В соответствии с МУК 4.2.1884-04 колиформные бактерии - это грамотрицательные, оксидазо-отрицательные, не образующие спор палочки, способные расти на дифференциальных лактозных средах и ферментирующие лактозу до кислоты и газа при температуре (37 + 1) °C в течение 24 - 48 ч. На среде Эндо они вырастают в виде слизистых колоний малинового, темно-красного или красного цвета, с металлическим блеском и без него, иногда с темно-малиновым центром (рис. 5).

Рис. 5. Колонии колиформных бактерий на среде Эндо.

Очистка изолятов колиформ и создание колекции штаммов.

Для подтверждения принадлежности подозрительных колоний к общим колиформам, ставили оксидазный тест, далее проверяли способность образования кислоты и газа на лактозе в жидкой среде Гисса с поплавками.

Для подтверждения принадлежности изолятов к термотолерантными колиформам проверяли способность образования кислоты и газа при 44°C в лактозо-пептонной среде Гисса с поплавками.

Для отнесения изолятов термотолерантных колиформ к виду E.coli проверяли способность образования индола из триптофана.

Для оценки численности составляли окончательное распределение присутствия/отсутствия колиформных бактерий в накопительных культурах, зашифровывали его и по таблице МакКреди рассчитывали содержание колиформ в воде и обрастаниях.

Для составления коллекции использовали изоляты общих, термотолерантных колиформ и E.coli. Их очищали клонированием на питательном агаре и использовали для идентификации. Штаммы поддерживали на питательном агаре при комнатной температуре, пересевали 1 раз в 2 недели.

Идентификация штаммов колиформных бактерий с помощью МИКРОЛАТЕСТ ENTEROtest 24 N(Чехия).

Набор ЭНТЕРОтест 24 Н (ErbaLahemas.r.o., 2016) предназначен для биохимической идентификация микроорганизмов без добавления реактивов после инкубации. Он представляет собой пластмассовые планшеты, в лунках которых находятся высушенные питательные среды. Тестирование проводится по 24 признакам:

- наличие ферментов: уреазы (URE), в-галактозидазы (ONP), в-глюкуронидазы (GLR), в-ксилоксидазы (bXY), аргинин(ARG)-, орнитин(ORN)-, лизин(LYS)- декарбоксилазы;

- потребление источников углерода: мелибиозы (MLB), целлобиозы (CEL), лактозы (LAC), сахарозы (SUC), раффинозы (RAF), арабитола (ART), сорбитола (SOR), маннитола (MAN), дульцита (DUL), адонитола (ADO), инозитола (INO), цитрата (SCI), трегалозы (TRE) , малоната (MAL) , салицина (SAL) и эскулина (ESL);

- образование сероводорода (H2S).

Схема проведения тестов представлена на рис. 6. Перед анализом выращивали 24 часовые культуры исследуемых штаммов на питательном агаре при 370С. Далее готовили суспензии в физиологическом растворе с мутностью 1 ед по шкале МакФарланда.

Суспензию вносили в лунки стрипа по 0, 1 мл. В лунки с тестами - URE, ARG, ORN, LYS, H2S вносили по 2 капли стерильного вазелинового масла. Инокулированный стрип инкубировали в течение 24 часов при температуре 370С. Внешний вид стрипа после инкубации представлен на рис. 7.

Рис. 6. Схема проведения теста.

Рис. 7. Внешний вид стрипа после инкубации.



Для регистрации результатов в тестах использовали цветную шкалу для ЭНТЕРОтеста24 Н (рис. 8).

Рис. 8. Цветная шкала для ЭНТЕРОтеста24 Н.

Полученные результаты тестов заносили в бланки (рис. 9).

Рис. 9. Бланк для регистрации результатов теста.



В бланке тесты разделены на 6 группы по три теста в каждой группе, каждому тесту присвоено определенное количество баллов при положительном ответе. Суммируя баллы в каждой группе, получают 6 цифр шифра, который далее используют для идентификации по списку кодов, представленному в наборе (ErbaLahemas.r.o., 2016). Индивидуальный профиль каждого штамма позволяет оценить:

- достигнутую степень дискриминации видов,

- процент идентификации (% id), который показывает, насколько близко полученный профиль соответствует указанному таксону по сравнению с другими таксонами, включенными в банк данных; %id>= 99 - таксон отлично отличается от других таксонов; %id>= 95 - таксон очень хорошо отличается от других таксонов; %id>= 90 - таксон удовлетворительно отличается от других таксонов; %id< 90 - таксон неудовлетворительно отличается от других таксонов.

- Т индекс (Tin) - индекс типичности, который показывает, насколько близко установленный профиль соответствует большинству типичных реакций указанного таксона. Его величина обратно пропорциональна количеству атипичных тестов. T-индекc>= 0.75 - типичный штамм; T - индекс >= 0.50- менее типичный штамм; Т - индекс >= 0.25 - атипичный штамм; Т-индекс < 0.25 - нетипичный штамм.



3. Результаты и их обсуждение

3.1 Общее микробное число и содержание колиформных бактерий в воде аквариумов с различными гидробионтами

Проведена количественная оценка общего микробного числа исследованных образцов воды, общих и термотолерантных колиформных бактерий и E.coli. Колиформных бактерий и E.coli выявляли после 60-минутного восстановления в TSY-бульоне (Вахрушев, 2018). Полученные данные представлены в табл. 5. океанариум колиформный бактерия штамм

Таблица 5. Общее микробное число и содержание колиформных бактерий в воде аквариумов с различными гидробионтами*.

№ аквариума, гидробионты	ОМЧ, КОЕ/мл	Содержание колиформных бактерий, кл/100мл
		Общие колиформы	Термотолерантные колиформы	E.coli
4(рыбы)	1,5 х 103	2,0 х 103	2,5 х 103	3,0 х 102
1 (черепахи)	2,1 х 103	4,5 х 101	4,5 х 101	1,5 х 101
11(выдры)	3,4 х 103	4,5 х 103	4,5 х 103	3,0 х 102

* - при оценке колиформных бактерий проведена процедура восстановления жизнеспособности бактерий.

Можно видеть, что ОМЧ воды во всех трех аквариумах низкое, удовлетворяющее требованиям внутреннего контроля лаборатории Океанариума. Причем в аквариуме с выдрами, где кормление осуществляется 3 раза в день и в аквариуме с черепахой, где кормление проводится 3 раза в неделю, общее микробное число воды практически одинаковое. Это указывает на стабильно высокую эффективность санации воды.

Содержание общих колиформных бактерий составляет: 1,1% от общего микробного числа для аквариума с рыбами, 0,02% - для аквариума с черепахами и 1,3% - для аквариума с выдрами. Численность колиформных бактерий в аквариуме с теплокровными животными не отличается от таковой в аквариуме с рыбами. Численность колиформных бактерий в аквариуме с черепахами существенно ниже, что можно связать с индивидуальными особенностями гидробионтов, но и с менее интенсивным режимом кормления.

Численность колиформных бактерий, установленная нами в аквариумной воде после восстановления жизнеспособности, в 3 раза выше, чем без восстановления (Аламмар, 2017). Эти значения превышают в 3-10 раз допустимый уровень колиформных бактерий, по требованиям СанПиН 2.1.5.980-00 для воды рекреационного водопользования и в черте населенных мест (не более 500 КОЕ общих колиформных бактерий и не более 100 КОЕ термотолерантных колиформв 100 мл воды).Очевидно, что вода крупнотоннажных аквариумов океанариумов должна контролироваться по специально разработанным гигиеническим требованиям.

Вирджинский Океанариум в США (Virginia Aquarium Water Quality Parameters Explained, 2016) контролирует гигиеническое состояние воды по показателю “E.coli”- не более 235 кл в 100 мл воды. В настоящий момент в СтПетербургском океанариуме придерживаются этого критерия гигиенического состояния воды. Тем не менее, его применение вызывает сомнение (Вахрушев, 2018).

В предыдущих исследованиях нашей группы (Аламмар, 2017; Вахрушев, 2018) было показано преобладание в группе колиформных бактерий в непрерывно санируемой воде СтПетербургского Океанариума представителей родов Citrobacter и Klebsiella и отсутствие или очень низкое присутствие E.coli.

Использованная нами в данной работе процедура восстановления жизнеспособности клеток, поврежденных санацией воды, может дать представление о реальном присутствии E.coli и других колиформных бактерий в воде аквариумов с разными гидробионтами. Это позволит рекомендовать обоснованные микробиологические показатели и нормативы для оценки гигиенического состояния воды океанариумов.

Данные по изучению видового состава колиформных бактерий аквариумов с различными гидробионтами представлены в следующих разделах.

3.2 Выделение колиформных бактерий и создание коллекции штаммов

Для составления коллекции колиформных бактерий использовали посевы на среду Эндо после стадии накопления в лактозо-пептонном бульоне при 370С. Все слизистые колонии темно-красного, красного цвета, с металлическим блеском и без него, с темно-малиновым центром, подозрительные на колиформы, отсевали и очищали клонированием. Всего было отсеяно 150 изолятов. Для подтверждения их принадлежности к колиформам проводили оксидазный тест и проверяли способность изолятов сбраживать лактозу с образованием кислоты и газа. 55 изолятов не относились к колиформам, 2 изолята утеряны в связи с их низкой жизнеспособностью.

В итоге после очистки клонированием и подтверждения по признакам образования кислоты и газа на лактозе к колиформам были отнесены 93 штамма (62% клонов, отсеянных со среды Эндо):

- 30 штаммов из аквариума № 4 (рыбы),

- 29 штаммов из аквариума № 1 (черепахи),

- 34 штамма из аквариума № 11 (выдры).

Для видовой идентификации были взяты 80 штаммов: все штаммы из аквариумов № 1 и № 4 и 21 штамм из аквариума № 11.

Идентификацию проводили по 24 физиолого-биохимическим тестам с помощью высоко эффективного набора МИКРОЛАТЕСТ ENTEROtest 24N (ErbaLahemas.r.o., 2016). Результаты приведены в следующей главе.



3.3 Идентификация колиформных бактерий, выделенных из аквариумов с разными гидробионтами

Идентификация колиформных бактерий в воде аквариума № 4 (рыбы).

Видовую идентификацию проводили для 30 штаммов колиформных бактерий из авкариума № 4. 15 штаммов из 30, то есть половина, являлись термотолерантными колиформами. 9 штаммов из 30 обладали способностью образовывать индол из триптофана (Приложение, табл.1).

Результаты тестирования 30 штаммов показывают достаточно высокую степень дискриминации: 13 штаммов характеризуются отличной, высокой и очень высокой дискриминацией, 11 штаммов идентифицированы до рода и только 4 штамма имеют низкую видовую идентификацию. 2 штамма не были идентифицированы в связи с отсутствием профиля в базе данных.

По данным идентификации из 28 идентифицированных, штаммов 22 штамма (79 %) отнесены к роду Citrobacter, из них: 18 штаммов - C.freundii, 2 штамма -C.murliniae, 1 штамм - C.gillenii.

4 штамма (14 %) отнесены к роду Enterobacter: 2 штамма (7 %) - E.kobei, по 1 штамму (3%) - E.amnigenus и E.hormaechei.

Последние два штамма идентифицированы как Rahnella aquatilis и Morganella morganii по 3%.

Идентификация колиформных бактерий в воде аквариума № 1 (черепахи).

Результаты тестирования 29 штаммов представлены в Приложении (табл. 2). Они также характеризуются достаточно высокой степенью дискриминации: 4 штамма характеризуются отличной и высокой дискриминацией видов, 21 штамма идентифицированы до рода и только 2 штамма имеют низкую видовую идентификацию. 2 штамма не были идентифицированы в связи с отсутствием профиля в базе данных.

По данным идентификации из 27 штаммов, 26 штаммов (96 %) отнесены к роду Citrobacter, из них: 16 штаммов - C.murliniae, 8 штаммов - C.freundii, 2 штамма - C.braakii.

1 штамм (4 %) отнесен к виду Klebsiella oxytoca.

Идентификация колиформных бактерий в воде аквариума № 11 (выдры).

Результаты тестирования 21 штамма представлены в Приложении (табл. 3). Они характеризуются достаточно высокой степенью дискриминации: 7 штаммов характеризуются отличной и высокой дискриминацией видов, 12 штаммов идентифицированы до рода и только 2 штамма имеют низкую видовую идентификацию. Штаммов, с профилями, отсутствующими в базе данных, не было.

По данным идентификации из 21 штамма, 12 штаммов (57 %) отнесены к виду Klebsiella oxytoca, 5 штаммов (24 %) - к виду Citrobacter freundii, 2 штамма (9 %) - к виду Raoutella terrigena, по 1 штамму (5 %) - к видам Rahnella genomospecies и E.coli.

Обсуждение результатов идентификации и заключение.

В табл. 6 приведено сравнение данных по идентификации колиформных бактерий в воде аквариумов с различными гидробионтами.

Можно видеть, что во всех трех аквариумах вода характеризуется преобладанием конкретных родов колиформ: в случае рыб - это Citrobacter (79%) в случае черепах - также Citrobacter (96%), в случае теплокровных животных (выдр) - Klebsiella (57%) и Citrobacter (24%). Enterobacter не является характерным для аквариумной воды подобного типа. Вид E.coli практически не встречается в аквариумной воде.

Таблица 6. Состав колиформных бактерий в воде аквариумов с различными гидробионтами.

Роды колиформных бактерий и их содержание в % от числа штаммов в коллекции
Рыбы (акв. № 4)	Черепахи (авк. №1)	Выдры (акв. № 11)
28 штаммов	27 штаммов	21 штамм
р. Citrobacter- 79% р. Enterobacter - 14% р. Rahnella - 3% р. Morganella - 3%	р. Citrobacter- 96% р. Klebsiella - 4 %	р. Klebsiella - 57 % р. Citrobacter - 24% р. Raoutella - 9 % р. Rahnella - 5 % Escheriсhia coli - 5%

В предыдущем исследовании нашей группы (Аламмар, 2017) для аквариума с рыбами было показано преобладание в составе колиформ представителей рода Klebsiella. Представители рода Citrobacter были выявлены преимущественно в обрастаниях. Эти различия могут быть отражением динамики изменения качественного состава колиформ в процессе кормления и уборки аквариумов и отсутствия процедуры восстановления жизнеспособности бактерий.

Полученные данные свидетельствуют об отсутствии специфических родов колиформных бактерий, связанных с природой гидробионтов. Это позволяет применять единые критерии гигиенической оценки аквариумной воды по микробиологическим показателям.

Практическое отсутствие E.coli среди идентифицированных штаммов (1 штамм из 80 идентифицированных) ставит под сомнение целесообразность использования микробиологического показателя «E.coli» при оценке гигиенического состояния аквариумной воды замкнутого цикла при непрерывной санации.



Выводы.

1. Качественный состав колиформных бактерий непрерывно санируемой воды изученных аквариумов с рыбами, черепахами и выдрами практически не различается. Представители родов Citrobacter и Klebsiella являются преобладающими.

2. Колиформные бактерии вида E.coli не характерны для аквариумов с замкнутой системой оборота воды и непрерывной санацией УФ независимо от типа содержащихся в них гидробионтов.



Список научной литературы

1. Аламмар В.А. 2017. Разнообразие колиформных бактерий в непрерывно санируемой аквариумной воде. Магистерская диссертация. СПбГУ, СтПетербург.

2. Вахрушев Р.А. 2018. Проблемы выявления санитарно-показательных бактерий из образцов воды в замкнутых системах с режимом непрерывной санации. Выпускная квалификационная работа бакалавра. СПбГУ, СтПетербург.

3. Калина Г.П. 1969. Санитарная микробиология. Издательство «Медицина», М.

4. Кузьмина В.В., Золотарева Г.В., Шептицкий В.А., Филипенко С.И. 2016. Роль объектов питания и микробиоты в процессах пищеварения рыб из разных экосистем. Тирасполь, Изд-во Приднестровского университета.

5.МУК 4.2.1884-04. Методические указания. Санитарно-микробиологический и санитарно-паразитологический анализ воды поверхностных водных объектов.

6. СанПиН 2.1.5.980-00. Водоотведение населенных мест, санитарная охрана водных объектов. Гигиенические требования к охране поверхностных вод. Санитарные правила и нормы" с изм. на 2011 г.

7. СанПиН 2.1.4.1074-01 "Питьевая вода. Гигиенические требования к качеству воды централизованных систем питьевого водоснабжения. Контроль качества.

8. СанПиН 2.1.2.1331--03. Санитарно-эпидемиологические правила и нормативы. Гигиенические требования к устройству, эксплуатации и качеству воды аквапарков.

9. Цесулис А.В. 2008. Колиформные бактерии пресноводных аквариумов. Выпускная работа бакалавра, СПбГУ.

10. Arambulo P.V., Westerland N.E., Sarmiento R.V. & Baga A.S. 1967. Isolation of Edwardsiella tarda: a new genus of Enterobacteriaceae from pig bile in the Phillipines. Far East Medical Journal. V. 3, p. 385-386.

11. Baccarin A.E. & Camarg A.F.M. 2005. Characterization and evaluation of the impact of feed management on the effluents of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) culture. Brazilian Journal of Biology and Biotechnology. V. 48, p. 81-90.

12. Bartlett K.H. & Trust T.J. 1976. Isolation of Salmonellae and Other Potential Pathogens from the Freshwater Aquarium Snail Ampullaria. Applied and Environmental Microbiology. V. 31, N. 5, p. 635-639.

13. Bartlett K.H., Trust T. J. & Lior H. 1977. Small Pet Aquarium Frogs as a Source of Salmonella. Applied and Environmental Microbiology. V. 33, N. 5, p. 1026-1029.

14. Bebak-Williams J., Noble A., Bowser P.A., Wooster G.A. 2002. Fish health management. In: Timmons M.B., Ebeling J.M., Wheaton F.W., Summerfelt S.T., Vinci B.J. (Eds.), Recirculating Aquaculture Systems. second ed. Cayuga Aqua Ventures, Chapter 13, p. 427-466.

15. Bhaskar, N., Setty, T. M. R., Mondal, S., Joseph, M. A., Raju, C. V., Raghunath, B. S., et al. (1998). Prevalence of bacteria of public health significance in the cultured shrimp (Penaeus monodon). Food microbiology. V. 15, p. 511-519.

16. Bhaskar, N., Setty, T. M. R., Reddy, G. V. S., Manoj, Y. B., Anantha, C. S., Raghunath, B. S. 1995. Incidence of Salmonella in cultured shrimp Penaeus monodon.Aquaculture. V. 138, p. 257-266.

17. Blancheton, J.P. 2000. Developments in recirculating systems for Mediterranean ?sh species. Aquacultural Engineering. V. 22, p. 17-31.

18. Bockenmuhl J., Pan-Urai R. & Burkhardt F. 1971. Edwardsiella tarda associated with human disease. Pathogenic Microbiology. V. 37, p. 393-401.

19. Buras N., Duek L., Niv S., Hepher B. & Sandbank E. 1987. Microbiological aspects of fish grown in treated waste water. Water Research. V. 21, p. 1-10.

20. Carson L. A., Peterson N. J., Favero M. S., Doto I.L., Collins D.E. & Levin M.A. 1975. Factors influencing detection and enumeration of most-probable number and membrane filtration techniques. Applied Microbiology. V. 30, p. 935-942.

21. CDC. 2010. Centers for Disease Control and Prevention. Multistate outbreak of human Salmonella typhimurium infections associated with pet turtle exposure - United States, 2008. MMWR Morbidity and Mortality Weekly Report.V. 59, p. 191-196.

22. CODE BOOK. Diagnostickэseznam. Kнига кодов. ErbaLachemas.r.o. M/PI/133/16/H, 12/2016.

23. Cohen J. & Shuval H.I. 1973. Coliforms, fecal coliform and fecal streptococci as indicators of water pollution. Water Soil Pollution. V. 2, p. 85-95.

24. Defengu F., Mengistu S. & Schagerl M. 2011. Influence of fish cage farming on water quality and plankton in fish ponds: A case study in the Rift Valley and North Shoa reservoirs, Ethiopia. Aquaculture. V. , 316, p. 129-135.

25. Del Rio-Rodriguez R., Inglis V., Millar S. D. 1997. Survival of Escherichia coli in the intestine of fish. Aquaculture Research. V. 28, p. 257-264.

26. Emerick, R.W., Loge, F.J., Thompson, D., Darby, J.L., 1999. Factors in?uencing ultraviolet disinfection performance. Part II. Association of coliform bacteria with wastewater particles. Water Environment Research. V. 71, p. 1178-1187.

27. Ewing W.H., McWhorter A.C., Escobat M.R. &Lubin A. H. 1965. Edwardsiella, a new genus of Enterobacteriaceae based on a new species, Edwardsiella tarda. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. V. 15, p. 33-38.

28. Fields B.N., Uwaydah M.M., Kunz L. & Swartz M.N. 1967. The so-called ?paracolon? bakteria. A bacteriologic and clinical reappraisal. American Journal of Medicine. V. 42, p. 89-106.

29. Fleet, G. H. 1978. Oyster depuration: a review. Food Technology Association of Australia. V. 30, p. 444-454.

30. Geue L, Lцschner U. 2002. Salmonella enterica in reptiles of German and Austrian origin. Veterinary Microbiology. V. 84, p. 79-91.

31. Goggins, P. L. 1964. Depuration in Maine In: L. S. Houser (ed.), Fifth National Shellfish Sanitation Workshop. U.S. Department of Health, Education, and Welfare, Division of Environmental Engineering and Food Protection, Shellfish Sanitation Branch, Washington, D.C. 7. p. 78-92.

32. Gopal Sh., Otta S.K. Kumar S., Karunasagar I., Nishibuchi M. , KarunasagarI. The occurrence of Vibrio species in tropical shrimp culture environments; implications for food safety. International Journal of Food Microbiology. V. 102, p. 151- 159.

33. Gorlach-Lira K., Pacheco C., Carvalho L.C.T., MeloJъnior H.N. and Crispim M.C. 2013. The influence of fish culture in floating net cages on microbial indicators of water quality. Brazilian Journal of Biology. V. 73, N. 3, p. 457-463.

34. Harris J.R., Neil K.P., Behravesh C.B., Sotir M.J., Angulo F.J. 2010. Recent Multistate Outbreaks of Human Salmonella Infections Acquired from Turtles: A Continuing Public Health Challenge. Clinical Infectious Diseases. V. 50, p.554-559.

35. Haven, D.S., Perkins F., Morales-Alamo R., & Rhodes M.W. 1978. Bacterial depuration by the American Oyster (Crassostrea virginica). Special scientific report no. 88, Virginia Institute of Marine Science, Gloucester Point, Va. V. 1.

36. Hejkal T.W., Gerba C.P., Henderson S. & Freeze M. (1983). Bacteriological, virological and chemical evaluation of a waste water aquaculture system. Water Research. V. 17, p. 1749-1755.

37. Hernбndez E, Rodriguez JL, Herrera-Leуn S, Garcнa I, de Castro V. 2012. Salmonella Paratyphi B var Java infections associated with exposure to turtles in Bizkaia, Spain, September 2010 to October 2011. Euro Surveill. V. 17, N. 25.

38. Hersey E.F., Mason D.J. 1963. Salmonella hartford 10 Communicable Disease Center. Salmonella Surveillance Report Atlanta, GA, US: Public Health Service; p. 22-24.

39. Hidalgo-Vila J., Dнaz-Paniagua C., Pйrez-Santigosa N., de Frutos-Escobar C., Herrero-Herrero A. 2008. Salmonella in free-living exotic and native turtles and in pet exotic turtles from SW Spain. Research in Veterinary Science. V. 85, p. 449-452.

40. ISO 9308-1(2000). International Standard. Water quality. Detection and enumeration of Escherichia coli and coliform bacteria. Part 1: Membrane filtration method.

41. ISO 9308-2 (2012). International Standard. Water quality. Enumeration of Escherichia coli and coliform bacteria. Part 2: Most probable number method.

42. Jeyasekaran G., & Ayyapan S. 2002. Postharvest microbiology of farm-reared tropical freshwater prawn (Machrobranchium rosenbreggi). Journal of food science. V.67, N. 5, p. 1859-1861.

43. Kazuaki Saheki, Shozo Kobayashi & Tsutomu Kawanishi. 1989. Salmonella Contamination of Eel Culture Ponds. Nippon Suisan Gakkaishi. V. 55, N. 4, p. 675-679.

44. King B.M. & Adler D.L. 1964. A previously undescribed group of Enterobacteriaceae. American Journal of Clinical Pathology. V. 41, p. 230-232.

45. Kusuda R., Toyoshima T., Iwamura Y. & Saka H. 1976. Edwardsiella tarda from an epizootic of mullets (Mugil cephalus) in Okitsu Bay. Bulletin of the Japanese Society of Scienti?c Fisheries. V. 42, p. 271-275.

46. Lafuente S., Bellido J.B., Moraga F.A., Herrera S., Yagьe A. 2013. Salmonella paratyphiB and Salmonella litchfield outbreaks associated with pet turtle exposure in Spain. Enfermeda des Infecciosas y Microbiologнa Clнnica, V.31, p. 32-35.

47. Leung C., Huang Y. & Pancorbo O. 1992. Bacterial pathogens and indicators in catfish and pond environments. Journal of Food Protection. V. 55, p. 424-427.

48. Liltved, H., 2002. Ozonation and UV-irradiation. In: Timmons, M.B., Ebeling, J.M., Wheaton, F.W., Summerfelt, S.T., Vinci, B.J. (Eds.), Recirculating Aquaculture Systems. second ed. Cayuga Aqua Ventures, Chapter 12, p. 393-426.

49. Litsky W., Mallmann W. L. & Fifield C. W. 1955. Comparison of the most probable numbers of Escherichia coli and Еnterococci in river waters. American journal of Public Health. V. 45, p. 1049.

50. Marin C., Ingresa-Capaccioni S., Gonzбlez-Bodi S., Marco-Jimйnez F., Vega S. 2013. Free-Living Turtles Are a Reservoir for Salmonella but Not for Campylobacter. PLoS One, V.8, N. 8.

51. Meyer F.P. & Bullock G.L. 1973. Edwardsiella tarda, a new pathogen of channel cat?sh (Ictalurus punctatus). Applied Microbiology. V.25, p. 135-156.

52. Mitchell J.C., McAvoy B.V. 1990. Enteric bacteria in natural populations of freshwater turtles in Virginia. Virginia Journal of Science. V. 41, p. 233-242.

53. Miyazaki T. & Kaige N. 1985. Comparative histopathology of Edwardsiellosis in ?shes. Fish Pathology. V.20, p. 219-227.

54. Nakadai A., Kuroki T., Kato Y., Suzuki R., Yamai S. 2005. Prevalence of Salmonella spp. in pet reptiles in Japan. Journal of Veterinary Medical Science. V.67, p. 97-101.

55. Nakatsugawa T. 1983. Edwardsiella tarda isolated from cultured young ?ounder. Fish Pathology. V. 18, p. 99 -101.

56. Ogbondeminu F.S. & Okoye F.C. 1992. Microbiological evaluation of an untreated domestic waste water aquaculture system. Journal of Aquaculture in the Tropics. V. 72, p. 7-34.

57. Ogbondeminu F.S. 1993. The occurrence and distribution of enteric bacteria in fish and water of tropical aquaculture ponds in Nigeria. Journal of Aquaculture in the Tropics. V. 8, p. 61-66.

58. Oppenheimer J.A., Jacangelo J.G., Laine J.M., Hoagland J.E. 1997. Testing the equivalency of ultraviolet light and chlorine for disinfection of wastewater to reclamation standards. Water Environment Research. V. 69, p. 14-24.

59. Pullela S., Fernandes C.F., Flick G.J., Libey G.S., Smith S.A. & Coale C.W. 1998. Indicative and pathogenic microbiological quality of aquacultured finfish grown in diferent production systems. Journal of Food Protection. V. 61, p. 205-210.

60. Ramos M. & Lyon W.J. 2000. Reduction of endogenous bacteria associated with catfish fillets using the grovac process. Journal of Food Protection.V. 63, p. 1231-1239.

61. Rattagool, P., Wongchida, N., & Sanghtong, N. 1990. Salmonella contamination in Thai shrimp. FAO Fisheries Report. V. 401, p. 18-23.

62. Readel AM, Phillips CA, Goldberg TL. 2008. Absence of Cloacal Shedding of Salmonella in wild red-eared sliders (Trachemysscripta elegans). Herpetological Review. V. 39, p. 427-430.

63. Rehulka J., Marejkova M. & Petra P. 2012. Edwardsiellosis in farmed rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture Research. V. 43, p. 1628-1634.

64. Reilly A. & Kaferstein F. 1997. Food safety hazards and the application of the principles of the hazard analysis and critical control point (HACCP) system for their control in aquaculture production. Aquaculture Research. V. 28, p.735-752.

65. Robinson, R. A. 1970. Salmonella infection: diagnosis and control. New Zealand Veterinary Journal. V.18, p. 259-275.

66. Rompreґ A., Servais P., Baudart P., de-Roubin MR., Laurent P. 2002. Detection and enumeration of coliforms in drinking water: current methods and emerging approaches. Journal of Microbiological Methods. V. 49, p. 31-54.

67. Rowse A.J. & Fleet G.H. 1982. Viability and Release of Salmonella charity and Escherichia coli from Oyster Feces. Applied Environmental Microbiology. V. 44, p. 544-548.

68. Sachs J.M., Pacin M. & Counts G.W. 1974. Sickle hemoglobinopathy and Edwardsiella tarda meningitis. American Journal of Disease of Children. V. 128, p. 387-388.

69. Saheki, Kazuaki & Kobayashi, Shozo & Kawanishi, Tsutomu. 1989. Salmonella contamination of eel culture ponds. Nippon Suisan Gakkaishi. V. 55, p. 675-679.

70. Sakata T., Okabayash J. & Kakimoto D. 1980. Variations in the Intestinal microflora of Tilapia, reared in fresh and sea water. Bulletin of the Japanese Society of Science & Fisheries Research. V. 40, p. 967-975.

71. Sakazaki R. 1962. The new group of Enterobacteriaceae, the Asakusa group. Japanese Journal of Bacteriology. V. 17, p. 616-617.

72. Sбnchez-Jimйnez M.M, Rincуn-Ruiz P.A., Duque S., Giraldo M.A, Ramнrez-Monroy D.M. 2011. Salmonella enterica in semi-aquatic turtles in Colombia. The Journal of Infection in Developing Countries. V. 5, p. 361-364.

73. Santos D.M.S., Cruz C.F., Pereira DP., Alves L.M.C. and Moraes FR. 2012. Microbiological water quality and gill histopathology of fish from fish farming in Itapecuru-Mirim County, Maranhгo State. Acta Scientiarum. V. 34, p. 199-205.

74. Sharrer M.J. and Summerfelt S.T. 2007. Ozonation followed by ultraviolet irradiation provides effective bacteria inactivation in a freshwater recirculating system. Aquacultural Engineering. V. 37, p. 180-191.

75. Sharrer M.J., Summerfelt S.T., Bullock G.L., Gleason L.E. and Taeuber J. 2005. Inactivation of bacteria using ultraviolet irradiation in a recirculating salmonid culture system. Aquaculture Engineering. V. 33, p. 135-149.

76. Simoes L. C., M, & Vieira M. J. 2007. Biofilm interactions between distinct bacterial genera isolated from drinking water. Applied Environmental Microbiology, V. 73, p. 6192-6200.

77. Simoes L.Ch., Simoes M. & Vieira J.M. 2008. Intergeneric coaggregation among drinking water bacteria: evidence of a role for Acinetobacter calcoaceticus as a bridging bacterium. Applied Environmental Microbiology. V. 74, N.4, p. 1259-1263.

78. Sivakami R., Premkishore G. & Chandran M.R. 1996. Aquaculture Research. V.27, p. 375-378.

79. Smith K.F., Behrens M.D., Max L.M., Daszak P. 2008. U.S. drowning in unidentified fishes: Scope, implications, and regulation of live fish import. Conservation letters. V. 1, p. 103-109.

80. Smith K.F., Schmidt V., Rosen G.E, Amaral-Zettler L. 2012. Microbial Diversity and Potential Pathogens in Ornamental Fish Aquarium Water. PLoS One. V. 7.

81. Son, N.T., and Fleet G.H. 1980. Behavior of pathogenic bacteria in the oyster, Crassostrea commercialis, during depitration, re-laying, and storage. Applied Environmental Microbiology. V.40, p. 994-1002.

82. Sonnenwirth A.C. & Kallus B.A. 1968. Meningitis due to Edwardsiella tarda. American Journal of Clinical Pathology. V. 49, p. 92 -95.

83. Sugita H., Tsunohara M., Ohkoshi T., Deguchi Y. 1998. The establishment of an intestinal microflora in developing goldfish (Carassius auratus) of culture ponds. Microbial Ecology. V. 15, N. 3, p. 333-344.

84. Summerfelt S.T., Bebak-Williams J., Tsukuda S. 2001. Controlled systems: water reuse and recirculation. In: Wedemeyer, G. (Ed.), Second Edition of Fish Hatchery Management. American Fisheries Society, Bethesda, Maryland, p. 285-395.

85. Summerfelt S.T., Wilton G., Roberts D., Savage, T., Fonkalsrud K. 2004. Developments in recirculating systems for arctic char culture in North America. Aquacultural Engineering. V. 30, p. 31-71.

86. Trust T.J. and Barlett K. H. 1976. Isolation of Pseudomonas aeruginosa and other bacterial species from ornamental aquarium plants. Applied Environmental Microbiology. V. 31, N. 6, p. 992-994.

87. Trust T.J. and Barlett K.H. 1974. Occurrence of potential pathogens in water containing ornamental fishes. Applied Microbiology. V. 28, N. 1, p.35-40.

88. Tu ZC, Zeitlin G, Gagner JP, Keo T, Hanna BA. 2004. Campylobacter fetus of reptile origin as a human pathogen. Journal of Clinical Microbiology. V. 42, p. 4405-4407.

89. Van Damme L.R. & Vandepitte J. 1980. Frequent isolation of Edwardsiella tarda and Plesiomonas shigelloides from healthy Zairese freshwater ?sh: a possible source of sporadic diarrhoea in the tropics. Applied and Environmental Microbiology. V. 39, p. 475-479

90. Virginia Aquarium Water Quality Parameters Explained, 2016.

91. White F.H., Neal F.E., Simpson C. & Walsh A.F. 1969. Isolation of Edwardsiella tarda from an ostrich and an Australian skink. Journal of the American Veterinary Medicine Association 55, 1057-1058.

92. White F.H., Simpson C.F. & Williams I.E. Jr. 1973. Isolation of Edwardsiella tarda from aquatic animal species and surface waters in Florida. Journal of Wildlife Diseases. V. 9, p. 204-208.

93. World Health Organization, 1989. Health guidelines for the use of wastewater in agriculture and aquaculture. Technical report series, 778, Geneva.



Приложение

Таблица 1. Характеристика колиформных бактерий из воды аквариума № 4 (рыбы) и их идентификационные диагнозы по кодам МИКРОЛАТЕСТ ENTEROtest 24N (Erba La Chema s.r.o., 2016).

№ штамма	Темпер. Тест1	Образова-ние индола2	Профиль по результатам Энтеро-тест	Степень дискри-минации3	Идентификационный диагноз	% id4	Tin5
52	+	-	422637	идентиф. до рода	Citrobacter freundii Citrobacter murliniae Rahnella aquatilis	56,82 39,56 1,86	0,77 0,74 0,21
53	+	-	422477	высокая	Citrobacter freundii	100,0	0,40
55	+	-	622677	низкая	Rahnella aquatilis Rahnella genomono-species 2 Enterobacter kobei	46,88 21,76 12,40	0,21 0,20 0,16
56	-	-	422677	идентиф. до рода	Citrobacter freundii Citrobacter murliniae Citrobacter youngae	57,09 39,76 3,16	0,38 0,34 0,05
59	+	-	422677	идентиф. до рода	Citrobacter freundii Citrobacter murliniae Citrobacter youngae	57,09 39,76 3,16	0,38 0,34 0,05
61	-	-	422677	идентиф. до рода	Citrobacter freundii Citrobacter murliniae Citrobacter youngae	57,09 39,76 3,16	0,38 0,34 0,05
62	+	-	422477	высокая	Citrobacter freundii	100,0	0,40
64	-	-	422677	идентиф. до рода	Citrobacter freundii Citrobacter murliniae Citrobacter youngae	57,09 39,76 3,16	0,38 0,34 0,05
65	-	-	422677	идентиф. до рода	Citrobacter freundii Citrobacter murliniae Citrobacter youngae	57,09 39,76 3,16	0,38 0,34 0,05
68	+	-	422677	идентиф. до рода	Citrobacter freundii Citrobacter murliniae Citrobacter youngae	57,09 39,76 3,16	0,38 0,34 0,05
69	-	+	532477	высокая	Citrobacter freundii	100,0	0,38
71	-	-	422637	идентиф. до рода	Citrobacter freundii Citrobacter murliniae Rahnella aquatilis	56,82 39,56 1,86	0,77 0,74 0,21
72	+	-	032477	оч.высокая	Citrobacter freundii	100,0	0,58
73	-	-	422677	идентиф. до рода	Citrobacter freundii Citrobacter murliniae Citrobacter youngae	57,09 39,76 3,16	0,38 0,34 0,05
76	+	-	032477	оч.высокая	Citrobacter freundii	100,0	0,58
79	+	+	132677	высокая	Citrobacter freundii Enterobacter kobei Enterobacter cloacae	93,79 3,26 2,96	0,54 0,04 0,08
80	+	-	422477	высокая	Citrobacter freundii	100,0	0,40
83	+	-	233233	низкая	Enterobacter amnige-nus bv 2 Citrobacter braakii Citrobacter amalonati-cus	76,00 20,80 1,85	0,50 0,57 0,21
84	+	+	632677	высокая	Enterobacter kobei	96,19	0,36
85	-	+	632637	низкая	Citrobacter murliniae Rahnella aquatilis Enterobacter kobei	79,31 7,56 5,70	0,68 0,21 0,25
86	-	+	632677	высокая	Enterobacter kobei Citrobacter murlinae	96,19 3,81	0,36 0,28
88	+	+	633777		Код в списке отс.
89	+	+	633777		Код в списке отс.
90	-	-	632636	низкая	Citrobacter murlinae Rahnella genomono-species 2 Rahnella aquatilis	64,47 22,67 9,24	0,50 0,21 0,07
91	-	-	032232	высокая	Citrobacter gillenii Citrobacter braakii Citrobacter freundii	93,60 3,36 2,72	0,94 0,65 0,68
92	-	-	630233	высокая	Citrobacter murliniae Citrobacter youngae	94,27 5,68	0,89 0,58
93	-	+	111000	оч.высокая	Morganella morganii ssp.morgani	97,06	0,60
94	-	-	111603	отличная	Enterobacter hormae-chei	99,23	0,84
97	-	-	432677	идентиф. до рода	Citrobacter freundii Citrobacter murliniae Citrobacter youngae	57,76 38,64 3,61	0,38 0,34 0,07
98	+	+	432677	идентиф. до рода	Citrobacter freundii Citrobacter murliniae Citrobacter youngae	57,76 38,64 3,61	0,38 0,34 0,07



1 - образование кислоты и газа в лактозо-пептонном бульоне при 44оС за 24 часа.

2 - образование индола в бульоне с триптофаном при 37оС за 48 часов.

3 - степень дискриминации видов: отличная, высокая, низкая, «до рода».

4 - Процент идентификации ( % id ) показывает, насколько близко полученный профиль

соответствует указанному таксону по сравнению с другими таксонами, включенными в банк данных; %id >= 99 - таксон отлично отличается от других таксонов; %id >= 95 - таксон очень хорошо отличается от других таксонов; %id >= 90 - таксон удовлетворительно отличается от других таксонов; %id < 90 - таксон неудовлетворительно отличается от других таксонов.

5 - Т индекс (Tin) - показывает насколько близко установленный профиль соответствует большинству типичных реакций указанного таксона. Его величина обратно пропорциональна количеству атипичных тестов. T-индекc >= 0.75- типичный штамм; T-индекс >= 0.50- менее типичный штамм; Т-индекс >= 0.25- атипичный штамм; Т-индекс < 0.25- нетипичный штамм.

Таблица 2. Характеристика колиформных бактерий из воды аквариума № 1 (черепахи) и их идентификационные диагнозы по кодам МИКРОЛАТЕСТ ENTEROtest 24N (Erba La Chema s.r.o., 2016).

№ штамма	Темпер. Тест1	Образова-ние индола2	Профиль по результатам Энтеро-тест	Степень дискри-минации3	Идентификационный диагноз	% id4	Tin5
102-2	+	+	766777	идентиф. до рода	Klebsiella oxytoca Klebsiella pneumoniae	65,96 33,83	0,60 0,53
103	-	+	766637		Код в списке отс.
104-2	+	+	722637	низкая	Citrobacter murliniae Rahnella aquatilis Rahnella genomo-species 2	89,12 4,99 2,32	0,72 0,21 0,20
105	-	-	636637	высокая	Citrobacter murliniae	100,00	0,28
106	+	-	432637	идентиф. до рода	Citrobacter freundii Citrobacter murliniae Citrobacter youngae	59,32 39,68 0,71	0,78 0,74 0,32
107	+/-	-	432233	идентиф. до рода	Citrobacter murliniae Citrobacter braakii Citrobacter youngae	74,87 10,68 9,53	0,89 0,68 0,65
108	+	-	432233	идентиф. до рода	Citrobacter murliniae Citrobacter braakii Citrobacter youngae	74,87 10,68 9,53	0,89 0,68 0,65
109	+	-	433233	высокая	Citrobacter braakii	98,79	0,91
110	+	-	433233	высокая	Citrobacter braakii	98,79	0,91
111	-	-	032637	отличная	Citrobacter freundii	99,07	0,96
112	+	-	432637	идентиф. до рода	Citrobacter freundii Citrobacter murliniae Citrobacter youngae	59,32 39,68 0,71	0,78 0,74 0,32
113	+	-	432233	идентиф. до рода	Citrobacter murliniae Citrobacter braakii Citrobacter youngae	74,87 10,68 9,53	0,89 0,68 0,65
115	-	-	432233	идентиф. до рода	Citrobacter murliniae Citrobacter braakii Citrobacter youngae	74,87 10,68 9,53	0,89 0,68 0,65
118	+	-	432637	идентиф. до рода	Citrobacter freundii Citrobacter murliniae Citrobacter youngae	59,32 39,68 0,71	0,78 0,74 0,32
126	+	-	432637	идентиф. до рода	Citrobacter freundii Citrobacter murliniae Citrobacter youngae	59,32 39,68 0,71	0,78 0,74 0,32
127	-	-	532637	идентиф. до рода	Citrobacter murliniae Citrobacter freundii Citrobacter youngae	58,25 40,18 1,36	0,78 0,76 0,39
128	-	-	432637	идентиф. до рода	Citrobacter freundii Citrobacter murliniae Citrobacter youngae	59,32 39,68 0,71	0,78 0,74 0,32
130	+	-	532637	идентиф. до рода	Citrobacter murliniae Citrobacter freundii Citrobacter youngae	58,25 40,18 1,36	0,78 0,76 0,39
135	+/-	-	532637	идентиф. до рода	Citrobacter murliniae Citrobacter freundii Citrobacter youngae	58,25 40,18 1,36	0,78 0,76 0,39
136	-	-	532637	идентиф. до рода	Citrobacter murliniae Citrobacter freundii Citrobacter youngae	58,25 40,18 1,36	0,78 0,76 0,39
137	+	-	532637	идентиф. до рода	Citrobacter murliniae Citrobacter freundii Citrobacter youngae	58,25 40,18 1,36	0,78 0,76 0,39
138	+	-	432637	идентиф. до рода	Citrobacter freundii Citrobacter murliniae Citrobacter youngae	59,32 39,68 0,71	0,78 0,74 0,32
139	-	-	532637	идентиф. до рода	Citrobacter murliniae Citrobacter freundii Citrobacter youngae	58,25 40,18 1,36	0,78 0,76 0,39
140	-	-	532637	идентиф. до рода	Citrobacter murliniae Citrobacter freundii Citrobacter youngae	58,25 40,18 1,36	0,78 0,76 0,39
141	-	-	532637	идентиф. до рода	Citrobacter murliniae Citrobacter freundii Citrobacter youngae	58,25 40,18 1,36	0,78 0,76 0,39
142	-	-	532637	идентиф. до рода	Citrobacter murliniae Citrobacter freundii Citrobacter youngae	58,25 40,18 1,36	0,78 0,76 0,39
143	-	-	532637	идентиф. до рода	Citrobacter murliniae Citrobacter freundii Citrobacter youngae	58,25 40,18 1,36	0,78 0,76 0,39
144	+	+	576477		Код в списке отс.
146	+	+	432637	идентиф. до рода	Citrobacter freundii Citrobacter murliniae Citrobacter youngae	59,32 39,68 0,71	0,78 0,74 0,32

1 - образование кислоты и газа в лактозо-пептонном бульоне при 44оС за 24 часа.

2 - образование индола в бульоне с триптофаном при 37оС за 48 часов.

3 - степень дискриминации видов: отличная, высокая, низкая, «до рода».

4 - Процент идентификации ( % id ) показывает, насколько близко полученный профиль соответствует указанному таксону по сравнению с другими таксонами, включенными в банк данных; %id >= 99 - таксон отлично отличается от других таксонов; %id >= 95 - таксон очень хорошо отличается от других таксонов; %id >= 90 - таксон удовлетворительно отличается от других таксонов; %id < 90 - таксон неудовлетворительно отличается от других таксонов.

5 - Т индекс (Tin) - показывает насколько близко установленный профиль соответствует большинству типичных реакций указанного таксона. Его величина обратно пропорциональна количеству атипичных тестов. T-индекc >= 0.75- типичный штамм; T-индекс >= 0.50- менее типичный штамм; Т-индекс >= 0.25- атипичный штамм; Т-индекс < 0.25- нетипичный штамм.

Таблица 3. Характеристика колиформных бактерий из воды аквариума № 11 (выдры) и их идентификационные диагнозы по кодам МИКРОЛАТЕСТ ENTEROtest 24N (Erba La Chema s.r.o., 2016).

№ штамма	Темпер. Тест1	Образова-ние индола2	Профиль по результатам Энтеро-тест	Степень дискри-минации3	Идентификационный диагноз	% id4	Tin5
153	+	+	766767	идентиф. до рода	Klebsiella oxytoca Klebsiella pneumoniae	65,96 33,83	1,00 0,93
156	+	-	766777	идентиф. до рода	Klebsiella oxytoca Klebsiella pneumoniae	65,96 33,83	0,60 0,53
161	+	+	766777	идентиф. до рода	Klebsiella oxytoca Klebsiella pneumoniae	65,96 33,83	0,60 0,53
168	+	+	766777	идентиф. до рода	Klebsiella oxytoca Klebsiella pneumoniae	65,96 33,83	0,60 0,53
169	+	+	622526	оч.высокая	Escherichia coli	96,21	0,91
170	+	+	666767	низкая	Raoutella terrigena ...

Подобные документы

• Бактерии

  Прокариоты - доядерные организмы, не обладающие типичным клеточным ядром и хромосомным аппаратом. История открытия и строение бактерий. Экологические функции бактерий. Бактерии как возбудители многих опасных заболеваний. Значение бактерий в природе.
  
  презентация [5,4 M], добавлен 04.09.2011
  

• Исследование бактерий по почвенному профилю дерновой альфегумусовой глеевой почвы

  Объект исследования и подготовка образцов почв к микробиологическому исследованию. Определение общей численности сапротрофных и олиготрофных бактерий в 5 горизонтах почвенного профиля дерновой почвы путем прямого счета по методу Виноградского-Брида.
  
  курсовая работа [41,1 K], добавлен 23.01.2011
  

• Бактерии

  Слоистые каменные структуры (строматолиты) - результат жизнедеятельности бактерий как древнейшей группы организмов. Изучение бактерий, форма и строение бактерий, их размеры и распространение. Классификация бактерий по способу питания, размножение.
  
  презентация [661,9 K], добавлен 14.10.2011
  

• Клубеньковые бактерии и их роль в азотистом обмене

  Распространение клубеньковых бактерий в природе. Клубеньки на корнях ольхи по Бекингу. История открытия азотфиксирующих бактерий. Клубеньковые бактерии бобовых культур. Клетки бактерий на поверхности инфицированного корневого волоска бобового растения.
  
  курсовая работа [5,6 M], добавлен 09.01.2012
  

• Механизмы выживания бактерий в окружающей среде

  Механизмы выживания бактерий при низких и высоких температурах и при экстремальных значениях рН. Жизнь бактерий при высоких концентрациях солей, растворенных веществ и в условиях недостатка воды. Роль стрессосом как факторов выживания микроорганизмов.
  
  курсовая работа [719,6 K], добавлен 01.06.2010
  

• Бактерии: места обитания, строение, процессы жизнедеятельности, значение

  Места обитания бактерий. Строение бактерий. Размеры, форма бактерий. Строение бактериальной клетки. Процессы жизнедеятельности бактерии: питание, размножение, спорообразование. Значение бактерий в природе и жизни человека.
  
  реферат [29,9 K], добавлен 05.10.2006
  

• Микробное число воды. Санитарное исследование почвы. Постоянные обитатели почвы

  Санитарно-показательные микроорганизмы для почвы. Требования, предъявляемые к водопроводной воде. Микрофлора полости рта взрослого. Санитарно-гигиеническое состояние воздуха. Микроорганизмы промежности. Химические факторы, действующие на бактерии.
  
  тест [29,4 K], добавлен 17.03.2017
  

• Бактерии. Вирусы. Краткая характеристика

  Бактерии (микробы) – одноклеточные прокариоты. Питание, дыхание, размножение и классификация бактерий. Бациллы, устройство жгутиков. Роль бактерий в природе, их экологические функции. Вирусы – внутриклеточные паразиты, возбудители опасных болезней.
  
  презентация [4,8 M], добавлен 17.03.2015
  

• Роль бактерии в круговороте веществ

  Роль бактерий в природе. Clostridium Botulinum как спорообразующая палочка, продуцирующая ботулизм. Негативное влияние сапротрофных бактерий на пищевые продукты. Болезнетворные бактерии растений. Вклад Коха в развитие микробиологии и лечение туберкулеза.
  
  презентация [7,6 M], добавлен 07.01.2014
  

• Светящиеся бактерии и биолюминесценция

  Светящиеся бактерии - мелкие живые излучатели, их классификация и физиологические свойства. Спектр и интенсивность эмиссии света. Люминесцентная система бактерий, контроль за ее синтезом и активностью. Культивирование и использование светящихся бактерий.
  
  реферат [983,8 K], добавлен 22.12.2013
  

• Спорообразующие бактерии

  Аэробные спорообразующие бактерии (бациллы), род Bacillus семейства Bacillaceae, их морфолого-физиологические признаки. Санитарно-показательные микроорганизмы. Санитарно-гигиеническая характеристика пищевых продуктов. Возбудители кишечных заболеваний.
  
  контрольная работа [20,4 K], добавлен 10.06.2009
  

• Дифференциальные системы счисления в биологии

  Определение удельной скорости роста популяции бактерий. Решение дифференциального уравнения первого порядка. Нахождение общего и частного решения, постоянной С. Подставка известных чисел в уравнение. Расчет численности популяции бактерий через 4 часа.
  
  презентация [4,7 M], добавлен 23.03.2014
  

• Термофильные метанобразующие бактерии

  Изучение морфологии, ультраструктуры, физиологических свойств и таксономического положения термофильных метанобразующих бактерий. Анализ особенностей дыхания, питания, размножения и энергетических процессов. Влияние температуры на активность бактерий.
  
  реферат [215,6 K], добавлен 31.01.2015
  

• Бактерии и их роль в природе

  История изучения бактерий, изучение их физиологии и метаболизма, открытие болезнетворных свойств. Общие принципы определения возбудителя болезни (постулаты Коха). Формы, строение и свойства бактерий, их размеры, распространение, питание и размножение.
  
  презентация [661,8 K], добавлен 16.09.2011
  

• Выделение и изучение силикатных бактерий

  Характеристика силикатных бактерий, их морфологические признаки. Потребность в кремнии живыми организмами и растениями. Методы и материалы выделения. Исследование морфологических свойств колоний. Влияние температуры среды на жизнедеятельность колоний.
  
  курсовая работа [1,1 M], добавлен 25.12.2012
  

• Гигиена воды

  Гигиеническое значение воды. Роль воды в передаче инфекционных заболеваний. Влияние химического состава воды на здоровье населения. Индифферентные химические вещества в воде. Классификация очистки воды. Организмы - индикаторы фекального загрязнения.
  
  реферат [258,6 K], добавлен 09.12.2009
  

• Жизнедеятельность бактерий

  Питание бактерий. Способы поступления питательных веществ в клетку. Классификация бактерий по типам питания, источникам энергии и электронам. Пропионовокислое брожение, его основные участники, их характеристика, использование в народном хозяйстве.
  
  контрольная работа [28,8 K], добавлен 29.11.2010
  

• Бактериальные болезни насекомых

  Общие бактериальные болезни насекомых, энтомопатогенные бактерии. Негативное влияние бактерий на здоровье человека. Характеристика и механизм действия бактерий Bacillus thuringiensis. Бактериальные препараты: применение и методы повышения эффективности.
  
  курсовая работа [48,4 K], добавлен 02.12.2010
  

• Метилотрофные бактерии - источники изотопно-меченных Н-2 и С-13 аминокислот

  Бактериальные штаммы. Условия адаптации. Получение штаммов - продуцентов аминокислот, адаптированных к максимальным концентрациям 2Н2О в среде. Изучение ростовых характеристик M. flagellatum. Секретируемые аминокислоты метилотрофных бактерий.
  
  статья [1,2 M], добавлен 23.10.2006
  

• Генетика бактерий

  Генетическая система бактерий. Полимеразная цепная реакция. Применение генетических методов в диагностике инфекционных заболеваний. Метод молекулярной гибридизации. Особенности генетики вирусов. Системы репарации бактерий. Взаимодействие вирусных геномов.
  
  презентация [2,6 M], добавлен 13.09.2015
  

• главная
• рубрики
• по алфавиту
• вернуться в начало страницы
• вернуться к началу текста
• вернуться к подобным работам