гельминтозов //Сборник научных статей «Профилактика паразитарных болезней животных».- Кишинев, 1985.- С.6.

68. Никитин В.Ф. Эпизоотология ларвальных тениидозов жвачных и связанных с ними тениидозов собак в условиях отгонного животноводства Дагестанской АССР:Автореф.дис.канд.вет.наук.-М.,1958.-15 с.

69. Исмаилов Т.Д. Гельминтофауна собак в Азербайджане, ее эпизоотологическая и эпидемиологическая характеристика: Автореф. дис. канд. наук. Баку., 1969, 23 с.

70. Камалов Н.Г., Горгадзе Г.Н., Сванидзе Д.П. Эхинококкоз среди собак и диких плотоядных в Грузии// Тр.2-го закавказ. съезда хирургов. - Тбилиси.,1937.-Ч.2.-С.377-380.

71. Реджепов А., Тайматов Р.Ш., Агапович Ж.А., Степанов Д.Ф. К гельминтофауне плотоядных и жвачных животных //Ветеринария, М., 1972, №12,С.71-72.

72. Полищук В.И. К гельминтофауне тонкого отдела кишечника собак Центрального и Южного Таджикистана //Труды Таджикского НГГВИ.- Душанбе, 1974. - Т.4.- С.170-172.

73. Петров А.М. К фауне паразитических червей домашних животных Туркестана //Труды ВИГИС.- М., 1926.- Вьш.2.- С.89-101.

74. Делянова Р.Ш. Гельминтофауна собак в республике Средней Азии и Казахстане //Работы по гельминтологии к 80 летию академика К.И. Скрябина, М.,1959,С.48-51.

75. Диков Г.И. Гельминты и гельминтозы овец юго-востока Казахстана и опыт борьбы с ними: Автореф. дис.канд. вет. Наук.- Самарканд, 1961.-24 с.

76. Захаров В.Н. Эхинококкоз собак в Казахстане и роль их в эпидемиологии и эпизоотологии этого заболевания // Изв. АН Каз.ССР. Серия паразитол.-1948.-Вып.5.-№ 43.- С.57-59.

77. Абдыбекова А.М. Зараженность собак гельминтами в Жамбылской области//Материалы докладов научной конференции «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями», М.,2001,С.3-4.

78. Степанян С.Г. Гельминты собак Кзыл-Ординской области и их эпизоотолого - эпидемиологическое значение // Природная очаговость болезней и вопросы паразитологии. Алма-Ата,1961,вып.III,С.298-301.

79. Генис Д.Е. Эхинококкоз и альвеококкоз человека и животных в зоне пустынь Южного Казахстана //материалы ВОГ,1965,Ч.2,С.60-63.

80. Генис Д.Е.К вопросу об эпизоотологии эхинококкоза в зоне пустынь Казахстана //МППБ, М.,1970, №3, С. 302-306.

81. Кенжибаев С.А. Эпизоотология и профилактика эхинококкоза животных в условиях Юго-Запада Казахстана: Автореф.дис.канд.вет.наук.-М.,1987,25 с.

82. Токпанов С.С. Гельминтозы собак г. Акмолы //Вестник науки Акмолинский с.-х. институт. Акмола, 1996, №4, С.147-148.

83. Шалменов М.Ш. Научные основы борьбы с эхинококкозом в Западном Казахстане: Дис. док. вет. наук. А., 2009, с. 112-115.

84. Кереев Я.М. Химиопрофилактика ларвальных цестодозов животных: Дис. д-ра. вет. наук. - Алматы., 1999. - 44 с.

85. Каспакбаев А.С. Особенности эпизоотологии ларвальных цестодозов в условиях Юго-востока Казахстана//Вопросы ветеринарной паразитологии в Казахстане, Алма-Ата,1987, С.44-47.

86. Кармалиев Р.С. Гельминтозы животных Западного Казахстана // ветеринария - М., 2006. - №1. - С. 37- 38.

87. Муханов И.З. Особенности распространения ларвальных цестодозов с.-х. ж-х в Атырауской области Казахстана //Тезисы докладов научн. конф. «Методы профилактики и борьбы с эхинококкозом и другими цестодозами человека и животных». -М.,1993. - С. 47-49.

...