Антипоживна дія фітатів - екстрафосфорний ефект фітази
Дослідження дії фітатів в організмі. Обґрунтування та аналіз моделювання процесів травлення в лабораторних умовах. Визначення та характеристика доцільності включення фітази в корми приймають на підставі виробничих випробувань пропонованих препаратів.
Рубрика | Сельское, лесное хозяйство и землепользование |
Вид | статья |
Язык | украинский |
Дата добавления | 27.08.2022 |
Размер файла | 121,6 K |
Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже
Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.
Размещено на http://www.allbest.ru/
Одеський державний аграрний університет
ТОВ «Ветфармстандарт»
Дніпровський державний аграрно-економічний університет
ФДБОУ ВО Курська державна сільськогосподарська академія
ФНЦ «Всеросійський науково-дослідний і технологічний інститут птахівництва» РАН
Антипоживна дія фітатів - екстрафосфорний ефект фітази
Решетніченко О.П.
Крюков В.С.
Антоненко П.П.
Ларасенко Л.А.
Глєбова І.В.
Зінов'єв С.В.
Рівень О.Т.
Антіпов А.А.
Милостивий Р.В.
Збільшення продукції тваринництва і птахівництва може бути досягнуто за ефективного використання кормів, у тому числі рослинних. Однак відомо, що до складу кормів рослинного походження входять антипоживні речовини (фітинова кислота або її солі), що знижує доступність наявних у раціоні поживних речовин. З огляду на це, метою огляду був опис дії фітатів в організмі і обґрунтування вибору кормових фітаз для кормовиробництва. Фосфор відповідає за надходження енергії для обмінних процесів в організмі, відіграє важливу роль в обміні білків, жирів і вуглеводів, у синтезі ферментів, гормонів, вітамінів, разом з кальцієм він забезпечує стабільність скелету тварин. Однак переважна частина фосфору в рослинних кормах недоступна для тварин, оскільки вона представлена фітатами, які не розщеплюються в шлунково-кишковому тракті (ШКТ). Фітати, потрапляючи в кисле середовище шлунка, іонізуються і вступають у реакції з позитивно зарядженими мінералами, білками, амінокислотами, утворюючи сполуки, недоступні для подальшого перетравлення. Доступність фосфору з фітатів забезпечується введенням до корму фітази, яка не тільки розщеплює фітати, а й зменшує їх антипоживну дію в результаті зниження концентрації. Сучасні дані свідчать про те, що фітати містять у своїй основі важкорозчинний фосфор та ускладнюють використання інших біологічно активних поживних речовин корму. Збагачення раціону мікробною фітазою робить більш доступними кальцій, цинк і мідь, покращує перетравність корму і стимулює приріст живої маси. Визначення активності фітази лабораторним методом не дає змоги зробити висновок про очікувану її ефективність за використання в кормах для тварин. Проведення таких складних досліджень із застосуванням динамічного моделювання процесів травлення в лабораторних умовах нині практично неможливе. Рішення про доцільність включення фітази в корми приймають на підставі виробничих випробувань пропонованих препаратів.
Ключові слова: корми для тварин, ферменти, фітаза, антипоживна дія фітатів, екстрафосфорний ефект фітази, активність кормових препаратів фітази.
Антипитательное действие фитатов - экстрафосфорный эффект фитазы
А.П. Решетниченко, В.С. Крюков, П.П. Антоненко, Л.А. Тарасенко, И.В. Глебова, С.В. Зиновьев, О.Т. Пи- вень, А.А. Антипов, Р.В. Милостивый
Увеличение продукции животноводства и птицеводства может быть достигнуто при эффективном использовании кормов, в том числе растительных. Однако известно, что в состав кормов растительного происхождения входят антипитательные вещества (фитиновая кислота или её соли), снижающие доступность содержащихся в рационе питательных веществ. Целью обзора было описание действия фитатов в организме и обоснование выбора кормовых фитаз для кормопроизводства. Фосфор отвечает за поступление энергии для обменных процессов в организме, играет важную роль в обмене белков, жиров и углеводов, в синтезе ферментов, гормонов, витаминов, вместе с кальцием он обеспечивает стабильность скелета животных. Однако преобладающая часть фосфора в растительных кормах недоступна для животных, поскольку она представлена фитатами, которые не расщепляются в желудочно-кишечном тракте (ЖКТ). Фитаты, попадая в кислую среду желудка, ионизируются и вступают в реакции с положительно заряженными минералами, белками, аминокислотами, формируя соединения, недоступные для дальнейшего переваривания. Доступность фосфора из фитатов обеспечивается включением в корм фитазы, которая не только расщепляет фитаты, но и в результате снижения концентрации уменьшает их антипитательное действие. Современные данные свидетельствуют о том, что фитаты содержат в своей основе труднорастворимый фосфор и затрудняют использование других биологически активных питательных веществ корма. Обогащение рациона микробной фитазой делает более доступными также кальций, цинк и медь, улучшает переваримость корма и стимулирует прирост живой массы. Определение активности фитазы лабораторным методом не позволяет сделать вывод об ожидаемой её эффективности при использовании в кормах для животных. Проведение таких сложных исследований с применением динамического моделирования процессов пищеварения в лабораторных условиях в настоящее время практически невозможно. Решение о целесообразности включения фитазы в корма принимают на основании производственных испытаний предлагаемых препаратов.
Ключевые слова: корма для животных, ферменты, фитаза, антипитательное действие фитатов, экстрафосфор- ный эффект фитазы, активность кормовых препаратов фитазы.
Anti-nutritional effect of phytates - extraphosphoric effect of phytase
Reshetnichenko O., Kryukov V., Antonenko P., Tarasenko L., Glebova I., Zinoviev S., Piven O., Antipov A., Mylostyvyi R.
The increase of animal and poultry production can be achieved by the effective use of fodder, including vegetable feed. However, it is known that the vegetable feed can contain anti-nutrients (phytic acid or its salts). They reduce the nutrient availability in the diet. That is why, the research aim is the description of the phytate influence on the body and the definition of the right feed phytases for fodder production.
Phosphorus is responsible for the energy supply to the body for metabolic processes. It plays a significant role in the metabolism of proteins, fats and carbohydrates. It takes part in the synthesis of enzymes, hormones, vitamins. Phosphorus ensures the stability of the skeleton of animals along with calcium. However, the predominant part of phosphorus is not available for animals in the vegetable feed as it is presented by phytates, which do not split in the gastrointestinal tract (GIT) of animals. When phytates get into the acidic environment of the stomach they ionize and react with positively charged minerals, proteins, amino acids creating compounds that are inaccessible for further digestion. The availability of phosphorus from phytates is provided by the phytase adding to the fodder, which not only splits phytates, but also reduces their anti-nutritional effect by concentration decreasing.
From the present-day data it is known that phytates contain difficult soluble phosphorus. They also make it difficult to absorb another biologically active nutrients from fodder. The enrichment of the animal diet with microbial phytase makes calcium, zinc and copper be more accessible. It improves digestibility of food and stimulates weight gain. Phytase activity determined by the laboratory method does not allow to make up a conclusion about its expected effectiveness for animals. At present it is almost impossible to conduct such complex research and to use the dynamic modeling of digestion processes in the laboratory. The decision about the appropriate use of proposed preparations with phytase in the fodder is made on the basis of the production test.
Keywords: animal feed, enzymes, phytase, anti-nutritional effect of phytates, extra phosphoric effect of phytase, activity of the feed preparations of phytase.
Вступ
Постановка проблеми та аналіз останніх досліджень. У рослинних кормах приблизно 70 % фосфору міститься в складі фітатів, які є його резервною формою для рослин. Однак у шлунково-кишковому тракті (ШКТ) тварин з рослинної сировини доступним є не більш як 30 % фосфору. У насінні рослин під час проростання активуються власні фітази, які відщеплюють фосфатні групи від фітатів для подальшого включення в метаболізм рослин. Щоб тварини могли використовувати фосфор з фітатів, у корми додають ферментні препарати, що містять фітази. Вперше про її позитивну дію на тварин стало відомо на початку 60-х років минулого століття, однак лише через три десятиліття з'явився перший комерційний препарат, який набув великого поширення. Це збіглося з істотним подорожчанням мінеральних джерел фосфору, а також забороною в європейських країнах використання кормового борошна тваринного походження.
Ретельне вивчення дії фітатів на травлення дало змогу встановити, що вони не тільки містять важкодоступний фосфор, а й гальмують використання інших поживних речовин [1-2]. Фі- тати, розчиняючись у кислому середовищі шлунка, перетворюються в аніони фітинової кислоти, які, вступаючи у взаємодію з білком корму, утворюють сполуки, недоступні для перетравлення ферментами тварин [3]. Крім того, йони фітинової кислоти утворюють нерозчинні хелати з катіонами цинку, кальцію, знижуючи їх доступність в організмі. Ці властивості пов'язують з антипоживною дією фітатів.
Проблема забезпечення тварин фосфором пов'язана з його низькою доступністю з рослинної сировини, в якій він присутній в основному в складі фітатів. Це зумовлює необхідність включення в корми мінеральних джерел фосфору, ресурс яких у глобальному аспекті обмежений [4-5]. Збільшення вмісту фосфору в раціоні призводить до зростання вартості комбікормів, а також підвищеного виділення фосфору з калом, що супроводжується забрудненням навколишнього середовища, включаючи джерела води [6].
Метою огляду є опис дії фітатів в організмі і обґрунтування вибору кормових фітаз для використання в кормовиробництві.
Сьогодні кормові препарати фітази отримують шляхом мікробіологічного синтезу. Виявлено безліч активних продуцентів фітази серед мікроскопічних грибів і бактерій, частину з яких використовували для виробництва комерційних препаратів [7-8]. Утворені ними фітази різняться за біологічними властивостями і ефективністю застосування в тваринництві. Незважаючи на різноманіття препаратів, єдиною основною функцією фітаз є відщеплення фосфату від фітатів, що перетворює їх у форму, доступну для всмоктування в ШКТ. Фітати включають різноманітні сполуки, що містять у своєму складі фітинову кислоту (ФК), яка є вільною формою міо-інозитол-гексафосфату (ІФ6). Вона включає 6 фосфатних груп (Н2Р03)-, з'єднаних з циклічним спиртом інозитолом.
Фітати кормів. Описуючи субстрати фітази, використовують терміни «фітат», «фітин» і «фітинова кислота». «Фітати» відображають збірне поняття, що включає безліч речовин, які об'єднує присутність у них фітинової кислоти. Найчастіше в наукових публікаціях зустрічається назва «фітат», яка відноситься до різноманітних сполук, що включають ФК. З терміном «фітин» пов'язують депонований у насінні рослин комплекс ІФ6 з калієм, магнієм і кальцієм. Аналізуючи щорічний світовий уміст фітатів у заготівельному зерні та фруктах, підрахували, що він становить приблизно 51 млн тонн, у тому числі 35 млн тонн фітинової кислоти, що містить 9,9 млн тонн фосфору, 12,5 млн тонн зв'язаного калію і приблизно 3,9 млн тонн магнію, які є важкодоступними для використання тваринами. Відтак, основними природними фітатами рослин є комплекси магнію, кальцію і калію з фітиновою кислотою [9-10]. Незалежно від абсолютної концентрації фітатів у зерні злаків, від загального фосфору на відносну частку у вигляді фітатів припадає 61-72 %. Водночас у продуктах переробки олійних культур цей діапазон ширший. фітат корм травлення
Селекція рослин на підвищення вмісту протеїну в зерні супроводжується високою позитивною кореляцією між умістом протеїну і концентрацією ФК та загального фосфору [11]. ФК є складним ефіром шестиатомного спирту інозитолу і ортофосфорної кислоти. Із ряду ізомерів у природі найчастіше зустрічається В-.шо-інозитол-1, 2, 3, 4, 5, 6-гексакісдигідрофосфорної кислоти (ІФ6 або IP6). Кожна фосфатна група має два атоми водню, здатні до дисоціації. Шість атомів виявляють сильні кислотні властивості - рН 1,5, у інших кислотні властивості виражені слабше [12]. Виходячи з реакційної активності фосфатних груп, ФК може вступати в реакції з різноманітними речовинами, утворюючи безліч хімічних сполук, які повною мірою ще не вивчено. Іноді зазначають, що антипоживна дія ФК і фітатів пов'язана з низькою доступністю фосфору, що не є вірним, оскільки свідчить лише про обмежену доступність фосфору і не пов'язане з антипоживними властивостями. Тому фахівці розмежовують антипоживну дію фітатів з їх властивостями, що пов'язані з низькою доступністю з них фосфору [13].
Фітати, потрапляючи в кисле середовище шлунка, розчиняються і набувають негативного заряду, завдяки чому вони вступають у реакцію з позитивно зарядженими йонами, до яких належать біогенні двовалентні метали (Zn2+, Fe2+/3+, Ca2+, Mg2+, Mn2+, Cu2+). Утворені сполуки під час переміщення в кишечник втрачають розчинність і в результаті стають недоступними для всмоктування. Залежно від складу раціону, видових і вікових особливостей травлення фітати можуть спричиняти дефіцит кальцію, цинку, знижувати доступність амінокислот і зменшувати використання енергії корму [14-16]. Під дією фітази фітинова кислота втрачає частину фосфатних груп, і утворюються сполуки, які не можуть утримувати раніше зв'язані мінеральні речовини, білки і амінокислоти.
Існують дані, які підтверджують, що фітати знижують ефективність використання протеїну і енергії кормів, проте ці факти не отримали наукового пояснення. Донині помилково вважають, що під дією фітази підвищується перетравність протеїну [17]. Ці висновки зроблено виходячи з результатів балансових дослідів, помилково ототожнюючи фізіологічний процес перетравлення поживних речовин з процесом всмоктування [18]. Складність полягає в тому, що склад хімусу в ШКТ змінюється по ходу його переміщення, змінюється розчинність фітатів і кислотність середовища, необхідні для прояву фітазою оптимальної активності. Умови в ШКТ залежать від споживання корму, води і секреції соляної кислоти в шлунку, бікарбонатів у дванадцятипалій кишці і зміни рН середовища, що впливає на перетравлення і всмоктування всіх поживних речовин. Зниження їх використання за впливу фітатів змінюється залежно від складу раціонів і віку тварин. Вивчення цих процесів ускладнене тим, що динамічне моделювання процесу травлення в лабораторних умовах неможливе. Це виключає можливість з'ясування важливих деталей його перебігу для кращого розуміння. Спочатку фітази розглядали тільки як фермент, призначений для підвищення доступності фосфору, з чим пов'язували покращення продуктивності тварин [19-20].
Антипоживна дія фітатів проявляється зниженням використання поживних речовин корму. Вони можуть утворювати важкоперетравні комплекси з білками і крохмалем. Визначити компоненти сировини з низьким умістом фітатів або їх відсутністю - економічно не виправдане завдання. Інший шлях досягнення поставленої мети - зниження вмісту в кормах фітатів шляхом застосування ферменту, що їх руйнує. Сьогодні на ринку сировини пропонують різні кормові препарати фітази, які різняться за механізмами дії, проявом активності в різних відділах шлунково-кишкового тракту.
Під час розщеплення фітатів утворюються вільні йони фосфату, які доступні для всмоктування, і в значній кількості - ефіри інозитолфосфату з меншим умістом фосфатних груп. Це зумовлює зниження негативного заряду молекул фітатів, і в результаті - втрату здатності блокувати травлення білків і всмоктування амінокислот і мінералів. Цей феномен назвали екстра- фосфорною дією фітази [21], хоча вона не пов'язана з прямою дією фітази, а обумовлена зниженням умісту реакційно-активних фітатів у хімусі. Це підтверджено спостереженнями на кур- чатах-бройлерах за згодовування корму, що не містить фітатів, в якому єдиним джерелом білка був легкоперетравний казеїн. Додавання в корм фітату натрію знижувало перетравність казеїну з 85 до 2 % і в цілому сухих речовин - до 37 %. Зменшення кількості введеної фітази в 2 рази зумовлювало підвищення перетравності казеїну і сухих речовин. За включення в корм 1000 одиниць/кг фітази, на тлі введеного до нього фітату натрію, спостерігали подальше зростання перетравності протеїну. Дослідники вважають, що аналогічна дія фітатів проявляється у птиці, яка отримує звичайний раціон [22]. У цьому модельному досліді доведено: 1) відбувається пригнічення перетравності протеїну під впливом фітатів; 2) фітаза за відсутності фітатів не підвищує перетравність протеїну, оскільки не має протеолітичних властивостей; 3) фітаза значною мірою пригнічує гальмівну дію фітатів.
Вплив фітатів і фітази на доступність амінокислот у кормі в практичних умовах буде змінюватися залежно від вмісту фітатів і ряду інших чинників, а також властивостей кормової фітази. У таблиці 1 наведено середні величини змін доступності амінокислот протеїну корму, і можливі її відхилення від середньої величини за використання однієї й тієї самої фітази [23].
Опубліковано сотні повідомлень про позитивну дію фітази на доступність амінокислот, однак узагальнення великої кількості публікацій свідчить, що бажані результати досить нестійкі [24]. Підкреслимо, що єдиною властивістю фітази є розщеплення фітатів, яке супроводжується підвищенням доступності фосфору в ШКТ. Екстрафосфорний ефект, який приписують фітазі, обумовлений перетворенням фітатів у сполуки, які не здатні блокувати інші поживні речовини, присутні в хімусі. Таким чином, він не прямо пов'язаний з дією фітази, а опосередковано через її вплив на метаболізм фітатів.
Таблиця 1 - Вплив включення в корми фітази на доступність амінокислот у бройлерів
Амінокислоти |
Доступність амінокислот, % |
|||
в середньому |
мінімальна |
максимальна |
||
Аргінін |
0,55 |
- 2,87 |
3,42 |
|
Гістидин |
0,88 |
- 4,91 |
464 |
|
Ізолейцин |
0,11 |
- 7,39 |
7,71 |
|
Лейцин |
0,08 |
- 4,31 |
3,72 |
|
Лізин |
- 0,91 |
- 0,59 |
2,66 |
|
Метіонін |
- 0,99 |
- 6,20 |
1,45 |
|
Фенілаланін |
-0,59 |
- 5,06 |
5,37 |
|
Треонін |
3,16 |
- 4,81 |
10,61 |
|
Валін |
0,50 |
- 4,67 |
5,09 |
Молекулярний механізм дії фітази. Фітази належать до одного з класів фосфатаз - фосфогідролаз міо-інозитол-1, 2, 3, 5-цис-4,6-гексакісдигідрогенфосфату, що піддають гідролізу ефірний зв'язок між міо-інозитолом і ортофосфатом. Фермент, після приєднання до ІФ6 і відщеплення першої фосфатної групи, залишається зв'язаним з субстратом, потім відщеплює від ІФ5 наступну фосфатну групу і т. д. [25]. Гідроліз зумовлює утворення нижчих ефірів міо-інозітолфосфату і вільних фосфатних груп у результаті перебігу послідовних реакцій дефосфорилювання.
Рис.1. Схема основних шляхів перетворення інозитолгексафосфату.
У ході експерименту встановлено, що фітати корму не впливають на активність фітази [26]. Зокрема, включення в корм, що містить 500 од./кг 6-фітази Phyzyme XP, 8,5; 11,5 або 14,5 г/кг фітату натрію, не змінювало активність ферменту, тобто ІФ6 не впливає на активність фітази [27]. Відомо декілька десятків ферментів, які відщеплюють фосфатні групи від фітатів, і тому кількість фітаз зростає у зв'язку зі створенням нових форм, що також пов'язано зі зміною їх властивостей. Згідно з рішенням Міжнародного союзу біохіміків, на підставі стереоспецифіч- ності виділено три класи фітаз: 3-фітаза (ЄС 3.1.3.8), 5-фітаза (EC 3.1.3.72) і 6-фітаза (ЄС 3.1.3.26), які ініціюють дефосфорилювання ІФ6 у 3-, 5- або 6-го вуглецевих атомів інозитолу і, відповідно, продукують різні ізомери нижчих ІФ. 3-фітазою дефосфорилюється ІФ6 в положенні 3, утворюючи 1, 2, 4, 5, 6-пентакісфосфат і неорганічний фосфат (Фн, (Н2Р03)-), тоді як 6- фітази починають дефосфорилювання ІФ6 в положенні 6, утворюючи 1, 2, 3, 4, 5- пентакісфосфат і Фн. Таким чином, на першій стадії дії фітаз вивільняється йон ортофосфату, і утворюється стереоізомер ІФ (див. схему перетворень ІФ).
Дія кожного типу фітаз і прояв максимальної їх активності залежить від рН. За цією ознакою їх відносять до кислих або лужних. Кислі фосфатази мають широку субстратну специфічність до фітатів, що не містять металів, тимчасом лужні проявляють специфічність по відношенню до фітатів, зв'язаних з металами. Детально класифікацію фітаз і їх продуцентів описано в оглядах [28-29].
У науковій літературі існує думка, що обмежувальною дією фітаз під час розщеплення фітатів є перша їх реакція, незалежно від типу фітази. Чим зумовлений цей факт - не встановлено: труднощами утворення зв'язку ферменту з субстратом або ж відомими обмеженнями доступності ферменту в кормах до субстрату. В експерименті на бройлерах, які отримували корми, що включають екзогенну 6-фітазу, спостерігали зниження ІФ6 в зобі і тонкому кишечнику [30]. За результатами досліджень уміст ІФ6 в зобі знижувався на 30 %. Включення в корм 500 од. фітази підвищувало його перетравність до 47 %, а 1500 од. - до 56 % (табл. 2).
Таблиця 2 - Вплив добавок фітази і міо-інозитолу на концентрацію ізомерів ІФ в хімусі зобу 22-добових бройлерів
Варіанти |
ІФзх |
ІФ(1,2, 3,4)Ф4 |
ІФ(1,2, 5,6)Ф4 |
ІФ(1,2, 3,4,6)Ф5 |
ІФ(1,2, 3,4,5)Ф5 |
ІФ(1,2, 4,5,6)Ф5 |
ІФ6 |
Зниження ІФ6, % |
|
мкмоль/г сухої речовини |
|||||||||
Концентрація в кормі |
* |
* |
* |
0.3 |
0.4 |
0.6 |
11.6 |
||
Контроль (К) |
1.1b |
0.6a |
0.8c |
0.3a |
0.7a |
0.4a |
7.9a |
30c |
|
К+міоінозитол |
1.4a |
0.6a |
1.2 |
0.4a |
0.8a |
0.4a |
7.9a |
31c |
|
Phy500** |
1.5a |
02 |
1.2a |
02 |
04 |
02 |
62 |
47 |
|
Phy1500 |
0.8c |
н.д.1 |
12 |
02 |
0.2c |
02е |
5.1c |
56a |
|
Phy3000 |
0.7c |
н.д.1 |
02е |
2 н.в.р2 |
0.2c |
0.1c |
5.1c |
58a |
Примітки: *Ізомери ІФ не виявлено.
**В експерименті використовували модифіковану 6-фітазу Quantum Blue.
a-c Середні величини з однаковими буквами не відрізняються (P < 0.05).
1н.д., не виявлено в більшості зразків.
2< н.в.р. - нижче за рівень, який можна виявити.
Показово, що під впливом ендогенних фітаз у контрольній групі підтримувалася найвища концентрація ІФ(1, 2, 3, 4, 5)Ф5, яка порівняно з її концентрацією в кормі зросла на 75 %, що пояснюється дією присутньої в кормі 6-фітази. Водночас концентрація двох інших метаболітів, що містять фосфат в шостому положенні ІФ(1, 2, 3, 4, 6)Ф5, не змінилася, або навіть знизилася ІФ(1, 2, 4, 5, 6)Ф5, що дає підставу припустити слабке їх утворення з ІФ6, або активне перетворення в ІФ(1, 2, 5, 6)Ф4, концентрація якого була вища порівняно з ІФ(1, 2, 3, 4)Ф4. Міо- інозитол суттєво не вплинув на концентрацію досліджуваних метаболітів.
Додавання до корму 500 од./кг фітази призводило до двократного зниження концентрації ІФ(1, 2, 4, 5, 6)Ф5. Цей факт не знаходить пояснення, оскільки до корму включали 6-фітазу, під впливом якої повинна відщеплюватися фосфатна група в 6-му положенні. Подальше збільшення фітази в кормі до 1500 од./кг не вплинуло на її концентрацію. ІФ(1, 2, 4, 5, 6)Ф5 може перетворюватися тільки в один метаболіт - ІФ(1, 2, 5, 6)Ф4, тоді як попередниками ІФ(1, 2, 3, 4)Ф4 можуть бути два метаболіти: ІФ(1, 2, 3, 4, 5)Ф5 і ІФ(1, 2, 3, 4, 6)Ф5. Незважаючи на це, концентрація ІФ(1, 2, 3, 4)Ф4 була нижчою, ніж ІФ(1, 2, 5, 6)Ф4, яка утворюється з одного попередника. Включення в корм 500 од./кг фітази в 2 рази знижувало концентрацію ІФ(1, 2, 3, 4)Ф4, і при 1500 од./кг цей метаболіт у хімусі не виявляли, тобто він повністю перетворювався в ІФ3. З викладеного вище слідує, що 6-фітаза по-різному впливала на окремі етапи дефосфорилювання ІФ. Можна припустити, що накопичення в середовищі ІФ(1, 2, 5, 6)Ф4 обумовлено тим, що хімічна реакція цього етапу є «вузьким» місцем у ланцюзі гідролізу зв'язку між фосфатом і міо- інозитолом. Це підтверджено результатами інших досліджень [31-32].
У вмісті тонкого кишечнику концентрація ІФ6 була майже втричі вищою, ніж у кормі, і в 3,8 раза вищою, ніж у хімусі зобу, хоча її рівень відносно початкового становив 31 %, тобто його зниження відбувалося так само швидко в кишечнику, як і в зобі. У зв'язку з тим, що вміст вихідного субстрату в хімусі тонкої кишки був у кілька разів вищим, порівняно з його рівнем у зобі, концентрація окремих метаболітів ІФ теж зростала. Можна припустити, що активність ендогенної фітази була недостатньою для гідролізу ІФ6 і його метаболітів. Це підтверджується зниженням концентрації ІФ з меншим умістом фосфатних груп за згодовування корму, що містить 1500 од./кг фітази (табл. 3).
Таблиця 3 - Вплив фітази і .шо-інозитолу на концентрацію метаболітів ІФ6 в хімусі тонкого кишечнику бройлерів
Варіанти |
ІФ P 2 P3x |
!0(1,5,6)P3 |
ІФ(1,2, 3,4)P4 |
ІФ(1,2, 5,6)P4 |
№(1,2,3,4,6)P5 |
ІФ(1,2, 3,4,5)P, |
ІФ(1,2, 4,5,6)P, |
!OPe |
Зниження №P6, % |
|
мкмоль/г сухої речовини |
||||||||||
Контроль (К) |
3 н.д. |
1.0a'b |
2.2d |
0.7а |
3.3b |
1.4а |
30.0а |
31е |
||
К+ .ш'о-інозитол |
1.4b |
н.д. |
1.2а |
2.8c,d |
0.7а |
3.9а |
1.6а |
30.1а |
28е |
|
Phy500 |
2.3а |
4 <н.в.р |
09 |
5.2а |
0.2 |
3ТЬ |
1.1b |
13.4b |
70 |
|
Phy1500 |
2.7а |
н.д. |
0.2c |
4.2a'b |
н.д. |
0.8е |
0.3е |
3.3е |
93а |
|
Phy3000 |
2.5а |
н.д. |
н.д. |
3.8b,c |
н.д. |
0.6е |
0.2е |
2.8е |
94а |
У кишечнику під впливом 500 од./кг фітази, концентрація ІФ (1, 2, 3, 4, 6) Ф5 знижувалася незначно, тимчасом рівень утвореного з нього метаболіту ІФ (1, 2, 5, 6) Ф4 зріс у 2,4 раза. Збільшення дози фітази в споживаному кормі до 1500 од./кг призвело до зниження концентрації всіх метаболітів за винятком зростаючого ІФ (1, 2, 5, 6) Ф4. Цей факт підтверджує припущення про те, що активність фітази, що діє на ІФ (1, 2, 5, 6) Ф4, обмежує дефосфорилювання фітатів, на відміну від фітази, яка метаболізує ІФ (1, 2, 3, 4) Ф4. На підставі викладених вище результатів можна зробити висновок, що перший етап перетворення ІФ6 в ІФ5 є обмежувальним чинником у дефосфорилюванні фітатів. Однак у ланцюзі послідовних перетворень ІФ іншим обмежувальним чинником метаболізму фітатів є недостатня активність фітази, яка гідролізує ІФ (1, 2, 5, 6) Ф4.
Ми звернули увагу на результати, отримані на підставі іншого методологічного підходу. В експерименті описано зміну вмісту окремих метаболітів у посліді курчат одного віку за впливу однакових доз кормових фітаз [32]. Концентрацію метаболітів у посліді птиці можна розглядати як сумарну, отриману в результаті їх утворення і втрат (табл. 4).
Таблиця 4 - Концентрація інозитолфосфатів у кормі і посліді 3-тижневих бройлерів
Додано фітази*, од./кг |
Жива маса в 3 тижні, г/гол |
Концентрація метаболітів ІФ**, г/кг |
|||||
Корм |
|||||||
ІФ« |
ІФ5 |
ІФ4 1 ІФ3 1 Інозитол |
|||||
11,56 |
0,558 |
Не виявлено |
|||||
Послід |
|||||||
Контроль (К) |
840 |
39,5 |
4,70 |
3,04 |
0,24 |
0,37 |
|
К+ 500 |
874 |
20,7 |
4,76 |
4,93 |
0,18 |
0,80 |
|
К+ 1500 |
882 |
8,8 |
2,73 |
7,30 |
0,26 |
1,23 |
Примітка:* Модифікована 6-фітаза QuantumBlue. ** Сума стереоізомерів.
Концентрація інозитолгексафосфату під дією рекомендованої дози фітази знизилася на 48 %, і під впливом «супер дози» - на 78 %. У посліді контрольної групи вміст ІФ4 був нижчим, ніж ІФ5, що могло бути пов'язано з недостатнім утворенням ІФ5 за низької активності ендогенних фітаз. Споживання корму з 500 од./кг фітази майже не вплинуло на концентрацію ІФ5, однак рівень ІФ4 зріс в 1,6 раза. У групі, яка одержувала корм, що включав 1500 од./кг екзогенної фітази, знижувалася концентрація ІФ6. Це обумовлено її активним перетворенням в ІФ5. Проте її концентрація теж знижувалася, що свідчить про активацію процесу перетворення ІФ5 в ІФ4. Метаболізм ІФ4, будучи «вузьким» у ланцюзі його перетворення в ІФ3, зумовив збільшення концентрації ІФ4 в 2,4 раза порівняно з контрольною групою.
Під час дослідження in vitro з використанням чистого субстрату - фітату натрію, коли доступність фітази до субстрату структурно не була обмежена, дійшли висновку, що дефосфорилювання ІФ4 є лімітуючим у всьому ланцюзі послідовних реакцій відщеплення фосфату від вихідних фітатів [31]. Таким чином, повільне травлення ІФ6 у дослідженнях на тваринах може мати дві причини: 1) брак ферменту стосовно субстрату, що супроводжується гальмуванням ініціації дефосфорилювання фітатів; 2) обмеження доступності ферменту до фітатів, які містяться в кормах. Ці причини усувають відомими способами. З точки зору регуляції молекулярного механізму ланцюга послідовних етапів дефосфорилювання ІФ6, явищем, що гальмує процес, є низька швидкість дефосфорилювання ІФ4, яка спостерігається навіть за високих доз екзогенної фітази. З огляду на те, що ІФ4 може перебувати в зв'язку з фітазою більш тривалий час, він буде «відволікати» фермент від каталізу дефосфорилювання інших молекул фітатів і побічно гальмуватиме перетравлення фітатів у цілому. Цю проблему можна вирішити шляхом створення фітази з високою швидкістю розщеплення ІФ(1, 2, 5, 6)Ф4. Сьогодні про проведення цілеспрямованих робіт у цьому напрямі не відомо.
Механізм дії фітази в організмі. Максимальний прояв активності фітази залежить від рН середовища, в якій знаходиться фермент. У таблиці 5 наведено основні властивості комерційних препаратів, найбільш поширених в ЄС [25].
Таблиця 5 - Властивості основних фітаз, доступних на ринку ЄС
Параметри |
Фітази, тип |
|||||||
Quantum |
Quantum Blue |
Phyzyme XP |
Axtra PHY |
Ronozymе Hiphos |
Rono- zyme NP |
Natuphos |
||
6-фітаза |
6-фітаза |
6-фітаза |
6-фітаза |
6-фітаза |
6-фітаза |
3-фітаза |
||
Діапазон pH, охоплюючий 80% активності |
4.0-5.0 |
3,5-5,0 |
3,0-5,0 |
3,0 |
3,0-4,5 |
4,5-5,5 |
4,5-5,5 |
|
Активність, за рН 3,0 а, % |
92,5 |
101,3 |
82,8 |
235,1 |
145,7 |
12,5 |
64,2 |
|
Активність,за рН 7,0 а, % |
0,8 |
2,2 |
1,7 |
0,5 |
0,6 |
7,8 |
7,0 |
|
Од. активності для гідролізу 50 % ІФб |
148 |
211 |
140 |
129 |
269 |
480 |
503 |
|
Од. активи. для вивільнення 50 % Рн |
1459 |
789 |
636 |
654 |
841 |
1719 |
1773 |
|
KM(jxM), рН 5, 37°С |
228 |
142 |
285 |
272 |
364 |
75 |
35 |
|
Kcat/с, рН 5, 37°С |
1545 |
1821 |
1327 |
1054 |
1478 |
1532 |
318 |
|
KM(nM), рН 3, 37°С |
257 |
179 |
302 |
311 |
427 |
98 |
142 |
|
Kcat/с, рН 3, 37°С |
1012 |
1274 |
984 |
768 |
1061 |
824 |
170 |
|
Залишкова активність при рН 3; 37°С, 45 хв |
||||||||
Без пепсину |
98 |
98 |
92 |
87 |
93 |
58 |
81 |
|
З пепсином, 3000 од. |
93 |
98 |
92 |
85 |
92 |
54 |
47 |
|
Оптимум іонної сили, mM NaCl |
50-100 |
50-200 |
100-200 |
50-200 |
50-200 |
50-200 |
50-600 |
Примітка:аактившсть фітази при рН 5 прийнята за 100%.
З даних таблиці 5 можна зробити висновок, що переважна кількість фітаз мікробіального походження належить до типу 6-фітаз. Наведені ферменти в кілька разів активніші в середовищі за рН 3, ніж за рН 7. Активність, необхідна для гідролізу 50 % інозитолфосфату, різнилася для окремих фітаз у 3,9 раза, тимчасом активність, необхідна для вивільнення 50 % неорганічного фосфату, відрізнялася у 2,8 раза. Порівняння двох різних фітаз - Quantum і Phyzyme XP, що вимагають однакової активності для гідролізу ІФ, показало, що вони різнилися в 2,3 раза за активністю, необхідною для відщеплення неорганічного фосфату. На підставі цього можна зробити висновок, що незважаючи на те, що фітази належать до одного типу, механізми їх дії різняться, однак деталі цих відмінностей не встановлено.
З огляду на чутливість ферментів до кислотності середовища і його зміни в ШКТ, слід очікувати, що активність фітаз буде проявлятися неоднаково в його різних відділах, що підтверджується в експерименті щодо вивчення активності фітаз, продукованих E. coli і P. lycii [33]. Оптимум активності обох фітаз, визначений in vitro, знаходився в діапазоні рН 4-4,5. До корму дослідних груп бройлерів включали однакову за активністю кількість фітаз, проте фітаза E. coli, визначена стандартним методом, на тлі комбікорму виявилась менш активною, ніж фітаза P. Lycii, активність якої була дещо вищою, ніж заявлена (табл. 6). У разі потрапляння корму в зоб, де процеси травлення виражені слабко, активність ендогенних фітаз, порівняно з вихідною в кормі, зростала в 2,9 раза. Водночас середовище зобу виявилося несприятливим для введених фітаз, і їх активність знижувалася порівняно з вихідною в кормі у 2,5-5,2 раза. У сумарному вмісті залозистого і м'язового шлунків активність ендогенних і доданих фітаз була різко пригнічена. Активність фітази E. coli не знижувалася, і в порожній кишці різко зростала, тимчасом активність P. lycii продовжувала залишатися на мінімальному рівні. Загалом фітаза E. coli була більш стійкою до дії ферментів і умов середовища ШКТ.
Таблиця 6 - Активність фітаз у хімусі в розрахунку на 1 кг спожитого корму
Місце відбору зразка |
ОР (1,0% Са; 0,39;% загального Р) |
ОР + 1000 од./кг фітази E. coli |
ОР + 1000 од./кг фітази P. lycii |
|
Корм |
14 |
825 |
1152 |
|
Зоб |
41 |
328 |
218 |
|
Шлунок |
10 |
119 |
25 |
|
Порожня кишка |
24 |
707 |
36 |
|
Клубова кишка |
49 |
328 |
22 |
Прояв різної активності фітаз у вивчених відділах кишечнику не підтверджується кількістю перетравлених фітатів. В експерименті на бройлерах, які отримували комбікорм, виготовлений на основі кукурудзи і соєвого шроту, вивчали дію трьох різних фітаз щодо розщеплення природних фітатів під час просування хімусу по ШКТ. Птиці дослідних груп кожну фітазу включали в корм з розрахунку 500 од./кг (табл. 7).
Таблиця 7 - Розщеплення ІФ6 у відділах ШКТ бройлерів, %
№ з/п |
Відділи шлунково-кишкового тракту |
Піддослідні групи* |
||||
ОР |
Phy A |
Phy E1 |
Phy E2 |
|||
1 |
Зоб |
9 |
64 |
31 |
44 |
|
2 |
12-типала + порожня кишки |
59 |
63 |
65 |
88 |
|
3 |
Клубова кишка |
74 |
74 |
79 |
82 |
|
4 |
Сліпі кишки |
91 |
93 |
98 |
96 |
Примітка:*Групи: ОР основний раціон; PhyA: ОР + 3-фітаза, Aspergillusniger, Finase Р; PhyE 1: ОР + 6-фітаза, Quantum, E. coli; PhyE2: ОР + 6-фітаза, QuantumBlueE. coli.
У курчат контрольної групи (ЗР), за рахунок ендогенних фітаз, в зобі перетравлювалася мінімальна кількість ІФ6, тимчасом під впливом доданих у корм фітаз гідроліз фітатів зростав у кілька разів [34]. У зобі більш активною була грибна фітаза (Phy A) порівняно з бактеріальними (Phy E1 і Phy E2). Однак, якщо звернути увагу на рівень гідролізованих фітатів у хімусі з дванадцятипалої і тонкої кишки, можна помітити, що кількість фітатів, які перетравлені ендогенними фітазами, підвищилася до 59 %, і приблизно на тому самому рівні перетравлення було за впливу Phy A і Phy E1. Велику перетравність ІФ6 відмічено за впливу Phy E2. Зменшення частки фітатів у хімусі дванадцятипалої і порожньої кишок контрольної групи за впливу ендогенних фітаз порівняно з хімусом зобу становило 50 %. Екзогенна фітаза Phy A не підвищувала частку перетравних фітатів у хімусі дванадцятипалої і порожньої кишок, як це відбувалося за дії бактеріальних фітаз (на 34-44 %). У клубовій кишці збільшення гідролізованих ІФ6 за впливу ендогенної фітази, так само як і Phy A і Phy E1, було близьким, хоча дещо вищим за дії бактеріальних фітаз. У хімусі сліпих кишок кількість перетравлених фітатів зростала на 14-19 %, сягаючи максимуму - 91-98 %. При цьому існуючі, хоча й несуттєві відмінності між активністю ферментів, були недостатніми для твердження про рівноцінність їх дії. Якщо врахувати, що в контрольній групі перетравлювався 91 % фітатів, можна ставити під сумнів доцільність застосування екзогенних фітаз. Дещо суперечливі дані, представлені у таблицях 6 і 7, зумовлені різними умовами їх отримання, і потребують подальшого уточнення.
Розщеплення фітатів у кишечнику зумовлює вивільнення фосфатів, однак їх всмоктування може обмежувати присутність кальцію й інших позитивно заряджених йонів металів унаслідок утворення сполук з низькою розчинністю. У бройлерів, які отримували фітази (ОР), концентрація вихідного IP6 у вмісті зобу становила 14,49 мкмоль/г сухої речовини, за впливу фітаз Phy A, Phy E1, Phy E2 вона знижувалася на 60, 25 і 40 % відповідно. Аналіз вмісту залозистого і м'язового шлунків показав, що рівень вихідного ІФ6 у результаті дії Phy A, Phy E1 і Phy E2 знижувався до 34,2; 15,3 і 5,1 %, тобто під впливом Phy E2 фітати практично повністю піддалися першій стадії дефосфорилювання в шлунку. Концентрація ІФ5, що утворилися в шлунку в результаті дії фітаз, знижувалася в 19-38 разів у порівнянні з ІФ6 [34].
Збільшення частки фітатів, які розщеплюються в зобі, має принципове значення, оскільки протеїн і крохмаль у ньому практично не перетравлюються, тимчасом фітати мірою поглиблення перетравлення втрачають здатність проявляти антипоживні властивості. Фітати корму за рН зобу слаборозчинні, тому вони не можуть вступати у взаємодію і зв'язуватися з іншими ре- новинами, з цієї ж причини їх розщеплюють не всі фітази. Відтак, у зв'язку зі зменшенням концентрації фітатів знижується можливість блокування ними білків, амінокислот, кальцію або інших мінералів. Незважаючи на досягнення у вивченні механізму перетравності фітатів, основаному на експериментах in vitro, перенести ці результати в умови in vivo не вдається, так само як і застосувати механізм дії ендогенних та екзогенних фітаз стосовно тварин.
У 70-х роках минулого століття виявили зниження використання протеїну під впливом фітатів. Припускають, що потрапляючи в кисле середовище шлунка, йони металів, зв'язані з ФК, замінюються йонами H+, фітати розчиняються, перетворюючись у протоновані фітат-йони, частина фосфатних груп яких зберігає негативний заряд у шлунку за рН від 2 до 3 [12]. Проте інша частина груп має негативний заряд і у верхніх відділах кишечника. Взаємодія між аніонами фітатів і амінокислотами білка в хімусі зумовлює утворення важкорозчинних сполук, які будуть недоступні для всмоктування. Інтенсивність процесу залежить від природи білка, концентрації фітату в кормі і рН. Для пригнічення розчинності білка критичне співвідношення фітат: білок становить приблизно 0,05: 1, тобто 10 г фітинової кислоти на 200 г протеїну [35]. Воно збігається з таким самим співвідношенням у комбікормах, виготовлених на основі кукурудзи і соєвого шроту. Споживання корму, що містить 0,25-0,35 % фітатів, зумовлює зниження розчинності протеїну і всмоктування перетравних амінокислот. Припускають, що фітати зв'язують гліцин, серин, треонін, пролін і в ряді випадків гістидин [27, 36].
Узагальнення результатів, опублікованих у статтях, показало, що збагачення фітазою раціонів зумовлювало підвищення засвоєння амінокислот. Зазвичай відзначали збільшення доступності цистеїну, треоніну, серину, проліну і гліцину, тимчасом на метіонін, аргінін і глутамінову кислоту вплив був слабким [37].
Порівняння перетравності бройлерами протеїну з пшениці та кукурудзи показало, що за 9 амінокислотами пшениці вона становила 80 %, а за додавання в корм фітази зросла на 13,4 %. Найбільший приріст відзначено за лізином - 17,6 %, треоніном - 16,9, ізолейцином - 15,2 % і гістидином - 15 %. Нижче за середні величини збільшувався фенілаланін і лейцин. Перетравність протеїну кукурудзи становила 87 %, однак середній приріст за зазначеними амінокислотами становив всього 3,9 %. У цьому випадку найбільше збільшення встановили за треоніном - 7,3 % і гістидином - 6,0 %; за лізином динаміка не збіглася, і його приріст був нижче середнього [38]. Збільшення частки доступних амінокислот у двох останніх дослідженнях різнилося за напрямом змін. Автори не пояснили причин виявлених відмінностей, оскільки зміна концентрації доступних амінокислот не відображала складу протеїну корму.
В іншому дослідженні на тлі раціону зі зниженим рівнем фосфору ті самі автори встановили, що загальна перетравність протеїну бройлерами становила 85,6 % і не змінювалася в присутності фітази. Водночас доступність треоніну зросла на 12,4 %, тирозину - на 6,7, ізолейцину - на 6,5, гістидину - на 3,1 %, при цьому знижувалася доступність цистеїну на 2,8 % [38]. Якби перетравність знижувалась або зростала в результаті пригнічення протеаз у ШКТ, зміна концентрації амінокислот відбувалася б пропорційно їх умісту в протеїні. Відзначено, що підвищення доступності амінокислот у присутності фітаз проявляється у разі розщеплення не менш як 30-40 % фітатів [24], тобто звернули увагу на кількість розщеплених фітатів, а не на активність фітази.
Аналогічного висновку можна дійти, аналізуючи результати спостережень на курчатах- бройлерах, яким згодовували корм, що не містить фітатів: у ньому єдиним джерелом білка був казеїн. Включення в корм фітату натрію знижувало перетравність казеїну з 85 до 2 % і сухих речовин - до 37 %. Зменшення кількості введеного фітату вдвічі зумовлювало зниження пригнічення перетравності казеїну. Дослідники вважають, що подібним чином фітати поводять себе у птиці, яку годують звичайними раціонами [22]. Із результатів цього досліду доцільно зробити висновки: 1) фітати пригнічують перетравність протеїну; 2) фітаза за відсутності фітатів не підвищує перетравність протеїну; 3) фітаза значною мірою долає гальмівну дію фітатів.
На нашу думку, механізм дії фітатів, який виявляється у вибірковому пригніченні доступності окремих амінокислот, не пов'язаний з травленням протеїну. Фітази, згідно з їх біологічними властивостями, не можуть брати участь у перетравленні білка: спостерігаються зміни, обумовлені зниженням доступності вже перетравлених амінокислот, причому відбувається це відповідно до хімічних особливостей амінокислот, що вступають у реакції з фітат-йонами і рН ШКТ. Зв'язування амінокислот і, можливо, поліпептидів аніоном ФК залежить від їх заряду, який може змінюватися залежно від рН, тобто відділу ШКТ.
Зниження доступності поживних речовин у ШКТ обумовлює антипоживну дію фітатів. Антагоністичним щодо цього процесу є підвищення доступності протеїну і крохмалю в присутності фітази, що відносять до її екстрафосфорної дії. Під час розщеплення фітатів утворюються вільні ефіри інозитолфосфату з меншим умістом фосфатних груп, що зумовлює зниження їх негативного заряду, і в результаті - до втрати здатності блокувати перетравлення білків і всмоктування амінокислот і мінералів. Цей феномен назвали «екстрафосфорною дією фітази» [21], який не пов'язаний з її прямою дією, а обумовлений зниженням умісту реакційно-активних аніонів ФК у хімусі. Поняття «екстрафосфорна дія», введено в практику комерсантами для обґрунтування включення в корми більшої кількості фітази. Підвищення дози збільшує використання протеїну і енергії корму. При цьому підвищується перетравність фітатів, які в результаті зникають і не можуть проявляти антипоживну дію. Таким чином, відбувається не екстрафосфо- рне, а одночасне підвищення доступності фосфору та інших поживних речовин.
Доцільність збільшення доз фітаз, включених у корм, зазвичай пов'язують зі встановленою раніше оптимальною дозою. Вперше її визначили для фітази Натуфос, мета застосування якої полягала в підвищенні доступності фосфору з фітатів. Підвищенню доступності інших поживних речовин приділяти увагу почали пізніше. З появою нових фітаз поняття «оптимальної» дози в науці стало нечітким, однак практики продовжують порівнювати рекомендовані дози нових фітаз з раніше встановленою «оптимальною» дозою Натуфосу. Подібне порівняння науково не обґрунтоване, оскільки створені згодом фітази відрізняються від першої як за механізмом дії, так і за своїми властивостями (утвореними стереоізомерами, величиною рН, необхідної для прояву максимальної активності, стійкістю до протеаз тварин та ін.).
Узагальнення результатів понад 700 спостережень, опублікованих за період з 1996 по 2015 роки, з вивчення впливу фітази на доступність амінокислот у поросят і бройлерів показало [24], що у поросят середня доступність 12 вивчених амінокислот становила 77 %, і зросла за включення до раціону фітази в середньому на 2,6 %. Найбільший приріст встановлено за треоніном - 3,8 %, триптофаном - 3,4, фенілаланіном - 3,0 % і мінімальний за метіоніном - 2,0 %.У бройлерів доступність досліджуваних амінокислот сягала 81 % і під впливом фітаз зросла на 4,1 %, тобто більше, ніж у свиней. Показово збільшувалася доступність цистеїну - на 7,2 %, проти +2 % у свиней, треоніну - на 6 %, ізолейцину - на 4,6 і фенілаланіну - на 4,6 %. У свиней з перерахованих амінокислот тільки доступність треоніну під дією фітаз зростала вище середньої величини. В обох видів тварин відбувалося мінімальне збільшення приросту перетравного метіоніну. З огляду на це, в більшості випадків включення в корми фітази підвищує доступність амінокислот у свиней і птиці, хоча окремі дослідники отримали значення, що перевершують наведені в таблиці 8 у 2-4 рази.
Таблиця 8 - Вплив фітази і різних концентрацій кальцію і фосфору в кормі на перетравність протеїну бройлерами
№ групи |
фосфор / кальцій, в кормі, % |
Фітаза, одиниць |
Перетравні, % |
Жива маса в 19 діб, г |
Спожито корму, г/гол |
Витрати кормів на приріст |
|||
Протеїн |
Фенілаланін |
Триптофан* |
|||||||
1 |
0,63 / 0,95 |
0 |
81,1 |
89,0 |
79,0 |
495 |
675 |
1,37 |
|
2 |
0,48 / 1,05 |
0 |
74,3 |
81,7 |
66,5 |
438 |
589 |
1,34 |
|
3 |
0,44 / 0,58 |
0 |
79,1 |
86,0 |
76,1 |
487 |
620 |
1,27 |
|
4 |
0,63 / 0,95 |
600 |
80,4 |
89,0 |
81,1 |
527 |
670 |
1,29 |
|
5 |
0,48 / 1,05 |
600 |
80,2 |
86,0 |
76,8 |
461 |
590 |
1,28 |
|
6 |
0,44 / 0,58 |
600 |
81,0 |
84,9 |
79,1 |
561 |
699 |
1,25 |
Примітка: *В оригінальній публікації наведено результати по 15 амінокислотам.
На доступність амінокислот впливає не тільки наявність фітази в кормі, а й концентрація фосфору в раціоні і співвідношення фосфору і кальцію. На курчатах 18-добового віку встановлено, що згодовування корму, що містить рекомендовану нормативами кількість загального фосфору і кальцію (кальцій: фосфор = 1,5), перетравлювалася максимальна кількість протеїну (1-ша група). На цьому тлі додавання фітази (4-та група) достовірно не впливало на апетит, доступність фенілаланіну, триптофану, хоча жива маса підвищилася на 6,5 %, а ефективність використання корму - на 5,8 % (табл. 8). Зниження в раціоні концентрації загального фосфору і збільшення співвідношення Са: Р до 2,2 (2-га група) призвело до значного гальмування перетравності протеїну, доступності амінокислот, споживання корму за період спостереження та приросту живої маси. Включення до цього раціону фітази (5-та група) значно підвищувало перетравність протеїну, хоча вона залишалася нижчою, ніж у 1-й групі. Крім того, зросла ефективність використання корму. Інтерес становлять результати 3-ї групи курчат, що споживали корм зі зниженим рівнем кальцію і фосфору. Перетравність протеїну і доступність амінокислот була нижчою, ніж у першій групі, де співвідношення Са: Р було 1,5, тобто близькою до 3-ї групи, але істотно вищою порівняно з 2-ю групою. На цьому тлі введення в корм фітази (6-та група) зумовлювало подальше зростання апетиту і приросту живої маси, які виявилися вищими, ніж в 1-й групі. Перетравність протеїну була подібною до 1-ї групи, корм якої містив офіційно рекомендовану кількість кальцію і фосфору [40].
Отже, можна зробити висновок, що за високого співвідношення кальцію до фосфору у разі відсутності фітази знижується апетит і перетравність протеїну, що супроводжується зменшенням продуктивності. Застосування фітази дещо послаблює ці наслідки, однак найбільш ефективною її дія спостерігається за зниженого вмісту в кормі кальцію і фосфору. З практичної точки зору, застосування фітази дає змогу економити джерела кальцію і фосфору, звільняючи в раціоні місце для інших компонентів, і отримувати найвищу продуктивність.
У більшості випадків використання фітаз зумовлює підвищення ефективності використання не тільки протеїну, а й енергії корму. Це показано в досліді на курчатах кросу Росс 308, яким у корми включали три різних фіта...
Подобные документы
Епізоотичний характер паразитарних захворювань домашніх тварин в умовах великих міст на сучасному етапі розвитку. Аналіз рівня ураженості гельмінтами м'ясоїдних: собак, котів. Ефективність лабораторних методів дослідження, антигельмінтних препаратів.
магистерская работа [80,2 K], добавлен 31.01.2014Методичні вказівки до виконання курсової роботи. Мета i завдання курсової роботи, засвоєння методики математичного моделювання екосистем. Постановка та математична модель задачі, тестовий приклад, аналіз отриманих результатів. Оформлення курсової роботи.
методичка [44,7 K], добавлен 24.10.2010Попереднє знайомство з твариною. Фізіологічні властивості шкіри. Дослідження серцево-судинної системи, дихання, органів травлення, сечової та нервової систем. Отримання сироватки крові. Визначення каротину в сироватці крові і його клінічне значення.
курсовая работа [42,9 K], добавлен 11.02.2013Особливості спеціалізації свинарських господарств за різними типами відгодівлі, їх коротка характеристика, розміщення ферм, структура й оборот череди в господарстві. Організація процесів у вівчарстві. Спеціалізація процесів і розміри птахівництва.
контрольная работа [20,5 K], добавлен 05.06.2011Визначення хвороби, економічні збитки від неї, систематика й загальна характеристика збудників. Особливості протікання й клінічного прояву стронгілятозно-параскарозної інвазії коней. Оцінка лікувальної ефективності препаратів при кишкових гельмінтозах.
магистерская работа [355,5 K], добавлен 13.05.2011Дослідження розвитку та оцінка ефективності функціонування особистих селянських господарств, удосконалення економічного обґрунтування їх параметрів, а також розроблення економіко-математичної моделі визначення раціональних розмірів землекористування.
автореферат [68,4 K], добавлен 25.09.2010Аналіз сучасних засобів автоматизації стійлового молокозаводу та молочних ферм. Характеристика сучасної ситуації в молочній промисловості та тенденцій розвитку українського ринку молока. Особливості техніко-економічного обґрунтування доцільності розробки.
реферат [28,1 K], добавлен 13.02.2010Загальна характеристика діяльності підприємства "Дружба народів". Організація виробничих процесів і шляхи зменшення собівартості при вирощуванні соняшнику. Перспективи та економічна доцільність використання соняшнику підприємства на виробництво біодизелю.
курсовая работа [47,0 K], добавлен 06.05.2014Дослідження волосяного покриву, шкіри, її похідних і окремих систем організму. Проведення епізоотологічних, клінічних та лабораторних досліджень у курки. Аналіз хвороби "кнемідокоптоз птиці": діагностика, лікування, заходи боротьби та профілактики.
история болезни [31,8 K], добавлен 31.01.2012- Організація вирощування ремонтного молодняку в умовах ПП "Радівське" с. Радівка Калинівського району
Закономірності росту органів у різні вікові періоди тварин і використання їх при вирощуванні ремонтного молодняку. Фізіологічні особливості відтворювальної здатності телиць. Первинна обробка молока в господарстві. Механізація основних виробничих процесів.
курсовая работа [559,4 K], добавлен 07.06.2013 Копроовоскопічний стандартизований метод Котельникова-Хренова. Лікування свиней за аскарозу, трихурозу, езофагостомозу та змішаної iнвазiї. Застосування антигельмінтиків для лікування тварин. Визначення лікувальної ефективності антигельмінтних препаратів.
дипломная работа [121,3 K], добавлен 20.01.2013Забезпечення комплексної механізації основних виробничих процесів. Роль інженерного менеджменту в механізації тваринницьких ферм та в ремонтно-обслуговуючих підрозділах. Особливості комплектування технікою фермерських та особистих селянських господарств.
реферат [771,3 K], добавлен 23.09.2010Організація виробничих підрозділів, закріплення за ними земель і розміщення виробничих центрів. Вивчення системи розселення і господарського призначення населених пунктів. Розміщення внутрішньогосподарських магістральних доріг, обґрунтування проекту.
курсовая работа [182,4 K], добавлен 03.05.2012Методи визначення якості м'яса свинини, забитої у господарстві. Аналіз динаміки надходження свинини у господарство за поточний рік. Дослідження продуктів забою свиней за органолептичними та фізико-хімічними показниками. Бактеріоскопічна оцінка проб м'яса.
дипломная работа [522,0 K], добавлен 13.10.2010Організація виробничих процесів. Планування поголів’я тварин, їх продуктивності, валового виробництва продукції, оплати праці, матеріальних і грошових витрат, фінансових результатів від реалізації м’яса птиці. Визначення планової собівартості продукції.
курсовая работа [331,9 K], добавлен 27.04.2016Показники економічної ефективності виробництва сої і методика їх визначення. Напрями інтенсифікації розвитку сільськогосподарських підприємств. Впровадження комплексної механізації виробничих процесів. Динаміка розвитку та підвищення виробництва зерна.
курсовая работа [88,4 K], добавлен 08.08.2015- Аналіз еколого-біологічних особливостей ехінацеї пурпурової, інтродукованої в умовах Полісся України
Вивчення біометричних показників ехінацеї пурпурової залежно від густоти посіву. Динаміка ростових процесів ехінацеї пурпурової протягом вегетації. Встановлення врожайності надземної маси та кореневищ залежно від густоти посіву в умовах Полісся України.
курсовая работа [132,3 K], добавлен 04.10.2014 Визначення собівартості ремонтних робіт. Визначення економічної доцільності і річної ефективності розробленого технологічного процесу ремонту сільськогосподарської техніки. Прямі експлуатаційні витрата і собівартість виконання технологічних операцій.
методичка [59,1 K], добавлен 23.02.2010Продуктивність агрофітоценозів тритикале озимого залежно від агротехнології вирощування. Характеристика сортів тритикале озимого, добрив, мікробних препаратів. Вплив мікробних препаратів на елементи структури і якісні параметри урожаю зерна тритикале.
дипломная работа [596,9 K], добавлен 26.12.2012Організаційно-економічна характеристика сільськогосподарського виробничого кооперативу "Колос". Характеристика рівня розвитку галузей рослинництва. Організація виробничих процесів та використання техніки. Нормування, організація та оплата праці.
отчет по практике [62,5 K], добавлен 03.01.2009