Интегральная оценка и коррекция тиреоидзависимых морфофункциональных нарушений у животных
Зависимость между уровнями содержания тиреоидных, тиреотропный гормонов и кортизола у здоровых и гипотиреоидных животных. Установление направленности морфофункциональных изменений у крыс и кроликов при введении органически связанных форм йода в рацион.
Рубрика | Сельское, лесное хозяйство и землепользование |
Вид | автореферат |
Язык | русский |
Дата добавления | 26.12.2017 |
Размер файла | 361,3 K |
Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже
Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.
Размещено на http://www.allbest.ru/
На правах рукописи
16.00.02 - патология, онкология и морфология животных
АВТОРЕФЕРАТ
диссертации на соискание ученой степени доктора биологических наук
ИНТЕГРАЛЬНАЯ ОЦЕНКА И КОРРЕКЦИЯ ТИРЕОИДЗАВИСИМЫХ МОРФОФУНКЦИОНАЛЬНЫХ НАРУШЕНИЙ У ЖИВОТНЫХ
Козлов В.Н.
Москва - 2008
Работа выполнена на кафедре патологической физиологии ФГОУ ВПО «Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии имени К.И. Скрябина»
Научный консультант: заслуженный деятель науки РБ, доктор ветеринарных наук, профессор Байматов Валерий Нурмухаметович
Официальные оппоненты: доктор биологических наук, профессор Поляков Виктор Филиппович заслуженный деятель науки РФ, доктор биологических наук, профессор Журавлев Александр Иванович заслуженный деятель науки РФ, доктор биологических наук, профессорТельцов Леонид Петрович
Ведущая организация: ФГОУ ВПО Оренбургский государственный аграрный университет
Защита диссертации состоится «___» 2008 года в____часов на заседании диссертационного совета Д 220.042.02 при ФГОУ ВПО «Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии им. К.И. Скрябина» по адресу: 109472, г. Москва, ул. Академика Скрябина, 23; тел. 377-93-83
С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ФГОУ ВПО «Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии им. К.И. Скрябина»
Автореферат разослан «__» __________ 2008 г.
Ученый секретарь диссертационного совета А.И. Торба
1. ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ
Актуальность темы. Республика Башкортостан относится к биогеохимической зоне с дефицитом йода, кобальта, меди в почвенных и водных экосистемах [Поляков В.Н., 1964; Аскарова Я.Н., 1966; Ивановский С.А., 1980; Мамцев А.Н., 2005; Байматов В.Н., 2006]. В условиях дефицита струмотропных микроэлементов наблюдается увеличение удельного веса тиреоидной патологии в общей структуре незаразных болезней у животных, что негативно влияет на продуктивность, воспроизводительную способность, реактивность и резистентность популяций животных [Клевец Е.И., 1995; Маннапова Р.Т., Аухатова С.Н., 2004; Исмагилова Э.Р., 2006; Salmen I.A., Kamel G.M., Ali A.M., 1975; Roche D., 1982]. Низкая эффективность мероприятий по профилактике нарушений обмена микроэлементов в организме животных связана как с отсутствием четко отработанных методов диагностики этих расстройств, так и ограниченным спектром препаратов, содержащих стабильные и биодоступные формы йода [Шарабрин И.Г., 1975; Уразаев Н.А., 1978; Самохин В.Т., 2003].
Несмотря на многочисленные исследования в области тиреоидологии, проблемы йододефицитных состояний в животноводстве не получили окончательного решения и остаются актуальными. К числу наиболее перспективных направлений следует отнести разработку новых способов стабилизации йода в составе рационов путем его связывания с субстанциями органического генеза, в частности с полисахаридами, наделенными энтеросорбционной активностью к струмогенам. Остаются актуальными вопросы регуляции системы цепного свободнорадикального перекисного окисления липидов при заболеваниях щитовидной железы. Показано, что в условиях хронического и острого воздействия струмогенов выявляются патофизиологические сдвиги в функциональном состоянии окислительного гомеостаза [Гильманов А.Ж., 2000; Камилов Ф.Х., 2000; Журавлёв А.И., 2003; Кармолиев Р.Х., 2005; Capen C.C. et al, 1991; Kelly G.S., 2000; Walsh P.H., 2001]. Показано, что явления гипо- и гипертиреоза сопровождаются накоплением продуктов липидпероксидации в тканях, а также повышенным уровнем хемилюминесценции плазмы крови [Rom-Bugoslavskaia E.C. et al, 1998; Sewerynek J. et al., 2000]. Изучению анти- и прооксидантных свойств йодосодержащих препаратов и биологически активных добавок посвящены немногочисленные исследования [Мамцев А.Н., 2006]. Между тем без выяснения роли струмотропных микроэлементов в формировании функционального состояния окислительного гомеостаза невозможна разработка патогенетически обоснованных методов предупреждения и лечения эндемического зоба.
В целях получения моделей тиреоидной патологии по типу эндемического эффекта используют тиреостатик мерказолил в суточной дозе от 1,0 до 20,0 мг/100 г МТ животного [Кузьмак Н.И., 1978; Москвина Н.И. и др., 1993; Конопля Е.Ф. и др., 1993; Лобанок Л.М. и др., 2002]. Следовательно, необходимы исследования по совершенствованию модели экспериментального гипотиреоза, направленные на определение оптимальной дозы тиреостатика, которая, с одной стороны, сводит к минимальному побочные эффекты тиреостатика, с другой - обеспечивает наиболее полное воспроизведение морфофункциональных нарушений, свойственных гипотиреоидному состоянию. Кроме того, остаются актуальными вопросы хронодиагностики гипотиреоидных состояний у животных.
Цель работы состояла в разработке модели экспериментального гипотиреоза у животных с изучением у них биохимических и морфологических показателей, а также после применения органически связанных форм йода в составе рационов.
Для реализации поставленной цели необходимо было решить следующие задачи:
1. Определить характер морфофункциональных нарушений при экспериментальной гипофункции щитовидной железы, вызванной введением мерказолила в суточных дозах - 1,0; 2,5; 5,0; 10,0 и 20,0 мг на 100 г массы тела.
2. Усовершенствовать способ экспериментального моделирования гипотиреоза на лабораторных животных.
3. Оценить диагностическую ценность хронобиологических исследований в экспериментальной тиреоидологии.
4. Выявить функциональные зависимости между уровнями содержания тиреоидных гормонов (сТ4, оТ3), ТТГ и кортизола у клинически здоровых и гипотиреоидных животных.
5. Установить направленность морфофункциональных изменений у крыс и кроликов при введении органически связанных форм йода в рацион соответственно в суточных дозах 3 мкг и 10 мкг/100 г массы тела.
6. Показать интенсивность реакций свободнорадикального окисления в фагоцитирующих клетках крови методом хемилюминесцентного анализа у здоровых животных и при коррекции экспериментального гипотиреоза.
7. Изучить состояние коры надпочечников в условиях применения мерказолила и йод-пектиновых соединений.
8. Оценить влияние «Йодпектина» и «Йодказеина» на функциональное состояние системы свободнорадикального окисления в гомогенатах почки крыс.
9. Определить возможность коррекции тиреоидзависимых метаболических нарушений путем использования рационов, обогащенных стабильными формами йода.
Научная новизна.
· Определены в эксперименте на крысах дозы антитиреоидного препарата, обеспечивающие получение модели гипотиреоза по эндемическому типу.
· Впервые проведена интегральная оценка структурно-функциональных изменений в органах у животных при тиреоидзависимых нарушениях. Предложена коррекция метаболизма йод-пектиновыми соединениями (патент № 2265377).
· Впервые разработан «Способ диагностики экспериментального гипотиреоза у лабораторных животных с использованием хронобиологических методов исследования» (патент № 2290859).
· Впервые установлены функциональные зависимости между уровнями содержания сТ4, оТ3, ТТГ и кортизола методом регрессионного анализа у клинически здоровых и гипотиреоидных животных.
· Определено состояние клеточного звена иммунитета у животных при коррекции гипотиреоза органически связанными формами йода.
· Дана оценка процессов свободнорадикального окисления при экспериментальном гипотиреозе и его коррекции «Йодпектином».
Научно-практическая значимость работы. На крысах установлены оптимальные суточные дозы тиреостатика, которые обеспечивают наиболее полное воспроизведение морфофункциональных нарушений при гипотиреозе.
Детальное изучение механизмов формирования биологических ритмов терморегуляции у крыс позволило разработать способ хронодиагностики экспериментального гипотиреоза. На усовершенствованных моделях гипотиреоза показана возможность патогенетической коррекции тиреоидзависимых нарушений органически связанными формами йода.
Работа включена в государственную научно-техническую программу Академии Наук Республики Башкортостан: «Профилактика заболеваний, медицинские технологии, здоровый образ жизни» в рамках подпрограммы «Разработка пищевых технологий для производства продуктов, обогащенных йодосодержащими органическими соединениями и пищевыми волокнами».
Внедрение результатов исследования в практику. Результаты работы легли в основу методических рекомендаций Министерства сельского хозяйства РФ «Диагностика нарушений минерального обмена у крупного рогатого скота» (Уфа, 2005), Российской академии сельскохозяйственных наук: «Диагностика и профилактика нарушений минерального обмена у крупного рогатого скота» (Москва, 2005) и «Хемилюминесцентные методы оценки функционального состояния животных» (Москва, 2005) - издания рассмотрены, обсуждены и рекомендованы к печати решением секции «Патология, фармакология и терапия» РАСХН, протокол №7 от 20 января 2005 г. По материалам диссертации получено семь патентов Российской Федерации, издана монография.
Материалы диссертации используются в учебном процессе при чтении лекций студентам филиала Московского государственного университета технологий и управления в г. Мелеузе, Башкирского государственного педагогического университета, ФГОУ ВПО «Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии им. К.И. Скрябина».
Апробация работы. Материалы диссертации доложены и обсуждены на ряде научных форумов: XII Всероссийском конгрессе «Политика здорового питания в России» (Москва, 2003); Всероссийской научно-практической конференции «Проблемы и перспективы обеспечения продовольственной безопасности регионов России» (Уфа, 2003); Всероссийской научно-практической конференции «Актуальные проблемы развития промышленности на современном этапе» (Мелеуз, 2003); научно-практической конференции «Достижения аграрной науки - производству» (Уфа, 2004); научно-практической конференции «Наука, техника и высшее образование: проблемы и тенденции развития» (Ростов-на-Дону, 2004); Российской научно-практической конференции «Интеграция науки и производства как важнейшее условие повышения качества подготовки специалистов» (Уфа, 2004); III Российском конгрессе по патофизиологии «Дизрегуляционная патология органов и систем» (Москва, 2004); X Международной научно-практической конференции «Стратегия развития пищевой промышленности» (Москва, 2004); VII конгрессе Международной ассоциации морфологов (Казань, 2004); Всероссийской научно-практической конференции «Перспективы развития пищевой промышленности России» (Оренбург, 2005); Всероссийской конференции «Трансформация общества: наука, педагогика, производство» (Уфа, 2005); Международной научной конференции по патофизиологии животных (Санкт-Петербург, 2006); 3-й конференции по учебно-методической, воспитательной и научно-практической работе академии (Москва, 2006); Всероссийской научно-практической конференции «Интеграционные евразийские процессы в науке, образовании и производстве» (Кумертау, 2006); V Международной научной конференции студентов и молодых ученых (Москва, 2006); Всероссийской научной конференции «Инновации в интеграционных процессах образования, науки, производства» (Мелеуз, 2007); Всероссийской научно-практической конференции «Проблемы и перспективы развития инновационной деятельности в агропромышленном производстве» (Уфа, 2007); XIII Международной научно-практической конференции «Стратегия развития пищевой промышленности» (Москва, 2007).
Публикации результатов исследования. Основные положения работы опубликованы в 65 научных работах, из них 1 монография (Уфа, 2005), 11 публикаций в центральной печати (журнал «Морфология», № 4, 2004; «Вестник Оренбургского государственного университета», № 12, 2005; «Сибирский медицинский журнал», № 5, 2006; «Ветеринария», № 11, 2006; «Российский ветеринарный журнал», № 1, 2, 3, 2007; «Эфферентная терапия», № 2, 2007; «Вестник Башкирского университета», № 3, 2007; «Достижения науки и техники АПК», № 12, 2007; 7 патентов ФИПС.
Структура и объем диссертации. Диссертация изложена на 370 страницах машинописного текста. Состоит из введения, обзора литературы, материалов и методов исследований, обсуждения полученных результатов исследований, выводов и практических предложений. Работа иллюстрирована 162 рисунками, 47 таблицами и диаграммами. Список литературы включает 526 источников (311 отечественных и 215 зарубежных авторов).
Положения и результаты, выносимые на защиту.
1. Высокие суточные дозы мерказолила (10 и 20 мг на 100 г массы тела) вызывают симптомы острой интоксикации у крыс, способствуют развитию выраженных деструктивных процессов в органах, искажая модель тиреоидной патологии.
2. Тиреостатик мерказолил, вводимый белым крысам в суточной дозе 1,0 - 5 мг/100 г массы тела в течение 21-х суток, позволяет получить модель гипотиреоза по типу эндемического эффекта в эксперименте.
3. Структура и уровень суточных ритмов терморегуляции отражают функциональную активность щитовидной железы, что позволяет использовать хронобиологические методы исследований в диагностике гипотиреоза (патент № 2290859).
4. Применение математических расчетов, с использованием метода наименьших квадратов, позволяет с высокой точностью определить уровни сТ4 и кортизола у клинически здоровых крыс по известным уровням оТ3, ТТГ и сТ4, оТ3 соответственно, а у гипотиреоидных - ТТГ от концентраций оТ3 и сТ4.
5. «Йодпектин» в составе рационов крыс и кроликов обладает биологической активностью, способствует улучшению структуры тканей гипотиреоидных животных.
6. «Йодпектин» в составе рационов оказывает стимулирующее влияние на функциональное состояние системы свободнорадикального окисления в фагоцитах. Йод-пектиновые соединения в составе рациона увеличивают интенсивность хемилюминесцентного ответа фагоцитов у гипотиреоидных животных в эксперименте.
7. Йод-пектиновые соединения в составе рационов нормализуют глюкокортикоидную функцию коры надпочечников.
8. Физиологические эффекты биологически активной добавки, содержащей органически связанные формы йода, проявляются в регуляции скорости и интенсивности реакций перекисного окисления липидов в тканях.
9. При сравнительном изучении физиологических эффектов органически связанных форм йода установлено, что «Йодпектин» по показателям биодоступности не уступает аналогу «Йодказеину» и является патогенетическим средством для восстановления гематологических и биохимических показателей у крыс и кроликов при тиреоидзависимых морфофункциональных нарушениях.
2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
Настоящая работа выполнена в комплексе с сотрудниками научно-исследовательской лаборатории «Пищевые технологии» филиала МГУТУ в г. Мелеузе в рамках выполнения программы исследований Академии Наук Республики Башкортостан за № 19/3 от 15.01.2004 г по теме: «Разработка пищевых технологий для полноценного питания в условиях природноочаговой зобной эндемии населения Южного региона Республики Башкортостан». Нами выполнялся самостоятельный раздел. В период с 2000 по 2007 года в условиях вивария филиала МГУТУ в г. Мелеузе было проведено 3 серии опытов на 360 беспородных крысах-самцах массой 180-240 г, 40 кроликах в возрасте 2,5 месяца и 10 козах. Кормление животных проводили по стандартному рациону вивария.
I-я серия опытов включала проведение экспериментов на крысах с целью определения оптимально-допустимых суточных доз тиреостатика, обеспечивающих, с одной стороны, получение модели гипотиреоза по типу эндемического эффекта, с другой - исключающих развитие симптомов острой интоксикации мерказолилом.
II-я серия экспериментов проводилась в два этапа:
I-й этап - экспериментальное воспроизведение гипотиреоза с помощью мерказолила. Препарат вводили ежедневно в желудок животных с помощью металлического зонда. Суточная доза тиреостатика и продолжительность его введения варьировали в зависимости от поставленных задач - схема проведения опытов представлена в таблице 1.
II-й этап - оценка морфофункционального статуса животных при коррекции экспериментального гипотиреоза органически связанными формами йода - «Йодпектином» и «Йодказеином» согласно схемы, представленной в таблице 1.
Гипотиреоз у коз индуцировался ежедневным введением мерказолила из расчета 5,0 мг/100 г МТ на протяжении 30-и суток. У клинически здоровых и гипотиреоидных коз рассчитывали уровни оТ3, сТ4 и ТТГ методом регрессионного анализа.
Таблица 1 Схема проведения опытов
Группа животных |
Количество животных в группе |
Продолжи- тельность введения тиреостатика (сутки) |
Срок содержания на йодобогащенном или общевиварном рационе (сутки) |
|
I-я серия опытов: определение оптимально-допустимой дозы введения мерказолила на крысах |
||||
I-я - контроль |
36 |
|||
II-я - экспериментальный гипотиреоз, индуцированный ежедневным введением мерказолила в дозе 20 мг/100 г МТ |
36 |
14 |
||
III-я - экспериментальный гипотиреоз, индуцированный ежедневным введением мерказолила в дозе 10 мг/100 г МТ |
36 |
14 |
||
IV-я - экспериментальный гипотиреоз, индуцированный ежедневным введением мерказолила в дозе 5 мг/100 г МТ |
36 |
21 |
||
V-я - экспериментальный гипотиреоз, индуцированный ежедневным введением мерказолила в дозе 1,0 мг/100 г МТ |
36 |
21 |
||
II-я серия опытов: изучение биологической активности «Йодпектина» и «Йодказеина» на крысах |
||||
I-я - контроль |
36 |
|||
II-я - экспериментальный гипотиреоз, индуцированный ежедневным введением мерказолила в дозе 2,5 мг/100 г МТ |
36 |
21 |
||
III-я - содержание на общевиварном рационе |
36 |
30 |
||
IV-я - содержание на рационах, обогащенных «Йодпектином» |
36 |
30 |
||
V-я - содержание на рационах, обогащенных «Йодказеином» |
36 |
30 |
||
III-я серия опытов: изучение биологической активности "Йодпектина" на кроликах |
||||
I-я - контроль |
10 |
|||
II-я - экспериментальный гипотиреоз, индуцированный ежедневным введением мерказолила в дозе 2,5 мг/100 г МТ |
10 |
30 |
||
III-я - содержание на общевиварном рационе |
10 |
30 |
||
IV-я - содержание на рационе, обогащенном «Йодпектином» |
10 |
30 |
Интегральную оценку морфофункционального статуса животных проводили при коррекции экспериментального гипотиреоза «Йодпектином», содержащим йод в органической связи с полисахаридами растительного генеза, в частности с пектином в соответствии с формулой изобретения по патенту № 2265377 «Биологически активная добавка к пище для профилактики йодной недостаточности и способ ее получения» от 10.12.2005 г. Исследуемое йодосодержащее органоминеральное соединение имеет следующий химический состав: пектин - 23,1-25,0 мас. %; йод кристаллический (I2) - 5,0-10,25 мас. %; йодид калия (KI) - 10,0-20,5 мас. %; вода дистиллированная - остальное.
«Йодказеин» - биологически активная добавка к пище на основе йодированных белков молока, изготовленная по патенту РФ № 2192150 от 14.05.2001 г.
В биологически активной добавке «Йодпектин» определяли содержание органического йода с использованием метода инверсионной постояннотоковой вольтамперометрии с углеродным электродом на вольтамперометрическом анализаторе «Экотест-ВА» по 3-х электродной схеме (Методические указания по выполнению измерений массовой концентрации йода в пищевых продуктах, продовольственном сырье, пищевых и биологически-активных добавках, разработанные ООО «Эконикс-Эксперт», Москва, 2001 г).
Метод связан с изучением поляризации микроэлектрода на основании кривых «ток - напряжение», называемых вольтамперными полярографическими волнами. Измерение массовой концентрации йода в пробах проводят после их минерализации и перевода йода из всех степеней окисления в йодид-ионы (степеь окисления -1).
В сыворотке крови животных определяли содержание тиреоидных гормонов - общего 3,5,3'-трийодтиронина (оТ3), свободного тироксина (сТ4), а также тиреотропного гормона (ТТГ) и кортизола методом иммуноферментного анализа с использованием стандартных наборов тест-систем ОАО «Алкор-Био» (Санкт-Петербург, Россия) на иммуноферментном автоматическом анализаторе УНИПЛАН (Россия).
Выявление взаимосвязей между содержанием гормонов щитовидной железы и коры надпочечников осуществляли методом регрессионного анализа (Прохоров Ю.В., 1998) c использованием полиномиальной модели: . Оценку неизвестных коэффициентов регрессии осуществляли методом наименьших квадратов на основе экспериментальных данных.
Суть метода заключается в рассмотрении семейства
и решении экстремальной задачи (где m?n-1)
для поиска значения параметров . Оптимальный набор параметров находили из системы
представляющей необходимые условия экстремума функции , в силу ее специфики являющиеся достаточными условиями ее минимума. Используя найденную зависимость, прогнозировали значения g(x) во всех точках.
Исследование крови проводили по общепринятым методам [Симонян Г.А., Хисамутдинов Ф.Ф., 1995].
Для исследования люминол-зависимого свечения цельной крови крыс использовали метод регистрации хемилюминесценции - свечения, возникающего при взаимодействии радикалов. Также в качестве биологических моделей использовали гомогенаты почек крыс, где имитировали процессы перекисного свободнорадикального окисления липидов [Фархутдинов Р.Р., 2004].
Исследования суточных биоритмов температуры тела у крыс проводили в течение двух суток с 0700 до 2300 ч: 700, 1100, 1500, 1900, 2300 [Асланян Н.Л. и др., 1978]. В конце опыта животных выводили из эксперимента одномоментным декапитированием с соблюдением правил эвтаназии, согласно Хельсинской декларации о гуманном отношении к животным. Кусочки органов фиксировали в 10 %-ном нейтральном водном растворе формалина, срезы изготавливали толщиной 7 мкм и окрашивали гематоксилином и эозином по общепринятой методике [Афанасьев Ю.И., 1967]. Гистохимические исследования включали определение в тканях гликогена по Мак-Манусу, гликозаминогликанов - по Хейлу и железа - по методу Перлса [Кононский А.И., 1976].
Результаты экспериментов подвергали вариационно-статистической обработке с использованием описательной статистики в программе Microsoft Excel. По всем количественным данным определяли критерий достоверности tst по Стьюденту.
3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ
Особенности терморегуляции у крыс при тиреоидной патологии
Нами изучены особенности воспроизведения тиреоидной патологии при суточных дозах мерказолила: 1,0; 5,0; 10,0 и 20,0 мг на 100 г МТ.
Установлено, что в течение эксперимента значения температуры тела у крыс претерпевают значительные колебания в течение суток. Размах этих колебаний у здоровых животных может достигать от 35,9 0С до 38,9 0С. Показатель температуры тела у здоровой крысы в одних случаях можно расcматривать как признак гипотиреоза, (35,9 0С при измерении в 0700 ч), а в других - как признак гипертиреоза (38,7 0С и 38,9 0С при измерении соответственно в 1900 ч и 2300 ч). При сохранении общей структуры температурной кривой отмечали значительную разницу в показаниях температуры тела, измеренных в одно и тоже время. Более того, акрофаза и батифаза ритма могут смещаться в течение суток.
Крысам 2-й группы вводили мерказолил из расчета 20 мг/100 г МТ. Особенности поведения животных в ходе эксперимента: на вторые сутки от начала эксперимента крысы снизили свою повседневную активность - не реагировали на обычные внешние раздражители, отказывались от грубых кормов (пшеница, овёс, семена подсолнечника), большую часть времени проводили в состоянии сна; на третьи сутки у животных отмечали агрессивное поведение; на 9-е сутки у 2-х крыс наблюдали расстройство двигательных функций, у 3-х крыс был отмечен летальный исход. Через семь дней от начала введения мерказолила у крыс изучали структуру суточных ритмов терморегуляции. У крыс 2-й группы наблюдали десинхроноз терморегуляции. Кроме того, в этой группе во все фазы исследования имели место более высокие значения температуры тела на 9-е сутки. Рисунок температурной кривой не был аналогичен контролю. Наблюдалось смещение акрофазы и батифазы, что свидетельствует о патофизиологических сдвигах в системах химической и физической терморегуляции. Содержание общего 3,5,3/-трийодтиронина (оТ3) в сыворотке крови гипотиреоидных животных составляло 1,44 ± 0,10 нмоль/л против 1,88 ± 0,13 нмоль/л у животных контрольной группы (р < 0,05), а свободного тироксина (сТ4) - 6,0 ± 0,23 пмоль/л и 16,68 ± 0,50 пмоль/л соответственно (р < 0,001). При этом уровень ТТГ у крыс 2-й группы составил 0,196 ± 0,02 мкМЕ/мл, а у контрольных - 0,124 ± 0,01 мкМЕ/мл (р < 0,01). Животные с такими функциональными нарушениями, безусловно, не пригодны в качестве моделей гипотиреоза по типу эндемического эффекта.
Животным 3-й экспериментальной группы вводили мерказолил из расчета 10 мг/100 г МТ. При наблюдении у них отмечали явления, присущие животным предыдущей группы: выпадение волос в области хвоста, задних лапок и грудной клетки, агрессивность, однако они были менее выраженные. На 14-е сутки эксперимента наблюдали летальный исход у 2-х крыс; симптомы острой интоксикации тиреостатиком не позволяют рассматривать данный вариант для моделирования тиреоидной дисфункции в эксперименте.
Животным 4-й экспериментальной группы вводили мерказолил из расчета 5 мг/ 100 г МТ. Крысы на протяжении всего исследования вполне удовлетворительно переносили эту дозу препарата. Они не отказывались от привычного для них корма, были спокойны и уравновешены. В этой группе, в отличие от двух предыдущих, не отмечали таких осложнений, как алопеция, паралич конечностей, выпадение волос и зубов. Хронобиологические исследования, проведенные на 22-е и 23-и сутки эксперимента, позволили прогнозировать развитие гипотиреоза: развивался симптом относительной гипотермии во все фазы ритма при совпадении положений акрофаз и батифаз в опыте и контроле. Мезор температуры тела у гипотиреоидных крыс был на 3,5 % ниже по отношению к аналогичному показателю клинически здоровых животных. В свою очередь данные иммуноферментного анализа сыворотки крови свидетельствовали о получении в данной группе крыс модели тяжелой формы гипотиреоза с дефектом конверсии Т4 в Т3 при дефиците йода: концентрация оТ3 в сыворотке крови гипотиреоидных животных составляла 1,6 ± 0,02 нмоль/л против 1,88 ± 0,13 нмоль/л в контроле (р < 0,05), а содержание сТ4 - 3,4 ± 0,12 пмоль/л и 16,68 ± 0,50 пмоль/л соответственно (р < 0,001). При этом уровень ТТГ у крыс 5-й группы составил 0,164 ± 0,01 мкМЕ/мл, а в контроле - 0,124 ± 0,01 мкМЕ/мл (р < 0,01).
Животным 5-й группы вводили мерказолил из расчета 1,0 мг/100 г МТ. Крысы сравнительно легко переносили малую дозу тиреостатика: как в общем физическом статусе животных, так и в их поведении не было замечено явных отклонений. При этом на 22-е сутки эксперимента наблюдали снижение температуры тела у гипотиреоидных крыс во все фазы ритма при сохранении положений акро- и батифаз по отношению к контролю. Мезор температуры тела гипотиреоидных крыс снизился на 2,45 % по отношению к аналогичному показателю клинически здоровых животных. Структура, уровень, а также положения акрофазы и батифазы суточных ритмов терморегуляции отражают функциональное состояние гипофизарно-тиреоидной системы, что позволяет рекомендовать хронобиологические методы исследования для диагностики гипотиреоидных состояний (патент № 220859). Концентрация оТ3 у крыс 5-й группы составляла 2,32 ± 0,07 нмоль/л против 1,88 ± 0,13 нмоль/л в контроле (р < 0,01), содержание сТ4 - 8,19 ± 0,80 пмоль/л и 16,68 ± 0,50 пмоль/л соответственно (р < 0,001). Уровень ТТГ у крыс 5-й группы составил 0,216 ± 0,01 мкМЕ/мл, а в контроле - 0,124 ± 0,01 мкМЕ/мл (р < 0,001). Уровни гормонов гипофизарно-тиреоидной системы в данной группе крыс характерны для легкой формы гипотиреоза.
Моделирование определения гормонов гипофизарно-тиреоидной системы у крыс, кроликов и коз
Гормон сТ4 является основным в оценке функционального состояния щитовидной железы, а тиреотропный гормон - стратегический маркер при ее оценке. Для прогноза уровня ТТГ в крови животных необходима количественная информация, отражающая связи в гипоталамо-гипофизарно-тиреоидной системе. В этой связи нами проведены исследования зависимости содержания ТТГ от содержания оТ3 и сТ4, оТ3 от сТ4 и ТТГ, сТ4 от оТ3 и ТТГ и кортизола от оТ3 и сТ4. Для исследования взаимосвязи гормонов в данной работе использована регрессионная зависимость в виде полинома второй степени.
Обозначим уровень содержания гормонов оТ3, сТ4, ТТГ и кортизола в крови соответственно и исследуем зависимости между гормонами:
,
где (1) - зависимость уровня гормона оТ3 от сТ4 и ТТГ, (2) - зависимость уровня гормона сТ4 от оТ3 и ТТГ, (3) - зависимость уровня гормона ТТГ от оТ3 и сТ4, (4) - зависимость уровня кортизола от оТ3 и сТ4. Находим неизвестные коэффициенты kij с приведением данных к одному порядку нормировкой (5):
Полученные данные представлены в таблицах 2, 3.
Таблица 2 Средние значения данных по уровням тиреоидных гормонов, ТТГ и кортизола у клинически здоровых и гипотиреоидных крыс; (М ± m, n=12)
оТ3 нмоль/л |
cТ4 пмоль/л |
ТТГ мкМЕ/мл |
кортизол нмоль/л |
|
Клинически здоровые |
||||
0,3376 ± 0,0235 |
0,3353 ± 0,0251 |
0,3106 ± 0,0415 |
0,3020 ± 0,0494 |
|
Гипотиреоидные |
||||
0,2797 ± 0,0215 |
0,2710 ± 0,0299 |
0,2536 ± 0,0415 |
0,2549 ± 0,0408 |
Таблица 3 Коэффициенты расчета содержания тиреоидных гормонов, ТТГ и кортизола у клинически здоровых и гипотиреоидных крыс
k1 |
k2 |
k3 |
k4 |
k5 |
k6 |
Относительная погрешность |
||
Клинически здоровые |
||||||||
(1) |
-9,685 |
18,798 |
6,640 |
-0,462 |
-7,339 |
1,252 |
6,04 % |
|
(2) |
-9,992 |
-2,705 |
-2,398 |
6,640 |
2,608 |
-1,046 |
4,53 % |
|
(3) |
7,390 |
-15,428 |
-22,144 |
-0,456 |
18,712 |
-2,414 |
12,92 % |
|
(4) |
-38,133 |
-55,970 |
-86,050 |
36,541 |
63,602 |
-13,155 |
1,42 % |
|
Гипотиреоидные |
||||||||
(1) |
-2,014 |
-0,940 |
-3,890 |
1,279 |
3,200 |
-0,327 |
9,88 % |
|
(2) |
-9,414 |
-6,626 |
2,054 |
8,147 |
1,329 |
-1,313 |
3,01 % |
|
(3) |
-61,351 |
67,886 |
52,387 |
23,217 |
-48,396 |
2,342 |
0,84 % |
|
(4) |
-88,673 |
79,312 |
63,784 |
37,337 |
-59,344 |
1,796 |
11,65 % |
Таблица 4 Значения коэффициентов для клинически здоровых и гипотиреоидных коз
k1 |
k2 |
k3 |
k4 |
k5 |
k6 |
Относительная погрешность |
||
Клинически здоровые |
||||||||
(1) |
-0,531 |
7,848 |
-6,810 |
-3,349 |
5,158 |
-0,502 |
7,23 % |
|
(2) |
76,050 |
19,168 |
-0,300 |
-67,777 |
-8,590 |
15,537 |
0,64 % |
|
(3) |
120,370 |
156,148 |
134,576 |
-159,063 |
-190,305 |
74,005 |
2,81 % |
|
Гипотиреоидные |
||||||||
(1) |
104,846 |
52,495 |
-311,824 |
-114,236 |
274,162 |
-40,460 |
2,17 % |
|
(2) |
53,154 |
43,491 |
-17,190 |
-65,755 |
0,727 |
13,556 |
0,04 % |
|
(3) |
-34,148 |
-86,803 |
181,864 |
78,726 |
-129,483 |
10,700 |
6,87 % |
Таблица 5 Значения коэффициентов для клинически здоровых и гипотиреоидных кроликов
k1 |
k2 |
k3 |
k4 |
k5 |
k6 |
Относительная погрешность |
||
Клинически здоровые |
||||||||
(1) |
1,940 |
24,533 |
-0,506 |
-7,512 |
-2,927 |
1,177 |
4,3% |
|
(2) |
0,462 |
-9,209 |
-0,046 |
2,237 |
2,435 |
-0,344 |
0,63% |
|
(3) |
136,918 |
-453,743 |
330,963 |
50,799 |
-61,533 |
2,074 |
4,83% |
|
Гипотиреоидные |
||||||||
(1) |
-0,297 |
6,857 |
-3,129 |
-2,102 |
0,674 |
0,422 |
8,68 % |
|
(2) |
4,936 |
6,045 |
-2,221 |
-4,416 |
-0,292 |
0,950 |
1,51 % |
|
(3) |
88,307 |
-88,066 |
-36,413 |
-24,279 |
52,760 |
-5,082 |
9,13 % |
Сравнение расчетных и экспериментальных данных для контрольной группы крыс приведено в таблице 6.
Таблица 6 Содержание оТ3, сТ4, ТТГ и кортизола у клинически здоровых крыс; (М ± m, n=12)
оТ3 нмоль/л |
cТ4 пмоль/л |
ТТГ мкМЕ/мл |
кортизол нмоль/л |
|||||
Опыт |
Расчет |
Опыт |
Расчет |
Опыт |
Расчет |
Опыт |
Расчет |
|
2,35 ± 0,13 |
2,58 ± 0,19 |
10,35 ± 0,67 |
10,89 ± 0,64 |
0,022 ± 0,002 |
0,021 ± 0,002 |
19,08 ± 2,96 |
20,14 ± 2,72 |
Сравнение расчетных и экспериментальных данных для крыс в состоянии гипотиреоза приведено в таблице 7.
Метод регрессионного анализа позволил с высокой точностью рассчитать концентрацию сТ4 как у клинически здоровых крыс, так и гипотиреоидных животных при значениях относительной погрешности в пределах от 0,04 % до 4,53 % (табл. 4). Коэффициенты (k1 - k6) позволяют устанавливать расчетным путем уровни содержания ТТГ (относительная погрешность не превышает 0,84 %) при известных оТ3 и сТ4 у крыс, введенных в состояние гипотиреоза мерказолилом в дозе 2,5 мг/100 г МТ (табл. 5).
У крыс в состоянии гипотиреоза повышается точность определения оТ3 до 3,01 %, что в свою очередь уменьшает значение относительной погрешности для ТТГ до 0,84 % (табл. 5). Уменьшение погрешностей определения сТ4 и ТТГ у гипотиреоидных крыс соответственно до 3,01 % и 0,84 % обусловлено тем, что тиреостатик уменьшает диапазон колебаний уровней содержания этих гормонов. Дистрофические процессы в печени, а также снижение активности ферментативных систем в условиях дефицита тиреоидных гормонов при экспериментальном гипотиреозе оказывают ингибирующее влияние на процессы периферического дейодирования Т4, соответственно, увеличивается разброс значений оТ3 и повышается погрешность в расчете до 9,88 % у гипотиреоидных крыс, тогда как у клинически здоровых крыс этот показатель составлял 6,04 % (табл. 4 и 5).
Таблица 7 Содержание оТ3, сТ4, ТТГ и кортизола у крыс при гипотиреозе, индуцированном мерказолилом в дозе 2,5 мг/100 г МТ; (М ± m, n=12)
оТ3 нмоль/л |
сТ4 пмоль/л |
ТТГ мкМЕ/мл |
кортизол нмоль/л |
|||||
Опыт |
Расчет |
Опыт |
Расчет |
Опыт |
Расчет |
Опыт |
Расчет |
|
2,52 ± 0,19 |
2,85 ± 0,22 |
4,78 ± 0,52 |
4,35 ± 0,48 |
0,030 ± 0,004 |
0,031 ± 0,006 |
13,25 ± 2,12 |
13,61 ± 2,25 |
Увеличение дозы мерказолила усиливает выраженность дистрофических процессов в печени и почках, где преимущественно протекают процессы периферического дейодирования Т4 с образованием Т3. Функциональное истощение этих органов ведет к увеличению диапазона колебаний оТ3, что увеличивает относительную погрешность расчетов оТ3 с 7,19 % до 24,76 % при введении соответственно 1,0 мг и 20,0 мг мерказолила на 100 г МТ. У крыс с тяжелой формой гипотиреоза, вызванного мерказолилом в дозе 20,0 мг/100 г МТ, резко снижается уровень оТ3 по отношению к контрольной группе: концентрация общего 3,5,3/-L-трийодтиронина в сыворотке крови гипотиреоидных крыс составляла 1,44 ± 0,10 нмоль/л против 1,88 ± 0,13 нмоль/л в контроле (р < 0,01). При гипотиреозе, вызванном мерказолилом в дозе 1,0 мг/100 г МТ, у крыс наблюдаются адаптивные реакции: на фоне дефицита сТ4 повышается концентрация оТ3 до 2,32 ± 0,07 нмоль/л против 1,88 ± 0,13 нмоль/л в контроле (р < 0,05). При этом относительная погрешность при расчетах сТ4 в этих же группах крыс не превышала 2,15 %, составляя 1,64 %, 1,34 %, 0,36 % и 2,15 % соответственно при введении 20,0; 10,0; 5,0 и 1,0 мг антитиреоидного препарата. С уменьшением дозы тиреостатика повышалась и точность расчетов по определению уровня ТТГ: при применении высоких доз тиреостатика (20 мг/100 г МТ) относительная погрешность составляла 6,86 %, а при дозах 10,0; 5,0 и 1,0 мг мерказолила этот показатель соответственно составил 2,53 %, 1,52 % и 3,17 %. Важно, что параметры (k), вычисленные методом регрессионного анализа, позволяют с высокой точностью рассчитывать у крыс значения ТТГ и сТ4. У клинически здоровых коз и кроликов относительная погрешность расчетов среднеарифметической для сТ4 составляла соответственно 0,63 % и 0,64 %. При экспериментальном гипотиреозе уменьшался показатель относительной погрешности расчетов сТ4 - до 0,04 % и 1,51 % соответственно. При этом как у коз, так и у кроликов в состоянии экспериментального гипотиреоза увеличивался диапазон колебаний уровня содержания оТ3 - продукта ферментативного дейодирования Т4. Относительная погрешность при расчетах оТ3 у гипотиреоидных коз составляла 2,17 % против 7,23 % в контроле, а у кроликов - 8,68 % и 4,3 % соответственно. Увеличение амплитуды колебаний содержания оТ3, оказывающего регуляторное влияние на продукцию ТТГ, в свою очередь увеличивает погрешность среднеарифметических значений ТТГ у коз в состоянии гипотиреоза до 6,87 % (в контроле 2,81 %), а у гипотиреоидных кроликов до 9,13 % (в контроле - 4,83 %). Следовательно, нами установлены изменения в функционировании гипофизарно-тиреоидной системы у крыс, кроликов и коз при экспериментальном гипотиреозе.
Морфологические изменения в органах крыс при введении разных доз мерказолила
Структура щитовидной железы у крыс. У животных контрольной группы фолликулы представлены в виде замкнутых полостей, выстланных однослойным эпителием. Тироциты имеют кубическую форму, содержат ядро на базальной половине клетки. Глыбки хроматина распределяются равномерно. Полость фолликулов заполнена коллоидом (тироглобулин), а снаружи фолликулы оплетены сетью кровеносных капилляров. Между фолликулами встречаются малодифференцированные клетки - тироциты, образующие интерфолликулярные островки.
После введения мерказолила в дозе 20 мг/100 г МТ возникают микроморфологические изменения. Имеются отдельные деструктивно измененные тироциты, которые расположены на базальной мембране и имеют цитоплазматические выросты различной конфигурации, направленные в полость фолликула. Ядра деформированных тироцитов подвергаются кариопикнозу и уменьшены в размерах. Часть деформированных тироцитов лишена связей с базальной мембраной и свободно располагается в виде скоплений в интрафолликулярной полости.
При введении мерказолила в суточной дозе 10 мг/100 г МТ отмечали единичные фолликулы, которые содержат небольшое количество коллоида. В подавляющем числе фолликулов сохранены основные структурные элементы. Часть фолликулов подвержена деструктивным процессам - фрагменты цитоплазмы тироцитов располагаются в свободной от коллоида полости.
Структура щитовидной железы при применении мерказолила в суточной дозе 5 мг/100 г МТ: часть фолликулов содержит незначительное количество коллоида, другая - представляет полости, свободные от тироглобулина. В подавляющем большинстве фолликулов сохранены основные структурные элементы - они имеют стенку, выстланную однослойным кубическим эпителием. Для тироцитов характерно наличие оксифильной цитоплазмы, центрально расположенного ядра с гомогенным хроматином. При этом в части фолликулов наблюдали дистрофические процессы, затрагивающие фактически все элементы тиреоидной паренхимы.
Структура щитовидной железы у крыс при экспериментальном гипотиреозе, индуцированном мерказолилом в дозе 2,5 мг/100 г МТ. В тироцитах крыс данной группы определялись незначительно выраженные гистологические трансформации, что указывает на достаточную функциональную активность железы. В кровеносных капиллярах в незначительной степени выявляются застойные явления. В различных участках паренхимы и интерфолликулярном пространстве наблюдаются небольшие скопления лимфоидных клеток.
Щитовидная железа крыс при применении мерказолила в дозе 1,0 мг/100 г МТ. В центральной части фолликулов, свободных от коллоида, стенка состоит из плотно прилегающих друг к другу тироцитов кубической или цилиндрической формы. В подкапсулярной зоне встречаются фолликулы, содержащие разное количество коллоида. Между фолликулами, в рыхлой соединительной ткани, выявляются небольшие скопления лимфоцитов, а также интерфолликулярных клеток. Часть фолликулов, особенно в краевой части органа, продолжает функционировать, обеспечивая процессы синтеза тиреоидных гормонов.
У крыс контрольной группы гепатоциты имеют кубическую или полигональную форму. В центре гепатоцитов располагается округлой формы ядро. Хроматин ядра располагается равномерно. Внутридольковые синусоидные гемокапилляры умеренного кровенаполнения. Лимфоидная ткань представлена в виде мелких очагов, диффузно расположенных по ходу синусоидных капилляров.
У крыс, получавших тиреостатик в дозе 20 мг/100 г МТ, отмечали выраженные деструктивные процессы в печеночной ткани. Наблюдали нарушение целостности печеночных пластин с разрушением внутридольковых синусоидных гемокапилляров без выраженных признаков кровоизлияния. В кровеносных сосудах долек печени наблюдаются явления застоя, что связано, видимо, с расширением венозной системы печени. Введение крысам мерказолила вызывает реакцию со стороны иммунокомпетентных клеток.
У животных, получавших мерказолил в суточной дозе 10 мг/100 г МТ, выявлялись гистологические изменения в печени. В первую очередь разрушаются печеночные балки и сами гепатоциты. Ядра уменьшаются в размерах, хроматин уплотняется, границы печеночных клеток четко не определяются. В синусоидных гемокапиллярах наблюдали явления застоя крови. По ходу кровеносных сосудов, особенно в зоне расположения триады печени, выявляли небольшие скопления диффузно расположенных лимфоцитов.
Структура печени при введении мерказолила в суточной дозе 5 мг/100 г МТ: в органе отмечается застой крови во внутридольковых синусоидных гемокапиллярах, при этом синусоидные капилляры расширены, между эндотелиоцитами появляются щели, создающие условия для выхода плазмы крови в периваскулярную зону.
Мерказолил в суточной дозе 1,0 мг/100 г МТ вызывал незначительные изменения в тканевых структурах печени: установлены слабо выраженные явления застоя крови в синусоидных гемокапиллярах отдельных долек и небольшие очаги скоплений лимфоцитов и макрофагов по ходу крупных кровеносных сосудов. В тоже время отсутствуют деструктивные процессы как в гепатоцитах, так и в междольковой соединительной ткани.
Структура почек после введения мерказолила в разных дозах. В почках у крыс контрольной группы среди канальцев нефрона выявляются почечные тельца, представленные двухслойной капсулой и сосудистым клубочком. Проксимальный отдел нефрона образован из нефроцитов кубической формы. Узкая часть нефрона построена из плоских клеток, дистальный отдел - из кубических клеток, а собирательные трубочки - из цилиндрических.
Введение мерказолила в возрастающих дозах - 5,0; 10,0 и 20,0 мг /100 г МТ - сопровождается изменениями структуры нефрона и кровообращения. В корковом веществе определяются не функционирующие почечные тельца, образованные интенсивно окрашенными плотно расположенными клетками. Они уплотнены, а полость капсулы расширена. Эпителий неравномерно расширенных канальцев находится в состоянии гиалиново-капельной дистрофии. Наряду с тубулопатией отдельных нефронов отмечали венозный стаз и скопление лимфоцитов, характеризующееся диффузным распределением клеток. При применении мерказолила в дозе 5 мг/100 г определяются нарушения сосудистой системы органа. В мозговом веществе почки обнаруживаются очаговые полнокровные сети кровеносных капилляров, окружающих почечные канальцы. У животных 5-й группы, которым вводили мерказолил из расчета 1,0 мг/100 г МТ, выявляли почечные тельца с запустевшими кровеносными капиллярами и лимфоидные скопления небольших размеров и в малом количестве.
Высокие дозы тиреостатика (20,0 и 10,0 мг/100 г МТ) способствуют развитию деструктивных процессов как в почечных тельцах, так и в канальцах нефронов. Дозы препарата, введенные из расчета 5,0 и 1,0 мг/100 г МТ, оказывают менее выраженный нефротоксический эффект, гистологические трансформации встречаются редко.
Гистохимические изменения у крыс под влиянием мерказолила
Нами проведены гистохимические исследования, включающие качественную оценку количества гликогена и кислых гликозаминогликанов. Гликоген проявляет высокую реакцию в печеночных клетках контрольной группы животных. Он равномерно распределяется по всей цитоплазме гепатоцитов, а ядра печеночных клеток остаются инактивными и выглядят в виде светлых образований. Междольковая соединительная ткань, а также триада печени проявляют высокую реакцию на гликоген. При введении крысам мерказолила в суточной дозе 5 мг/100 г МТ в гепатоцитах обнаружена высокая реакция на гликоген, а область триады печени и кровеносные сосуды с окружающей соединительной тканью проявляли умеренную реакцию. При более высоких дозах мерказолила происходит уменьшение количества гликогена в гепатоцитах. Отмечается его неравномерное распределение в центральных и периферических зонах долек.
У крыс, получавших мерказолил в дозе 1 мг/100 г МТ, надпочечники характеризовались нормальным гистологическим строением, а при увеличении дозы антитиреоидного препарата (5, 10 и 20 мг/100 г МТ) наблюдали явления застойной гиперемии в корковом и мозговом веществе. В надпочечниках у клинически здоровых крыс обнаружена высокая реакция на гликоген соединительнотканной капсулы и умеренная реакция паренхимы (корковое и мозговое вещество) железы. При введении крысам мерказолила в дозе 20 мг/100 г массы тела в корковом веществе надпочечников количество гликогена существенным образом не меняется, а хромаффинные клетки проявляют высокую реакцию на гликоген. При этом гранулы гликогена интенсивно окрашивают цитоплазму хромаффиноцитов. Мерказолил в дозе 10 мг/100 г массы тела не влияет на содержание гликозаминогликанов в надпочечниках. У клинически здоровых крыс, так и у крыс в состоянии гипотиреоза обнаружена умеренная реакция на кислые гликозаминогликаны в корковом веществе и высокая - в мозговом веществе.
Экспериментальный гипотиреоз сопровождается нарушениями гемодинамики в селезенке, что выражается в расширении просвета вен и капилляров, приводящих к застойной гиперемии. В результате происходит избыточное образование гемосидерина в клетках ретикулоэндотелиальной системы из-за усиленного разрушения эритроцитов и гемоглобина. В красной пульпе селезенки клинически здоровых крыс определялись гранулы железа темно-синего цвета, а белая пульпа не проявляла реакцию на железо. Мерказолил в дозе 10 мг/100 г массы тела способствовал накоплению гемосидерина в тканях селезенки, в частности в цитоплазме макрофагов. При проведении качественной гистохимической реакции на железо в легких клинически здоровых крыс также обнаруживаются сидерофаги, но в меньшем количестве, чем у крыс в состоянии экспериментального гипотиреоза.
Сравнительная оценка эффективности биологически активных добавок - «Йодпектина» и «Йодказеина» - на моделях гипотиреоза у крыс
Полученные материалы показывают, что гипотиреоз, индуцированный мерказолилом в дозе 2,5 мг/100 г МТ позволяет получать объективные биохимические и морфологические данные у крыс, характерные для этой патологии. Поэтому в дальнейших экспериментах на крысах нами для получения модели гипотиреоза была применена эта доза, а в следующей серии, на этих же животных, определяли эффективность воздействия йодосодержащих препаратов.
Исследования показали, что при гипотиреозе наиболее подвержены гистологическим трансформациям печень, почки и легкие. В этих органах наряду с деструктивными явлениями отмечали нарушения периферического кровоснабжения с морфологическими признаками реакций иммунной системы. При применении йодосодержащих рационов вышеописанные признаки деструктивных процессов нивелируются.
Влияние «Йодпектина» и «Йодказеина» на кровь крыс c экспериментальным гипотиреозом
На 22-е сутки от начала введения тиреостатика отмечали изменение состава периферической крови у крыс 2-й группы (экспериментальный гипотиреоз). Как видно из данных, представленных в таблице 8, содержание гемоглобина у гипотиреоидных животных составило 126,75 ± 0,86 г/л против 136,75 ± 1,76 г/л в контроле (р < 0,001). При подсчете числа эритроцитов, лейкоцитов и тромбоцитов у животных 2-й группы установлено, что среднеарифметические значения количества названных форменных элементов входят в коридор нормы, существенно не отличаясь от аналогичных показателей клинически здоровых крыс.
На втором этапе, при оценке эффектов йодосодержащего рациона, гематологические показатели крыс 3-й группы претерпевают изменения: содержание гемоглобина у крыс 4-й и 5-й групп составило соответственно 112,50 ± 1,92 г/л и 112,70 ± 2,13 г/л против 106,25 ± 2,60 г/л в 3-й группе (табл. 8). Кроме того, у крыс в 3-й группе выявлена тенденция к уменьшению числа эритроцитов: при содержании на йодобогащенном рационе количество эритроцитов составило 6,11 ± 0,16•1012/л (4-я группа) и 6,14 ± 0,15•1012/л (5-я группа), а на общевиварном - 5,90 ± 0,24•1012/л. При подсчете общего количества лейкоцитов и тромбоцитов у крыс 4-й и 5-й групп не выявлены существенные различия по отношению к аналогичным показателям в 3-й группе животных. В лейкограмме процентное содержание лимфоцитов составляло: в 4-й группе - 69,1 ± 3,01 %, в 5-й группе - 70,3 ± 1,92 %, а в 3-й - 61,7 ± 2,74 %.
Таблица 8 Показатели крови у крыс; (М ± m; n = 12)
Показатели |
Контрольная (1-я группа) |
Эксперимен-тальный гипотиреоз (2-я группа) |
Общевиварный рацион (3-я группа) |
Рацион, обогащенный «Йод-пектином» (4-я группа) |
Рацион, обогащенный «Йод-казеином» (5-я группа) |
|
Гемоглобин, г/л |
136,75 ± 1,76 |
*** 126,75 ± 0,86 |
*** 106,25 ± 2,60 |
*** 112,50 ± 1,92 |
*** 112,70 ± 2,13 |
|
Эритроциты, 1012/л |
4,78 ± 0,16 |
* 4,34 ± 0,12 |
*** 5,90 ± 0,24 |
*** 6,11 ± 0,16 |
*** 6,14 ± 0,15 |
|
Лейкоциты, 109/л |
4,06 ± 0,31 |
4,78 ± 0,36 |
3,50 ± 0,21 |
3,98 ± 0,31 |
3,91 ± 0,25 |
|
Тромбоциты, 109/л |
186,66 ± 8,90 |
183,33 ± 8,29 |
*** 487,25 ± 13,96 |
*** 525,50 ± 14,42 |
*** 475,66 ± 23,79 |
|
Базофилы, % |
0,00 |
0,00 |
0,00 |
0,00 |
0,00 |
|
Эозинофилы, % |
0,50 ± 0,15 |
0,40 ± 0,25 |
1,20 ± 0,34 |
* 2,20 ± 0,62 |
** 1,10 ± 0,14 |
|
Палочкоядер-ные нейт-... |
Подобные документы
Хозяйственно-биологические особенности кроликов. Состав кормов для этих животных. Типы, техника и гигиена кормления. Потребность кроликов в энергии и питательных веществах. Откорм и кормление взрослых кроликов и молодняка. Методика составления рационов.
реферат [41,2 K], добавлен 24.01.2012Принципы селекции животных. Отбор родительских форм и типы скрещивания животных. Отдаленная гибридизация домашних животных. Восстановление плодовитости у животных. Успехи селекционеров России в создании новых и улучшении существующих пород животных.
презентация [2,6 M], добавлен 04.10.2012Кролиководство - наиболее скороспелая отрасль животноводства. Составление рационов для половозрастных групп животных, определение их структуры. Основные элементы полноценных рационов и их роль в питании кроликов. Контроль качества и полноценности кормов.
курсовая работа [100,7 K], добавлен 18.10.2012Токсикологическая характеристика соединений свинца и кадмия, пути их поступления, распределения и накопления в организме животных. Исследование патологоанатомических и морфологических изменений в органах и тканях крыс при отравлении тяжелыми металлами.
дипломная работа [969,1 K], добавлен 10.12.2010Влияние отдельных параметров микроклимата на здоровье и продуктивность животных. Гигиенические требования к объемно-планировочным и конструктивным решениям зданий для содержания животных. Ветеринарная защита кролиководческих ферм, меры общей профилактики.
курсовая работа [53,9 K], добавлен 26.10.2015Строение скелета крупного рогатого скота на примере коровы. Схема пищеварительного аппарата, строение кожи. Способы скрещивания сельскохозяйственных животных, их нормированное кормление. Содержание кроликов. Технология заготовки сенажа, учет кормов.
контрольная работа [1,1 M], добавлен 24.12.2013Потребности сельскохозяйственных животных в питательных веществах, энергии. Нормы кормления быков-производителей. Рацион и его структура, оптимальные варианты. Влияние структуры рационов на пищеварение, обмен веществ, воспроизводительные функции животных.
отчет по практике [382,2 K], добавлен 20.08.2015Эффективность нормированного кормления сельскохозяйственных животных. Поддерживающее кормление животных, величина поддерживающей части нормы. Структура и составление рационов для животных. Особенности кормления стельных сухостойных коров и нетелей.
реферат [24,4 K], добавлен 13.12.2011Проблема изучения механизмов влияния ионизирующей радиации на организм животных и человека, ее актуальность на современном этапе, направления исследования. Исследование данной тематики на примере облученных крыс при 10- и 60-минутной физической нагрузке.
статья [19,9 K], добавлен 18.07.2013Состояние копытец животных, формы их заболевания. Ножные жидкие и сухие ванны для профилактики. Правила содержания животных. Профилактическая расчистка и обрезка копытец (хироподия), применяемый инструментарий. Обработка копытец у беспокойных животных.
реферат [16,4 K], добавлен 11.09.2009Научные основы кормления животных, определение их потребности в питательных веществах и составление оптимального рациона и схемы кормления. Анализ кормления разных половозрастных групп животных. Передовые способы приготовления кормовых к скармливанию.
курсовая работа [57,1 K], добавлен 12.03.2011Классификация, химический состав и питательность кормов для животных. Заготовка высококачественных кормов. Заготовка сенажа в траншее. Заготовка силоса. Подготовка кормов к скармливанию. Нормированное кормление и составление суточного рациона животных.
реферат [31,5 K], добавлен 11.07.2015Способы содержания кроликов породы советская шиншилла в условиях Кузбасса. Показатели эффективности содержания кроликов в крольчатниках и в шедах на улице. Характеристика пушно-меховой продуктивности в традиционном и акселерационном кролиководстве.
презентация [71,6 K], добавлен 24.01.2011Учет фактической переваримости и усвояемости кормов при расчете рационов, комбикормов и премиксов. Оценка питательности кормов по химическому составу, балансу азота, углерода и энергии. Минеральные вещества в кормлении сельскохозяйственных животных.
контрольная работа [277,6 K], добавлен 12.09.2011Задание службы ветеринарной медицины во время транспортировки. Подготовка убойных животных к перевозке, оформление транспортной документации. Требования к погрузке и содержанию животных. Профилактика травматизма и болезней, связанных с перевозкой.
реферат [24,8 K], добавлен 13.02.2015Элементы системы нормированного кормления животных, их потребности в питательных веществах и энергии. Выбор типа кормления для животных с учётом их вида, возраста, продуктивности. Оптимальные варианты типов кормления и рационов для лактирующих коров.
курсовая работа [2,1 M], добавлен 22.01.2012Оценка питательности кормов в скандинавских кормовых единицах. Ее сущность и недостатки. Режим и рацион кормления щенков, рабочих лошадей. Энергетические потребности животных. Расчет годовой потребности в кормах для крупного рогатого скота стада.
контрольная работа [62,0 K], добавлен 14.08.2013Влияние микроклимата на физиологическое состояние и продуктивность животных. Планирование территории животноводческой фермы. Защита от проникновения инфекции на территорию предприятия. Поение животных, навозоудаление, освещение и вентиляция помещения.
курсовая работа [547,1 K], добавлен 13.05.2013Основные системы содержания сельскохозяйственных животных и их характеристика. Гигиена содержания свиней, овец, лошадей и сельскохозяйственной птицы. Санитарно-гигиенические требования к участку для строительства животноводческих ферм и комплексов.
контрольная работа [62,0 K], добавлен 02.08.2015Биологические и хозяйственные особенности кроликов: рост, развитие, особенности пищеварения и размножения. Продуктивность мясо-шкурных, мясных и пушных пород. Гигиена содержания, кормление и разведение кроликов. Заразные болезни, лечение и профилактика.
курсовая работа [135,5 K], добавлен 24.02.2016