Значение ассоциаций микроорганизмов в этиологии и профилактике инфекционных болезней конечностей крупного и мелкого рогатого скота (некробактериоз, копытная гниль)

Изучение видового спектра микроорганизмов при болезнях конечностей крупного рогатого скота и овец. Ознакомление с результатами испытаний эффективности ассоциированных вакцин в лабораторных и производственных условиях. Рассмотрение методов их контроля.

Рубрика Сельское, лесное хозяйство и землепользование
Вид автореферат
Язык русский
Дата добавления 26.12.2017
Размер файла 1,9 M

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

Во вторую группу, как и при болезнях конечностей овец, вошли наиболее часто выделяемые пиогенные микроорганизмы Streptococcus pyogenes (24-42%случаев), Staphylococcus aureus (18-28% cлучаев), Actinomyces pyogenes (9-15% cлучаев), Pseudomonas aeruginosa (3-9% случаев).

Представителями третьей группы так же, как и при инфекционных заболеваниях конечностей овец, являлись условно-патогенные и сапрофитные микроорганизмы Escherichia coli (36-43% случаев), Proteus vulgaris (16-24% случаев). К этой группе могли быть отнесены непостоянно выделяемые представители родов Propionibacterium, Prevotella, Eubacterium, Flavobacterium, а также Bacteroides fragillis.

Четвертую группу составили споровые микроорганизмы: постоянно выделявшиеся в малых количествах Clostridium septicum (6 - 10 % случаев), непостоянно выделявшиеся Clostridium оedematiens, Bacillus cereus, Bacillus subtilis. При этом споровые микроорганизмы из патматериала от КРС и овец, чаще выделяли в Ставропольском крае и в Республике Киргизия. Проведенные исследования позволили констатировать факт наличия широкого спектра видов микроорганизмов, участвующих в патогенезе инфекционных болезней конечностей овец и КРС, что подтверждает данные многих ученых (Самоловов А.А., 1988; Балабанов В.А., 1971; Гришаев Н.Е., 1971; Сидорчук А.А. и др. 1999, 2006) о важной роли микробных ассоциаций в этиологии некробактериоза крупного рогатого скота, некробактериоза и копытной гнили овец. Они также позволяют несколько иначе посмотреть на этиологию и патогенез некробактериоза крупного и мелкого рогатого скота и копытной гнили овец.

Таблица 1 Результаты исследований патологического материала от овец, взятого из хозяйств Центральной России, Ставропольского края и Республики Киргизия

№ п/п

Идентифицированные микроорганизмы

% от числа исследованных проб

1

Clostridium perfringens т. А

69 - 82

2

Dichelobacter (Вacteroides) nodosus

72 - 79

3

Streptococcus pyogenes

17 - 43

4

Staphylococcus aureus

36 - 42

5

Escherichia coli

28 - 38

6

Fusebacterium necrophorum

9 - 39

7

Proteus vulgaris

20 - 33

8

Actinomyces (Corynebacterium) pyogenes

10 - 12

9

Klebsiella pneumoniae

10

10

Treponema spp.

9

11

Peptostreptococcus anaerobius

8

12

Enterococcus

7 - 8

13

Prevotella (Вacteroides) melaninogenicus

1 - 6

14

Clostridium perfringens т. С

2 - 5

15

Clostridium septicum

4

16

Clostridium oedematiens

3 - 4

17

Clostridium perfringens т. D

3

18

Вacteroides fragilis

2 - 3

19

Bacillus cereus

2 - 3

20

Arachnia propionicus

2

21

Flavobacterium spp.

1

22

Sarcina spp.

1

Таблица 2 Результаты исследований 213 проб патологического материала от крупного рогатого скота, взятого из хозяйств Центральной России, Ставропольского края и Республики Киргизия

№ п/п

Идентифицированные микроорганизмы

% от числа исследованных проб

1

Clostridium perfringens т. А

68- 75

2

Fusebacterium necrophorum

63 - 74

3

Escherichia coli

17 - 43

4

Streptococcus pyogenes

36 - 43

5

Staphylococcus aureus

18 - 28

6

Proteus vulgaris

16 - 24

7

Dichelobacter (Вacteroides) nodosus

21

8

Actinomyces (Corynebacterium) pyogenes

9 - 15

9

Streptococcus pyogenes

12

10

Peptococcus spp.

11

11

Micrococcus luteus

10

12

Prevotella (Вacteroides) melaninogenicus

7 - 10

13

Clostridium septicum

6 - 10

14

Pseudomonas aeruginosa

3 - 9

15

Вacteroides fragilis

3 - 8

16

Propionibacterium spp.

3 - 7

17

Enterococcus faecalis

4 - 6

18

Clostridium oedematiens

4 - 6

19

Fusebacterium nucleatum

4

20

Bacillus cereus

3 - 4

21

Bifidobacterium bifidum

3

22

Bacillus subtilis

3

23

Veillonella spp.

3

24

Eubacterium spp.

2

25

Flavobacterium spp.

2

26

Pseudomonas putida

1

27

Micrococcus spp.

1

Полученные результаты позволили сделать вывод, что представители гнойно-раневой микрофлоры (C. perfringens, S. aureus, A. pyogenes) в ассоциации с D. nodosus и F. necrophorum значительно усиливают вирулентность последних, позволяя им действием своих ферментов значительно быстрее преодолевать защитные барьеры организма животного и вызывать тяжелые поражения конечностей и внутренних органов, часто приводя к летальному исходу.

Поэтому, на другом этапе исследований были отобраны следующие микроорганизмы: F. necrophorum, D. nodosus, C. perfringens т. А, S. aureus, A. pyogenes для изучения их биологических свойств.

При этом учитывались как культурально-морфологические свойства штаммов F. necrophorum, D. nodosus, C. perfringens т. А, S. aureus, A. pyogenes, так и их биохимические показатели, включая протеолитические и гемолитические, токсигенные, вирулентные и антигенные свойства.

В результате проведенных исследований были описаны свойства: 17 штаммов F. necrophorum, в том числе 10 музейных и 7 вновь выделенных, проведена их типизация и отобраны 4 штамма биотипа «А» для дальнейших экспериментов; 5 штаммов С.perfringens т. А, в том числе 2 музейных и 3 вновь выделенных, из них отобраны 2 штамма; 8 штаммов S. aureus, в том числе 3 музейных и 5 вновь выделенных. Для последующих исследований отобрали 2 штамма; 15 штаммов А. pyogenes, в том числе 5-и музейных и 10-и вновь выделенных. Из этого количества отобрали 5 наиболее перспективных для дальнейших исследований штаммов; 7 штаммов D.nodosus. из которых были отобраны 4 штамма.

Изучение биологических свойств и отбор штаммов позволили перейти к экспериментам, подтверждающим значение ассоциаций указанных микроорганизмов в этиологии инфекционных боленей конечностей.

2.2.1 Экспериментальное подтверждение значения ассоциаций микроорганизмов в этиологии болезней конечностей

С этой целью провели подтитровку культур F. necroforum, А. pyogenes, S. аureus на кроликах и определили LD50 для каждой культуры. После определения LD50 был поставлен основной опыт по подтверждению значения ассоциаций микроорганизмов на кроликах массой 2,0-2,5 кг, где животных заражали культурами F. necrophorum, А. pyogenes, S. aureus и различными вариантами смеси этих культур. Результаты исследований продемонстрировали, что при одинаковом количестве инфекционного материала, использованного для заражения животных, в дозе 4 LD50 кролики, зараженные ассоциациями микроорганизмов в различных вариациях, погибали значительно быстрее по сравнению с животными, зараженными монокультурами. Два кролика, зараженные монокультурами, на период наблюдения остались живыми. На вскрытии животных, зараженных ассоциациями, отмечали поражения, характерные для септического процесса: множественные кровоизлияния во внутренние органы, очаги некроза и абсцессы. Результаты повторного эксперимента, полностью совпали с результатами первого опыта.

На селективных средах из отдельных органов удалось реизолировать и идентифицировать исходные культуры микроорганизмов F. necrophorum, А. рyogenes, S. аureus. Заболевание у кроликов, зараженных ассоциациями, протекало остро, и через 2 - 3 дня животные погибали. На вскрытии отмечали поражения внутренних органов, характерные для сепсиса. Выделение и идентификация культур подтверждали чистоту экспериментов.

На втором этапе исследований для подтверждения значения ассоциаций микроорганизмов в этиологии заболеваний конечностей был поставлен опыт на овцах результаты которого отображает таблица 3.

Таблица 3 Степень проявления болезни в зависимости от состава микробной ассоциации

№ группы

Заражающая культура и штамм

Кол-во овец

Сроки наблюдения и характер поражения конечностей овец

3-е суток

7 суток

11 суток

15 суток

1

D. nodosus ПП 82/90

3

-

1/л

1/л

1/л

2

F. necrophorum шт. Тула шт. Кр-1

3

1/л*

2/л

2/л

2/л

3

A. pyogenes шт. 4/2334

3

-

1/л

2/л

2/л

4

S. aureus шт. 7315

3

-

-

1/л

1/л

5

D. nodosus, F. necrophorum (2 шт.)

3

2/л

1/с

3/с

3/с

3/с

6

D. nodosus, F.necrophorum,

A. pyogenes

S.aureus , C.perfringens т. А

3

3/с

1/с

2/т

1/с

2/т

1/с

2/т

*-числитель - количество заболевших животных, знаменатель - тяжесть поражений: л - легкая степень поражения копытец; с - средняя степень поражения копытец; т - тяжёлая степень поражения копытец.

Для постановки опыта использовали 12 овец и 6 баранов 1,5 - 2 летного возраста. Всех животных разделили на 6 групп по 3 овцы в каждой. Для заражения использовали 36 часовые культуры F. necrophorum, А. pyogenes, S. aureus в дозах, составляющих 20 LD50 для кроликов массой 2,5 - 3 кг. В опыте также использовали 12 часовую культуру C. рerfringens т. А штамма 28 в дозе 100 LD50 для морских свинок массой 250 г. Культуру D. nodosus штамм ПП82/90 использовали в дозе 50 млрд. м.т.

Заражение осуществляли путем втирания инфекционного материала в скарифицированный свод межкопытной щели с последующим наложением тампона, содержащего инфекционный материал и повязки.

Все животные на протяжении опыта содержались в клетках с сухими полами. За животными установили наблюдение в течение 15 дней. Через 3 дня после заражения у всех животных были сняты повязки с инфекцион- ным заражающим материалом и проведен первый осмотр конечностей всех зараженных овец. В последующем осмотры провели на 7, 11 и 15 дни после заражения. Результаты представлены в таб. 4. В опыте отмечали 3 степени поражения и характеризовали их как:

Л - легкая степень поражения; общее легкое угнетение, снижение аппетита, животные иногда поднимают больную конечность в покое, при движении - слабо выраженная хромота. При осмотре: выпадение волос в межкопытной щели, гиперемия и отечность кожи свода межкопытной щели, повышение местной температуры;

С - средняя степень поражения; общее легкое угнетение, гиподинамия, снижение аппетита, выраженная хромота при движении, в покое животное держит больную конечность приподнятой. При осмотре: в области свода межкопытной щели гиперемия, отечность, наличие эрозий и язв, покрытых сероватым экссудатом с ихорозным запахом, повышение местной температуры;

Т - тяжелое поражение; те же клинические признаки поражений, как и при средней тяжести (с), а также поражение основы кожи пяточных частей внутренних стенок копыт и гнойное воспаление основы кожи подошвы, отслоение рогового башмака. Из таблицы 4 видно, что заражение овец монокультурами микроорганизмов не всегда вызывало их заболевания или отмечали в основном легкую степень поражения. Животные, зараженные ассоциациями микроорганизмов, заболели уже на 3 - е сутки после заражения.

В этом случае отмечали среднюю степень поражения у всех зараженных, а у двух баранов отмечена впоследствии тяжелая степень поражения копыт и начато их досрочное лечение. Эксперименты, проведенные на кроликах и овцах, позволили сделать вывод о том, что избранная ассоциация микроорганизмов значительно сильнее угнетает защитные системы организма и в короткие сроки вызывает более тяжелые поражения конечностей животных по сравнению с воздействием монокультур тех же организмов, входящих в состав ассоциаций.

Эти эксперименты подтвердили правомочность концепции создания ассоциированных вакцин против инфекционных болезней конечностей копытных животных.

2.3 Определение оптимальных соотношений антигенов в ассоциированных вакцинах. Изучение конкуренции антигенов в организме животных, привитых ассоциированными вакцинами

С целью определения оптимальных концентраций антигенов для конструирования ассоциированных вакцин были изготовлены инактивированные формалином антигены D.nodosus, F.necrophorum, C.perfringens т. A, S. aureus, A. pyogenes в концентрациях 10, 20, 40 млрд. микробных клеток в мл , которыми иммунизировали 36 овец 1,5 - 2 летнего возраста. По уровню гуморальных антител в РА подбирали оптимальные концентрации для составления опытных серий ассоциированных вакцин. В результате проведенных исследований были установлены следующие концентрации антигенов для составления опытных серий ассоциированных вакцин: F. necrophorum и D.nodosus 20 млрд. м.т./мл,S.aureus, C. perfringens т. А, A. рyogenes - 30 - 40 млрд. м.т./мл. Конкуренцию антигенов изучали также на овцах, которых прививали моновакцинами из указанных штаммов на ГОА адъюванте и экспериментальной ассоциированной вакциной с этим же адъювантом. Количество каждого антигена в ассоциированной вакцине и моновакцинах было одинаковым. О наличии или отсутствии конкуренции антигенов судили по титру специфических агглютининов и токсиннейтрализующих антител. Результаты исследований приведены в табл. 4.

Исследования позволили установить факт отсутствия конкуренции указанных антигенов в организме привитых овец. Уровни антител, стимулируемых каждой валентностью (антигеном) ассоциированной вакцины в сравнении с уровнем антител, стимулируемых моновакцинами, были примерно одинаковыми и даже несколько большими у ассоциированной вакцины по некоторым валентностям.

Проведенные исследования позволили перейти к изготовлению опытных серий ассоциированных вакцин против инфекционных болезней конечностей овец и некробактериоза КРС и их испытаниям в неблагополучных по этим болезням овцеводческих и животноводческих хозяйствах.

2.4 Испытания опытных образцов ассоциированных вакцин против инфекционных болезней конечностей овец и некробактериоза КРС. Разработка схемы применения ассоциированных вакцин

Испытание опытной серии инактивированной ассоциированной вакцины против инфекционных заболеваний конечностей овец с масляным адъювантом, провели в сравнении с Югославской ассоциированной вакциной «Памавак» и отечественной моновакциной против копытной гнили овец в совхозе «Кузнецовский» Тверской области. В свою очередь, в совхозе «Мир» Рузаевского района Республики Мордовия испытывались несколько вариантов инактивированной вакцины против инфекционных заболеваний конечностей овец с различными адъювантами и антигенным составом. Аналогично в совхозе «им. Кирова» Балашихинского района Московской области были испытаны несколько вариантов инактивированной ассоциированной вакцины против некробактериоза КРС с лечебной и профилактической целями, включая вариант вакцины с им- муномодулятором «Гликопин» (ГМДП), в сравнении с Югославской ассоциированной вакциной «Памавак» на 170 головах крупного рогатого скота.

Таблица 4 Результаты сравнительного испытания ассоциированной вакцины и моновакцин

Сроки исследований

Средние титры в РА и РН

Средние титры в РА и РН

моновакцины.

ассоциированная вакцина

D. nodosus

F. necrophorum

S. aureus

A. pyogenes

C.perfringens т. А

D. nodosus

F. Necrophorum

S. aureus

A. pyogenes

C.perfringens т. А

До вакцинации, 1-я вакцинация

1:60

±5

1:80

±5

1:70

±5

1:50

±0

-

1:80

±5

1:80

±5

1:70

±5

1:50

±0

-

Через 1 мес после 1-й вакцинации, 2-я вакцинация

1:200

±0

1:480

±40

1:200

±0

1:60

±5

0,24

1:280

±40

1:1920

±200

1:240

±20

1:60

±5

0,88

Через 2 недели после 2-й вакцинации

1:960

±30

1:1660

±0

1:360

±20

1:160

±10

0

1:1600

±0

1:3840

±800

1:480

±40

1:240

±10

1,72

Через 1 мес после 2-й вакцинации

1:480

±40

1:2240

±300

1:400

±0

1:360

±20

0,5

1:1040

±80

1:2240

±300

1:480

±4

1:480

±40

-

Через 2 мес после 2-й вакцинации,

1:400

±0

1:1920

±180

1:320

±20

1:150

±10

-

1:960

±30

1:1920

±200

1:360

±20

1:200

±0

-

Через 3 мес после 2-й вакцинации

1:150

±10

1:960

±30

1:150

±10

1:50

±0

-

1:720

±20

1:1600

±0

1:280

±40

1:80

±5

-

Впоследствии, лучшим вариантом вакцины против некробактериоза КРС было привито все поголовье (1347 коров) этого хозяйства. Другой вариант (эмульгированной) опытной серии инактивированной ассоциированной вакцины против некробактериоза КРС был испытан на 381 голове КРС в совхозе «Луховский» Октябрьского района г. Саранска. В дальнейшем в совхозе «Барыбино» опытно-промышленной серией инактивированной ассоциированной вакцины против некробактериоза КРС с ГОА адъювантом, было привито 32 коровы различными дозами этого препарата. В этом хозяйстве были исследованы также некоторые параметры иммунитета, стимулируемого этой вакциной.

В результате проведенных исследований было установлено, что вакцинация животных инактивированными ассоциированными вакцинами против инфекционных заболеваний конечностей овец и некробактериоза КРС является эффективным методом борьбы с этими болезнями. Их эффективность оказалась выше, чем у Югославской ассоциированной вакцины «Памавак» и эмульгированной моновакцины против копытной гнили овец. В итоге, в качестве адъюванта был выбран 3% ГОА как менее реактогенный по сравнению с масляным и дешевый. Наиболее эффективной оказалась двукратная иммунизация животных с интервалом 28 - 30 дней при подкожном введении в области коленной складки для КРС и в области нижней трети шеи для овец в дозах по 5 мл на 1 голову животного.

Срок иммунитета, стимулируемого этими вакцинами не превышал 6 месяцев, поэтому перспективной являлась однократная реиммунизация через 5-6 месяцев после второй вакцинации для поддержания иммунитета у привитых животных.

Инактивированная ассоциированная вакцина против инфекционных заболеваний конечностей овец получила название «Овикон», а инактивированная ассоциированная вакцина против некробактериоза конечностей КРС - «Нековак».

2.5 Разработка методов контроля ассоциированных вакцин

За основу лабораторных методов контроля вакцин «Овикон» и «Нековак» брали существующие стандартные методики: отбор проб по ОСТ 10-07-001-93, определение внешнего вида визуально, определение стерильности согласно ГОСТ 28085-89 - «Препараты биологические. Метод бактериологического контроля стерильности». При этом в питательных средах с посевами и пересевами не должно быть визуальных признаков роста микрофлоры. Определение безвредности проводили также по стандартной методике, используя 10 белых мышей и двух кроликов, при подкожном введении в соответствующих дозах. Вакцины считали безвредными, если животные в течение 10 суток оставались живы и клинически здоровы. Допускалось образование в местах введения вакцин припухлостей различной величины. Принципиально важным и сложным стал вопрос о разработке методов контроля антигенной и иммуногенной активности ассоциированных вакцин «Овикон» и «Нековак» ввиду большого количества антигенов и анатоксинов входящих в их состав. Ранее, нами в качестве лабораторного контроля антигенной активности вакцины против копытной гнили овец инактивированной эмульгированной был разработан метод определения антител в РА у вакцинированных кроликов. Предварительно нами были изучены вирулентные и иммуногенные свойства D. nodosus на лабораторных моделях. В результате исследований было установлено, что лабораторные животные (кролики, белые мыши, морские свинки и другие) не чувствительны к D. nodosus. При различных методах заражения и дозах культуры D. nodosus не вызывали заболевания и падежа лабораторных животных (Панасюк С.Д., 1982). Однако, нами было экспериментально установлено, что динамика накопления антител в крови вакцинированных кроликов в половинных дозах (от дозы овцы) повторяет динамику накопления агглютининов у привитых овец только на более низком уровне соответственно 1:720-1:880 и 1:2133-1:2533 на пике накопления. При этом коэффициент корреляции был в высокой степени положительным (r=+0,83-+ 0,99). Это позволило использовать кроликов в качестве лабораторной модели контроля антигенной активности вакцины против копытной гнили овец ВИЭВ инактивированной эмульгированной (Панасюк С.Д. 1982, 1983). Предложенный метод прошел проверку на Орской и Армавирской биофабриках и надежно обеспечивал качество указанной вакцины до момента снятия её с производства. Учитывая тот факт, что в состав вакцины «Овикон» входит антиген D. nodosus, мы использовали указанный метод контроля антигенной активности этой валентности на кроликах в тех же параметрах, как и у вакцины против копытной гнили овец. Более того, учитывая потерю вирулентных свойств культур F. necrophorum (быструю потерю вирулентных свойств культур при пересевах на жидких питательных средах и возможность образования L-форм). Нами были проведены сравнительные исследования по определению динамики антител у вакцинированных кроликов, овец и КРС. Результаты исследований показали, как для валентности D. nodosus, так и для валентности F. necrophorum имеется возможность использовать кроликов в качестве лабораторной модели для оценки антигенной активности вакцин. Корреляция титров агглютининов у вакцинированных кроликов и овец, а также у привитых кроликов и КРС была очень высокой и соответственно составляла r=+0,97 и r=+ 0,99,что показано в таблице 5. Полученные результаты позволили нам расширить эксперимент и продолжить использовать кроликов в качестве лабораторной модели антигенной активности вспомогательных валентностей S. aureus, C. perfringens т. А, A. pyogenes ассоциированных вакцин «Овикон» и «Нековак».

Таблица 5 Сравнительное антителообразование у вакцинированных (валентность F.necrophorum) кроликов, овец, КРС

Вакцины,

Животные,

Дозы,

Сроки исследований

Двукратная доза (мл)

Количество животных (гол.)

Сроки исследований

Коэффициент корреляции ®

Средние титры агглютининов в РА

До 1-й вакцинации

1-я вакцинация

1 месяц после

1-й вакцинации

2-я вакцинация

2 недели после 2-й вакцинации

1 месяц

после 2-й вакцинации

2 месяца

после 2-й вакцинации

Вакцина «Овикон»,

Кролики

4

10

1:70±10

1:560±30

1:1440±40

1:1360±60

1:1200±30

Вакцина «Овикон», Овцы

10

10

1:100±0

1:1520±60

1:2560±120

1:2480±80

1:2240±40

+0.97

Вакцина «Нековак»

Кролики

4

10

1:95±5

1:960±30

1:1360±90

1:1440±40

1:1280±60

Вакцина «Нековак»,

КРС

10

10

1:120±10

1:1680±80

1:3840±210

1:3840±210

1:3040±180

+0.99

Полученные результаты позволили установить тот факт, что привитые вакцинами «Овикон» и «Нековак» кролики могут быть лабораторной моделью оценки антигенной активности валентностей S. aureus, C.perfringens т. А, А. pyogenes в реакции нейтрализации (РН), о чем убедительно свидетельствовали в высокой степени коэффициенты корреляции (r= +0,97 - +0,99).

Результаты проведенных экспериментов легли в основу создания временной нормативной документации (НД) на инактивированную ассоциированную вакцину против некробактериоза конечностей КРС «Нековак» и на инактивированную ассоциированную вакцину против инфекционных заболеваний конечностей овец «Овикон», включающую временное наставление, временную инструкцию по изготовлению и контролю и временные технические условия (ТУ).

2.6 Изучение некоторых параметров иммунитета при применении инактивированных ассоциированных вакцин «Нековак», «Нековак-стимул» и «Овикон»

С целью изучения некоторых параметров иммунитета, стимулируемых ассоциированными вакцинами «Овикон» и «Нековак» с руководством и специалистами Курской биофабрики в 1994 году были согласованы вопросы технологии изготовления опытно-промышленной серии вакцин «Овикон» и «Нековак», общим объемом 45000 доз. Одновременно, после согласования вопросов технологии изготовления, выпуск опытно-промышленных серий начался на Ставропольской биофабрике. В период с 1994 по 1996 годы Ставропольской биофабрикой было выпущено 3 опытно-промышленных серии вакцины «Нековак» общим объемом 850 литров (175000 доз) и 4 серии вакцины «Овикон» объемом 1118,6 л (223720 доз).

Изучение некоторых параметров иммунитета, стимулируемых ассоциированными вакцинами «Нековак», «Нековак-стимул» (вакцина «Нековак» с иммуномодулятором ГМДП) и «Овикон», провели по составленной программе исследований. Она предусматривала испытание вакцины «Нековак-стимул» в двух неблагополучных по некробактериозу КРС хозяйствах Ленинского района Тульской области: агрофирмах «Иван-Озеро» и «Саженец» - на всем поголовье КРС (635 голов) этих хозяйств и вакцин «Нековак» и «Нековак-стимул» с СХПК ПЗ «Барыбино» Домодедовского района Московской обл. на 221 корове. При этом вакциной «Нековак-стимул» привили 20 здоровых коров, для оценки некоторых параметров клеточного иммунитета и его сопоставления с аналогичными показателями иммунитета, стимулируемого вакциной «Нековак».

Комиссионное испытание опытно-промышленной серии вакцины «Овикон» провели на 1234 головах мелкого рогатого скота в ГПЗ «Котовский» Пронского района Рязанской области, неблагополучного по копытной гнили и некробактериозу овец, в наиболее сильно пораженных отарах баранов-производителей и овцематок племъядра, где заболеваемость конечностей соответственно составляла до начала эксперимента 30,0 и 10,3%. Обе вакцинированные отары составили примерно половину всего поголовья овец хозяйства.

В хозяйствах, где испытывали опытно-промышленные серии вакцин «Овикон» и «Нековак», контрольные и вакцинированные животные содержались в одинаковых условиях. Выпасались и выгуливались совместно.

Результаты представлены в таблицах 6, 7.

Итоги экспериментов по изучению некоторых параметров иммунитета, стимулируемых ассоциированными вакцинами «Нековак», «Нековак-стимул» и «Овикон» показывают, что указанные препараты вызывали в организме привитых животных значительное повышение иммунного статуса, выражающегося выработкой как гуморального, так и клеточного иммунитета. Поствакцинальный иммунитет сопровождался значительны ростом титров специфических агглютининов, которые с достоверностью 99% (Р <0,01) в средней и высокой степени находятся в обратной коррелятивной связи с заболеваемостью конечностей у привитых животных. Пик выработки специфических гуморальных тел наблюдались через 2-3 недели после второй вакцинации.

Так, при применении вакцины «Нековак-стимул» агрофирме «Иван-Озеро», титры специфических агглютининов увеличились с 1:200 в начале испытания, до 1:2240 через 3,5 месяца после второй вакцинации, т.е. увеличились в 11,2 раза. В этот период заболеваемость КРС резко снизилась с 58,4% в начале опыта до 4,4% в конце исследований, т.е. в 13,3 раза. Коэффициент корреляции (r) по результатам опыта составил с достоверной вероятностью 99% (Р <0,01) величину (-0,88). Это указывает на наличие высокой степени обратной коррелятивной связи между величиной титров специфических агглютининов и заболеваемостью конечностей животных.

Аналогичные результаты были получены при испытании вакцины «Нековак-стимул» в агрофирме «Саженец», где при увеличении титров гуморальных антител в РА с 1:230 до 1:3680, т.е. в 16 раз, уровень заболеваемости животных некробактериозом снизился с 83% до 0,6% в 138,3 раза, т.е. хозяйство было практически оздоровлено от этой инфекции. Коэффициент корреляции (r) составил (-0,57), что подтверждает наличие обратной корреляционной связи между величиной титров агглютининов и заболеваемостью некробактериозом животных средней степени.

В тоже время, в СХПК ПЗ «Барыбино» во время испытания опытно-промышленной серии вакцины «Нековак», при росте титров агглютининов в 10,4 раза (с 1:370 до 1:3840) заболеваемость некробактериозом снизилась с 31,7% до 3,0% т.е. в 10,6 раза, что с достоверной вероятностью 99% подтвердило наличие обратной коррелятивной связи между титрами агглютининов и заболеваемостью животных некробактериозом (r=-0,98) в высокой степени. В этом эксперименте, как и в предыдущих опытах, отмечали увеличение всего пула лимфоцитов. Несколько большее увеличение Т- и В- лимфоцитов констатировали у коров, привитых вакциной «Нековак-стимул», соответственно на 7,13 и 5,09% по сравнению с первоначальным уровнем. У животных, привитых вакциной «Нековак» количество Т- и В- лимфоцитов увеличилось соответственно на 4,7 и 3,83%. В контрольной группе уровень Т- и В- лимфоцитов оставался в пределах физиологической нормы.

Результаты опыта, отображенные в табл. 7, свидетельствуют о нарастании интенсивности фагоцитоза в группах, где использовались вакцины «Нековак» и «Нековак-стимул», в то время как в контрольной группе этого не произошло.

Данные табл. 7 свидетельствуют также об увеличении концентрации в крови вакцинированных животных иммуноглобулинов классов G и М. Максимальный рост иммуноглобулинов наблюдали через 1 месяц после второй вакцинации. В этот период Ig G у привитых вакциной «Нековак-стимул» составили величину 24,06±0,95 мг/мл, что на 10,6% больше первоначальной величины. У коров, иммунизированных вакциной «Нековак», иммуноглобулины G увеличивалась на 8,4% и достигли величины 23,68±0,85 мг/мл. Анологично увеличивалась концентрация Ig M.

Результаты эксперимента убедительно показали, что вакцина «Нековак» стимулировала у привитых животных выработку первичного и вторичного напряженного поствакцинального гуморального и клеточного иммунитета и обладала лечебным действием. Применение вакцины «Нековак» в СХПК ПЗ «Барыбино» позволило в 10,6 раза снизить заболеваемость привитых животных некробактериозом и свести её до единичных случаев.

При испытании опытно-промышленной серии инактивированной ассоциированной вакцины «Овикон» в ГПЗ «Котовский» на группе баранов-производителей и овцематок, мы наблюдали теже закономерности, что и при испытании вакцин «Нековак» и «Нековак-стимул» на КРС.

Так, в группе баранов-производителей, привитых вакциной «Овикон», титры гуморальных антител увеличились по валентности D. nodosus с 1:120 до 1:2160, т.е. в 32,0 раза, а по валентности F. necrophorum с 1:120 до 1:3760, т.е. в 37,6 раза через месяц после второй вакцинации. В указанные сроки заболеваемость копытной гнилью и некробактериозом в группе баранов-производителей снизилась с 30,5 до 6%, т.е. в 5 раз.

В группе привитых овцематок племъядра титры специфических антител с начала испытания выросли по валентности D. nodosus с 1:120 до 1:2320, т.е. в 19,3 раза, а по валентности F. necrophorum с 1:110 до 1:3200, т.е. в 32,0 раза. Заболеваемость конечностей у привитых овцематок в те же периоды снизилась с 10,3% до 3,4%, т.е. в 3,0 раза. Результаты исследова ний подтвердили наличие обратной коррелятивной связи с достоверностью 99% между уровнем титров специфических агглютининов и заболеваемостью копытной гнилью и некробактериозом в группе баранов-производителей высокой степени по валентности D. nodosus (r=-0.82), а по валентности F. Necrophorum (r=-0.90).

Таблица 6 Результаты испытания вакцины против некробактериоза КРС (Нековак) в СХПК ПЗ «Барыбино» Домодедовского района, Московской области

Наименование

препарата

Группа

Сроки исследований

До вакцинации

1-я вакцинация

1 месяц после 1-й вакцинации

2-я вакцинация

Количество больных животных

%

Количество здоровых животных

%

Всего животных

Средние титры антител в РА

Количество больных животных

%

Количество здоровых животных

%

Всего животных

Достовер-ность (Р)

Средние титры антител в РА

Ассоции-рованная вакцина (Нековак)

32

31,7

69

68,3

101

1:370±45

15

15,3

83

84,7

98

P < 0,02

1:1920±160

Непривитые

Контроль

38

31,7

82

68,3

120

1:370±40

37

30,6

84

69,4

121

1:400±65

Ассоцииро-ванная вакцина (Нековак)

3

3

98

97

101

P < 0,01

1:3840 ±320

3

3,4

86

96,6

89

P < 0,01

1:3680 ±260

r = (-0,98)

Непривитые Контроль

32

28,8

79

71,2

111

1:400 ±40

35

30,7

79

69,3

114

1:400±45

Таблица 7 Основные параметры иммунного статуса коров, привитых вакцинами против некробактериоза КРС «Нековак» и «Нековак-стимул» в СХПК ПЗ «Барыбино» Домодедовского района Московской области

Количество животных (n)=20, достоверность Р< 0,01

Препараты, сроки исследований

Показатели

Вакцина «Нековак»

Вакцина «Нековак-стимул»

До вакцинации

1-я вакцинация

1 месяц после 1-й вакцинации

2-я вакцинация

1 месяц после

2-й вакцинации

До вакцинации

1-я вакцинация

1 месяц после 1-й вакцинации

2-я вакцинация

1 месяц после

2-й вакцинации

Иммуно-глобулины

Ig G

21,841,06

22,250,95

23,680,85

21,750,84

23,821,48

24,061,53

Ig M

2,180,21

2,230,34

2,780,2

2,120,02

2,630,3

3,120,32

Популяции Лимфоцитов (%)

B-

42,658,17

45,638,45

47,365,17

41,956,14

47,135,36

49,089,42

T-

20,742,04

22,092,36

24,573,85

20,343,28

24,212,13

25,432,85

Фагоцитарная активность ФА (%)

49,357,05

51,536,75

54,087,04

49,746,36

52,885,35

56,178,14

Фагоцитарное число ФЧ (м.т.)

6,872,23

7,751,44

9,172,15

6,741,34

8,161,05

10,341,26

Фагоцитарный индекс ФИ (м.т.)

3,820,95

4,170,98

6,260,94

3,791,14

6,681,15

7,641,75

У привитых овцематок племъядра наблюдалась обратная коррелятивная связь между этими показателями средней степени по валентности D. nodosus (r=-0,57), а по валентности F. necrophorum коэффициент корреляции r был равен (- 0,66).

При изучении некоторых параметров клеточного иммунитета у животных, привитых указанными препаратами, максимально увеличивалась концентрация иммуноглобулинов классов G и М. У привитых животных отмечали увеличение всего пула лимфоцитов, как тимусзависимых, так и бурсазависимых. Особенно значительным оно было на 14 - 30 день после второй вакцинации. Иммунизация указанными препаратами также стимулировала у вакцинированных животных интенсивность фагоцитоза нейтрофилов. Основные показатели фагоцитоза: фагоцитарная активность, фагоцитарное число и фагоцитарный индекс - достигли максимума на 14 день после вакцинации. На этом фоне все показатели иммунного статуса контрольных животных оставалась в пределах физиологической нормы.

Иммунизация вакцинами «Нековак», «Нековак-стимул» и «Овикон» сопровождалась выраженным лечебным эффектом, проявляющимся в легком переболевании привитых животных, их быстром выздоровлении и отсутствии случаев рецидивов заболевания.

Доказательство иммуногенности указанных вакцин позволило поставить вопрос об их промышленном выпуске и создании промышленной технологии изготовления.

2.7 Промышленная технология изготовления ассоциированных вакцин «Нековак» и «Овикон»

Успешное испытание опытно-промышленных серий вакцин «Нековак», «Нековак-стимул» и «Овикон» в неблагополучных по инфекционным болезням конечностей хозяйствах, позволило перейти на серийное примышленное производство указанных препаратов.

Общая схема технологического процесса изготовления указанных вакцин состоит из следующих стадий, представленных в табл. 10.

Технология, разработанная при создании опытно-промышленных серий вакцин «Нековак» и «Овикон» в 1994-1996 гг., предусматривала культивирование анаэробных штаммов F. necrophorum, D. nodosus, C. perfringens т. А на жидких питательных средах из натурального сырья. Аэробные культуры S. aureus и A. pyogenes выращивали на плотных питательных средах - 2,5% агаре Хоттингера в 1,5 л. матрасах.

Технология изготовления последних двух валентностей вакцин являлась весьма трудоемкой, с высокими материальными затратами и низким выходом бактериальной массы. По нормативно-технической документации F. necrophorum и D. nodosus выращивалась на питательной среде, состоящей из смеси печеночного экстракта и одного из переваров мяса (ферментативного или казеинового) в соотношении 1:3. Это очень дорогостоящая среда.

Таблица 8 Испытание опытно-промышленной серии ассоциированной вакцины против инфекционных заболеваний конечностей овец «Овикон» в ГПЗ «Котовский» Пронского района Рязанской области

Сроки

исследований

Группы

До вакцинации

1 месяц после 1-й вакцинации

2-я вакцинация

1 месяц после 2-й вакцинации

Количество больных

%

Количество здоровых

%

Всего овец

Титры в PA D.nodosus

Титры в РА F.necrophorum

Количество больных

%

Количество здоровых

%

Всего овец

Титры в PA D.nodosus

Титры в РА F.necrophorum

Достоверность (Р)

Количество больных

%

Количество здоровых

%

Всего овец

Титры в PA D.nodosus

Титры в РА F.necrophorum

Достоверность (Р)

Коэффициент

корреляции (r)

D.nodosus

F.necro-phorum

Привитые бараны-производители

15

30

35

70

50

1:120

1:100

15

30

35

70

50

1:1280

1:1680

P<0,01

3

6

47

94

50

1:2160

1:3760

P<0,01

-0,82

-0,9

Привитые овцематки племъядра

55

10,3

477

89

532

1:120

1:100

70

14

410

86

480

1:1360

1:1520

P<0,01

18

3,4

499

96,4

517

1:2320

1:3200

P<0,01

-0,57

0,66

Контроль

Непривитые

23

3,5

629

96,5

652

1:120

1:100

44

7

608

93

652

1:150

1:125

114

19

488

81

602

1:115

1:130

Таблица 9 Основные параметры иммунного статуса овец, привитых ассоциированной вакциной против инфекционных заболеваний конечностей «Овикон» в ГПЗ «Котовский» Пронского района Рязанской области

Достоверность Р<0,01

Сроки

исследований

Показатели

Вакцина «Овикон»

Контроль (Непривитые)

До вакцинации

1 месяц после 1-й вакцинации

2-я вакцинация

1 месяц после 2-й вакцинации

До начала опыта

1 месяц после начала опыта

1 месяц после начала опыта

Иммуно-глобулины Jg (мг/мл)

Ig G

17,241,15

18,241,34

19,632,05

16,981,05

17,081,20

17,061,05

Ig M

1,570,40

1,980,18

2,270,21

1,520,35

1,610,09

1,610,46

Популяции Лимфоцитов (%)

B-

23,730,96

26,151,17

28,931,68

23,851,17

23,921,05

23,871,05

T-

12,040,85

14,581,15

17,122,04

12,360,75

12,740,98

12,450,95

Фагоцитарная активность ФА (%)

26,221,29

31,442,15

32,752,05

26,431,15

26,720,85

27,150,98

Фагоцитарное число ФЧ (м.т.)

4,851,75

5,870,97

6,141,24

4,881,05

5,910,95

5,921,05

Фагоцитарный индекс ФИ (м.т.)

4,380,98

5,731,15

6,521,05

4,390,95

4,510,85

4,481,05

Рисунок 1 Технологическая схема производства инактивированных ассоциированных вакцин: против некр...


Подобные документы

  • Основные формы клинического проявления болезней конечностей у крупного рогатого скота. Современные данные об этиологии и патогенезе заболевания копытец. Новые методы и препараты, применяемые при лечении некробактериоза, его специфическая профилактика.

    курсовая работа [54,0 K], добавлен 24.01.2009

  • Проведение эпизоотологического анализа при лейкозе крупного рогатого скота. Разработка мероприятий по профилактике и ликвидации болезни среди молочного скота фермерского хозяйства. Обнаружение у крупного рогатого скота клинических признаков болезни.

    презентация [2,9 M], добавлен 20.03.2019

  • Понятие о конституции, экстерьере и интерьере крупного рогатого скота. Способы оценки крупного рогатого скота по экстерьеру и конституции. Линейный метод оценки телосложения молочного крупного рогатого скота. Метод глазомерной оценки, фотографирование.

    курсовая работа [701,9 K], добавлен 11.02.2011

  • Эпизоотологические особенности хламидиоза крупного рогатого скота в Республике Беларусь. Клинические признаки и патологоанатомические изменения. Мероприятия по его предупреждению и ликвидации. Эффективность вакцин, применяемых при профилактике хламидиоза.

    автореферат [35,8 K], добавлен 20.04.2012

  • Методы диагностики, дифференциальная диагностика и лечение при эмфизематозном карбункуле крупного рогатого скота. Лейкоз крупного рогатого скота. Определение, распространение, экономический ущерб и этиология, течение и симптомы цирковирусной болезни.

    контрольная работа [25,7 K], добавлен 20.04.2012

  • Основные причины, способствующие возникновению вирусных желудочно-кишечных болезней молодняка крупного рогатого скота. Эпизоотологические особенности вирусных желудочно-кишечных болезней молодняка крупного рогатого скота, их клинические признаки.

    курсовая работа [43,7 K], добавлен 15.04.2012

  • Анатомо-морфологические особенности фасциол. Их биологический цикл развития. Фасциолез как трематодозное заболевание крупного рогатого скота. Эпизоотология фасциолеза, его течение и симптомы. Патогенное воздействие возбудителя на крупного рогатого скота.

    курсовая работа [27,5 K], добавлен 16.04.2010

  • Анатомическое строение пальцев и копытец крупного рогатого скота. Эпизоотическая обстановка хозяйства в прошлом ЗАО "Агрофирма "Лебедевская". Клиническая картина некробактериоза, патолого-анатомические изменения. Показатели экономического ущерба.

    курсовая работа [763,3 K], добавлен 25.06.2013

  • Совершенствование работ по воспроизводству стада крупного рогатого скота и повышение эффективности в хозяйствах Брестской области. Мероприятия по диагностике, лечению и профилактике акушерско-гинекологической патологии у коров. Акушерские болезни коров.

    курсовая работа [56,5 K], добавлен 16.04.2012

  • Общая характеристика крупного рогатого скота, распространенного в исследуемом хозяйстве. Описание характеристики по одной основной породе крупного рогатого скота и овец, разводимых в зоне расположения хозяйства. Влияние кормления животных на их развитие.

    контрольная работа [30,4 K], добавлен 19.06.2014

  • Ветеринарные мероприятия по профилактике и ликвидации внутренних незаразных болезней. Экономические потери хозяйства при тимпании крупного рогатого скота. Клинические признаки острого расширения рубца, меры борьбы, диагностика, профилактика и лечение.

    курсовая работа [57,5 K], добавлен 28.07.2010

  • Краткая характеристика породы крупного рогатого скота, его экстерьерные особенности и продуктивные показатели в условиях Западной Сибири. Технологические карты содержания поголовья крупного рогатого скота на ферме. Кормление разных половозрастных групп.

    курсовая работа [52,3 K], добавлен 05.05.2009

  • Технология кормления и содержание крупного рогатого скота. Анализ разведения в хозяйстве породы. Технология кормления крупного рогатого скота в хозяйстве. Особенности организации труда и ухода. Охрана окружающей среды от загрязнения отраслью скотоводства.

    курсовая работа [28,9 K], добавлен 12.09.2012

  • Условия содержания и кормления скота в хозяйстве. Организация работы ветеринарной службы. Эпизоотология и инфекционные болезни с ветеринарной санитарией. Ликвидация лейкоза в ГУП ПС "Пашинский", меры по профилактике болезни крупного рогатого скота.

    курсовая работа [57,2 K], добавлен 05.04.2013

  • Распространение и экономический ущерб от лейкоза крупного рогатого скота. Возбудители вирусной инфекционной болезни, ее проявления и стадии развития. Клинические признаки, патологоанатомические изменения. Мероприятия по профилактике и ликвидация лейкоза.

    реферат [26,7 K], добавлен 15.02.2012

  • Техническая характеристика, описание рабочих процессов и виды кормораздатчиков для крупного рогатого скота и свиней: односторонние и двухсторонние, одноосные и двухосные. Кормовые рационы и цеха для приготовления общесмешанных кормовых смесей для скота.

    реферат [23,6 K], добавлен 15.04.2014

  • Изучение особенностей лейкоза крупного рогатого скота, инфекционной болезни с длительным инкубационным периодом. Анализ организации ветеринарного обслуживания и санитарной характеристики предприятия. Обзор патогенеза, методов профилактики и лечения.

    курсовая работа [54,8 K], добавлен 29.03.2012

  • Губкообразная энцефалопатия как инфекционная медленно развивающаяся прионная трансмиссивная болезнь взрослого крупного рогатого скота. Распространение, этиология, течение и симптомы болезни. Диагностика, лечение, мероприятия по профилактике и ликвидации.

    реферат [38,8 K], добавлен 13.02.2012

  • Рассмотрение системы органов пищеварения крупного рогатого скота. Описание строения ротовой полости, слюнных желез, миндалин, гортани, пищевода, печени. Видовые особенности кишок животного. Характеристика процесса всасывания питательных веществ.

    презентация [4,7 M], добавлен 24.12.2015

  • Описание демодекоза крупного рогатого скота как инвазионной болезни, вызываемой паразитированием условно патогенного клеща. Жизненный цикл возбудителя и эпизоотология заболевания. Диагностика, профилактика, терапия и методы борьбы с демодекозом скота.

    контрольная работа [19,2 K], добавлен 19.02.2011

Работы в архивах красиво оформлены согласно требованиям ВУЗов и содержат рисунки, диаграммы, формулы и т.д.
PPT, PPTX и PDF-файлы представлены только в архивах.
Рекомендуем скачать работу.