Биоразнообразие микробного сообщества винограда культурного (Vitis vinifera)
Анализ данных о количественной и качественной структуре эпифитных и эндофитных микроорганизмов разных экониш винограда культурного. Доказана важность изучения корневого сообщества ввиду вертикального движения по сосудистой системе к филлосфере.
Рубрика | Биология и естествознание |
Вид | статья |
Язык | русский |
Дата добавления | 22.02.2023 |
Размер файла | 1,0 M |
Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже
Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.
2016. - Vol. 219. - P. 56-63.
Mezzasalma, V. Grape microbiome as a reliable and persistent signature of field origin and environmental conditions in Can- nonau wine production / V. Mezzasalma, A. Sandionigi // PLoS ONE. - Vol. 12(9). DOI:10.1371/journal.pone.0184615
Castrillo, D. Yeast diversity on grapes from Galicia, NW Spain: biogeographical patterns and the influence of the farming system / D. Castrillo, E. Rabunal, N. Neira // OENO One.
2019. - Vol. 53. - P. 573-587.
Miura, T. Is microbial terroir related to geographic distance between vineyards? / T. Miura, R. Sanchez // Environmental Microbiology Reports. - Vol. 9(6). - P. 742-749. DOI:10.1111/1758-2229.12589
References
Capozzi V., Garofalo C., Chiriatti M. A. Microbial terroir and food innovation: the case of yeast biodiversity in wine. Microbiol. Res., 2015, vol. 181, pp. 75-83. DOI: 10.1016/j.micres.2015.10.005
Oleshuk E.N., Popov Y.G., Yanchevskaya
T.G. Nauchnyye problemy introduktsii i osvoyeniya promyshlennoy tekhnologii vy- rashchivaniya vinograda v usloviyakh Bela- rusi [Scientific problems of the introduction and development of industrial technology for growing grapes in Belarus]. Problemy sokhraneniya biologicheskogo raznoobraziya i ispol'zovaniya biologicheskikh resursov: tez. dokl. 2-y Mezhdunar. konf [Problems of conservation of biological diversity and the use of biological resources: abstract. report 2nd Intern. conf.]. Minsk, 2012, pp. 482-485. (In Russian)
Oleshuk Ye.N., Popov Y.G. Promyshlennyy vinogradnik na Poles'ye [Industrial vineyard in Polissya]. Khozyain [Owner], 2012, no. 11, pp. 8-9. (In Russian)
Sobolev S.Y. Vyrashchivaniye vinograda v
Belarusi: populyarnyye sorta [Growing
grapes in Belarus: popular varieties]. Minsk., Ser-Vit, 2010. 64 p. (In Russian)
Pinskiy opornyy punkt po vinogradu i drugim
yuzhnym kul'turam [Pinsk stronghold for grapes and other southern crops]. (In Russian). Available at:
http://mvvinogradnik.ru/pinskii-opornvi -
punkt-po-vinogradu-i-drugim-yuzhnym-
kulturam (accessed 16.03.2021)
Gde loze vit'sya? [Where does the vine grow?]. (In Russian). Available at: https://www.sb.by/articles/gde-loze-
vitsya.html. (accessed 03.04.2022)
Bulgarelli D., Schlaeppi K., Spaepen S. Structure and functions of the bacterial microbiota of plants. Annu Rev. Plant Biol., 2013, vol. 64, pp. 807-838. DOI: 10.1146/annurev- arplant-050312-120106
Compant S., Clement C., Sessitsch A. Plant
growth-promoting bacteria in the rhizo- and endosphere of plants: their role, colonization, mechanisms involved and prospects for utilization. Soil Biol. Biochem., 2010, vol. 42, pp. 669-678.
D0I:10.1016/j.soilbio.2009.11.024
Rosenberg E., Zilber-Rosenberg I. Microbes drive evolution of animals and plants: the hologenome concept. mBio., 2016, vol. 7. DOI: 10.1128/ mBio.01395-15
Leveau, J.H.J. and Tech, J.J. (2011). Grapevine microbiomics: bacterial diversity on grape leaves and berries revealed by high- throughput sequence analysis of 16s RRNA amplicons. Acta Hortic., 2011, vol. 905, pp. 31-42. DOI:10.17660/ActaHortic.2011.905.2
Pinto C.D., Pinho S., Sousa M., Pinheiro C. Unravelling the diversity of grapevine micro- biome. PLoS ONE, 2014, vol. 9, pp. 1-12. DOI:10.1371/journal.pone.0085622
Belkina D.D. Sostav i znachenie bakterial'n- yh soobshchestv v agroekosistemah vinogra- da [Composition and significance of bacterial communities in grape agroecosystems]. Plodovodstvo i vinogradarstvo Yuga Rossii [Fruit growing and viticulture of the South of Russia], 2021, no 68(2), pp. 272-286. (In
Russian). DOI: 10.30679/2219-5335-2021-268-272-286
Almario J., Jeena G., Wunder J. Root- associated fungal microbiota of nonmycor- rhizal Arabis alpina andits contribution to plant phosphorus nutrition. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A., 2017, vol. 114, pp. 9403-9412. DOI:10.1073/pnas.1710455114
Alvarez-Perez J.M., Cobos R., Gonzalez- Garcia S. Use of endophytic and rhizosphere actinobacteria from drapevine Plants to reduce nursery fungal graft infections that lead to young grapevine decline. Applied and Environmental Microbiology, 2017, vol. 83, iss. 24. DOI:10.1128/AEM.01564-17
White R.E. The value of soil knowledge in understanding wine terroir. Front Environ Sci., 2020, no. 8. pp. 1-6. D0I:10.3389/fenvs.2020.00012
Zarraonaindia I., Owens S.M., Weisenhorn P., West K. The soil microbiome influences grapevine-associated microbiota. MBio, 2015, vol. 6, iss. 2, pp. 1-10.
Coince A. Leaf and root-associated fungal assemblages do not follow similar elevational diversity patterns. PLoS One, 2014, vol. 9, iss. 6. DOI:10.1371/journal.pone.0100668
Compant S., Kaplan H., Sessitsch A. Endo
phytic colonization of Vitis vinifera L. by Burkholderia phytofirmans strain PsJN: from the rhizosphere to inflorescence tissues. FEMS Microbiol. Ecol., 2008, vol. 63, pp. 84-93. DOI: 10.1111/j.1574-
6941.2007.00410.x
Guyonnet J.P., Guillemet M., Dubost A. Plant nutrient resource use strategies shape active rhizosphere microbiota through root exudation. Front Plant Sci., 2018, vol. 9. DOI:10.3389/fpls.2018.01662
Hacquard S., Spaepen S., Garrido-Oter R. Interplay between innate immunity and the plant microbiota. Ann. Rev. Phytopathol,
vol. 55, pp. 565-589. DOI:10.1146/annurev-phyto-080516-035623
Herz K., Dietz S., Gorzolka K. Linking root exudates to functional plant traits. PLoS One,
vol. 13, pp. 1-14. DOI:10.1371/journal.pone.0204128
Pascale A., Proietti S., Pantelides I.S., Stringlis I.A. Modulation of the root micro- biome by plant molecules: the basis for targeted disease suppression and plant growth promotion. Front Plant Sci, 2020, vol. 10, pp. 1-23. DOI:10.3389/fpls.2019.01741
Ollat N., Bordenave L., Tandonnet J.P. Grapevine rootstocks: origins and perspectives. Acta Hortic, 2016, vol. 1136, pp. 1122. DOI:10.17660/ActaHortic.2016.1136.2
Andreolli M., Lampis S., Zapparoli G., Angelini E. Diversity of bacterial endophytes in 3 and 15 year-old grapevines of Vitis vinif- era cv. Corvina and their potential for plant growth promotion and phytopathogen control. Microbiological Research, 2015, vol. 183. D0I:10.1016/j.micres.2015.11.009
Berendsen R.L., Pieterse C.M., Bakker P.A. The rhizosphere microbiome and plant health. Trends Plant Sci., 2012, vol. 17, pp. 478-486. DOI: 10.1016/j.tplants.2012.04.001
Toju H., Yamamoto S., Tanabe A. S. Network modules and hubs in plant-root fungal biome. J. R. Soc. Interface, 2016, vol.13. DOI: 10.1098/rsif.2015.1097
Berg G., Grube M., Schloter M., Smalla K. Unraveling the plant microbiome: looking back and future perspectives. Front. Microbi
ol., 2014, vol. 5, iss. 148. DOI:10.3389/fmicb.2014.00148
Coskun D., Britto D.T., Shi W.M., Kron-
zucker H.J. How plant root exudates shape the nitrogen cycle. Trends Plant Sci., 2017, vol. 22, pp. 661-673.
DOI:10.1016/j.tplants.2017.05.004
Fierer N. Embracing the unknown: disentangling the complexities of the soil microbi- ome. Nat. Rev. Microbiol., 2017, vol. 15, 579-590. DOI: 10.1038/nrmicro.2017.87
Munakata R., Larbat R., Duriot L., Olry A. Polyphenols from plant roots. Recent Adv. Polyphen. Res., 2019, vol. 6, pp. 207-236.
Coskun D., Britto D.T., Shi W.M., Kron- zucker H.J. Nitrogen transformations in modern agriculture and the role of biological nitrification inhibition. Nat. Plants, 2017, vol. 3. DOI: 10.1038/nplants.2017.74
Toju H. Factors influencing leaf- and root- associated communities of bacteria and fungi across 33 plant orders in a Grassland. Frontiers in Microbiology, 2019, vol. 10, pp. 114. DOI:10.1101/439646
Ghatak A., Chaturvedi P., Bachmann G., Physiological and proteomic signatures reveal mechanisms of superior drought resilience in pearl millet compared to wheat. Front
Plant Sci., 2021, vol. 13, iss. 11. DOI:10.3389/fpls.2020.600278
Deyett E., Rolshausen P.E. Endophytic microbial assemblage in grapevine. FEMS Microbiol. Ecol. 2020, vol. 96, no. 5, pp. 1-11. DOI:10.1093/femsec/fiaa053
Zahid M., Javed H. Comparative fungal diversity and dynamics in plant compartments at different developmental stages under root- zone restricted grapevines. BMC Microbiology, vol. 21(1), pp. 2-16. DOI:10.1186/s12866-021-02376-y
Berlanas C., Berbegal M. The fungal and
bacterial rhizosphere microbiome associated with grapevine rootstock genotypes in mature and young vineyards. Frontiers in Microbiology, 2019, vol. 10.
DOI:10.3389/fmicb.2019.01142
Martinez-Diz M.P., Andres-Sodupe M., Bu- janda R. Soil-plant compartments affect fungal microbiome diversity and composition in grapevine. Fungal Ecol., 2019, vol. 41, pp. 234-44. DOI: 10.1016/j.funeco.2019.07.003
Marasco R., Rolli E., Fusi M., Michoud G. Grapevine rootstocks shape underground bacterial microbiome and networking but not potential functionality. Microbiome, 2018, vol. 6, iss.1. DOI:10.1186/s40168-017-0391- 2
Novello G., Gamalero E., Bona E., Boatti
L.The rhizosphere bacterial microbiota of Vitis vinifera cv. Pinot Noir in an integrated pest management vineyard. Front. Microbi
ol., 2017, vol. 8.
DOI:10.3389/fmicb.2017.0152
Liu D., Howell K. Community succession of the grapevine fungal microbiome in the annual growth cycle. Environ. Microbiol., 2021, vol. 23, pp. 1842-1857. DOI:10.1101/2020.05.03.075457
Dries L., Bussotti S. Rootstocks shape their microbiome - bacterial communities in the rhizosphere of different grapevine rootstocks. FDW. 2021.
Samad A., Trognitz F., Compant S., Anto- nielli L., Sessitsch A. Shared and host- specific microbiome diversity and functioning of grapevine and accompanying weed plants. Environ Microbiol., 2017, vol. 19, pp. 1407-1424. DOI:10.1111/1462-2920.13618
Wei Y., Wu Y., Yan Y. High-throughput sequencing of microbial community diversity in soil, grapes, leaves, grape juice and wine of grapevine from China. PLoS ONE, 2018. DOI:10.1371/joumal.pone.0193097
Cureau N. Year, location, and variety impact
on grape-, soil-, and leaf-associated fungal microbiota of Arkansas-Grown table grapes. Microbial ecology, 2021.
D0I:10.1007/s00248-021-01698-8
Wright A., Shawkat A. A characterization of a cool climate organic vineyard's microbi- ome. Phytobiomes Journal., 2021, vol. 3. D0I:10.1094/PBI0MES-03-21-0019-R
Volynchuk N.N. Rizosfera i rizoplana vinograda kul'turnogo [Rhizosphere and rhi- zoplane of cultivated grapes]. Nauchnyy po- tentsial molodezhi - budushchemu Belarusi: materialy XV mezhdunarodnoy molodezhnoy nauchno-prakticheskoy konferentsii [The scientific potential of youth - the future of Belarus: materials of the XV International Youth Scientific and Practical Conference]. Pinsk, 2021, pp. 72-75. (In Russian)
Volynchuk N.N., Zhuk O.N. Mitselial'nyye i
nemitselial'nyye griby rizoplany i endosfery korney vinograda kul'turnogo (Vitis vinifera) [Mycelial and non-mycelial fungi of the rhi- zoplane and endosphere of the roots of cultivated grapes (Vitis vinifera)]. Opyt i per- spektivy vyrashchivaniya netraditsionnykh yagodnykh rasteniy na territorii Belarusi i sopredel'nykh stran: materialy Mezhdu-
narodnogo nauchno-prakticheskogo semina- ra [Experience and prospects for growing non-traditional berry plants in Belarus and neighboring countries: materials of the International Scientific and Practical Seminar]. Minsk, 2021, pp. 24-29. (In Russian)
Zarraonaindia I., Gilbert J.A. Understanding grapevine-microbiome interactions: implications for viticulture industry. Microb. Cell, 2015, vol. 2, pp. 171-173. D0I:10.15698/mic2015.05.204
Baldan, E., Nigris, S., Populin, F., Zottini, M., Squartini, A., Baldan, B. Identification of culturable bacterial endophyte community isolated from tissues of Vitis vinifera “Glera”. Plant Biosyst, 2014, vol. 148, pp. 508-516. D0I:10.1080/11263504.2014.916364
Hirano S.S. Bacteria in the leaf ecosystem with emphasis on Pseudomonas syringae - a pathogen, ice nucleus, and Epiphyte. Microbiol. Mol. Biol. Rev., 2000, vol. 64, iss. 3, pp. 624-653. D0I:10.1128/MMBR.64.3.624- 653.2000
Mitchell J.I. Sequences, the environment and fungi. Mycologist, 2006, vol. 20, pp. 62-74. D0I: 10.1016/j.mycol.2005.11.004
Jha P., Panwar J., Jha P.N. Secondary plant metabolites and root exudates: guiding tools for polychlorinated biphenyl biodegradation. Int. J. Environ. Sci. and Tec., 2014, vol. 12, iss. 2, pp. 789-802. D01:10.1007/s13762- 014-0515-1
0burger E., Jones D.L. Sampling root exudates - mission impossible? Rhizosphere,
vol. 6, pp. 116-133. D0I:10.1016/J.RHISPH.2018.06.004
Pieterse C.M., Zamioudis C., Berendsen R.L., Weller D.M. Induced systemic resistance by beneficial microbes. Ann. Rev. Phytopathol., 2014, vol. 52, pp. 347-375. D0I:10.1146/annurev-phyto-082712-102340
Bona E.N. Metaproteomic characterization
of the Vitis vinifera rhizosphere. EMS Microbiology Ecology, 2018.
D0I:10.1093/femsec/fiy204
D'Amico F. The rootstock regulates micro- biome diversity in root and rhizosphere compartments of Vitis vinifera cultivar Lam- brusco. Front. Microbiol., 2018, vol. 9. D0I:10.3389/fmicb.2018.02240
Bruez E., Vallance J. Major changes in
grapevine wood microbiota are associated with the onset of esca, a devastating trunk disease. Environ Microbiol., 2020, vol. 22, pp. 5189-206. D01:10.1111/1462-
2920.15180
Vitulo N., Calgaro M. Bark and grape mi- crobiome of Vitis vinifera: influence of geographic patterns and agronomic management on bacterial diversity. Front. Microbiol.,
vol. 9. D0I:10.3389/fmicb.2018.03203
Awad M., Giannopoulos G., Mylona P.
Genotype may influence bacterial diversity in bark and bud of Vitis vinifera cultivars grown under the same environment. Applied Sciences, 2020, vol. 10.
D0I:10.3390/app10238405
Martins G., Lauga B., Miot-Sertier C., Mercier A. Characterization of epiphytic bacterial communities from grapes, leaves, bark and soil of grapevine plants grown, and their relations. PLoS 0ne, 2013, vol. 8, iss. 8. D0I:10.1371/journal.pone.0073013
Bekris F., Vasileiadis S., Papadopoulou E., Samaras A. Grapevine wood microbiome analysis identifies key fungal pathogens and potential interactions with the bacterial community implicated in grapevine trunk disease appearance. Environmental Microbiome, 2021, vol. 16, no. 23. DOI: 10.1186/s40793- 021-00390-1
Canfora L., Vendramin E., Felici B., Tar- ricone L. Vineyard microbiome variations during different fertilisation practices revealed by 16s rRNA gene sequencing. Appl. Soil Ecol., 2017, vol. 125, pp. 71-80.
Stefanini I., Cavalieri D. Metagenomic approaches to investigate the contribution of the vineyard environment to the quality of wine fermentation, potentials and difficulties. Front. Microbiol., 2018, vol. 9. DOI:10.3389/fmicb.2018.00991
Pacifico D. The role of the endophytic mi- crobiome in the grapevine response to environmental triggers. Front. Plant Sci., 2019, vol. 10. DOI:10.3389/fpls.2019.01256
Campisano A., Puopolo G. Diversity in en
dophyte populations reveals functional and taxonomic diversity between wild and domesticated grapevines. Am. J. Enol. Vitic., 2014, vol. 66, pp. 12-21.
DOI:10.5344/ajev.2014.14046
Yurchenko Y.G., Luk'yanova A.A., Gor
bunov I.V. K issledovaniyu kompleksa mikromitsetov dikorastushchego vinograda, proizrastayushchego v poymennom lesu Krasnodarskogo kraya [To the study of the complex of micromycetes of wild grapes growing in the floodplain forest of the Krasnodar Territory]. «Magarach». Vinogra- darstvo i vinodeliye ["Magarach". Viticulture and winemaking], 2021, no. 4, pp. 377-381. (In Russian). DOI
10.35547/IM.2021.23.4.012
Singh, P. Assessing the impact of plant ge
netic diversity in shaping the microbial community structure of Vitis vinifera phyllo- sphere in the Mediterranean. Front. Life Sci., 2018, vol. 11, pp. 35-46.
DOI:10.1080/21553769.2018.1552628
Zhang J., Shang Y., Chen J., Brunel B. Diversity of non-Saccharomyces yeasts of grape berry surfaces from representative Cabernet Sauvignon vineyards in Henan Province, China. FEMS Microbiol. Lett., 2021, vol. 368. DOI: 10.1093/femsle/fnab142.
Glushakova A.M. Massovoye vydeleniye anamorfnykh askomitsetovykh drozhzhey Candida oleophila iz fillosfery rasteniy [Mass isolation of anamorphic ascomycete yeast Candida oleophila from the plant phyl- losphere]. Mikrobiologiya [Microbiology], 2017, vol. 76, no. 6, pp. 896-901. (In Russian)
Bokulich N. A., Collins T. S., Masarweh C., Allen G. Associations among wine grape mi- crobiome, metabolome, and fermentation behavior suggest microbial contribution to regional wine characteristics. MBio, 2016, Vol. 7, iss. 3. DOI:10.1128/mBio.00631-16
Faist H. Crown galls of grapevine (Vitis vinifera) host distinct microbiota / H. Faist // Applied and Environmental Microbiology, 2016, vol. 82(18). DOI:10.1128/AEM.01131- 16
Volynchuk N.N. Analiz mikrobioma pochek vinograda kul'turnogo [Analysis of the mi- crobiome of the buds of cultivated grapes]. Sbornik Mezhdunarodnoy nauchno- prakticheskoy konferentsii «Sovremennyye tendentsii nauki, innovatsionnyye tekhnologii v vinogradarstve i vinodelii [Collection of the international scientific and practical conference "Modern trends in science, innovative technologies in viticulture and winemaking"]. Yalta, 2022, vol. 51, pp. 15-18.
Singh P., Peros J. Understanding the phyllo- sphere microbiome assemblage in grape species (Vitaceae) with amplicon sequence data structures. Scientific Reports, 2019, vol. 9. DOI:10.1038/s41598-019-50839-0
Wiegand S, Jogler M., Jogler C. On the maverick planctomycetes. FEMS Microbiology Reviews, 2018, vol. 42, iss. 6, pp. 739760. DOI:10.1093/femsre/fuy029
Santoyo G., Moreno-Hagelsieb G., Orozco- Mosqueda Mdel C. Plant growth-promoting bacterial endophytes. Microbiol. Res., 2016, vol. 183, pp. 92-99. DOI: 10.1016/j.micres.2015.11.008
Morrison-Whittle P., Goddard M. R. From vineyard to winery: a source map of microbial diversity driving wine fermentation. Environ. Microbiol., 2018, vol. 20, pp. 75-84. DOI:10.1111/1462-2920.13960
Morrison-Whittle, P. Fungal communities are differentially affected by conventional and biodynamic agricultural management approaches in vineyard ecosystems. Agric. Eco- syst. Environ., 2017, vol. 246, pp. 306-313. DOI: 0.1016/j.agee.2017.05.0.
Niem J.M., Billones-Baaijens R., Stodart B.,
Savocchia S. Diversity profiling of grapevine microbial endosphere and antagonistic potential of endophytic Pseudomonas against grapevine trunk diseases. Frontiers in Microbiology, 2020, vol. 11.
DOI:10.3389/fmicb.2020.00477
Wassermann B. Plant health and sound vibration: analyzing implications of the micro- biome in grape wine leaves. Pathogens, 2021, vol. 10(1). D0I:10.3390/pathogens10010063
Lorenzini M., Cappello M.S., Logrieco A. Polymorphism and phylogenetic species delimitation in filamentous fungi from predominant my cobiota in withered grapes. Int. J. Food Microbiol., 2016, vol. 238, pp. 56-62. DOI: 10.1016/j.ijfoodmicro.2016.08.039
Prendes L.P., Zachetti V.G., Pereyra A. Water activity and temperature effects on growth and mycotoxin production by Alternaria al- ternata strains isolated from Malbec wine grapes. J. Appl. Microbiol., 2017, vol. 122, iss. 2, pp. 481-492. DOI: 10.1111/jam.13351
Fortes A.M., Agudelo-Romero P., Silva M.S. Transcript and metabolite analysis in Trincadeira cultivar reveals novel information regarding thedynamics of grape ripening. BMC Plant Biol., 2011, vol. 11, no. 149.
Ageyeva N.M. Vidovoye mnogoobraziye mikroflory na yagodakh vinograda [Species diversity of microflora on grapes]. Poli- tematicheskiy setevoy elektronnyy nauchnyy zhurnal Kubanskogo gosudarstvennogo agrarnogo universiteta [Polythematic network electronic scientific journal of the Kuban State Agrarian University], 2015, no. 111, pp. 1-10. (In Russian). DOI: 10.30679/2219-5335-2021-2-68-272-286
Bokulich N.J., Thorngate H., Richardson P. Microbial biogeography of wine grapes is conditioned by cultivar, vintage, and climate. Proceedings of the National Academy of Sciences, 2013. DOI:10.1073/pnas.1317377110
Barata A., Malfeito-Ferreira M., Loureiro V.
The microbial ecology of wine grape berries. Int. J. Food Microbiol, 2012, vol. 153, pp. 243-259. DOI:
10.1016/j.ijfoodmicro.2011.11.025
Barata A., Gonzalez S., Malfeito-Ferreira M., Querol A. Sour rot-damaged grapes are sources of wine spoilage yeasts. FEMS Yeast Res, 2008, vol. 8, no. 7, pp. 1008-1017. DOI:10.1111/j.1567-1364.2008.00399.x
Grangeteau C., Roullier-Gall C., Rousseaux
S., Gougeon R.D. Wine microbiology is driven by vineyard and winery anthropogenic factors. Microb. Biotechnol., 2017, vol. 10, pp. 354-370. DOI:10.1111/1751-7915.12428
Barata A., Pais A., Malfeito-Ferreira M. Influence of sour rotten grapes on the chemical composition and quality of grape must and wine. Eur. Food Res. Technol, 2011, vol. 233, pp. 183-184. DOI: 10.1007/s00217-011-1505-x
Gilbert J.A. Microbial terroir for wine
grapes. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 2014, vol. 111, pp. 115 - 126.
DOI:10.1073/pnas.1320471110
Martins G., Miot-Sertier C., Lauga B., Clais-
se O. Grape berry bacterial microbiota: impact of the ripening process and the farming system. Int. J. Food Microbiol, 2012, vol. 158, pp. 93-100.
DOI:10.1016/j.ijfoodmicro.2012.06.013
Kioroglou D., Kraeva-Deloire E., Schmidtke L.M. Geographical origin has a greater impact on grape berry fungal community than grape variety and maturation state. Microorganisms, 2019, vol. 7, vol. 669. DOI:10.3390/microorganisms7120669
Bougreau M., Ascencio K., Bugarel M.
Yeast species isolated from Texas high plains vineyards and dynamics during spontaneous fermentations of Tempranillo grapes. PLoS ONE, 2019, vol. 14.
DOI:10.1371/journal.pone.0216246
Copeland J.K., Yuan L., Layeghifard M. Seasonal community succession of the phyl- losphere microbiome. Mol. PlantMicrobe Interact., 2015,vol. 28, pp. 274-285. DOI: 10.1094/MPMI-10-14-0331-FI
Kamilari E., Mina M., Karallis C., Tsaltas D.
Metataxonomic analysis of grape microbiota during wine fermentation reveals the distinction of Cyprus regional terroirs. Front. Microbiol., 2021, vol. 12.
DOI:10.3389/fmicb.2021.726483
Gao, F.-K., Dai C.-C., Liu X.-Z. Mechanisms of fungal endophytes in plant protection against pathogens. Afr. J. Microbiol. Res., 2010, vol. 4, pp. 1346-1351.
Setati M. E., Jacobson D., Andong U.-C.
The vineyard yeast microbiome, a mixed model microbial map. PLoS One, 2012, vol. 7, iss. 12.
DOI:10.1371/journal.pone.0052609
Liu Y., Rousseaux S., Tourdot-Marechal R., Sadoudi M. Wine microbiome, a dynamic world of microbial interactions. Crit. Rev. Food Sci. Nutr., 2015, vol. 57, iss. 4. DOI: 10.1080/10408398.2014.983591
Martins G., Vallance J., Mercier A., Albertin W. Influence of the farming system on the epiphytic yeasts and yeast-like fungi colonizing grape berries during the ripening process. Int. J. Food Microbiol., 2014, vol. 177,
pp. 21-28.
D0I:10.1016/j.ijfoodmicro.2014.02.002
Sun D. Analysis of microbial community diversity of muscadine grape skins // Food Research International, 2021, vol. 145, iss. 2. D0I:10.1016/j.foodres.2021.110417
Capozzi V., Garofalo C. Microbial terroir and food innovation: the case of yeast biodiversity in wine. Microbiol. Res., 2015, vol. 181, p. 75-83.
Costantini A., Vaudano E., Pulcini L. Yeast biodiversity in vineyard during grape ripening: comparison between culture dependent and NGS analysis. MDPI, 2022, vol. 10, iss. 5. D0I:10.3390/pr10050901
Fleet G.H., Prakitchaiwattana C., Heard G. «The yeast ecology of wine grapes», in biodiversity and biotechnology of wine yeasts. Biology, 2002, pp. 1-17.
Mezzasalma V., Sandionigi A., Guzzetti L.,
Galimberti A. Geographical and cultivar features differentiate grape microbiota in northern Italy and Spain vineyards. Front. Microbiol, 2018, vol. 9.
D0I:10.3389/fmicb.2018.00946
Wei R. Community succession of the grape epidermis microbes of Cabernet Sauvignon (Vitis vinifera L.) from different regions in China during fruit development. Int. J. Food Microbiol., 2022, vol. 362. DOI: 10.1016/j.ijfoodmicro.2021.109475
Salvetti E., Campanaro S., Campedelli I., Fracchetti F. et al. Whole-metagenomesequencing-based community profiles of Vitis vinifera L. cv. Corvina berries withered in two post-harvest conditions. Front. Microbi
ol., 2016, vol. 7, iss. 70, pp. 1-17. DOI:10.3389/fmicb.2016.00937
Portillo M., Del C., Franquиs J., Araque I. Bacterial diversity of Grenache and Carignan grape surface from different vineyards at Priorat wine region (Catalonia, Spain). Int. J. Food Microbiol., 2016, vol. 219, pp. 56-63. DOI: 10.1016/j.ijfoodmicro.2015.12.002
Mezzasalma V. Grape microbiome as a reliable and persistent signature of field origin and environmental conditions in Can- nonau wine production. PLoS ONE, vol. 12(9). DOI:10.1371/journal.pone.0184615
Castrillo D., Rabunal E., Neira N., Blanco P. Yeast diversity on grapes from Galicia, NW Spain: biogeographical patterns and the influence of the farming system. OENO One, 2019, vol. 53, pp. 573-587. DOI:10.20870/oeno-one.2019.53.3.2379
Miura T. Is microbial terroir related to geographic distance between vineyards? Environmental Microbiology Reports, vol. 9(6). pp. 742-749. DOI: 10.1111/17582229.12589
Размещено на Allbest.ru
...Подобные документы
Анализ возможности использования тихоходок в качестве биоиндикаторов степени нарушения среды, в частности, загрязнения воздуха. Условия существования тихоходок. Влияние степени нарушения среды на сообщества тихоходок эпифитных мхов и лишайников г. Москвы.
дипломная работа [4,0 M], добавлен 27.01.2018История развития паразитизма как формы взаимоотношения между паразитами и их хозяевами. Рассмотрение видов факультативных и облигатных микроорганизмов. Описание процессов мутации и рекомбинации генов - основной силы эволюции микробного паразитизма
презентация [247,6 K], добавлен 28.12.2011Описание структуры воды пресных водоемов и донных иловых отложений. Характеристика почвы как среды обитания микроорганизмов. Исследование влияния вида и возраста растений на ризосферную микрофлору. Рассмотрение микробного населения почв разных типов.
курсовая работа [45,7 K], добавлен 01.04.2012Седиментационный метод изучения микрофлоры воздуха. Определение микробного числа патогенных микроорганизмов. Результаты визуального обследования тестируемых помещений. Культуральные особенности микроорганизмов. Непатогенные бактерии, определение.
курсовая работа [771,7 K], добавлен 28.09.2017Результаты мониторинга сообщества эктопаразитов серой крысы в Казахстане, Узбекистане, Таджикистане и Чуйской долине Киргизии. Роль паразитических членистоногих в эпидемиологии и эпизоотологии инфекционных заболеваний. Клещи и блохи в г. Бишкеке.
статья [17,4 K], добавлен 16.02.2015Особенности характера внутривидовых взаимоотношений особей, структура сообщества животных и механизмы ее поддержания. Основные формы социальных структур особей. Понятие анонимного сообщества, агрегация и скопление. Индивидуализированный тип сообществ.
контрольная работа [23,1 K], добавлен 12.07.2011- Эпифитная лихенобиота смешанных и широколиственных лесов окрестностей села Зилаир Зилаирского района
Определение степени сходства видового состава лишайников на разных породах деревьев. Экологическая оценка местообитаний эпифитных лишайников. Приуроченность эпифитных лишайников окрестностей села Зилаир Зилаирского района к определенным породам деревьев.
дипломная работа [3,2 M], добавлен 13.11.2014 - Современное состояние авифауны населенного пункта Аксубаево (Республика Татарстан) в 2014-2017 годах
Изучение видового и количественного состава птиц населенного пункта Аксубаево. Экологическая характеристика сообщества птиц в 2014-2017 годах. Определение структурного разнообразия местности и степени антропогенного влияния на структуру сообщества птиц.
курсовая работа [3,8 M], добавлен 10.04.2017 Понятие и значение в природе биоразнообразия. Возникновение и особенности островных экосистем, их география, этапы и направления исторического развития. Влияние человеческого фактора на биоразнообразие островов. Стратегия и тактика охраны природы.
курсовая работа [47,5 K], добавлен 09.12.2013Характер роста периодической культуры. Эффективность использования субстрата для достижения конечной емкости. Хемостат как модель роста микроорганизмов в природных системах. Способность микроорганизмов выживать в условиях голодания и при стрессе.
курсовая работа [936,8 K], добавлен 29.01.2013Растительные сообщества разных типов растительности, обитающих в пределах какого-либо участка земной поверхности. Культурная растительность и оценка сельскохозяйственных земель. Стадии восстановительной сукцессии травянистых сообществ в городе.
контрольная работа [26,4 K], добавлен 27.11.2011Определение, история выделение и изучения строматолитов - класса ископаемых фитогенных построек, прикрепленных к субстрату и имеющих характерные морфологические и текстурно-структурные признаки. Обнаружение и обработка строматолитов, их систематика.
курсовая работа [62,5 K], добавлен 13.12.2015Ячмень как древнейшая культура, наиболее распространенная на Земле, его применение в народном хозяйстве. Строение побега ячменя гривастого – эволюционно и генетически близкого дикорастущего родича ячменя культурного. Характеристика диких видов злаков.
реферат [1,0 M], добавлен 07.02.2015Методы изучения морфологии микроорганизмов. Правила работы в микробиологической лаборатории. Микроскопия в светлом поле. Установка света по Келеру. Изображения фиксированных препаратов, полученные в результате исследования метода изучения морфологии.
лабораторная работа [925,0 K], добавлен 14.05.2009Растения, обладающие лекарственными свойствами. Применение лекарственных растений в медицине, ветеринарии и пищевой промышленности. Свойства адониса амурского, аира обыкновенного, бадана тихоокеанского, винограда амурского и девясила японского.
презентация [328,4 K], добавлен 18.11.2014Исследование данных о строении, жизнедеятельности и экологии мелких млекопитающих. Определение зверьков по справочникам-определителям. Годичные и сезонные изменения численности мелких млекопитающих, демографические характеристики популяций лесной мыши.
контрольная работа [23,3 K], добавлен 10.07.2010Участие микроорганизмов в биогеохимических циклах соединений углерода, азота, серы, в геологических процессах. Условия обитания микроорганизмов в почве и воде. Использование знаний о биогеохимической деятельности микроорганизмов на уроках биологии.
курсовая работа [317,9 K], добавлен 02.02.2011Рекреационная трансформация растительного сообщества. Особенности биологии рыжих полевок и малых лесных мышей, жизнедеятельность данных сообществ в условиях рекреационного нарушения леса, а также закономерности их передвижения и динамика подвижности.
дипломная работа [144,8 K], добавлен 01.02.2018Виды микроорганизмов: микробы, спирохеты, риккетсии, вирусы, грибки. Рецепторы клеток: нативные, индуцированные, приобретенные. Характеристика групп микроорганизмов согласно Всемирной организации здравоохранения. Особенности патогенных микроорганизмов.
презентация [999,4 K], добавлен 14.04.2012Химический состав бактериальной клетки. Особенности питания бактерий. Механизмы транспорта веществ в бактериальную клетку. Типы биологического окисления у микроорганизмов. Репродукция и культивирование вирусов. Принципы систематики микроорганизмов.
презентация [35,1 M], добавлен 11.11.2013