Корневые и прикорневые гнили плодовых и ягодных культур, диагностика и меры борьбы

В полевых условиях гниль корневой шейки была обусловлена заражением сеянцев видами рода Pythium и Ph. cactorum, частота выделений которых составила 62,5 и 50 % соответственно (табл. 7).

Гибель сеянцев плодовых пород также может вызывать гриб R. solani, особенно если они выращиваются в теплице (табл. 7). Так, в апреле 1992 г. мы наблюдали гибель сеянцев сливы в теплице в результате поражения ризоктониозом. В этом же году в июне было отмечено поражение ризоктониозом сеянцев груши в условиях открытого грунта.

В то же время, в условиях открытого грунта наличие в почве школки до посадки оомицета P. ultimum обусловило, в дальнейшем, сильное развитие корневой гнили сеянцев яблони.

Таблица 7. Частота выделения почвенных микромицетов (%) из сеянцев плодовых культур пораженных корневыми гнилями в условиях открытого (ОГ) и защищенного грунтов (ЗГ)

Сеянцы плодовых культур могут поражаться почвенными микромицетами после пересадки их в первое поле питомников. Этому способствуют механические повреждения корневой системы, наносимые при выкопке сеянцев. При неблагоприятных условиях выращивания (засуха, переувлажнение) раны на корневой системе сеянцев заселяются почвенными грибами, относящимися к раневым патогенам, которые вызывают гниль корней. Так, в 2007 г., во время жаркого засушливого лета, наблюдались интенсивные выпады сеянцев в первом поле питомника. Эти выпады сопровождались интенсивной корневой гнилью, с которой ассоциировались такие грибы, как Cylindrocarpon destructans, Fusarium sambucinum, F. solani и Rhizoctonia solani.

3.3.2. Корневые гнили подвоев и саженцев плодовых культур в питомнике. В плодовых питомниках ежегодно наблюдаются выпады саженцев, часть из которых нельзя объяснить поражением, например, грибами - возбудителями инфекционного усыхания.

Микологические анализы показали, что симптомы корневой гнили у клоновых подвоев и окулянтов яблони и сливы были связаны с заселением корней и базальной части саженцев почвенно-патогенным грибом Rhizoctonia solani, часто совместно с другими почвенными микромицетами, такими как Fusarium spp., Cylindrocarpon spp., Pythium spp., иногда Phytophthora spp. (табл. 8).

Таблица 8. Частота выделения почвенных микромицетов (%) из укорененных черенков сливы в теплице и после высадки в поле на доращивание

Причиной корневых гнилей в первом поле плодового питомника часто бывает заражение почвенными микромицетами клоновых подвоев ещё на стадии укоренения их в теплице. Из приведенных данных (табл. 8) видно, что уже на стадии укоренения зеленых черенков сливы в условиях теплицы происходит их заражение почвенно-патогенным грибом R. solani, что в дальнейшем сказывается на приживаемости саженцев после высадки в открытый грунт.

Так в 2007 году выпады в 1-ом поле плодового питомника составили 10,5-58,9 %. Причем наибольший процент выпадов (до 58,9 %) приходился на клоновые подвои вишни, которые были получены при укоренении зеленых черенков в теплице.

3.3.3. Гнили зеленых черенков плодовых культур при их укоренении в теплице. Микологические исследования зеленых черенков плодовых и ягодных культур, пораженных микозными гнилями, показали, что наиболее часто встречающимся патогеном был гриб Rhizoctonia solani, который выделялся из некротизированных частей базальных частей с частотой встречаемости 80-100 %. Другой наиболее часто и постоянно встречающейся группой грибов были виды из рода Fusarium, с преобладанием вида F. sambucinum. Встречаемость видов рода Pythium варьировала по годам от 5,5 до 57,1 %. Среди видов рода Pythium были идентифицированы три вида: P. mamillatum, P. ultimum и P. irregulare, которые также ассоциировались с корневыми и прикорневыми гнилями саженцев и сеянцев плодовых культур.

В целом, наибольший ущерб при укоренении зеленых черенков в теплицах наносит гриб Rhizoctonia solani, вызывая гниль базальной части зеленых черенков и отмирание зоны корнеобразования.

ГЛАВА 4. Диагностика почвы и растений на зараженность микромицетами - возбудителями корневых и прикорневых гнилей плодовых и ягодных культур, прогноз их развития

4.1. Метод плавающих биоприманок для диагностики почвы и корней растений на зараженность видов Phytophthora. В связи с тем, что в 1991 году нами была выявлена новая для России болезнь малины - фитофторозная корневая гниль, возбудитель Phytophthora fragariae var. rubi, возникла необходимость разработать доступные методы диагностики этого патогена в почве и в растениях.

В 1994 году был проведен ряд опытов по подбору приманок для диагностики Ph. fragariae var. rubi в почве и корнях растений. Наиболее подходящими для тестирования этого патогена в почве были листья и черешки листьев малины от микроразмноженных растений, адаптированных в теплице.

Для выделения этого патогена из корней малины было предложено в качестве приманок использовать черешки листьев малины, выращиваемой в условиях открытого грунта. Результаты опыта показали, что черешки листьев различных сортов отличались восприимчивостью к Ph. fragariae var. rubi. Максимальную некротизацию черешков листьев наблюдали у сортов Маросейка и Калашник, частота выделения патогена в этом случае достигала 70,0 и 55,5 %, соответственно. Наименее чувствительными к заражению этим патогеном были черешки листьев сортов Маллинг эксплайн и Норфолк Джайнт, которые проявляли некротизацию 0,12 и 0,15 %, соответственно, при низкой частоте выделения этого патогена. Следует отметить, что эти сорта по сообщениям зарубежных исследователей являются устойчивыми к фитофторозной гнили корней [Barritt et al., 1981; Duncan et al., 1993].

Результаты опытов 1997 г. по подбору наиболее селективной приманки для выделения Phytophthora fragariae var. rubi суммированы в таблице 9. Из представленных данных видно, что лишь листья альпийской лесной земляники оказались совершенно непригодными для выделения Phytophthora fragariae var. rubi из почвы.

Таблица 9. Значения коэффициентов селективности (Кс) к Ph. fragariae var. rubi восьми типов биологических приманок

Следует отметить, что средний коэффициент селективности у листьев малины красной соответствовал 48,9 %, а у молодых листьев ежевики сорта Смутсен - 79,2 % (наивысший коэффициент селективности из 8 испытанных биоприманок).

Формула расчета коэффициента селективности:

Кс= По- Прр Ч 100%,

где По - общее число видов Phytophthora, Прр - число видов не относящиеся к Ph. fragariae var. rubi,

Нашими опытами также установлена возможность диагностирования Ph. fragariae var. rubi в почвенных образцах при лабораторных температурах от + 15 до +20°С и оптимуме + 17-18°С. Однако отобранные летом образцы даже при оптимальных условиях тестирования в лаборатории не позволяют выявлять этого патогена. Его удавалось обнаружить в этих образцах лишь весной следующего года (марте, апреле) после продолжительного хранения в холодильнике при +5°С.

Из аналогичных методик по тестированию данного патогена в почве с помощью биоприманок известна методика Дж. М. Дункана [Duncan, Kennedy, 1993], но она требует больших материальных затрат и времени на диагностику. Так, если на диагностику Ph. fragariae var. rubi предложенными способами при благоприятных условиях уходит 4-6 дней, то по методике Дункана - 4-5 недель.

4.2. Метод зеленых черенков для диагностики почвенных микромицетов, возбудителей корневых гнилей плодовых и ягодных культур.

Изучая микозные гнили зеленых черенков плодовых и ягодных культур, мы попытались использовать зеленые черенки, как модельные для диагностики почвенных микромицетов - возбудителей гнилей черенков, а также для определения риска возникновения гнилей.

Таблица 10. Гибель зеленых черенков косточковых культур от гнилей в теплице и процент некротизации «модельных черенков» в тепличном субстрате перед посадкой (через 7-8 дней инкубации при 24-26°С)

Примечание *- укоренение проходило в разных теплицах

Из результатов опытов 1991-1992 гг. (табл. 10) видно, что выпады зеленых черенков напрямую были связаны некротизации «модельных» черенков. В частности, статистический анализ данных показал прямую корреляционную зависимость между выпадами и скоростью некротизации «модельных» черенков, при высоком коэффициенте корреляции (r = 0,823). Также была отмечена прямая корреляционная зависимость между выпадами укореняемых черенков и частотой выделения гриба Rhizoctonia solani из модельных черенков (r = 0,979).

4.3. Прогноз развития корневых и прикорневых гнилей плодовых и ягодных культур

4.3.1. Регрессионный прогноз развития гнилей зеленых черенков при их укоренении в теплице. Для прогноза выпадов зеленых черенков при их укоренении в пленочных теплицах мы рассчитали уравнение регрессии, имеющее вид: У=5,30х-34,13 (1), где У - процент гибели зеленых черенков, х - коэффициент некротизации почвы, рассчитываемый по некротизации «модельных» черенков золотистой смородины в тестируемой почве. В таблице 11 приведены данные прогноза с помощью этого уравнения выпадов зеленых черенков крыжовника, сливы, вишни и красной смородины и сравнение предсказанных значений с фактическими показателями. В частности, из этих данных видно, что ошибка прогноза не выходила за пределы 25 % от фактических значений выпадов.

Таблица 11. Регрессионный прогноз потерь зеленых черенков крыжовника при укоренении в теплице в зависимости от коэффициента (Кп) некротизации «модельных» черенков на почве (У=5,30х-34,13)

Примечание: * - укоренялись одревесневшие черенки весной (март) в зимней теплице; ** - укоренение проходила одинаковых культур в разные годы.

Для упрощения процедуры диагностики и прогноза развития гнили зеленых черенков в теплице вместо коэффициента некротизации почвы (Кп) мы применили прямую оценку некротизации «модельных» черенков для расчета уравнения регрессионного прогноза. Нами было рассчитано уравнение регрессионного прогноза для косточковых культур имеющее вид: У=0,89х+7,48 (2), где х - общая некротизация модельных черенков чубушника, У - прогнозируемая гибель черенков.

Для увеличения точности прогноза мы рассчитали отдельно формулу для предсказаний для зеленых черенков:

- вишни У=1,02х-3,94 (В)

- сливы У=0,42х+41,99 (С).

Расчеты по индивидуальным формулам показали, что в среднем ошибка по прогнозу для вишни была снижена почти в два раза, а для сливы поменяла знак с минуса на плюс, при уменьшении отклонений от фактических в 2 раза.

4.3.2. Регрессионный прогноз фитофторозной гнили корней малины. В ходе наших исследований установлено, что в условиях Московской области оомицет Phytophthora fragariae v. rubi проявляет периодичность в своей вредоносности в зависимости от погодных условий, преобладающих в вегетационный период. Результаты анализа показали, что отмечается высокая корреляционная зависимость (r=0,888) между индексом болезни и суммой осадков за апрель, май, июнь. Прогноз фитофторозной гнили осуществляли по введенному нами значению - индекс болезни (ИБ), который соответствует общепринятому термину - распространенность болезни, но в ИБ вводятся поправки на развитие болезни в текущий год учета.

Используя данные наблюдений за 17 лет, мы рассчитали два уравнения регрессионного прогноза, где в первом (У=0,56 х - 35,55) использовали в качестве независимой переменной х сумму осадков за 3 месяца (апрель, май, июнь), а во втором (У=9,94 х - 37,31) - х это коэффициент отношения суммы осадков за 3 месяца к максимальной среднемесячной температуре (Ко/т). Анализ этих двух уравнений регрессионного прогноза показал, что по уравнению регрессии, где в качестве независимой переменной использовали сумму температур за 3 месяца, давал суммарную ошибку - 4,1 %, а среднюю -0,2 %, что было на порядок ниже лучших регрессионных прогнозов по гнилям зеленых черенков.

Результатом исследований по диагностике и мониторингу явилось создание системы учетов и диагностики, корневых и прикорневых гнилей плодовых культур с использованием оптимальных сроков для учета болезней и проведения анализов. Данная система базируется в основном на разработанных нами методах диагностики с помощью биоприманок и предусматривает применение элементов прогноза для определения риска развития болезней вызываемых некоторыми почвенными патогенами.

ГЛАВА 5. Концепция изменения патогенеза почвенных микромицетов на плодовых и ягодных растениях в условиях агроценозов.

Концепция изменения патогенеза почвенных микромицетов на плодовых и ягодных растениях в условиях агроценозов сформулирована следующим образом.

На патогенез почвенных микромицетов оказывают влияние три основных фактора: почвенно-климатические условия, биологический и антропогенный.

Влияние этих факторов может выражаться, как стимулирующем, так и лимитирующем воздействие на патогенез возбудителей корневых и прикорневых гнилей плодовых и ягодных культур.

Почвенно-климатический фактор является определяющим по своему влиянию на патогенез почвенных грибов и псевдогрибов, так как оказывает сильное влияние, как на структуры их популяции, так и на способность их изменчивости для преодоления устойчивости растения-хозяина.

Лимитирующая роль климатических условий может выражаться в виде «дробности» патогенеза или его периодичности, что ограничивает вредоносность большинства почвенно-патогенных микромицетов на плодовых и ягодных растениях в регионах с континентальным или с резко континентальным климатом.

Основными биологическими факторами являются - количественный и качественный состав популяции почвенно-патогенных микромицетов (плотность инокулюма и наличие вирулентных расс), состояние растения-хозяина (устойчивость или восприимчивость), антагонистическая активность почвы.

Антропогенные факторы, особенно при выращивании растений в искусственных условиях, могут быть определяющими для патогенеза некоторых почвенных микромицетов. Применение новых интенсивных технологий в садоводстве и ягодоводстве может усиливать патогенез почвенных грибов и псевдогрибов, которые ранее не имели значения для этих культур.

В условиях агроценозов, как правило, наблюдается взаимодействие факторов влияющих на патогенез почвенных микромицетов, которое может усиливать или снижать их способность к патогенезу. Изменение одного из взаимодействующих факторов может значительно изменять патогенез почвенных микромицетов, в ту или иную сторону.

Глава 6. Разработка приемов защиты плодовых и ягодных культур от корневых и прикорневых гнилей

6.1. Борьба с гнилями зеленых черенков крыжовника при укоренении в пленочных теплицах.

Результаты опытов по защите зеленых черенков крыжовника от гнилей базальной части показали, что при использовании в качестве предпосадочной обработки замачивание черенков с экспозицией 15 минут в 0,2 % водных суспензиях фунгицидов наиболее эффективным на зараженном субстрате был Фундазол 50 % с.п. Этот фунгицид снижал развитие базальной гнили на черенках в 2,4 раза, по сравнению с контролем.

В борьбе с гнилями черенков крыжовника был испытан такой прием, как профилактическое опрыскивание маточных черенков крыжовника системными фунгицидами Фундазол 50% с.п. и Спортак 45% к.э. (прохлораз) за две недели до заготовки черенков. Наиболее эффективно подавляло заселение черенков видами Fusarium опрыскивание 0,2% Фундазолом, что способствовало увеличению числа укоренившихся черенков крыжовника в 2 раза (табл. 12). Опрыскивание 0,2 % Спортаком напротив увеличивало частоту выделения видов Fusarium до 100 %, против 44,4 % в контроле, что привело к ухудшению укореняемости черенков.

Таблица 12. Влияние фунгицидных обработок маточных кустов крыжовника сорта Русский и замачивания зеленых черенков в фунгицидах перед высадкой теплицу на приживаемость и корнеобразование

Для защиты зеленых черенков крыжовника сорта Колобок испытаны три штамма бактерии Pseudomonas fluorescens (№35, №163, №183). Данные штаммы испытывались по отдельности и в смеси. Результаты этого опыта показали, что все штаммы, при обработке черенков путем погружения их нижние части в бактериальный раствор с экспозицией 30 минут, были мало эффективны в борьбе с гнилью черенков. Повышение экспозиции до 60 минут повышало эффективность штаммов №35 и №163, приближая их по эффективности к Фундазолу.

Результаты опыта по применению препарата Симбионта 1 путем замачивания в нем зеленых черенков крыжовника на 30 минут совместно с 0,02 % CuSO4 или с 0,2 % Фундазолом несколько увеличивали укореняемость черенков (до 65,7 и 80,0 %, соответственно) и были на уровне эталонной обработки Фундазолом. Применение Симбионта 1 в тех же сочетаниях способом пропитки тепличного субстрата увеличивало эффективность препарата, который обеспечивал укоренение до 88,3 и 93,3 % черенков, против 61,6 % в контроле.

6.2. Борьба с гнилями зеленых черенков косточковых культур при их укоренении в пленочных теплицах.

В 2001 был проведен опыт по использованию биопрепаратов для защиты зелёных черенков вишни от почвенно-патогенных микромицетов. Наиболее эффективным было заблаговременное внесение гранул Кетомиума в пленочные пакеты с торфо-песчаным субстратом, которое в 2 раза снижало поражение зеленых черенков гнилями.

Влияние биологического препарата Агат 25 К на приживаемость и укореняемость зеленых черенков клонового подвоя вишни было не равнозначным и противоречивым, причём прослеживалась четкая тенденция снижения числа укоренных растений при повышении концентрации препарата с 0,01% до 0,05%. Пропитка почвенного субстрата 0,15 % водной суспензией фунгицида Топсин М 70 % СП была более эффективной, чем замачивание черенков в этом препарате, и обеспечивала приживаемость 85 % черенков против 57,5 %, соответственно.

Второй опыт (2002 г.) заключался в обработке тепличных субстратов биопрепаратами (внесение перед высадкой черенков). В опыте использовались Агат 25 К - 1,0 %, Кетомиум - 1,0 %, Микофунгицид (на основе хламидоспор и мицелия Trichoderma viride) - 1,0 % и фунгицид Топсин М - 0,15 % (препарат-эталон). Применение биологических препаратов с черенками клонового подвоя Измайловский (ПН) в контейнерах было мало эффективным или заметно снижало выход подвоев со стандартной корневой системой, как в варианте с микофунгицидом - снижение до 30 %, так и в варианте с пониженной концентрацией агата (0,5 %). В варианте с черешневым подвоем Колт, который хуже укоренялся и образовывал крупные каллусы на базальном срезе (от 1 до 5 см3), применение биопрепаратов заметно увеличивало выход подвоев с хорошо сформированной корневой системой. В частности, 1 % Агат увеличивал выход в 2 раза, также как и Кетомиум, а Микофунгицид в 2,8 раза.

В 2005 году был заложен опыт по испытанию двух налипателей, препятствующих смыву фунгицидов с базальной части, это 5% агар-агара и 50% водоэмульсионной краски при укоренении зеленых черенков сливы сорта Евразия 21. Для защиты черенков также использовали Применяли фунгициды Топсин М, Фундазол и Эупарен мульти. Укореняемость в опыте 2005 г. черенков в контрольном варианте составила 40 %, применение стимулятора ризогенеза - корневина (аналога ауксина) не способствовала увеличению укореняемости в среднем по всему опыту. Минимальная укореняемость наблюдалась при использовании в качестве налипателя агар-агара от 0 до 10,4 %. Применение водоэмульсионной краски обеспечивало укоренение у 65 % черенков сливы, это в 1,2-1,6 раза выше, чем в контрольных вариантах. Использование Фундазола и Эупарена мульти совместно с водоэмульсионной краской значительно снижало поражение коры черенков гнилями (в 1,8-2 раза) в зоне корнеобразования. Для контактного фунгицида Эупарен-мульти сохранение этого препарата с помощью водоэмульсионной краски (ВЭК) на черенках увеличило его эффективность в 2 - 6 раз, по сравнению с замачиванием черенков в водной суспензии фунгицида.

В 2007 году были продолжены исследования по применению налипателей для сохранения фунгицидов на базальной части зеленых черенков при их укоренении в теплице. В качестве налипателей испытывались водоэмульсионные краски: акриловая и латексная. Латексная краска заметно снижала эффективность Фундазола и Топсина М, по сравнению и акриловой краской. Особенно сильно такое снижение было заметно для Топсина М, так при использовании его с латексной краской приживаемость черенков составляла 28,6 % (19,0 % - с хорошо развитой корневой системой), а при использовании водной суспензии фунгицида 44 % (40 %, соответственно). В каждом варианте этого опыта с налипателями были свои наиболее эффективные фунгициды, В частности, при использовании латексной краски с Максимом укореняемость была 63,1 % (57,9 %) против 39,1 % (30,4 %) в контроле без обработок. Фундазол показал наибольшую эффективность в варианте с акриловой краской, укореняемость 91,7 % (87,5 %) против 39,1% (30,4 %) в контроле, а Ридомил голд оказался более эффективен в воде, без налипателей - 90,5 % (66,7 %) против 39,1 % (30,4 %).

По результаты своих исследований, мы пришли к выводу, что для полной защиты зеленых черенков от гнилей одной обработки бывает не достаточно, даже при использовании налипателей. Необходимо проводить 2 - 4 обработки фунгицидами во время укоренения и роста корней. Профилактические обработки также необходимы для борьбы с гнилями листьев, особенно серой гнилью, которая как показали наблюдения, представляет серьезную опасность, особенно в годы с влажным летом.

В 2008 году при проверке данного способа в производственных условиях, в тепличном комплексе ГУ ОС «Центральная» ВСТИСП, были включены дополнительные опрыскивания фунгицидами укореняемых черенков, в период корнеобразования. Обработки проводились по следующей схеме: ВЭК + 0,2 % Фундазол (кратковременное погружение перед посадкой), 0,2 % фундазол (пропитка почвы через две недели); 2 - 0,15 % хорусом (опрыскивания против серой гнили с интервалом 14 дней) и пропитка почвы 0,2 % фундазолом через 20 дней (табл. 13).

Таблица 13. Влияние предлагаемого способа защиты на укореняемость зеленых черенков вишни и сливы при их укоренении в производственных условиях, в 2008 г.

Применение разработанной системы защиты зеленых черенков вишни и сливы увеличило их укореняемость в 2 - 2,5 раза, по сравнению с предыдущими годами, когда система защиты в полном объеме не проводилась. Рекомендованный способ защиты зеленых черенков от микозных гнилей способствовал повышению качества укорененных черенков в сравнении с данными, предшествующими началу испытания. В частности, у сортов вишни Владимирская и Светлая выход саженцев первого сорта увеличился в 2,5 и 2,7 раза, а у клонового подвоя вишни Измайловский (ПН) - в 3 раза, а у сливы сорта Скороспелка красная - в 2,8 раз, соответственно.

6.3. Борьба с корневыми и прикорневыми гнилями плодовых культур в первом поле питомника

Первый рекогносцировочный опыт по защите саженцев был заложен в производственных условиях в 2004 году. Была проведена предпосадочная обработка корней в глиняной болтушке, содержащей 0,2 % фундазола. Учеты, проведенные в 2005 году, показали, что в вариантах с обработкой таким способом значительно снизились выпады подвоев. Так, на клоновом подвое 54-118 выпады по сравнению с контролем сократились почти в 6 раз, а на подвоях 62-396 и ММ 106 в 3,6 и 5,3 раза, соответственно. На всех обработанных клоновых подвоях наблюдалось снижение в 2-2,5 раза числа растений с угнетением роста.

В 2006 году было расширен сортимент применяемых фунгицидов таким образом, чтобы они своим фунгицидным действием перекрывали большее количество видов почвенно-патогенных микромицетов.

Обработка подвоев смесью фунгицидов (Фундазол + Ридомил Голд МЦ) обеспечивала приживаемость растений на 100 %, а биологическую эффективность борьбы с болезнями до 97,5 % (через месяц после обработки). Обработка одним фундазолом также была эффективна и обеспечивала приживаемость на уровне 99,2 %, а биологическую эффективность борьбы с болезнями до 92,6 % (табл. 14).

Обработка подвоев перед посадкой в первое поле питомника смесью фунгицидов обеспечивала приживаемость растений на 88,5 % (через полтора года после посадки), а приживаемость окулировок здесь, соответственно, составила 91,6 %, в то время как сохранность подвоев в контроле была - 63,1 %, а приживаемость окулировок - 75,3 %. В сентябре 2007 года выход стандартных саженцев в варианте (Ридомил + Фундазол) составил 81,4 %, против варианта без обработки - 47,2 %.

Таблица 14. Эффективность применения предпосадочной обработки подвоев яблони и её влияние на приживаемость растений и их состояние (2006 г.)

6.4. Борьба с фитофторозными гнилями корней малины

Первый опыт по борьбе с этой болезнью был заложен в 1994 году в селекционных молодых посадках малины с естественным инфекционным фоном. Результаты опыта показали, что все фунгициды в той или иной мере снижали пораженность растений малины фитофторозной корневой гнилью (табл. 15).

Таблица 15. Эффективность пропитки почвы в рядах водными суспензиями фунгицидов в борьбе с корневой гнилью малины (1994)

Примечание: *- оценка по 5-ти бальной шкале (0 - растение внешне здорово, менее 20% корней некротизированы; 4 балл - растение погибло, 100 % корней загнило).

Наиболее эффективно снижал развитие болезни Ридомил 25 % СП (Б.Э. = 69,1%), причем увеличение концентрации рабочего раствора фунгицида с 0,1 % до 0,2 % не влияло на эффективность препарата. Вторым по эффективности был Акробат МЦ 69 % СП, который снижал развитие корневых гнилей в 2,7-2,8 раза, по сравнению с контролем. Фунгициды Сандофан М и Гальбен были менее эффективны (Б.Э.= 43,6 - 55,6 %), причем их эффективность несколько снижалась с увеличением концентрации.

В 1997 году опыт по оценке влияния микрорельефа участка на эффективность фунгицидов в борьбе с фитофторозными гнилями корней малины показал, что необработанные контрольные растения, росшие на делянках с повышенным микрорельефом, были в 2 раза менее поражены корневой гнилью, чем такие же растения в понижениях. На делянках обработанных Ридомилом и расположенных на повышении, средний бал поражения был всего 0,34, а на понижении - в два раза больше. Если на повышенных участках биологическая эффективность Сандофана М была сравнима с таковой у Ридомила (64,2 % против 68,8 %), то на пониженных делянках эффективность Сандофана М снижалась до 39,4 % против практически не изменившего своей эффективности Ридомила (БЭ = 66,5 %).

В 2000 году в полевых условиях испытали препарат на основе лактата хитозана - Агрохит. Предпосадочное 30-минутные погружения в 1 % (п.п.) Агрохит увеличивали рост растений малины примерно на 25 % в сравнении с контролем на возвышенном участке. На пониженном участке в варианте с Акробатом и в контроле произошло заметное ослабление роста растений малины (соответственно на 17 и 25 %). Это было связано с поражением корней растений фитофторовыми оомицетами, более активными во влажных условиях.

Таблица 16. Эффективность защитных мероприятий при посадке малины в борьбе с фитофторозной корневой гнилью (2004)

В 2004 году было проведено производственное испытание защитных мероприятий против фитофторозной гнили корней малины в производственных условиях. Результаты испытания показали, что обработка корней малины перед посадкой фунгицидом Ридомил Голд МЦ и летняя пропитка почвы в рядах Сандофаном М, практически предотвратила развитие болезни в условиях ее эпифитотии в этом году на необработанных участках. Развитие болезни было в 13,5-20,7 раза ниже, чем на сорте Патриция, который был оздоровлен, но высажен без обработки фунгицидами (табл. 16).

Глава 7. Методологические подходы к планированию и разработке защитных мероприятий в борьбе с корневыми и прикорневыми гнилями плодовых и ягодных культур.

На основе результатов исследований были разработаны схемы защиты плодовых и ягодных культур от корневых и прикорневых гнилей, которые основываются на учете уязвимых для почвенно-патогенных микромицетов фаз развития этих культур или этапов выращивания. Наибольшее внимание, при разработке данных схем защиты, уделялось профилактическим обработкам.

Основное внимание в этих схемах защиты уделяется профилактическим мероприятиям при производстве посадочного материала плодовых и ягодных культур. Борьба с корневыми и прикорневыми гнилями на этапах размножения и выращивания посадочного материала снижает риск возникновения этих болезней на промышленных плантациях.

Для повышения эффективности предложенных схем защиты можно использовать разработанные нами относительно простые методы диагностики и регрессионного прогноза.

ГЛАВА 8. РАСЧЕТ ЭКОНОМИЧЕСКОЙ ЭФФЕКТИВНОСТИ

8.1. Расчет экономической эффективности оригинального метода диагностики корней малины и прикорневой почвы на зараженность Phytophthora fragariae var. Rubi

Для расчета экономической эффективности предложенного нами метода диагностики возбудителя фитофторозной гнили корней малины сравнивали его с методом Дункана [Duncan, 1990], широко используемого до недавнего времени в Европе для тестирования патогена Phytophthora fragariae var. Rubi

Таблица 17. Материальные затраты на тестирование одного почвенного образца на зараженность Phytophthora fragariae var. Rubi, руб.

Из данных расчета (табл. 17) видно, что материальные затраты на проведение диагностики одного почвенного образца оригинальным методом, по сравнению с методом Дункана, в 3,8 раза меньше. Так, себестоимость диагностики одного образца почвы или растения нашим методом составят 297,6 руб., а аналогичным методом диагностики по Дункану увеличивается до 1138,5 руб. Тем не менее, при одновременном тестировании предлагаемым методом десяти и более образцов себестоимость теста одного образца снижается еще в 1,5-2 раза.

8.2. Экономическая эффективность предлагаемого способа защиты укореняемых зеленых черенков от микозных гнилей, при получении подвоев косточковых культур в сравнении со стандартным

Таблица 18. Экономическая эффективность предлагаемого способа защиты укореняемых зеленых черенков от микозных гнилей, при получении подвоев косточковых культур в сравнении со стандартным

Применение разработанного нами метода защиты зеленых черенков плодовых и ягодных культур при их укоренении в теплице от микозных гнилей также дает значительный экономический эффект. Это достигается тем, что при использовании данного метода происходит увеличение укореняемости зеленых черенков в 2 раза, также происходит увеличение выхода стандартных подвоев в 1,5 - 3 раза, в зависимости от типа и формы подвоя (табл. 18).

В отличие от стандартного способа защиты, где использовалась предпосадочная пропитка почвы фунгицидами широкого спектра действия, предлагаемый способ предусматривает применение в качестве налипателя для фунгицида водоэмульсионной акриловой краски, что продлевает период защитного действия в два раза. Предлагаемый способ также снижает расход фунгицида в 2 раза, что дает снижение материальных затрат на фунгициды, а также снижает пестицидную нагрузку на окружающую среду.

Сравнивая разработанный метод защиты укореняемых зеленых черенков косточковых культур в теплице, с ранее используемым, установлено, что предлагаемый метод обеспечивает рентабельность 174,4 %, против 29,7% при традиционном (табл. 18).

ОБЩИЕ ВЫВОДЫ

1. Установлено, что в настоящее время на Европейской части России из всех изученных почвенных патогенов для земляники наибольшую опасность представляют такие виды, как Phytophthora cactorum и Rhizoctonia solani, а также комплекс почвенных микромицетов (Cylindrocarpon destructans, Pythium spp., Fusarium spp. и др.), вызывающий черную корневую гниль земляники садовой.

2. Отмечено снижение вредоносности фитофторозной гнили рожков земляники (возб. Ph. cactorum), связанное со сменой сортамента земляники, в ходе которой восприимчивые сорта постепенно заменялись устойчивыми.

3. Установлено, что в последние годы, в условиях открытого грунта, повысилась вредоносность ризоктониозной корневой и прикорневой гнили (возб. Rhizoctonia solani) на землянике и на плодовых культурах в питомнике.

4. Была выявлена новая для России и вредоносная болезнь малины - фитофторозная корневая гниль (возб. Phytophthora fragariae var. Rubi,), установлено влияние на её распространение и вредоносность погодных условий и некоторых агротехнических приемов, характерных для средней полосы России. Разработаны методы диагностики корней малины и прикорневой почвы на зараженность возбудителем фитофторозной корневой гнили Ph. fragariae var. rubi, с помощью плавающих приманок - листьев и черешков листьев малины красной, отличающиеся своей простотой и доступностью, наличие патогена устанавливается в 8-9 раз быстрее, по сравнению с аналогичным зарубежным методом. Рассчитаны две регр...