Современные представления о действии ауксина. Механизмы трансдукции ауксинового сигнала и физиологическое действие
Исследование механизмов жизнедеятельности растений, требующие участия ауксина. Особенности рецепции и внутриклеточной трансдукции ауксинового сигнала. Особенности взаимодействия транскрипционных факторов и их место в активации ауксин-регулируемых генов.
| Рубрика | Биология и естествознание |
| Вид | лекция |
| Язык | русский |
| Дата добавления | 26.07.2024 |
| Размер файла | 1009,4 K |
Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже
Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.
131. Richter R., Behringer C., Zourelidou M., Schwechheimer C. 2013. Convergence of auxin and gibberellin signaling on the regulation of the GATA transcription factors GNC and GNL in Arabidopsis thaliana. Proc. Natl. Acad. USA. 110: 13192-13197.
132. Rober-Kleber N., Albrechtova J.T., Fleig S., Huck N., Michalke W., Wagner E., Speth V., Neuhaus G, Fischer-Iglesias C. 2003. Plasma membrane H+ATPase is involved in auxin-mediated cell elongation during wheat embryo development. Plant Physiol. 131: 1302-1312.
133. Robert S., Kleine-Vehn J., Barbez E., Sauer M., Paciorek T., Baster P., Vanneste S., Zhang J., Simon S., Covanova M., Hayashi K., Dhonukshe P., Yang Z., Bednarek S.Y., Jones A.M., Luschnig C., Aniento F., Zazimalova E., Friml J. 2010. ABP1 mediates auxin inhibition of clathrin-dependent endocytosis in Arabidopsis. Cell. 143: 111-121.
134. Roberts I., Smith S., Stes E., De Rybel B., Staes A., van de Cotte B., Njo M.F., Dedeyne L., Demol H., Lavenus J., Audenaert D., Gevaert K., Beeckman T., De Smet I. 2016. CEP5 and XIP1/CEPR1 regulate lateral root initiation in Arabidopsis. J. Exp. Bot. 67 (16): 4889-4899.
135. Roosjen M., Paque S., Weijers D. 2018. Auxin response factors: output control in auxin biology. J. Exp. Bot. 69: 179-188.
136. Ruegger M., Dewey E., Gray W.M., Hobbie L., Turner J., Estelle M. 1998. The TIR1 protein of Arabidopsis functions in auxin response and is related to human SKP2 and yeast Grr1p. Genes Dev. 12: 198-207.
137. Sachs T. 1975. The Control of the Differentiation of Vascular Networks. Ann. Bot. 39. 2: 197-204.
138. Sachs, T. 1981. The control of the patterned differentiation of vascular tissues. Adv. Bot. Res. 9: 151-262.
139. Sachs T. 1991. Pattern Formation in Plant Tissues. Cambridge University Press, Cambridge: 248 p.
140. Sachs T. 2000. Integrating cellular and organismic aspects of vascular differentiation. Plant Cell. Physiol. 41: 649-56
141. Sachs T., Thimann K. 1967. The role of auxins and cytokinins in the release of buds from dominance. Amer. J. Bot. 54: 136-144.
142. Sauer M., Balla J., Luschnig C., Wisniewska J., Reinohl V., Friml J., Benkova E. 2006. Canalization of auxin flow by Aux/IAAARF-dependent feedback regulation of PIN polarity. Genes Dev. 20: 2902-2911.
143. Schlereth A., Moller B., Liu W., Kientz M., Flipse J., Rademacher E.H., Schmid M., Jurgens G., Wei-jers D. 2010. MONOPTEROS controls embryonic root initiation by regulating a mobile transcription factor. Nature. 464: 913-916.
144. Sheard L.B., Tan X., Mao H., Withers J., Ben-Nissan G., Hinds T.R., Kobayashi Y., Hsu F.F., Sharon M., Browse J., He S.Y., Rizo J., Howe G.A., Zheng N. 2010. Jasmonate perception by inositol-phosphatepotentiated COI1-JAZ co-receptor. Nature. 468: 400-405.
145. Shi J.-H., Yang Z.-B. 2011. Is ABP1 an Auxin Receptor Yet? Mol. Plant. 4. 4: 635-640.
146. Sievers A., Buchen B., Volkmann D., Hejnowicz Z. 1991. Role of the cytoskeleton in gravity perception. In: The Cytoskeletal Basis of Plant Growth and Form, ed. Lloyd C. London: Acedemic Press, pp. 169-182.
147. Srivastava R., Liu J.X., Guo H., Yin Y., Howell S.H. 2009. Regulation and processing of a plant peptide hormone, AtRALF23, in Arabidopsis. Plant J. 59: 930-939.
148. Stafstrom J., Sussex I.M. 1992. Expression of a ribosomal protein gene in axillary buds of pea seedlings. Plant Physiol. 100: 1494-1502.
149. Staswick P.E., Serban B., Rowe M., Tiryaki I., Maldonado M.T., Maldonado M.C., Suza W. 2005. Characterization of an Arabidopsis enzyme family that conjugates amino acids to indole-3-acetic acid. Plant Cell. 17: 616-627.
150. Staswick P.E., Tiryaki I., Rowe M. 2002. Jasmonate response locus JAR1 and several related Arabidopsis genes encode enzymes of the firefly luciferase super-family that show activity on jasmonic, salicylic, and in-dole-3-acetic acids in an assay for adenylation. Plant Cell. 14: 1405-1415.
151. Strader L.C., Bartel B. 2009. The Arabidopsis pleiotropic drug resistance8/ABCG36 ATP binding cassette transporter modulates sensitivity to the auxin precursor indole-3-butyric acid. Plant Cell. 21: 1992-2007.
152. Strader L.C., Culler A.H., Cohen J.D., Bartel B. 2010. Conversion of endogenous indole-3-butyric acid to indole-3-acetic acid drives cell expansion in Arabidopsis seedlings. Plant Physiol. 153: 1577-1586.
153. Su S.-H., Gibbs N.M., Jancewicz A.L., Masson P.H. 2017. Molecular mechanisms of root gravitropism. Curr. Biol. 27: R964-R972.
154. Swarup K., Benkova E., Swarup R., Casimiro I, Peret, Yang Y., Parry G., Nielsen E., De Smet I., Vanneste S., Levesque M., Carrier D., Nicholas J., Calvo V., Ljung K., Kramer E., Roberts R., Graham N., Marillonnet S., Patel K., Jones J.D.G., Taylor C.G., Schachtman D., May S., Sandberg G., Benfey P., Friml J., Kerr I., Beeckman T., Laplaze L., Ben-nett M.J. 2008. The auxin influx carrier LAX3 pro-motes lateral root emergence. Nature. Cell Biol. 8: 946954.
155. Szemenyei H., Hannon M., Long J.A. 2008. TOPLESS mediates auxin-dependent transcriptional repression during Arabidopsis embryogenesis. Science. 319: 1384-1386.
156. Tan X., Calderon-Villalobos L.I.A., Sharon M., Zheng, Robinson C., Estelle M., Zheng N. 2007. Mechanism of auxin perception by the TIR1 ubiqui-tin ligase. Nature. 446: 640-645.
157. Tanaka M., Takei K., Kojima M., Sakakibara H., Mo-ri 2006. Auxin controls local cytokinin biosynthesis in the nodal stem in apical dominance. Plant J. 45: 1028-1036.
158. Tang L.P., Zhou C., Wang S.S., Yuan J., Zhang X.S., Su Y.H. 2017. FUSCA3 interacting with leafy cotyledon2 controls lateral root formation through regulating YUCCA4 gene expression in Arabidopsis thaliana. New Phytol. 213: 1740-1754.
159. Thimann K.V., Skoog F. 1933. Studies on the growth hormone of plants. III. The inhibitory action of the growth substance on bud development. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 19: 714-716.
160. Tian H., Klambt D., Jones A.M. 1995. Auxin-binding protein 1 does not bind auxin within the endoplasmic reticulum despite this being the predominant subcellular location for this hormone receptor. J. Biol. Chem. 270: 26962-26969.
161. Timpte C. 2001. Auxin binding protein: curiouser and curiouser. Trends Plant Sci. 6: 586-590.
162. Tiwari S.B., Wang X.-J., Hagen G., Guilfoyle T.J. 2001. Aux/IAA proteins are active repressors, and their stability and activity are modulated by auxin. Plant Cell. 13: 2809-2822.
163. Tromas A., Braun N., Muller P., Khodus T., Paponov A., Palme K., Ljung K., Lee J.-Y., Benfey P., Murray J.A.H., Scheres B., Perrot-Rechenmann C. 2009. The auxin binding protein 1 is re-quired for differential auxin responses mediating root growth. PLoS One. 4: e6648.
164. Turner B.M. 2002. Cellular memory and the histone code. Cell. 111: 285-291.
165. Umehara M., Hanada A., Yoshida S., Akiyama K., Ante T., Takeda-Kamiya N., Magome H., Kamiya Y., Shirasu K., Yoneyama K., Kyozuka J., Yamagu-chi S. 2008. Inhibition of shoot branching by new terpenoid plant hormones. Nature. 455: 195-200.
166. Van der Lee R., Buljan M., Lang B., Weatheritt R.J., Daughdrill G.W., Dunker A.K., Fuxreiter M., Gough, Gsponer J., Jones D.T., Kim P.M., Kriwacki R.W., Oldfield C.J., Pappu R., Tompa P., Uversky V.N., Wright P.E., Babu M.M. 2014. Classification of intrinsically disordered regions and proteins. Chem. Rev. 114: 6589-6631.
167. Van Norman J.M., Xuan W., Beeckman T., Benfey P.N. 2013. To branch or not to branch: the role of prepatterning in lateral root formation. Development. 140, 4301-4310.
168. Venis M.A., Napier R.M., Briggs W.R. 1995. Auxin receptors and auxin binding proteins. Crit. Rev. Plant Sci. 14(1): 27-47.
169. Vermeer J.E., Geldner N. 2015. Lateral root initiation in Arabidopsis thaliana: a force awakens. F1000 Prime Reports. 7: 32.
170. Vermeer J.E., von Wangenheim D., Barberon M., Lee Y., Stelzer E.H., Maizel A., Geldner N. 2014. A spatial accommodation by neighboring cells is re-quired for organ initiation in Arabidopsis. Science. 343: 178-183.
171. Von Wangenheim D., Fangerau J., Schmitz A., Smith R.S., Leitte H., Stelzer E.H., Maizel A. 2016. Rules and self-organizing properties of postembry-onic plant organ cell division patterns. Curr. Biol. 26: 439-449.
172. Wabnik K., Kleine-Vehn J., Balla J., Sauer M., Naramoto S., Reinohl V., Merks R.M.H., Govaerts W., Friml J. 2010. Emergence of tissue polarization from synergy of intracellular and extracellular auxin signaling. Mol. Syst. Biol. 6: 447.
173. Weijers D., Wagner D. 2016. Transcriptional responses to the auxin hormone. Annu. Rev. Plant Biol. 67: 539-574.
174. Whitford R., Fernandez A., Tejos R., Perez A.C., Kleine-Vehn J., Vanneste S., Drozdzecki A., Leitner J., Abas L., Aerts M., Hoogewijs K., Baster P., De Groodt R., Lin Y.-C., Storme V., Van de Peer Y., Beeckman T., Madder A., Devreese B., Luschnig C., Friml J., Hilson P. 2012. GOLVEN secretory peptides regulate auxin carrier turnover during plant gravitropic responses. Developmental Cell. 22: 678685.
175. Wilmoth J.C., Wang S., Tiwari S.B., Joshi A.D., Ha-gen G., Guilfoyle T.J., Alonso J.M., Ecker J.R., Reed J.W. 2005. NPH4/ARF7 and ARF19 promote leaf expansion and auxin-induced lateral root for-mation. Plant J. 43: 118-130.
176. Worley C.K., Zenser N., Ramos J., Rouse D., Leyser O., Theologis A., Callis J. 2000. Degradation of Aux/IAA proteins is essential for normal auxin signaling. Plant J. 21: 553-562.
177. Wu M.F., Yamaguchi N., Xiao J., Bargmann B., Estelle M., Sang Y., Wagner D. 2015. Auxin-regulated chromatin switch directs acquisition of flower primordium founder fate. Elife. 4: e09269.
178. Xie X., Yoneyama K., Yoneyama K. 2010. The Strigolactone Story. Annu. Rev. Phytopathol. 48: 93-117.
179. Xu T., Dai N., Chen J., Nagawa S., Cao M., Li H., Zhou Z., Chen X., De Rycke R., Rakusova H., Wang W., Jones A.M., Friml J., Patterson S.E., Bleecker A.B., Yang Z. 2014. Cell surface ABP1-TMK auxinsensing complex activates ROP GTPase signaling. Science. 343: 1025-1028.
180. Xu T., Wen M., Nagawa S., Fu Y, Chen J.-G., Wu M.J., Perrot-Rechenmann C., Friml J., Jones A.M., Yang Z. 2010. Cell surfaceand rho GTPase-based auxin signaling controls cellular interdigitation in Arabidopsis. Cell. 143: 99-110.
181. Xuan W., Audenaert D., Parizot B., Moller B.K., Njo M.F., De Rybel B., De Rop G., Van Isterdael G., Mahonen A: , Vanneste S., Beeckman T. 2015. Root cap-derived auxin pre-patterns the longitudinal axis of the Arabidopsis root. Curr. Biology. 25: 1381-1388.
182. Xuan W., Band L.R., Kumpf R.P., Van Damme D., Parizot B., De Rop G., Opdenacker D., Moller B.K., Skorzinski N., Njo M.F., De Rybel B., Audenaert
183. , Nowack M.K., Vanneste S., Beeckman T. 2016. Cyclic programmed cell death stimulates hormone signaling and root development in Arabidopsis. Science. 351: 384-387.
184. Yamamoto Y., Kamiya N., Morinaka Y., Matsuoka M., Sazuka T. 2007. Auxin biosynthesis by the YUCCA genes in rice. Plant Physiol. 143: 1362-1371.
185. Yang F., Song Y., Yang H., Liu Z., Zhu G., Yang Y. 2014. An auxin responsive endogenous peptide regulates root development in Arabidopsis. J. Integr. Plant Biol. 56: 635-647.
186. Yang T., Poovaiah B.W. 2000. Molecular and biochemical evidence for the involvement of calcium/calmodulin in auxin action. J. Biol. Chem. 275: 3137-3143.
187. Zhang X., Gonzalez-Carranza Z.H., Zhang S., Miao Y., Liu C.-J., Roberts J.A. 2019. F-Box Proteins in Plants. Annu. Plant Rev. Online. 2. 1: 1-21.
188. Zhao Y., Christensen S.K., Fankhauser C., Cashman J.R., Cohen J.D., Weigel D., Chory J. 2001. A role for flavin monooxygenase-like enzymes in auxin biosynthesis. Science. 291: 306-309.
189. Zolman B.K., Silva I.D., Bartel B. 2001. The Arabidopsis pxa1 mutant is defective in an ATP-binding cassette transporter-like protein required for peroxisomal fatty acid P-oxidation. Plant Physiol. 127:
190. 1266-1278.
Размещено на Allbest.Ru
...Подобные документы
Растительные гормоны (фитогормоны): ауксины, цитокинины, гиббереллины, брассиностероиды, абсцизины, этилен. Ауксин и плоды. Ауксин как гербицид. История изучения ауксинов. Биосинтез и деградация ауксинов. Физиологические проявления действия ауксинов.
реферат [18,7 K], добавлен 28.09.2012Формы взаимодействия аллельных генов: полное и неполное доминирование; кодоминирование. Основные типы взаимодействия неаллельных генов: комплементарность; эпистаз; полимерия; гены-модификаторы. Особенности влияния факторов внешней среды на действие генов.
курсовая работа [601,5 K], добавлен 21.09.2010Механочувствительные ионные каналы. Структура рецепторов и апикальная поверхность волосковых клеток. Процесс трансдукции через отклонение волоскового пучка. Особенность волоскового пучка, которая лежит в основе ориентационной избирательности трансдукции.
реферат [13,1 K], добавлен 27.10.2009Дифференциальная экспрессия генов и ее значение в жизнедеятельности организмов. Особенности регуляции активности генов у эукариот и их характеристики. Индуцибельные и репрессибельные опероны. Уровни и механизмы регуляции экспрессии генов у прокариот.
лекция [2,8 M], добавлен 31.10.2016Обмен генетического материала у бактерий при трансформации, конъюгации и трансдукции. Перенос фрагмента ДНК от донорских бактериальных клеток к реципиентным при непосредственном контакте. Перенос, гены специальных и необходимых при конъюгации структур.
реферат [18,9 K], добавлен 27.05.2010Сравнительное рассмотрение постсинаптических механизмов. Рецептия с участием G-белков, системы трансформации внеклеточного сигнала. Роль цАМФ в регуляции пролиферации и дифференцировки нервных клеток и модулирования активности ионных каналов мембран.
курсовая работа [76,2 K], добавлен 27.08.2009Описание комплементарного взаимодействия генов. Рассмотрение характерных особенностей модификационной и наследственной (комбинативной, мутационной) закономерностей изменчивости организма. Задачи и методы селекции растений, животных и микроорганизмов.
реферат [20,8 K], добавлен 06.07.2010Исследование механизмов передачи генетического материала и создание новых способов генетического картирования. Перенос генетического материала с помощью плазмид, с помощью рекомбинации и посредством трансдукции. Генетическое картирование актиномицетов.
реферат [25,9 K], добавлен 15.12.2010Физиологическое действие регуляторов роста растений и роль представлений о гормонах исследований Ч. Дарвина. Эксперименты и испытания химических соединений в качестве средств для управления жизненными процессами и применение их в растениеводстве.
реферат [19,9 K], добавлен 02.04.2009Эволюция представлений о гене. Основные методы идентификации генов растений. Позиционное клонирование (выделение) генов, маркированных мутациями. Выделение генов, маркированных делециями методом геномного вычитания и с помощью метода Delet-a-gen.
контрольная работа [937,4 K], добавлен 25.03.2016Химическая природа, синтез и транспорт фитогормонов. Особенности синтеза ауксинов, гиббереллинов цитокининов и этилена. Физиологическое действие фитогормонов. Общая схема механизмов действия фитогормонов, их рецепторы и практическое использование.
реферат [32,8 K], добавлен 11.12.2013Закономерности жизнедеятельности растительных организмов. Рациональное размещение растений в почвенно-климатических условиях. Механизмы онкопрофилактического действия фитостеринов. Физические и химические компоненты физиологии растений, фотосинтез.
реферат [42,6 K], добавлен 15.12.2009Свойства цитоплазмы, химическая природа и функциональное значение ферментов. Действие недостатка воды на растение. Современные представления о сущности фотосинтеза. Физиологическая роль каротиноидов, химизм аэробной фазы дыхания, заслуга Г. Кребса.
контрольная работа [129,7 K], добавлен 12.07.2010Избыточность структур и функциональных возможностей как один из основных способов обеспечения надежности систем. Характеристика путей стабилизации живых систем. Знакомство с основными приспособлениями растений к действию неблагоприятных факторов.
презентация [2,2 M], добавлен 13.12.2013Формы и размеры бактериальных организмов и их краткая характеристика. Строение бактериальной клетки, движение бактерий. Спорообразование и его биологическая роль, размножение бактерий. Передача признаков с помощью процессов трансдукции и трансформации.
лекция [25,5 K], добавлен 25.03.2013Понятие и общее описание механизма рекомбинации генов, классификация и типы форм его реализации: общей и сайт-специфической. Особенности взаимодействий, обусловленных спариванием оснований между комплементарными цепями гомологичных спиралей ДНК.
курсовая работа [37,4 K], добавлен 18.10.2013Почва как среда обитания и основные эдафические факторы, оценка ее роли и значения в жизнедеятельности живых организмов. Распределение животных в почве, отношение растений к ней. Роль микроорганизмов, растений и животных в почвообразовательных процессах.
курсовая работа [3,7 M], добавлен 04.02.2014Разнообразие генов, регулирующих процесс цветения растений. Схематическое изображение генеративного побега арабидопсиса. Молекулярная характеристика генов, контролирующих идентичность цветковой меристемы. Экспрессия генов идентичности цветковых меристем.
реферат [709,9 K], добавлен 06.01.2010Иерархические уровни передачи внешних сигналов у высших растений: внутриклеточный и межклеточный (организменный). Передача молекулярного сигнала гормональной природы. Взаимодействие с помощью питательных веществ. Характеристика фитогормонов-стимуляторов.
реферат [44,1 K], добавлен 17.08.2015Современные представления о материальных основах наследственности. Исследование закономерности передачи информации. Генетическая организация хромосом, доминантность и рецессивность. Хромосомные основы расщепления и независимого перераспределения генов.
реферат [48,2 K], добавлен 27.01.2010
