Иммунобиохимическое, микробиологическое, морфофункциональное обоснование применения целлюлозосодержащих продуктов зернопереработки после твердофазной бактериальной ферментации при выращивании телят и гусей

Размещено на http://www.allbest.ru/

16.00.03 - ветеринарная микробиология, вирусология, эпизоотология, микология с микотоксикологией и иммунология

Автореферат

диссертации на соискание ученой степени

доктора биологических наук

Иммунобиохимическое, микробиологическое, морфофункциональное обоснование применения целлюлозосодержащих продуктов зернопереработки после твердофазной бактериальной ферментации при выращивании телят и гусей

Карпова Галина Викторовна

Уфа 2009

Работа выполнена в ФГОУ ВПО «Оренбургский государственный университет» и ФГОУ ВПО «Башкирский государственный аграрный университет»

Научный консультант: доктор биологических наук, профессор Маннапова Рамзия Тимергалеевна

Официальные оппоненты: доктор биологических наук, профессор Янгуразова Земфира Ахметовна

доктор биологических наук, профессор Щербаков Анатолий Анисимович

доктор биологических наук, профессор Малик Нина Ивановна

Ведущая организация - ФГОУ ВПО «Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии им. К.И.Скрябина»

Защита диссертации состоится на заседании диссертационного совета Д 220.003.03 в ФГОУ ВПО «Башкирский государственный аграрный университет» по адресу: 450001, г. Уфа, ул. 50 лет Октября, 34.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ФГОУ ВПО «Башкирский государственный аграрный университет».

Ученый секретарь диссертационного совета, доктор сельскохозяйственных наук, профессор М.Г. Гиниятуллин

Общая характеристика работы

Актуальность темы. В последние годы ведутся исследования по разработке рациональных способов утилизации целлюлозосодержащих отходов с применением физической, химической и экструзионной обработки (С.В. Антимонов с соавт., 2005, 2007; Д.С. Кобыльник с соавт., 2006, 2007; Т.М. Крахмалева, 2007; Е.Г. Прошкина с соавт., 2007; М.А. Студянникова, 2005, 2007; В.А. Трофимов, 2007; Т.Н. Холодилина с соавт., 2007; Чан Ван Чи с соавт., 2007). Лузга подсолнечника, шелуха проса и гречихи, как побочные продукты зернопереработки, могут использоваться после предварительной твердофазной ферментации с использованием бактерий- продуцентов целлюлолитических ферментов. Оптимальным для твердофазной ферментации таких отходов является применение смешанных бактериальных заквасок из целлюлолитических, пептозосбраживающих молочнокислых и пропионовокислых бактерий (ЦЛБ+ ПМК+ПКБ) в соотношении 2,5: 1: 1. В консервированных средах это значительно повышает содержание молочной и пропионовой кислот, белка, витаминов, увеличивает переваримость протеина, жира, органических кислот и целлюлозы, повышает питательность полученного корма (содержание кормовых единиц). Этому способствуют значительные деструкции растительного сырья под воздействием бактериальных заквасок.

Однако до настоящего времени не изученными остаются вопросы влияния этих продуктов на иммунологические, микробиологические, биохимические, морфологические, продуктивные показатели животных и птиц.

Целью исследований явилось изучение влияния целлюлозосодержащего сырья: лузги подсолнечника, шелухи проса, гречихи, после твердофазной бактериальной ферментации ЦЛБ, ПМК и ПКБ (2,5:1:1) на иммунологические, микробиологические, биохимические, морфофункциональные процессы и продуктивные показатели в организме телят и гусей.

В задачи исследований входило:

1. Установить влияние целлюлозосодержащего сырья (лузги подсолнечника, шелухи проса и гречихи) после твердофазной бактериальной ферментации ЦЛБ, ПМК, ПКБ на гематологические показатели и состояние естественной резистентности телят и гусей

2. Определить влияние лузги подсолнечника, шелухи проса и гречихи после твердофазной бактериальной ферментации ЦЛБ, ПМК, ПКБ на показатели Т- и В-систем иммунитета телят и гусей, со сравнительной оценкой:

а) динамики изменения содержания Т-Е-РОК-лимфоцитов, Т-хелперов, Т-супрессоров и В-ЕАС-лимфоцитов в крови телят и гусей,

б) динамики изменения содержания Т-Е-РОК и В-ЕАС-лимфоцитов в селезенке, лимфатических узлах и Т-Е-РОК-лимфоцитов в тимусе телят,

в) динамики изменения содержания Т-Е-РОК и В-ЕАС- лимфоцитов в селезенке и Т-Е-РОК- лимфоцитов в тимусе гусей,

г) динамики изменения содержания В-ЕАС-лимфоцитов в сумке Фабрициуса и гардеровой железе гусей.

3. Провести сравнительное исследование влияния целлюлозосодержащих кормов после твердофазной бактериальной ферментации на динамику изменения содержания в крови телят сывороточных иммуноглобулинов (IgG, IgM, IgE) и циркулирующих иммунных комплексов (ЦИК).

4. Установить иммуноморфологические изменения в центральных и периферических органах иммуногенеза телят после внесения в рацион кормов, подвергнутых биоконверсии ассоциацией микрорганизмов ЦЛБ+ПМК+ПКБ с учетом: структурных перестроек в иммунокомпетентных зонах и динамики изменения содержания клеток в миелограмме, в спленограмме и аденограмме.

5. Определить влияние лузги подсолнечника и щелухи зерновых после твердофазной бактериальной ферментации ЦЛБ, ПМК и ПКБ на биохимические показатели крови телят с изучением: динамики активности сывороточных ферментов, изменения содержания показателей белкового, липидного и углеводного обмена.

6. Обосновать влияние твердофазной бактериальной ферментации кормов на изменение содержания жирорастворимых и водорастворимых витаминов в крови телят и молоке коров под влиянием целлюлозосодержащих кормов после твердофазной бактериальной ферментации.

7. Провести сравнительный анализ влияния лузги подсолнечника, шелухи проса и гречихи после твердофазной бактериальной ферментации на микробно- микологическую экологию кишечника телят и гусей с определением: динамики изменения содержания нормофлоры (бифидобактерий и лактобацилл), условно-патогенных микроорганизмов (стафилококков, клостридий, эшерихий, псевдомонов), микроскопических грибов из родов Mucor, Aspergillus и Penicillium.

8. Установить влияние целлюлозосодержащих кормов, подвергнутых твердофазной бактериальной ферментации, на биохимические показатели качества мяса телят. целлюлозосодержащий корм ферментация рацион

9. Выявить влияние твердофазной бактериальной ферментации целлюлозосодержащих кормов ЦЛБ, ПМК, ПКБ на продуктивные показатели гусей родительского стада с учетом: динамики изменения показателей яйценоскости гусей; морфологических и биохимических показателей яиц гусей, характера изменения инкубационных качеств яиц гусей, затрат, переваримости и использования питательных веществ корма.

10. Определить влияние твердофазной бактериальной ферментации целлюлозосодержащих кормов ЦЛБ, ПМК и ПКБ на продуктивные качества гусят со сравнительной оценкой: динамики изменения живой массы гусят, затрат, переваримости и использования питательных веществ корма гусятами, мясных качеств гусят.

Научная новизна. Впервые дана комплексная системная оценка влияния на организм телят и гусей целлюлозосодержащих кормов (лузги подсолнечника, шелухи проса и гречихи) после твердофазной бактериальной ферментации ЦЛБ, ПМК, ПКБ. Разработана научно-обоснованная концепция эффективности их включения в состав рациона животных и птиц. Проведены в динамике сравнительные исследования влияния отходов зерноперерабытывающей промышленности после твердофазной бактериальной биоконверсии на состояние гемо-, эритро- и лейкопоэза; естественной резистентности; показатели Т- и В систем звена иммунитета в крови, центральных и периферических органах иммуногенеза; восстановление баланса иммуноглобулинов (IgG, IgM, IgE) и циркулирующих иммунных комплексов (ЦИК); морфофункциональные перестройки в структурных компонентах Т- и В-зависимых зон в лимфоидных органах, иммуноцитологические реакции в миелограмме, спленограмме и аденограмме. Определены основные направления развития биохимических реакций в организме телят под влиянием целлюлозосодержащих кормов после твердофазной бактериальной ферментации с учетом изменения активности ферментов - показателей белкового, углеводного, липидного обмена. Установлено влияние твердофазной бактериальной ферментации целлюлозосодержащих кормов на динамику изменения содержания жиро- и водорастворимых витаминов в крови телят и в молоке коров. Разработана концепция восстановления микробно-микологической экологии кишечника и профилактики вторичных дисбактериозов у телят и гусей внесением в рацион лузги подсолнечника, шелухи проса и гречихи после твердофазной бактериальной ферментации ЦЛБ, ПМК и ПКБ. Доказана целесообразность применения кормов из отходов переработки зерна после твердофазной бактериальной ферментации для повышения продуктивных показателей гусей родительского стада (яйценоскости, улучшения морфологических, биохимических и инкубационных показателей качества яиц) и гусят (повышение живой массы), а также с целью улучшения переваримости и повышения использования питательных веществ корма гусями родительского стада и гусятами. Установлено, что использование лузги подсолнечника, шелухи проса и гречихи после бактериальной ферментации способствует улучшению биохимических и морфологических показателей качества мяса телят и гусей.

Практическая значимость работы. Данные о положительном влиянии целлюлозосодержащих кормов (лузги подсолнечника, шелухи проса и гречихи) на гематологические, иммунологические, морфофункциональные, иммуноморфологические, биохимические, микробиологические, микологические реакции в организме телят и гусей, способствующих повышению продуктивности, снижению затрат корма, улучшению переваримости и использования питательных веществ корма, повышению живой массы, улучшению биохимических и морфологических показателей качества мяса, молока и яиц позволяют рекомендовать применение этих кормов в животноводстве и птицеводстве, как экономически и экологически целесообразное.

Теоретически и практически обоснованы высокие иммуностимулирующие и иммунокоррегирующие свойства целлюлозосодержащих кормов после твердофазной бактериальной ферментации ЦЛБ, ПМК и ПКБ, способствующие созданию в организме оптимального иммунного баланса, профилактике вторичных иммунодефицитов и дисбактериозов.

Результаты экспериментальных исследований, имеющие номер государственной регистрации 0288068085 являются составной частью научных исследований, выполненных по ГНТП Академии наук Республики Башкортостан и Оренбургской области, а также хоздоговорных работ Оренбургского и Башкирского государственного аграрного университетов.

Реализация результатов исследований. Результаты исследований внедрены в животноводческих и птицеводческих хозяйствах и комплексах разного типа Оренбургской области и Республики Башкортостан. По материалам диссертации получен Патент РФ № 2155496 -2000 «Способ получения корма из растительного сырья», подана заявка на Патент РФ «Использование аспирационной пыли в кормовых целях после ферментативного гидролиза». По результатам исследований разработаны и выпущены для производства информационные листки ЦНТИ № 50-95, 1995; №52-95, 1995; № 69-95, 1995; две рекомендации производству «Применение лузги подсолнечника, шелухи проса, гречихи после твердофазной бактериальной ферментации в животноводстве» (Москва, 2006); «Применение целлюлозосодержащих кормов после бактериальной ферментации в птицеводстве» (Москва, 2007). Материалы диссертации освещены в двух монографиях: «Морфофункциональные показатели иммунной системы и микробно-микологическая экология кишечника при ассоциативной инвазии гусей» (Москва, 2007) и «Влияние целлюлозосодержащих кормов после твердофазной бактериальной ферментации на биологические показатели телят и гусей» (Москва, 2007).

Апробация работы. Основные положения диссертации доложены и апробированы в материалах международной конференции «Загрязнение окружающей среды. Проблемы токсикологии и эпидемиологии» (Москва, 1993); в Материалах Межрегиональной конференции «Методы исследования утилизации, паспортизации отходов» (Пенза, 1994); Всероссийской научно-технической конференции «Совершенствование технологических процессов в пищевой промышленности и АПК» (Оренбург, 1996); Межрегиональной научно-технической конференции «Сертификация и управление качеством экосистем на Южном Урале» (Оренбург, 1997); научно-практической конференции «Экотехнологии-99» (Оренбург, 1999); Всероссийской научно-практической конференции с международным участием (Санкт-Петербург, 1999); Всероссийской научной конференции «Стратегия природопользования и сохранения биоразнообразия в ХХI веке» (Оренбург, 1999); Всероссийской научно-технической конференции «Обеспечение продовольственной и экологической безопасности человечества - важнейшая задача ХХI века» (Оренбург, 2000); Международной юбилейной научно-производственной конференции «Учебная, производственная и инновационная деятельность высшей школы в современных условиях» (Оренбург, 2001); Всероссийской научно-практической конференции «Оптимизация сложных биотехнологических систем» (Оренбург, 2003); научно-практической конференции «Приоритетные вопросы биологии пчел, технология производства и использования продуктов пчеловодства» (Москва, 2006); научно-практической конференциях «Актуальные проблемы физиологии и патологии размножения животных» (Уфа, 2007) и «Теория и практика борьбы с паразитарными болезными» (Москва, 2007); на всероссийских научно-практических конференциях «Инновационные технологии обеспечения безопасности питания и окружающей среды» (Оренбург, 2007); «Актуальные проблемы экологического образования в вузе» (Бирск, 2007); «Проблемы и перспективы развития инновационной деятельности в агропромышленном производстве» (Уфа, 2007), «Интеграция аграрной науки и производства: состояние, проблемы и пути решения» (Уфа, 2008).

Основные положения диссертации, выносимые на защиту:

1. Влияние целлюлозосодержащих кормов (лузги подсолнечника, шелухи проса и гречихи) после твердофазной бактериальной ферментации ЦЛБ, ПМК, ПКБ на изменения содержания в крови эритроцитов, гемоглобина, лейкоцитов и состояние естественной резистентности телят и гусей (бактерицидной, лизоцимной, комплементарной активности сыворотки крови) под влиянием кормов, подвергнутых бактериальной биоконверсии.

2. Влияние лузги подсолнечника, шелухи проса и гречихи после твердофазной бактериальной ферментации ЦЛБ, ПМК, ПКБ на динамику изменения содержания Т-Е-РОК-лимфоцитов, Т-хелперов, Т-супрессоров и В-ЕАС-лимфоцитов в крови телят и гусей; Т-Е-РОК-лимфоцитов, Т-хелперов, Т-супрессоров и В-ЕАС-лимфоцитов в лимфатическом узле телят; Т-Е-РОК-лимфоцитов и В-ЕАС-лимфоцитов в селезенке телят и гусей; Т-Е-РОК-лимфоцитов в тимусе телят и гусей; В-ЕАС-лимфоцитов в сумке Фабрициуса и гардеровой железе гусей.

3. Сывороточные иммуноглобулины (IgG, IgM, IgE) и циркулирующие иммунные комплексы (ЦИК) в сыворотке крови телят на фоне внесения в рацион целлюлозосодержащих кормов после твердофазной бактериальной ферментации.

4. Иммуноморфологические перестройки в структурных компонентах Т- и В-зависимых зон лимфоидных органов под влиянием кормов, подвергнутых бактериальной биоконверсии.

5. Динамика изменения содержания нейтрофильных клеток, эозинофилов, клеток эритроидного ростка, лимфоцитов, моноцитов, плазматических клеток, макрофагов, моноцитов в костном мозге, селезенке и брыжеечном лимфатическом узле телят при включении в рацион целюлозосодержащих кормов после твердофазной бактериальной ферментации ЦЛБ, ПМК, ПКБ.

6. Влияние кормления лузги подсолнечника, шелухи проса и гречихи после твердофазной бактериальной ферментации на состояние сывороточных ферментов, а также биохимические показатели белкового, углеводного и липидного обмена.

7. Влияние целлюлозосодержащих кормов после твердофазной бактериальной ферментации на повышение уровня жиро- и водорастворимых витаминов в крови телят и в молоке коров.

8. Восстановление микробно- микологического баланса в кишечнике телят и гусей при внесении в рацион целлюлозосодержащих кормов после бактериальной биоконверсии.

9. Влияние лузги подсолнечника, шелуши проса и гречихи после твердофазной бактериальной ферментации ЦЛБ, ПМК, ПКБ на биохимические показатели качества мяса телят.

10. Повышение яйценоскости гусей по месяцам продуктивного цикла, инкубационных качеств яиц, увеличение содержания в яйцах гусей каратиноидов, витаминов А и В2, изменения морфологических показателей под влиянием целлюлозосодержащих кормов после бактериальной биоконверсии.

11. Влияние лузги подсолнечника, шелухи проса, гречихи на увеличение живой массы гусят (самцов и самок) с учетом массы потрошеной тушки, массы мышц, кожи с подкожным жиром, внутреннего жира, массы съедобных частей, костяка, повышение отношения массы мышц к массе костяка.

12. Снижение затрат корма, улучшение его переваримости (протеина, жира, клетчатки и БЭВ) и использования питательных веществ (азота, кальция, фосфора) гусями родительского стада и гусятами при внесении в рацион целлюлозосодержащих кормов после твердофазной бактериальной ферментации ЦЛБ, ПМК, ПКБ.

Публикация результатов исследований. Основные положения диссертационной работы опубликованы в 68 научных работах, в том числе 9 в изданиях, рекомендованных ВАК РФ, в двух монографиях (Москва, 2007), в двух рекомендациях (Москва, 2006, 2007) и в информационных листках ЦНТИ № 50-95, 1995; №52-95, 1995; № 69-95, 1995 (по видам сырья).

Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 374 страницах компьютерного текста и состоит из введения, обзора литературы, материалов и методов исследований, результатов собственных исследований, обсуждения, выводов и практических предложений. Работа иллюстрирована 62 таблицами, 62 рисунками. Библиографический список включает 332 работы, в том числе 69 иностранных авторов.

Собственные исследования

Материалы и методы исследований

Работа выполнялась с 1994 г. в условиях кафедр микробиологии ФГОУ ВПО «Оренбургский государственный университет» и паразитологии, микробиологии и вирусологии ФГОУ ВПО «Башкирский государственный аграрный университет».

Животные и птицы 1-ой группы были контрольные - здоровые. Телята, коровы и гуси 2-4-ой групп - опытные. Животные и птицы 1-ой группы содержались на общем рационе и никакие дополнительные манипуляции с ними не проводились. Телятам, коровам и гусям 2-ой группы на фоне общего рациона в корм добавлялась шелуха проса, 3-ей группы - шелуха гречки, 4-ой группы - лузга подсолнечника.

У телят до начала опытов (фон), а затем через 10, 30, 60, 90 и 120 дней от начала опытов проводилось взятие крови для иммунологических и биохимических, молока для биохимических, фекалий для микробиологических исследований. Через 120-150 дней от начала опытов организовывали сдачу по 4 головы животных из каждой группы на мясокомбинат, где забирали материал для биохимического исследования качества мяса.

У гусей до начала опытов (фон), а затем через 10, 20, 30 и 60 дней от начала опытов проводились взятие крови для иммунологических и биохимических, фекалий для микробиологических исследований. Через 60-90 дней от начала опытов забирали материал для биохимического исследования качества мяса.

Бактерицидную активность сыворотки крови определяли по П.А. Емельяненко (1980), лизоцимную - по В. Г. Дорофейчуку (1983). В качестве индикатора активности лизоцима применяли суточную культуру Micrococcus lysodeicticus. Выделение В-лимфоцитов у коров проводили с эритроцитами быка и в камере Горяева, подсчитывали количество розеткообразующих клеток. За В-лимфоциты принимали клетки, присоединившие 3 и более эритроцитов. Определение популяции Т-лимфоцитов проводили методом теста розеткообразования лимфоцитов с эритроцитами барана. Определение субпопуляций Т-лимфоцитов проводили в реакции спонтанного розеткообразования с теофиллином (Т-хелперы - теофиллинрезистентные, Т-супрессоры -теофиллинчувствительные - S.Limtibui et al., 1978).Сывороточные иммуноглобулины определяли методом радиальной иммунодиффузии с использованием моноспецифичных антисывороток моноклональных антител. Циркулирующие иммунные комплексы (ЦИК) определяли посредством преципитации их полиэтиленгликолем-6000 с последующим измерением оптической плотности исследуемых образцов на спектрофотометре Spekol-II при 450 нм.

Для качественного исследования микрофлоры кишечника взятие фекалий коров производили в стерильную посуду с 9-10 мл изотонического раствора натрия хлорида с глицерином. В лабораторных условиях тщательно перемешивали и оставляли на 10-15 минут при комнатной температуре, посев суспензии фекалий проводили на ряд элективных и дифференциальных сред. Культивирование клостридий проводили на мясопептонном печёночном бульоне (МППБ) Китта-Тароцци, плотной среде Вильсона-Блера, глюкозо-кровяном агаре Цейсслера, для псевдомонов использовали ЦПХ-агар. Для выделения бактерий семейства кишечных палочек материал засевали на среды: Эндо, Левина, МПА, МПБ. Чистую культуру эшерихий типировали в РА. Выделение бифидобактерий проводили посевом больших разведений фекалий в среду Блаурокка. В пробирки с13 -15 мл регенерированной в течение 45 минут среды Блаурокка засевали 1 мл фекалий в разведении от 10-7 до 10-10. Посевы инкубировали при температуре 37єС в течение 24 часов. Лактобациллы выращивали на среде МРС. Выделение микроскопических грибов осуществляли на средах Сабуро и Чапека. Результаты переводили в десятичные логарифмы и устанавливали относительное соотношение различных групп микроорганизмов в кишечной популяции.

Определение глюкозы в крови проводили фотоэлектоколометрическим методом по цветной реакции орто-толуидином (И.П. Кондрихин, 2004). Общий холестерин в сыворотке крови определяли на ФЭКН реакцией Либермана-Бурхарда, модифицированной Илбком. Альбумины в сыворотке крови устанавливали нефелометрическим методом (по степени мутности на ФЭКНе) (И.П. Кондрахин, 2004). Креатинин, общий и прямой билирубин, активность ферементов амилазы, аспартатаминотрансферазы (АСАТ и аланинаминотрансферазы (АЛАТ) в сыворотке крови определяли на ФЭКНе (И.П. Кондрахин, 2004).Для определения химического состава мяса, с целью составления общей пробы, отбирали мышечную ткань 4 мускулов из разных анатомических областей туши (плечеголового, трехглавая мышца плеча, поясничная часть длиннейшей мышцы спины и двуглавая мышца бедра). Мышцы освобождали от фасции и жира. Отобранные средние пробы подвергали химическому исследованию по общепринятым методикам. Органолептические исследования проводили по ГОСТ 7269-79, физико-химические и микроскопические анализы по ГОСТ 23392-78, бактериологические исследования по ГОСТ 21237-75. Концентрацию летучих жирных кислот (ЛЖК) определяли путем отгонки из подкисленной водяной вытяжки острым паром с последующим титрованием дистиллята, амино-амиачный азот (ААА) - по Колоботскому Г.В. Исследование мяса проводили через 24 часа после убоя животных и хранения его в холодильнике при температуре +4…+2С.

Полученные данные подвергнуты статистической обработке методами вариационной статистики с проверкой достоверности результатов с помощью критерия Стьюдента и уровня значимости (Р) по специально разработанным компьютерным программам.

Результаты собственных исследований

Влияние лузги подсолнечника и шелухи зерновых после твердофазной бактериальной ферментации на гематологические показатели и состояние естественной резистентности телят и гусей

Данные по исследованию динамики изменения содержания гемоглобина и лейкоцитов в крови телят и гусей представлены на рисунке 1.

Рисунок 1. Динамика изменения гемоглобина (а, б; г/л), лейкоцитов (в, г; тыс./мкл) в крови телят (а, в) и гусей (б, г).

Внесение в рацион телят к основному рациону шелухи проса, гречихи и лузги подсолнечника после твердофазной бактериальной ферментации способствовало повышению уровня эритроцитов в крови. Данный показатель превышал уровень контроля в крови животных 2, 3 и 4-ой групп к концу опыта на 0,9; 1,2 и 0,7 млн./мкл. Подобным образом изменялась динамика эритроцитов в крови гусей. На 30-й и 60-й дни опыта содержание эритроцитов в крови гусей 2-й группы было выше, чем в контроле, на 0,7 и 1,0 млн./мкл, 3-ей группы на 0,9 и 1,1 млн./мкл, 4-ой группы на 0,8 и 0,9 млн./мкл.

Показатель бактерицидной активности сыворотки крови животных опытных групп по ходу исследований заметно повышался. Его значение увеличилось к 10 дню опыта по 2, 3 и 4-й группам на 1,1; 0,9 и 2,3%, к 30 дню - на 6,5; 8,7 и 8,9%, к 60 дню- на 11,1; 12,9 и 10,2%, к 90 дню - на 13,5; 15,4 и 10,9%. К концу опыта (120 дней) бактерицидная активность сыворотки крови телят опытных групп незначительно снизилась, но продолжала превышать контрольный уровень на 9,2; 11,2 и 5,9%. Подобное влияние оказывали исследуемые корма на бактерицидную активность сыворотки крови гусей. Максимальное повышение бактерицидной активности регистрировалось в сыворотке крови гусей 3-ей группы. К 10, 20, 30 и 60-ым дням опыта она превысила контрольный показатель на 3,0; 5,8; 9,2 и 7,2%. Несколько уступали показателям гусей 3-й группы параметры их у птиц 2 и 4-ой групп.

Данные по исследованию динамики изменения показателей лизоцимной активности сыворотки крови телят и гусей представлены на рисунке 2.

Рисунок 2. Динамика изменения показателя лизоцимной активности сыворотки крови телят (а), гусей (б), %. Здесь и далее обозначения те же, что на рис.1.

Показатель активности комплемента в сыворотке крови телят опытных групп, в процессе исследований, также изменялся в сторону повышения. По 2-ой группе он увеличился, по сравнению с уровнем в контроле, к 10, 20, 30, 60, 90 и 120-м дням опыта на 0,9; 1,6; 2,1; 2,3 1,8 и 1,9 ед. Максимальное повышение активности комплемента регистрировалось в сыворотке крови животных 3-й группы.

Следовательно, целлюлозосодержащие корма, подвергнутые бактериальной биоконверсии ЦЛБ, ПМБ и ПКБ, способствуют активизации процессов гемо-эритро-лейкопоэза и факторов естественной резистентности в организме телят и гусей.

Т- и В-системы иммунитета телят и гусей на фоне внесения в рацион лузги подсолнечника и шелухи зерновых после твердофазной бактериальной ферментации ЦЛБ, ПМБ и ПКБ

Фоновое значение содержания Т-Е-РОК-лимфоцитов в крови телят опытных групп соответствовало его уровню в контроле, но в процессе исследований данный показатель последовательно увеличивался. К 10 дню опыта содержание Т-Е-РОК- лимфоцитов в крови телят было выше контрольной цифры по 2, 3 и 4-ой группам на 1,4; 2,1 и 0,8%. Этот процесс прогрессировал по срокам опыта и достиг максимального значения к 60 дню исследований. В последующие сроки исследований уровень Т-Е-РОК-лимфоцитов в крови телят опытных групп незначительно снижался, но до конца опытов оставался высоким, превышая контроль на 120-ый день опыта на 2,2; 3,7 и 4,3%.

Шелуха проса, гречихи и лузга подсолнечника после твердофазной бактериальной ферментации способствовали активизации в организме животных хелперных и затормаживанию супрессорных реакций (рисунок 3).

Рисунок 3. Динамика изменения содержания Т-хелперов (а), Т-супрессоров (б) в крови телят, %

Внесение в рацион животных указанных кормов способствовало повышению в крови В-ЕАС-лимфоцитов. Показатель В-клеток в крови телят 2, 3 и 4 групп увеличился на 10, 30, 60, 90 и 120-е дни опыта на 2,7; 3,0 и 3,2%; на 4,5; 5,1 и 5,3%; на 3,9; 5,2 и 4,5%; на 4,0; 5,0 и 6,1%); на 3,3; 4,2 и 4,4%.

Результаты исследования изменения содержания Т-Е-РОК-лимфоцитов в крови гусей, по периодам опыта, представлены в таблице 1.

Таблица 1 Динамика изменения содержания Т-Е-РОК-лимфоцитов в крови гусей (М±m/Cv,%; в %)

Группы	Сроки исследования в днях от начала опытов
	Фон	10	20	30	60
1.Контроль - (ОР)	50,10±1,13	50,20±1,32	50,00±0,97	49,80±0,93	49,90±0,94
	5,05	5,86	4,32	4,18	4,20
2.Общий рацион + шелуха проса	49,80±1,07	56,70±1,69	59,10±0,78	62,30±1,22	63,00±1,73
	4,79	6,65	2,96	4,38	6,15
		*	***	***	**
3.Общий рацион + шелуха гречихи	49,60±1,08	58,90±1,08	61,00±0,71	67,40±0,68	65,30±1,24
	4,86	4,09	2,59	2,25	4,25
		**	***	***	***
4.Общий рацион + лузга подсолнечника	49,70±0,86	54,10±0,93	57,20±1,07	60,40±0,93	57,20±0,97
	3,87	3,83	4,17	3,43	3,79
		*	**	***	**

В крови гусей опытных групп, в процессе исследований, регистрировалось повышение уровня Т-хелперов, В-ЕАС-лимфоцитов и стабилизация Т-супрессоров (рисунок 4).

Рисунок 4 Динамика изменения содержания Т-хелперов (а; клеток/мм3), Т-супрессоров (б; клеток/мм3) и В-ЕАС-лимфоцитов (в; %) в крови гусей

Внесение в рацион телят целлюлозосодержащих кормов, подвергнутых твердофазной бактериальной ферментации, способствовало повышению активности Т-Е-РОК- и В-ЕАС-имфоцитов в селезенке телят и гусей. Их максимальный показатель, регистрируемый в 3-ей группе, превысил контрольное значение у телят на 20-ый день опыта по Т-клеткам на 11,7%, по В-клеткам на 8,5%, у гусей на 30-ый день исследований по Т-лимфоцитам на 11,3%, по В-лимфоцитам на 2,7%. Незначительно уступали показателям телят и гусей 3-й группы показатели животных и птиц 2 и 4-ой групп. До конца опыта активность селезенки телят и гусей опытных групп оставалась на высоком уровне.

Данные по изучению влияния шелухи проса, гречихи, лузги подсолнечника после твердофазной бактериальной ферментации ЦЛБ, ПМБ и ПКБ на динамику изменения содержания Т-Е-РОК-лимфоцитов, Т-хелперов, Т-супрессоров и В-ЕАС-лимфоцитов в брыжеечном лимфатическом узле телят представлены на рисунке 5.

Результаты исследования динамики изменения содержания Т-Е-РОК-лимфоцитов в тимусе телят приведены в таблице 2.

Рисунок 5 Динамика изменения содержания Т- лимфоцитов (а), Т-хелперов (б), Т-супрессоров (в) и В- лимфоцитов (г) в брыжеечном лимфатическом узле телят, %

Таблица 2 Динамика изменения содержания Т-Е-РОК-лимфоцитов в тимусе телят (млн./орган)

Группы	Стат. показ	Сроки исследования в днях от начала опытов
		Фон	10	20	30	60
1.Контроль - общий рацион	M	469,70	480,20	455,80	486,50	474,30
	±m	18,92	2,11	15,61	3,69	6,43
2. Общий рацион + шелуха проса	M	470,60	515,20	643,40	587,60	590,30
	±m	7,22	7,32	12,47	12,82	8,31
	Р		**	***	***	***
3. Общий рацион + шелуха гречихи	M	482,60	540,10	674,20	669,60	644,70
	±m	10,94	10,44	8,10	16,02	19,06
	Р		*	***	***	***
4. Общий рацион + лузга подсолнечника	M	466,80	497,30	612,00	546,50	519,40
	±m	10,50	9,50	15,30	8,65	7,10
	Р			***	**	**

Внесение в рацион птиц кормов, подвергнутых твердофазной бактериальной ферментации, способствовало повышению активности Т-клеток в тимусе гусей. Описываемый показатель увеличился 20-й день опыта в тимусе гусей 2, 3 и 4-й опытных групп на 31,7; 52,6 и 20,5 млн/ орган, на 30-й день на 50,7; 76,2 и 33,6 млн /орган, на 60-й день на 48,7; 70,0 и 27,9 млн/орган.

Содержание В-ЕАС-лимфоцитов в сумке Фабрициуса птиц опытных групп в процессе исследований имело тенденцию к повышению. К 10-му дню опыта у гусей 2, 3 и 4-й групп он превысил фоновый уровень на 2,0; 3,5 и 1,3%, к 20-му дню на 4,6; 5,7 и 3,0%, к 30-му дню на 7,3; 8,8 и 6,1%, к 60-му дню на 10,3; 12,5 и 8,0%, к 90-му дню на 14,4; 19,9 и 12,5% и к 120-му дню на 11,3; 18,6 и 12,5%. Шелуха проса, гречихи и лузга подсолнечника после бактериальной ферментации ЦЛБ, ПМБ и ПКБ способствовали повышению уровня В-клеток в гардеровой железе птиц (таблица 3).

Таблица 3 Динамика изменения содержания В-ЕАС-лимфоцитов в гардеровой железе гусей (М±m/ Cv,%; в %)

Группы	Сроки исследования в днях от начала опытов
	Фон	10	20	30	60
1. Контроль - ОР	32,70±1,43	31,90±1,28	32,20±1,59	33,30±0,82	32,40±0,37
	9,78	8,99	11,05	5,53	2,52
2. ОР + шелуха проса	31,60±0,51	37,20±0,58	43,60±1,29	47,10±0,68	46,50±1,52
	3,61	3,50	6,61	3,22	7,29
		***	***	***	***
3. ОР + шелуха гречихи	32,00±0,63	38,30±1,18	45,30±1,55	48,70±1,36	48,20±1,27
	4,42	6,88	7,63	6,23	5,90
		**	***	***	***
4. ОР + лузга подсолнечника	31,80±0,58	36,00±1,18	42,40±1,29	46,30±1,45	46,00±1,48
	4,10	7,35	6,79	6,98	7,21
		*	***	***	***

Иммуноглобулины классов G, M и E и циркулирующие иммунные комплексы (ЦИК) в сыворотке крови телят на фоне внесения в рацион целлюлозосодержащих кормов после твердофазной бактериальной ферментации ЦЛБ, ПМБ и ПКБ

Внесение в рацион телят кормов, подвергнутых твердофазной бактериальной ферментации, способствовало повышению активности IgG. Уровень антител этого класса в сыворотке крови телят 2, 3 и 4-й групп к 10, 30, 60, 90 и 120-м дням от начала опыта превысил контрольную цифру на 1,6; 3,5 и 1,1%, на 3,6; 4,9 и 3,9%, на 6,4; 7,0 и 6,1%, на 8,0; 8,4 и 7,6%, на 6,8; 7,0 и 6,3%.

Уровень IgM в сыворотке крови телят опытных групп понижался. На эти сроки исследований описываемый показатель снизился в сыворотке крови животных 2, 3 и 4 групп, в сторону физиологических норм, по сравнению с контрольным значением, на 0,51; 0,8 и 0,64%, на 2,14; 2,18 и 2,16%, на 1,18; 1,37 и 1,0%, на 1,34; 1,5 и 1,11%, на 0,96; 1,17 и 0,99%. Данные по исследованию динамики изменения содержания в крови телят IgE представлены в таблице 4.

К началу опытов в сыворотке крови телят всех групп был повышен уровень циркулирующих иммунных комплексов (ЦИК). Показатель ЦИК в сыворотке крови телят контрольной группы по ходу опытов имел тенденцию к дальнейшему увеличению. Содержание ЦИК в сыворотке крови телят опытных групп постепенно снижалось по срокам опытов. На 10, 30, 60, 90 и 120-е дни исследований данный показатель был ниже контрольной цифры по 2, 3 и 4 группам на 7,7; 8,4 и 7,2%, на 17,1; 17,6 и 16,2%, на 18,8; 19,5 и 17,3%, на 21,0; 22,1 и 18,8%, на 18,1; 19,2 и 17,7%.

Таблица 4 Динамика изменения содержания Ig Е в сыворотке крови телят, в %

Группы	Ст. показ.	Сроки исследования в днях от начала опытов
		Фон	10	30	60	90	120
1.Контроль - общий рацион	M	129,40	139,30	156,40	164,00	167,60	165,70
	±m	3,75	3,81	7,02	4,81	2,59	2,77
	Р			*	**	***	***
2. Общий рацион + шелуха проса	M	132,50	115,00	92,90	73,80	64,60	68,70
	±m	3,22	3,66	1,52	1,93	1,63	1,50
	Р		*	***	***	***	***
3. Общий рацион + шелуха гречихи	M	128,50	105,30	86,40	64,30	59,30	61,40
	±m	1,60	2,30	1,36	1,04	0,77	1,21
	Р		***	***	***	***	***
4. Общий рацион + лузга подсолнечника	M	131,60	120,40	99,40	81,60	90,50	75,30
	±m	2,66	2,16	1,54	1,91	1,18	1,45
	Р		*	***	***	***	***

Анализируя данные, представленные в разделах автореферата 2.2.2 и 2.2.3, можно прийти к заключению, что внесение в рацион откормочных телят и в рацион гусей шелухи проса, гречихи и лузги подсолнечника, подвергнутых твердофазной бактериальной ферментации с использованием молочнокислых Lactobacterium pentoaceticum Bб-23, целлюлолитических Cellulomonas flavigena 22, пропионовокислых Propionibacterium shermanii способствует получению высококачественного кормового продукта, содержащего в своем составе биологически активные вещества, вызывающие повышение в крови, лимфатических узлах, селезенке, тимусе телят, а также в крови, селезенке, сумке Фабрициуса и гардеровой железе гусей Т-Е-РОК-лимфоцитов, Т-хелперов, В-ЕАС-лимфоцитов, стабилизацию Т-супрессоров, восстановление до уровня физиологических норм в крови IgA, IgG, IgE и ЦИК, приводящих к нормализации иммунного баланса в организме животных и птиц.

Иммуноморфологические изменения в центральных и периферических органах иммунитета телят под влиянием лузги подсолнечника и шелухи зерновых после твердофазной бактериальной ферментации ЦЛБ, ПМБ и ПКБ

В лимфатическом узле телят опытных групп отмечались выраженные позитивные иммуноморфологические перестройки. Показатель площади, занимаемой лимфатическими узелками без светлых центров, увеличилась, по сравнению с контрольным значением, в лимфоузле телят 2, 3 и 4-ой групп на 1,86; 3,56 и 1,67%. Площадь лимфатических узелков со светлыми центрами в лимфатическом узле телят опытных групп превысила контрольную цифру на 5,02; 8,18 и 4,37%. Мякотные тяжи лимфоузла животных опытных групп расширились, по сравнению с показателем контрольных животных на 2,8; 4,2 и 1,9%. Паракортикальная зона лимфатического узла животных 2, 3 и 4-й групп превысила значение его у животных контрольной группы на 2,8; 5,0 и 2,2%.

В селезенке телят в качестве В-зависимой зоны измеряли площадь лимфатических узелков без светлых и со светлыми центрами, в качестве Т-зависимой зоны- площадь периваскулярных лимфоидных муфт. Селезенка телят 2, 3 и 4-ой групп реагировала повышением иммунологической активности на внесение в рацион шелухи проса, гречихи и лузги подсолнечника после бактериальной биоконверсии. Это проявлялось в виде расширения площадей В и Т-зависимых зон органа. Площадь лимфатических узелков без светлых центров в селезенке животных опытных групп увеличилась на 2,01; 4,26 и 1,85%, со светлыми центрами на 5,47; 6,95 и 4,03%, периваскулярных лимфоидных муфт на 4,24; 6,84 и 2,64%. Площадь красной пульпы органа у животных опытных групп, напротив, уступала контрольному значению на 11,8; 18,6 и 9,3%.

Шелуха проса, гречихи, лузга подсолнечника после твердофазной бактериальной ферментации ЦЛБ, ПМБ, ПКБ способствовали активизации коркового вещества тимуса. Площадь описываемой структуры органа у телят 2, 3 и 4-ой групп увеличилась, по сравнению с показателем животных контрольной группы, на 17,3; 18,7 и 12,8%. Параллельно с расширением площади коркового вещества регистрировалось уменьшение площади мозгового вещества тимуса.

Фоновый показатель содержания миелоцитов в миелограмме животных 1-ой контрольной группы был относительно высоким. В последующие сроки опыта уровень миелоцитов в костном мозге животных 1 группы не имел существенных изменений. Содержание миелоцитов в миелограмме телят 2, 3 и 4 опытных групп снижалось. На 60-ый день опыта их уровень был ниже, по сравнению с контрольным показателем, на 1,22; 1,53 и 0,79%.

Метамиелоциты в костном мозге телят 1-ой контрольной группы выделялись на уровне от 7,2 до 9,7%. Данный показатель следует считать несколько повышенным. Их содержание в миелограмме животных опытных групп, по ходу исследований, также имело тенденцию к умеренному снижению.

Палочкоядерные нейтрофилы в миелограмме животных 1-ой контрольной группы были несколько выше физиологических норм для телят данной возрастной группы. Содержание палочкоядерных нейтрофилов в костном мозге животных опытных групп достоверно уменьшилось. На 60 и 120-ые дни данный показатель снизился, по сравнению с уровнем в контроле, по 2, 3 и 4-ой группам на 3,4; 4,5 и 2,8% и на 3,1; 3,9 и 2,3%

Общее содержание нейтрофильных клеток в миелограмме телят 1-ой контрольной группы было выше физиологических значений. К концу опыта данный показатель снизился, по сравнению с контрольной цифрой, на 8,91; 11,1 и 6,18%. Наблюдалось восстановление клеточного состава эозинофилов.

Уровень клеток эритроидного ростка в костном мозге телят 1-ой контрольной группы, во все сроки исследований, был ниже параметров физиологических норм. Содержание клеток эритроидного ростка в миелограмме животных 2, 3 и 4-ой опытных групп на 60 и 120-ые дни превысило контрольный показатель на 10,2 и 10,5%, на 14,7 и 16,8%, на 6,5 и 7,7%.

Внесение в рацион животных шелухи проса, гречихи и лузги подсолнечника после твердофазной бактериальной ферментации способствовало нормализации количества лимфоидных клеток, восстановления явления моноцитоза, активизации плазмоклеточных реакций.

Результаты по исследованию динамики изменения содержания клеток в спленограмме и аденограмме телят представлены на рисунке 6.

Рисунок 6 Динамика изменения содержания клеток в спленограмме (а) и аденограмме (б) телят, %

Данные, представленные в разделе 2.2.4 автореферата свидетельствуют, что недостаточность экологического баланса, несбалансированность рационов, нарушения зоогигиенических условий содержания и другие неблагоприятные факторы, постоянно встречаемые в животноводческих фермах по откорму скота, приводят к глубоким негативным изменениям в структурах лимфоидных органов и цитологическим перестройкам в костном мозге, селезенке и лимфатических узлах, проявляющимся в виде снижения в центральном органе иммунитета костном мозге процессов пролиферации и дифференциации клеток эритроидного ростка, при активизации нейтрофилов, эозинофилов, лимфоцитов, моноцитов; изменениями в аденограмме и спленограмме в сторону лимфоцитопении, плазмоцитопении, повышения уровня макрофагов, нейтрофилов, эозинофилов, моноцитов. Внесение в рацион откормочных телят шелухи проса, гречихи, лузги подсолнечника после твердофазной бактериальной ферментации, восстанавливает морфологию лимфоидных органов.

Влияние лузги подсолнечника и шелухи зерновых после твердофазной бактериальной ферментации ЦЛБ, ПМБ и ПКБ на биохимические показатели крови телят

Внесение в рацион телят биоконверсированных кормов способствовало восстановлению до физиологических норм основных биохимических параметров. Данные по исследованию динамики изменения содержания в сыворотке крови телят показателей белкового, липидного и углеводного обменов представлены на рисунке 7.



Рисунок 7 Динамика изменения содержания альбуминов (а), креатинина (б), общего билирубина (в), холестерина (г), триглициридов (д), глюкозы (е) в сыворотке крови телят по вариантам опыта, (г%).

Влияние твердофазной бактериальной ферментации кормов на уровень витаминов в крови телят

Содержание витамина А в сыворотке крови телят опытных групп имело тенденцию к выраженному увеличению. Максимального значения оно достигло в сыворотке крови телят 3-й группы. Здесь его значение увеличилось, по сравнению с показателями животных контрольной группы, на10; 20; 30; 60; 90 и 120-е дни опыта, соответственно на 3,3; 15,0; 18,1; 27,0; 25,6 и 21,7 мкг/100мл. Уровень витамина А в сыворотке крови телят 2 и 4-ой групп также имел тенденцию к повышению, но по выраженности этот процесс был слабее.

Результаты исследования динамики изменения содержания жирорастворимых витаминов D и Е в крови телят представлены на рисунке 8.

Рисунок 8 Динамика изменения содержания жирорастворимых витаминов D (а) и Е (б) в крови телят

Содержание тиамина (витамина В1) в сыворотке крови телят опытных групп в процессе исследований имело тенденцию к постепенному повышению. Максимальное увеличение уровня тиамина в сыворотке крови регистрировалось также у животных 3-ей группы. Показатели телят данной группы превысили описываемые значения у животных 1, 2 и 4-й групп на 10, 20, 30, 60, 90 и 120-е дни опыта на 1,6; 0,5 и 0,8; на 3,0; 1,3 и 1,7; на 4,2; 0,9 и 1,7; на 4,7; 0,6 и 1,3; на 4,4; 0,4 и 1,1; на 3,9; 0,7 и 1,3 мкг/100 мл. Результаты исследования динамики изменения содержания витаминов В2 (рибофлавина), В5 (никотиновой кислоты), В12 (цианкобаламина) в крови телят представлены на рисунке 9.

Рисунок 9 Динамика изменения содержания витаминов В2 (рибофлавина) (а), В5 (никотиновой кислоты) (б), В12 (цианкобаламина) (в) в крови телят

Влияние лузги подсолнечника и шелухи зерновых после твердофазной бактериальной ферментации ЦЛБ, ПМБ и ПКБ на уровень витаминов в молоке коров

Содержание витамина А в молоке коров опытных групп имело тенденцию к увеличению. К 10, 20, 30-ым дням опыта содержание витамина А в молоке коров 2, 3 и 4-й групп превысило контрольную цифру в 1,14; 1,09 и 1,19 раза, в 1,47; 1,52 и 1,68 раза, в 1,6; 1,7 и 1,85 раза. Максимальное повышение содержания витамина А регистрировалось в молоке животных к 40 дню опыта - в 1,7; 1,8 и 1,9 раза. До конца опытов содержание витамина А в молоке коров опытных групп было выше, чем у животных контрольной группы.

Добавление в рацион коров целлюлозосодержащих кормов после бактериальной ферментации способствовало повышению в молоке жирорастворимого витамина Д. На 10, 20, 30, 40 и 60-е дни опыта данный показатель во 2, 3 и 4-й группах превысил контроль, в 1,11; 1,16 и 1,35 раза, в 1,85; 1,75 и 1,95 раза, в 2,3; 2,18 и 2,32 раза, в 2,38; 2,3 и 3,07 раза, в 2,25; 2,07 и 2,75 раза.

Указанные корма способствовали повышению уровня витамина Е в молоке коров 2, 3 и 4-й групп на 10, 30, 40 и 60-ые дни опыта в 1,12; 1,13 и 1,11 раза, в 1,23; 1,16 и 1,03 раза, в 1,33; 1,41 и 1,23 раза, в 1,14; 1,18 и 1,1 раза.

Результаты исследования динамики изменения содержания в молоке коров водорастворимых витаминов под влиянием кормов, подвергнутых твердофазной бактериальной ферментации, представлены на рисунке 10.

Рисунок 10. Динамика изменения содержания водорастворимых витаминов С (а), В1 (б), В2 (в), В3 (г) в молоке коров по вариантам опыта

Рис.10.2. Динамика изменения содержания водорастворимых витаминов В6 (д), В12 (е), РР (ж) в молоке коров по вариантам опыта

Следовательно, твердофазная бактериальная ферментация целлюлозосодержащих кормов способствует повышению их питательности и биологических свойств. Внесение в обычный рацион (ОР) коров кормов из шелухи проса, гречихи и лузги подсолнечника после твердофазной бактериальной ферментации целлюлолитическими, пентозосбраживающими молочнокислыми и пропионовокислыми бактериями способствует повышению в молоке уровня жирорастворимых и водорастворимых витаминов.

Микробно-микологическая экология кишечника телят и гусей под влиянием лузги подсолнечника и шелухи зерновых после твердофазной бактериальной ферментации ЦЛБ, ПМБ и ПКБ

В процессе опытов отмечалась активизация в кишечнике телят и гусей опытных групп лактобацилл. К 10, 30, 60, 90 и 120-м дням содержание лактофлоры в кишечнике животных 2, 3 и 4 групп повысилось в 1,22; 1,34 и 1,15, в 1,4; 1,5 и 1,28, в 1,69; 1,82 и 1,51, в 1,67; 1,91 и 1,41 и в 1,61; 2,04 и 1,47 раза.

В кишечнике гусей опытных групп уровень лактобацилл превысил контроль на эти же сроки исследований в 1,19; 1,35 и 1,13, в 1,36; 1,57 и 1,26, в 1,66; 1,84 и 1,54, в 1,6; 1,84 и 1,49, в 1,44; 1,69 и 1,36 раза.

Подобным образом изменялась в кишечнике телят и гусей динамика содержания бифидобактерий (рисунок 11).

Рисунок 11 Динамика изменения содержания бифидобактерий в кишечнике телят (а), гусей (б), lgКОЕ/г.

Внесение в рацион телят целлюлозосодержащих кормов после бактериальной ферментации способствовало затормаживанию активности стафилококков. Их уровень в кишечнике животных 2, 3 и 4-й групп снизился к 10, 30, 60, 90 и 120-м дням опыта в 1,05; 1,18; 1,23; 1,4 и 1,29 раза, в 1,12; 1,4; 1,48; 1,63 и 1,54 раза, в 1,01; 1,13; 1,18; 1,34 1,23 раза. Подобным образом изменялась динамика стафилококков в кишечнике гусей.

Результаты исследования динамики изменения содержания клостридий в кишечнике телят и гусей представлены в таблице 5.

Таблица 5 Динамика изменения содержания клостридий в кишечнике телят и гусей (М±m, lg KOE/г)

Группы	Сроки исследования в днях от начала опытов
	Фон	10	30	60	90	120
	телята
1.Контроль - ОР	8,60±0,26	7,90±0,22	8,00±0,37	8,60±0,26	8,60±0,26	8,50±0,21
2. ОР + шелуха проса	8,30±0,30	7,50±0,22	6,70±0,37	5,30±0,44	5,00±0,17	5,20±0,20
			*	**	***	***
3. ОР + шелуха гречихи	8,50±0,39	7,20±0,37	6,10±0,33	4,90±0,42	4,80±0,26	4,50±0,32
			**	***	***	***
4. ОР + лузга подсолнечника	8,40±0,24	7,60±0,24	6,90±0,33	5,50±0,22	5,30±0,25	5,40±0,24
			*	***	***	***
	гуси
1.Контроль - ОР	6,50±0,22	6,80±0,37	6,70±0,30	6,90±0,40	6,40±0,19	6,50±0,22
2. ОР + шелуха проса	6,70±0,30	5,90±0,33	4,80±0,37	4,00±0,32	3,80±0,34	3,90±0,17
			*	**	***	***
3. ОР + шелуха гречихи	6,40±0,26	5,50±0,21	4,30±0,11	3,60±0,07	3,40±0,21	3,50±0,20
		*	***	***	***	***
4. ОР + лузга подсолнечника	6,60±0,40	6,00±0,32	5,10±0,25	4,20±0,12	4,30±0,20	4,50±0,32
			*	**	**	**

Данные по исследованию динамики изменения содержания в кишечнике телят и гусей эшерихий и псевдомонов представлены на рисунке 12.



Рисунок 12 Динамика изменения содержания эшерихий (а,б), псевдомонов (в,г) в кишечнике телят (а, в), гусей (б, г)

Внесение в рацион телят описываемых кормов способствовало восстановлениюв кишечнике уровня микрогрибов Candida. При этом содержание микрогрибов Candida в кишечнике телят 2, 3 и 4-й групп снизилось по срокам опыта и уступало показателю контроля к 10, 30, 60, 90 и 120-м дням в 1,06; 1,11 и 1,01 раза, в 1,32; 1,42 и 1,23 раза, в 1,56; 1,91 и 1,43 раза, в 1,86; 2,08 и 1,77 раза, в 1,94; 2,11 и 1,84 раза. В кишечнике телят контрольной группы в незначительном количестве выделялись микрогрибы из родов Aspergillus и Peniсillium, что было вызвано нарушением микробной экологии кишечника животных и созданием благоприятных условий для их размножения в прямой кишке. Внесение в рацион телят шелухи проса, гречихи, лузги подсолнечника после бактериальной ферментации способствовало выведению микрогрибов описываемых родов из кишечника. Содержание микрогрибов из рода Candida в кишечнике гусей опытных групп изменялось подобно их изменению в кишечнике телят.

Микроскопические грибы из родов Aspergillus, Peniсillium из кишечника гусей не выделялись.

Данные, представленные в разделе 2.2.8 автореферата свидетельствуют, что целлюлозосодержащие корма (шелуха проса, гречихи, лузга подсолнечника) после твердофазной бактериальной ферментации ЦЛБ, ПМБ и ПКБ, внесенные в состав основного рациона, способствуют профилактике дисбактериозов, проявляющихся в виде активизации в кишечнике телят и гусей нормофлоры (бифидобактерий и лактобацилл) и затормаживания размножения условно- патогенных микроорганизмов (стафилококов, клостридий, эшерихий, ...